Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Генетическая детерминация и механизмы модификационной изменчивости в онтогенезе гипоталамического несахарного диабета

ВАК РФ 03.00.15, Генетика

Содержание диссертации, доктора биологических наук, Хегай, Игорь Ильич

Введение.

Глава 1. Обзор литературы.

1.1. Гипоталамический несахарный диабет.

1.2. Молекулярно-генетический контроль синтеза вазопрессина

1.3. Структура молекулы вазопрессина

1.4. Внутриклеточная трансдукция гормонального сигнала вазопрессина

1.4.1. Рецепторы вазопрессина.

1.4.2. Амплификация гормонального сигнала в почке.

1.4.3. Белки цитоскелета и рециркуляция аквапоринов.

1.4.4. Нефрогенный несахарный диабет.

1.5. Структура и функции почечных канальцев.

1.6. Системные эффекты вазопрессина.

1.6.1. Центральное звено осморегулирующего рефлекса.

1.6.2. Взаиморегуляция нейросекреторных и иммунных процессов.

1.6.3. Координация механизмов кортикостероидной регуляции и осморегуляции.

1.7. Критические периоды в онтогенезе

Введение Диссертация по биологии, на тему "Генетическая детерминация и механизмы модификационной изменчивости в онтогенезе гипоталамического несахарного диабета"

Актуальность проблемы. Наследственные болезни являются предметом комплексных исследований генетических причин возникновения аномальных процессов, развития патологии в онтогенезе и физиологического взаимодействия со структурами других функциональных систем. Генетический аспект проблемы наследственных заболеваний по определению связан с вычленением компонентов генома, подвергшихся мутационному повреждению. В настоящее время известно не менее десяти тысяч генных мутаций, влияющих на жизнеспособность человека (McKusick, 1998; Krawczak et al., 2000). К важнейшим особенностям высших позвоночных относится регуляционный тип развития со сложными формами взаимного влияния морфогенетических процессов в онтогенезе (Корочкин, 1977; Мицкевич, 1978; Конюхов, 1980; Gilbert et al., 1996; Weatherall, 2001). Выяснение точного механизма реализации генетического дефекта в этой связи требует привлечения дополнительных, более общих, системных подходов, используемых, в частности, в физиологии. Физиологические исследования в своём классическом виде прежде всего ориентированы на выяснение основных закономерностей в работе сложных функциональных систем на уровне целого организма. Но понимание этиологии функциональных дефектов, устойчиво передающихся потомкам, невозможно без основополагающих генетических методов анализа. Физиологические признаки проявляются в форме количественно оцениваемых параметров и, за редким исключением, имеют сложную систему генетического контроля (Ohno, 1976; Фогель, Мотульски, 1990; Friedmann, 1990; Gulcher et al., 2001). Особенности проявления наследственных форм гипоталамического несахарного диабета позволяют в данном достаточно редком случае выделить в мутантном фенотипе действие одного гена главного эффекта (Valtin, 1982; Robertson et al., 1995; Hansen et al., 1997; Willcutts et al.,

1999; Grant, 2000). Это свойство наследуемого гипоталамического диабета существенно расширяет возможности проведения полноценного генетического анализа, дополненного необходимыми системными физиологическими экспериментами. Актуальность такого исследования в целом обусловлена возрастающим интересом к генетике человека и заключается в большом научном и практическом значении потенциальных результатов для установления общих закономерностей в развитии генетических болезней. В конкретном плане такой комплексный подход является наиболее продуктивным для поиска новых методов ранней диагностики заболевания и способов терапевтической коррекции патологических симптомов гипоталамического несахарного диабета.

Цель и задачи исследования. Общей целью всех экспериментальных работ, выполненных в ходе исследования, было установление механизмов, детерминирующих на генетическом и физиологическом уровне развитие наследственно обусловленных форм гипоталамического несахарного диабета в постнатальном онтогенезе. Достижение поставленной цели было связано с решением следующих конкретных задач.

1. Исследовать закономерности фенотипического проявления мутации diabetes insipidus (несахарный диабет) у крыс линии Brattieboro, представляющих генетическую модель гипоталамического несахарного диабета, с целью определения количественных параметров, необходимых и достаточных для надёжного генотипирования мутантного генотипа по фенотипу.

2. Локализовать на генетической и цитогёнетической карте крысы Rattus norvegicus гибридологическими и молекулярно-генетическими методами мутантный ген diabetes insipidus.

3. Исследовать экспрессивность гена diabetes insipidus в инбредных линиях гомозиготных мутантов и определить параметры экспрессии, характеризующие мутантный фенотип на уровне популяций.

4. Выявить плейотропные эффекты мутации diabetes insipidus на разных уровнях организации основных функциональных систем, осуществляющих базовые физиологические процессы в организме.

5. Установить характер взаимодействия генов локуса diabetes insipidus и генов тканеспецифичных почечных белков при формировании механизмов осморегуляции в постнатальном онтогенезе.

6. Исследовать стабильность в онтогенезе генетически детерминированных процессов, задействованных в становлении осморегулирующей функции у крыс в норме и при развитии гипоталамического несахарного диабета.

Научная новизна и теоретическая значимость работы. Важнейшим научным результатом является локализация мутантного гена diabetes insipidus, детерминирующего развитие несахарного диабета, на генетической карте крысы Rattus norvegicus и картирование мутантного локуса на цитогенетической карте крысы. Это позволило впервые идентифицировать физическое соответствие хромосомы 3 и группы сцепления IV в геноме крысы. Приоритетность полученных результатов зафиксирована публикациями в ведущих зарубежных генетических изданиях и на сайтах с базами данных по организации генома крысы (Khegay, Golybjatnikova, 1993; Khegay, 1996). Важный вклад в частную генетику крысы составляет феногенетическое описание мутантного признака в инбредных сублиниях гомозиготных мутантов. Впервые было показано, что у генетически идентичных мутантных особей наблюдается высокий уровень модификационной изменчивости фенотипических признаков несахарного диабета. Предложен вероятный механизм возникновения устойчивых фенокопий, основанный на концепции отдалённых эффектов дестабилизации функциональных систем гомеостаза внутренней среды в раннем онтогенезе. На основании выявленных множественных плейотропных эффектов мутации diabetes insipidus, имеющей монолокусное генетическое происхождение, постулируется системный многокомпонентный характер симптомов гипоталамического несахарного диабета.

Практическая ценность работы. Результаты работы расширяют представления об этиологии наследственных форм гипоталамического несахарного диабета. В постнатальном онтогенезе установлены критические периоды развития механизмов нейросекреции вазопрессина и концентрирования выводимой из организма мочи, важные для профилактики возникновения отягощенных форм отклонений от нормальной дефинитивной осморегуляции. Определены теоретически и экспериментально обоснованные критерии генотипирования носителей мутантного гена diabetes insipidus по уровню потребления воды, необходимые для проведения селекционно-генетических экспериментов. Выведены устойчивые жизнеспособные инбредные сублинии гомозиготных мутантных крыс, дающие возможность проведения системных функциональных исследований гипоталамического несахарного диабета на фенотипически индифферентных ранних стадиях онтогенеза. Разработанные методы микроколоночной хроматографии белков нейрогипофиза и ферментной микродиссекции почечных канальцев имеют самостоятельное значение и широко используются в исследовании нормальных физиологических процессов.

Апробация работы. Полученные в ходе исследования результаты были представлены на Международном симпозиуме по нейроэндокринологии «Взаимодействие пептидных и моноаминовых нейрогормонов в нейроэндокринной регуляции» (Ленинград, 1985); на 5-м Съезде ВОГиС им. Н.И. Вавилова (Москва, 1987); на 3-й школе-семинаре по генетике и селекции животных (Новосибирск, 1989); на 1-й Всесоюзной конференции «Геном человека» (Москва, 1990); на Симпозиуме по физиологии почки и водносолевого обмена, (Новосибирск, 1995); на 1-м Всемирном конгрессе по нейрогипофизу и вазопрессину (Точиги, Япония, 1995); на Международных научных конференциях «Эндокринные механизмы регуляции функций в норме и патологии» (Новосибирск, 1997 и 2002); на 2-м Всемирном конгрессе по нейрогипофизарным гормонам (Монреаль, Канада, 1997); на 33-м Международном конгрессе по физиологическим наукам (Санкт-Петербург, 1997); на 17-м и 18-м Съездах Всероссийского физиологического общества им. И.П. Павлова (Ростов-на-Дону, 1998; Казань, 2001); на Международном симпозиуме «Генетика и развитие психо-нейроэндокринных механизмов», (Новосибирск, 1999); на 3-м и 4-м Всемирных конгрессах по нейрогипофизарным гормонам (Эдинбург, Великобритания, 1999; Бордо, Франция, 2001); на 10-м Собрании европейской ассоциации нейроэндокринологов (Мюнхен, Германия, 2002).

Все основные результаты получены автором самостоятельно. На отдельных этапах работы ряд экспериментов выполнен в сотрудничестве с В.А. Шульгой, А.А. Мустаевым, Н.И. Тищенко, Т.С. Морозковой, С.Г. Дзгоевым, С.В. Ивановым, А.А. Тинниковым, Н.Н. Войтенко, Н.А. Поповой, А.В. Катохиным. Особой благодарности заслуживает внимательное отношение к работе и неоценимая роль в успешном осуществлении поставленной цели научного руководителя и консультанта академика РАН Л.Н. Ивановой.

Гранты. Работа была поддержана научными программами «Геном человека» (проект 122-63-89), РФФИ (проекты 97-04-49641 и 00-04-49546).

Структура и объём диссертации. Материалы диссертации изложены на 323 страницах и включают 33 таблицы и 40 рисунков. Список цитированной литературы содержит 879 ссылок на статьи и монографии, в том числе 61 отечественных и 818 зарубежных.

Заключение Диссертация по теме "Генетика", Хегай, Игорь Ильич

Выводы

1. Гипоталамический несахарный диабет, развивающийся у крыс линии Brattleboro к моменту прекращения вскармливания молоком, характеризуется стабильным проявлением симптомов в течение всей последующей жизни особи. Суточное потребление воды в стандартных условиях содержания является устойчивой индивидуальной характеристикой. Установлены достоверные критерии генотипа по уровню среднесуточного потребления воды.

2. Мутантный ген diabetes insipidus сегрегирует сцепленно с маркёрами группы сцепления IV крысы Rattus norvegicus. Установлен следующий порядок расположения локусов на генетической карте: diabetes insipidus - agouti - Svp-1. Осуществлено физическое картирование мутантного локуса на цитогенетической карте хромосомы 3 крысы в районе 3q41-q42.

3. В инбредных сублиниях гомозиготных мутантов сохраняется высокий уровень вариабельности фенотипических признаков несахарного диабета. Индивидуальные значения признака не воспроизводятся в ближайшем поколении потомков, и для отдельных популяций характерны низкие коэффициенты наследуемости.

4. Мутация diabetes insipidus обладает выраженным плейотропным действием. У гомозиготных мутантов существенно изменена возрастная динамика фертильности и показателей иммунного ответа. Мутантные крысы отличаются пониженным уровнем транскортина в начале жизни и низкой активностью моноаминоксидазы типа Б в мозге во второй половине жизни. Мутация влияет на распределение гликозаминогликанов во внутреннем мозговом веществе почки.

5. Гены локуса diabetes insipidus определяют активность генов тканеспецифичных белков в почке. Динамика белка 120 килодальтон во внутреннем мозговом веществе совпадает с уровнем экспрессии нормального

251 гена вазопрессина. Мутантный ген di позитивно контролирует экспрессию гена тропомиозина в наружном мозговом веществе. В канальцах, формирующих мозговое вещество почки, выявлены специфические белковые субстраты активируемой вазопрессином протеинкиназы А.

6. В постнатальном онтогенезе локализованы критические периоды для становления осморегуляции. Функционирование центрального звена, связанного с синтезом и секрецией вазопрессина, устойчиво изменяется после дисбаланса кортикостероидов со второго по пятый день после рождения. Почечные механизмы модифицируются аномальными кортикостероидными воздействиями в период с пятого по девятый день жизни.

7. Таким образом, моногенный гипоталамический несахарный диабет характеризуется широкой нормой реакции признаков мутации. Исследования на линейных крысах показали, что основной вклад в вариабельность вносит модификационная изменчивость, возникающая преимущественно в критические периоды раннего онтогенеза вследствие отсутствия вазопрессина и дестабилизации морфогенетических процессов, сложившихся в ходе эволюции системы осморегуляции.

Заключение

Гипоталамический несахарный диабет относится к системным заболеваниям, имеющим в своей основе дефекты структур головного мозга, проявляющиеся на уровне вегетативных симптомов. Наследственные формы гипоталамического несахарного диабета являются результатом мутационного повреждения гена, кодирующего синтез гормона вазопрессина в ядрах гипоталамуса. Наиболее очевидные признаки несахарного диабета связаны с функциональными нарушениями в нормальной работе почек и отражаются на количестве потребляемой воды, необходимой для поддержания осмотического равновесия внутренней среды. Развитие болезненного состояния в онтогенезе имеет характер отложенной манифестации со значительной вариабельностью симптомов у отдельных индивидов. Наиболее адекватной лабораторной моделью гипоталамического несахарного диабета являются крысы линии Brattleboro с зафиксированной в геноме мутацией diabetes insipidus. Мутация возникла в результате делеции одного гуанина в консервативной средней части гена гормона вазопрессина. Сдвиг рамки считывания полностью блокирует экспрессию гена на уровне трансляции. Отсутствие у гомозиготных мутантов гормона в крови приводит к постепенному развитию несахарного диабета с постоянным мочеизнурением и потреблением воды, достигающим уровня до 100 процентов от веса тела в сутки. Суточное потребление воды в стандартных условиях содержания является устойчивой индивидуальной характеристикой и может быть положено в основу процедуры генотипирования мутантных крыс. По наиболее достоверному соответствию расщепления потомков теоретически ожидаемому были установлены следующие фенотипические критерии дозы мутантного гена. Относительный уровень потребления воды у гомозиготных мутантов составляет 25% и более, вплоть до 100%, у гетерозиготных мутантов потребление воды варьирует от 5 до 25%, крысы нормального генотипа ежесуточно потребляют воду в количестве менее 5% от веса тела.

В серии дигибридных и тригибридных анализирующих скрещиваний было установлено, что мутантный ген diabetes insipidus сегрегирует сцепленно с маркёрами четвёртой группы сцепления крысы Rattus norvegicus. Частота рекомбинаций указывает на следующий порядок расположения локусов на генетической карте: diabetes insipidus - 23,1 ±1,9 сМ - agouti - 8,0±1,2 сМ - Svp-1. Прямая гибридизация молекулярного зонда гена diabetes insipidus с препаратами метафазных хромосом позволила осуществить физическое картирование мутантного локуса на хромосоме 3 крысы в районе 3q41-q42 и привести к взаимному соответствию генетические и цитогенетические сведения, касающиеся данной части генома Rattus norvegicus.

Индивидуальный уровень потребления воды у гомозиготных мутантов, устанавливающийся к моменту эмансипации крысят, стабильно сохраняется в течение последующей жизни, но не воспроизводится в ближайшем поколении потомков. Исследование особенностей наследования мутантного признака у особей трёх инбредных сублиний крыс с мутантным генотипом выявило независимость фенотипического проявления мутации diabetes insipidus от частичного изменения генетического фона. Установлено, что на популяционном уровне мутантный признак характеризуется генотипическим значением 56,78±0,64, а закономерности в частоте и амплитуде наблюдаемых отклонений в отдельных субпопуляциях свидетельствуют о низком коэффициенте наследуемости. Величина коэффициента наследуемости уровня потребления воды, вычисленная для трёх различных по происхождению инбредных субпопуляций, не выходит за пределы 0,09. Такие низкие значения коэффициента наследуемости характерны для генетически стабильных признаков, имеющих отношение к важнейшим для всего организма базовым физиологическим процессам.

Мутация diabetes insipidus оказывает выраженное плейотропное влияние на реализацию в онтогенезе сложных признаков, формирующихся под контролем системных морфогенетических факторов. У гомозиготных мутантов существенно изменена возрастная динамика фертильности, наблюдается более быстрое, чем в норме, снижение основных показателей уровня иммунного ответа в процессе жизнедеятельности. У мутантных крыс с возрастом происходит повышение до нормы изначально пониженного уровня транспортного белка транскортина в крови, имеющее важное адаптивное значение, а сопровождающая общее старение организма активизация в мозге ключевого фермента катаболизма биогенных аминов - моноаминоксидазы формы Б сдвигается на более поздние сроки. Мутантный генотип существенным образом влияет на распределение гликозаминогликанов во внутреннем мозговом веществе почки, участвующих в формировании условий осуществления реабсорбции воды.

Состав генов, зафиксированных в локусе diabetes insipidus, определяет активность тканеспецифичных генов белков почки. У крыс с нормальными генами, осуществляющими эффективный синтез гормона вазопрессина, во внутреннем мозговом веществе выявлен белок массой в 120 килодальтон, реагирующий на интенсивность секреции вазопрессина в кровь. Сроки возникновения реакции белка и амплитуда ответа совпадают с динамикой активности гена вазопрессина в онтогенезе. Мутантный ген diabetes insipidus осуществляет позитивный контроль экспрессии гена тропомиозина в наружном мозговом веществе почки. У гомозиготных мутантов содержание тропомиозина более чем в два раза выше, чем у нормальных крыс, при сравнении в гидратированном состоянии, и почти в три с половиной раза - при дегидратации. Вазопрессин регулирует уровень посттрансляционного фосфорилирования белков в основных канальцевых отделах, формирующих мозговое вещество почки. В присутствии вазопрессина in vitro усиливается включение фосфора в белки молекулярного веса 15, 20, 25 и 33 кДа в собирательных трубках и белки весом 17, 25 «Да в толстом восходящем отделе петли Генле.

Гены локуса diabetes insipidus и гены почечных белков интегрированы в общую систему генетического контроля осморегулирующей функции почки. Межгенное взаимодействие в почке включает дистантный механизм с участием циркулирующего в крови вазопрессина. Отсутствие у гомозиготных мутантов вазопрессина разрушает систему координированной регуляции экспрессии генов специализированных почечных белков. Существенно более низкие, чем у нормальных крыс, суммарные адаптивные возможности осморегуляции у крыс Brattleboro являются как прямым следствием отсутствия центрального регуляторного гормонального звена, так и отражением несбалансированности экспрессии в почке ключевых тканеспецифических генов. Функциональные системы, осуществляющие выполнение физиологических функций на уровне организма, в процессе своего становления проходят через отдельные периоды особенно высокой чувствительности к состоянию гормонального баланса. Гормональные нарушения в такие критические периоды способствуют возникновению различных модифицикаций нормального развития.

Методом экспериментального дисбаланса глюкокортикоидных гормонов, контролируемого по дозе и срокам применения, были локализованы критические для системы осморегуляции периоды. Центральное звено осморегуляции, связанное с синтезом и секрецией вазопрессина, устойчиво изменяет параметры своего функционирования после воздействий в период между вторым и пятым днями после рождения. Внутрипочечные механизмы модифицируются аномальными гормональными воздействиями в период с пятого по девятый день жизни. Основное значение результатов, полученных в экспериментах с воздействиями в раннем онтогенезе, заключается в том, что таким образом был установлен один из наиболее вероятных механизмов возникновения у гомозиготных крыс Brattleboro широкой вариабельности фенотипических признаков несахарного диабета.

Межгенное взаимодействие, существующее на разных уровнях экспрессии генов, позволяет высшим организмам сравнительно успешно преодолевать последствия мутационного повреждения многих важнейших генов. Нормальный ген гормона вазопрессина и мутантный ген diabetes insipidus различным образом определяют возможности центрального звена осморегуляции. Вследствие того, что нейроны, экспрессирующие ген вазопрессина, осуществляют единую нервную и гуморальную регуляцию вегетативных процессов, вазопрессин занимает исключительно важное положение в системе водно-солевого обмена. Эволюционно закрепившаяся система центральной регуляции с участием только одного гормона, синтезируемого непосредственно в нервной системе и выделяемого в кровь нейросекрецией, обеспечивает необходимое адекватное и максимально быстрое развитие ответа на сдвиг изоосмотичности. Генетическая система, поддерживающая монолокусный контроль центральной регуляции осморегулирующих процессов, сформировалась за счёт стабилизирующей формы естественного отбора. Общим направлением эволюции системы осморегуляции после выхода животных на сушу было создание физиологических механизмов поддержания водно-солевого гомеостаза, приспособленных к продолжительному функционированию назависимо от условий внешней среды, но одновременно с этим строго и точно поддерживающих объём и осмотическое давление жидкостей внутри организма. Постепенное усложнение внутренней организации структурных образований, реагирующих на вазопрессин, на каждом этапе естественным отбором закреплялось в геноме. Сложившаяся у высших животных система генетического контроля периферических механизмов, непосредственно осуществляющих осмотически активную работу, отражает эволюционно непрерывный процесс реорганизации на генном уровне и вследствие этого обладает высокой пластичностью. Функциональная стабилизация в эволюции сопровождается прогрессивным усложнением системы морфогенетических корреляций, формируя большой скрытый резерв изменчивости и одновременно создавая всё более устойчивые формы наследования и физиологической приспособляемости. Нормальная экспрессия гена вазопрессина стабилизирует и канализирует развитие структур почки и их функциональные параметры в достаточно узком диапазоне изменчивости. Мутация diabetes insipidus выводит физиологические процессы и систему межгенного взаимодействия из сбалансированного состояния. У крыс Rattus norvegicus, как у эволюционно пластичного вида, дестабилизация вызывает быстрое вскрытие резервов изменчивости. Дестабилизирующий эффект мутации diabetes insipidus дистантно через кровь распространяется на свойства почки. Случайные соотношения между различными факторами развития, сложившиеся в отсутствие вазопрессина в критические для онтогенеза почки периоды, фиксируются в форме устойчивых модификаций и определяют в дальнейшем норму реакции мутантного признака. Наблюдаемая у гомозиготных мутантов значительная вариабельность симптомов несахарного диабета, таким образом, имеет в своей основе разбалансирование генетической системы контроля нормального развития структур почки.

На основании гибридизационного и популяционного анализа мутантного гена diabetes insipidus мы приходим к следующему общему заключению. Несмотря на характер проявления в форме физиологических реакций, размах модификационной изменчивости мутантного признака у крыс Brattleboro детерминируется преимущественно генотипом. Осуществляемые вазопрессином процессы регулирования объёмов выводимой мочи и поддержания водно-электролитного равновесия имеют важнейшее для животных после выхода на сушу значение и находятся под защитой сложно организованной многоуровневой системы генетического контроля, сложившейся в ходе всей эволюции животных и поддерживаемой стабилизирующей формой естественного отбора. Мутационное повреждение, касающееся гена вазопрессина, дестабилизирует всю систему

249 морфогенетического контроля в онтогенезе нормального развития системы осморегуляции. Возникновение в линиях гомозиготных мутантных крыс устойчивых фенокопий с различным уровнем экспрессии мутантного гена является наиболее быстрой и динамичной формой адаптивной реакции. Таким единственно возможным образом у генетически однородных животных формируется резерв адаптивных морфофункциональных вариантов, попадающий под действие естественного отбора для последующего эволюционного закрепления в наиболее приспособленных к отсутствию вазопрессина генокопиях.

Библиография Диссертация по биологии, доктора биологических наук, Хегай, Игорь Ильич, Новосибирск

1. Акмаев И.Г. Структурные основы механизмов гипоталамической регуляции эндокринных функций. М. Наука. 1979. С. 1-227.

2. Аргутинская С.В., Аршинова Т.В., Селятицкая В.Г., Салганик Р.И. Исследование причин снижения индукции ферментов при длительном введении гормона: рецепция кортизола в клетках печени крыс // Проблемы эндокринологии. 1981. Т. 27. С. 43-48.

3. Войтенко Н.Н., Попова Н.К. Моноаминоксидазы мозга при старении // Вопросы Мед Химии. 1991. Т. 37. С. 28-31.

4. Гинецинский А.Г., Васильева В.Ф., Закс М.Г., Наточин Ю.В., Соколова М.М. Методы исследования осморегулирующей системы рыб. В кн. Руководство по методике исследований физиологии рыб. М. Изд. АН СССР. 1962. С. 204216.

5. Гинецинский А.Г. Физиологические механизмы водно-солевого равновесия. М. Изд. АН СССР. 1963. С. 1-427.

6. Горкин В.З. Аминоксидазы и их значение в медицине. М. Медицина. 1981. С. 1-100.

7. Графодатский А.С., Раджабли С.И. Хромосомы сельскохозяйственных и лабораторных млекопитающих. Новосибирск. Наука. 1988. С. 1-127.

8. Дзгоев С.Г., Иванова Л.Н. Фосфорилирование белков клеток собирательных трубок под влиянием вазопрессина // Биохимия. 1991. Т. 56. С. 1011-1017.

9. Длоуга Г. Микропункционное исследование некоторых показателей функции почки в процессе развития //Журн Эвол Биохим Физиол. 1975. Т. 11. С. 5364.

10. Длоуга Г., Кршечек И., Наточин Ю.В. Онтогенез почки. Ленинград. Наука. 1981. С. 1-184.

11. Доис Э. Количественные проблемы биохимии. М. Мир. 1983. С. 1-373.

12. Дыгало Н.Н., Науменко Е.В. Влияние гормонов надпочечников плода на реактивность гипоталамо-гипофизарно-адренокортикальной системы взрослых крыс//Онтогенез. 1984. Т. 15. С. 215-219.

13. Дыгало Н.Н., Маркель А.Л., Науменко Е.В. Пренатальная модификация гидрокортизоном адренокортикальной функции взрослых крыс с наследственно обусловленной артериальной гипертензией // Бюлл Эксп Биол Мед. 1987. Т. 103. С. 287-289.

14. Иванова Л.Н., Горюнова Т.Е., Климова В.П. Активность тканевой гиалуронидазы в почке крыс в условиях дегидратации и действия экзогенного антидиуретического гормона//Докл АН СССР. 1975. Т. 224. С. 1209-1211.

15. Иванова Л.Н., Мелиди Н.Н. О роли кислых мукополисахаридов почки в механизме реабсорбции осмотически свободной воды. Бюлл Эксп Биол Мед. 1975. Т. 79. С. 18-21.

16. Иванова Л.Н., Зеленина М.Н., Мелиди Н.Н., Солёнов Е.И., Хегай И.И. Вазопрессин: онтогенез антидиуретического действия на клеточном уровне // Физиол Журн СССР им. Сеченова. 1989. Т. 75. С. 970-979.

17. Иванова Л.Н., Зеленина М.Н., Логвиненко Н.С., Солёнов Е.И., Свиташева Н.Г. Возрастные изменения молекулярных механизмов гормональной регуляции функции почек//Журн Эвол Биохим Физиол. 1990. Т. 26. С. 482489.

18. Кассирский И.А. Справочник по функциональной диагностике. М. Медицина. 1970. С. 1-848.

19. Конюхов Б.В. Генетика развития позвоночных. М. Наука. 1980. С. 1-291.

20. Корочкин Л.И. Взаимодействие генов в развитии. М. Наука. 1977. С. 1-280.

21. Кржечек И. О возможности влияния на регуляцию приёма соли и воды в критические периоды развития крыс//Журн Эвол Биохим Физиол. 1975. Т. 11. С. 573-581.

22. Лакин Г.Ф. Биометрия. М. Высшая школа. 1980. С. 1-293.

23. Майр Э. Систематика и происхождение видов. М. ИЛ. 1947. С. 1-199.

24. Манк М. Биология развития млекопитающих. М. Мир. 1990. С. 144-152.

25. Маркель А.Л., Казин Э.М., Лурье С.Б., Науменко Е.В. Влияние введений преднизолона в раннем постнатальном онтогенезе на циркадный ритм кортикостероидной функции у взрослых крыс//Онтогенез. 1978. Т. 9. С. 160165.

26. Маслова Л.Н., Никулина Э.М., Попова Н.К., Науменко Е.В. Нарушение синтеза катехоламинов в раннем онтогенезе и состояние гипофизарно-адренокортикальной системы у взрослых крыс// Онтогенез. 1984. Т. 15. С. 327-332.

27. Маслова Л.Н., Рязанцева Н.В. Влияние стресса и введения гидрокортизона в ранний постнатальный период на функцию гипофизарно-надпочечниковой системы взрослых крыс// Изв СО АН СССР. 1984. Т. 6. С. 104-109.

28. Мицкевич М.С. Гормональные регуляции в онтогенезе животных. 1978. М. Наука. С. 1-222.

29. Морозова Т.М., Сонич В.В., Салганик Р.И. Формирование в онтогенезе рецепторов глюкокортикоидных гормонов в хроматине и цитоплазме печени крыс//Онтогенез. 1973. Т. 4. С. 154-160.

30. Наточин Ю.В. Водно-солевой гомеостаз: эволюция и экология. Серия Научные доклады. Коми филиал АН СССР. 1982. С. 1-48.

31. Наточин Ю.В., Длоуга Г., Лаврова Е.А., Печуркина Н.И., Подсекаева Г.В., Шахматова Е.И. Осморегулирующая функция почки и деятельность петель Генле у водяных крыс, песчанок и крыс Браттлеборо // Физиол Журн СССР им. Сеченова. 1983. Т. 69. С. 695-700.

32. Наточин Ю.В. Уровни и механизмы интеграции в деятельности почки // Успехи Физиол Наук. 1988. Т. 19. С. 3-23.

33. Наточин Ю.В. Физиология водно-солевого обмена и почки. Санкт-Петербург. Наука. 1993. С. 1-576.

34. Науменко Е.В., Дыгало Н.Н., Кудрявцева Н.Н. Норадреналиновые механизмы головного мозга взрослых крыс после воздействия гидрокортизоном в пренатальный период //Докп АН СССР. 1979. Т. 248. С. 1004-1006.

35. Науменко Е.В., Попова Н.К., Иванова Л.Н. Нейроэндокринные и нейрохимические механизмы доместикации животных // Генетика. 1987. Т. 23. С. 1011-1025.

36. Науменко Е.В., Попова Н.К. Онтогенетические и генетико-эволюционные аспекты нейроэндокринной регуляции стресса. Новосибирск. Наука. 1990. С. 40-66.

37. Неженцев М.В. Влияние гидрокортизона на рост белых крыс в различные возрастные периоды //Журн Эвол Биохим Физиол. 1981. Т. 17. С. 151-158.

38. Никитин П.И., Тверской Г.Б. Изменение антидиуретической и окситотической активностей нейрогипофиза в онтогенезе // Физиол Журн СССР им.Сеченова. 1951.Т. 37. С. 205-208.

39. Новикова Н.М., Грищенков В.Г. Влияние односторонней нефрэктомии на количественные изменения белка и РНК митохондрий почек у животных различных возрастов. В кн. Физиологические и молекулярные аспекты онтогенеза. Киев. Наукова думка. 1977. С. 101-107.

40. Панков Ю.А., Усватова А.И. Методы исследования некоторых гормонов и медиаторов. М. Наука. 1965. С. 137-145.

41. Перцева М.Н. Молекулярные основы развития гормонокомпетентности. Ленинград. Наука. 1989. С. 1-251.

42. Поленов А.Л. Гипоталамическая нейросекреция. Ленинград. Наука. 1971. С. 1-158.

43. Попова Н.К., Войтенко Н.Н., Маслова Л.Н. Влияние эмоционального стресса и кортикостерона на активность моноаминоксидаз мозга крыс // Вопросы Мед Химии. 1989. Т. 35. С. 114-119.

44. Робинсон Р., Маркель А.Л. Генетика норвежской крысы. Новосибирск. ИЦиГ СО РАН. 1994. С. 1-206.

45. Розен В.Б. Основы эндокринологии. М. Высшая школа. 1984. С. 1-336.

46. Салганик Р.И., Грязнова И.М., Маркель А.Л., Багинская Н.В. Влияниевведения кортизола и стрессорных воздействий в раннем онтогенезе нагормональную индукцию у взрослых крыс//Онтогенез. 1978. Т. 9. С. 193-196.

47. Салганик Р.И., Соловьёва Н.А., Мананкова Н.М., Томсонс В.И. Коррекция наследственных ферментопатий в эксперименте путём неонатальной индукции ферментов // Вопросы Мед Химии. 1982. Т. 28. С. 8-15.

48. Северин Е.С., Кочеткова М.Н. Роль фосфорилирования в регуляции клеточной активности. М. Наука. 1985. С. 1-288.

49. Северцов А.С. Возникновение пластичных признаков фенотипа под действием отбора //Журн Общ Биол. 1985. Т. 61. С. 579-589.

50. Солёнов Е.И., Логвиненко Н.С., Зеленина М.Н., Дзгоев С.Г., Иванова Л.Н. Изменение рецепторного звена в процессе развития чувствительности почки к альдостерону и антидиуретическому гормону // Физиол Журн СССР им. Сеченова. 1986. Т. 72. С. 1673-1679.

51. Тинников А.А., Бажан Н.М. Определение глюкокортикоидов в плазме крови и инкубатах надпочечников методом конкурентного связывания гормонов с белками без предварительной экстракции //Лаб Дело. 1984. Т. 12. С. 709713.

52. Тырышкина Е.М. Динамика активности интерстициальных волюморецепторов печени в условиях различной стимуляции // Физиол Журн СССР им. Сеченова. 1989. Т. 75. С. 1752-1766.

53. Финкинштейн Я.Д. Осморегулирующая система организма высших животных. Новосибирск. Наука. 1983. С. 1-125.

54. Фогель Ф., Мотульски А. Генетика человека. М. Мир. 1990. Т. 3. С. 1-366.

55. Фролькис В.В. Биология старения. М. Наука. 1982. С. 5-23.

56. Хегай И.И., Тищенко Н.И., Иванова Л.Н. Влияние генетического фона на жизнеспособность крыс с наследственным несахарным диабетом // Генетика. 1986. Т. 22. С. 55-61.

57. Хегай И.И., Дзгоев С.Г. Фосфорилирование белков в чувствительных к вазопрессину отделах нефронов почек у крыс // Физиол Журн им. И.М. Сеченова. 1996. Т. 82. С. 105-110.

58. Хегай И.И. Особенности экспрессии гена di (diabetes insipidus) в гомологичных инбредных линиях крыс// Генетика. 2002. Т. 38. С. 1677-1681.

59. Хегай И.И. Фенотипическое проявление мутантного гена diabetes insipidus у крыс и критерии генотипирования по фенотипу // Генетика. 2003. Т. 39. С. 7276.

60. Шмальгаузен И.И. Факторы эволюции (теория стабилизирующего отбора). М. Наука. 1968. С. 1-451.

61. Acher R. The neurohypophysial hormone-neurophysin precursors: composite biosynthesis and composite evolution. In: Imura H., Shizume K., Yosida S. (eds). Progress in endocrinology. Elsevier. Excerpta Medica. 1988. V. 2. P. 1505-1526.

62. Acher R. Neurohypophysial peptide systems: Processing machinery, hydroosmic regulation, adaptation and evolution // Regul Peptides. 1993. V. 45. P. 1-13.

63. Adashi E.Y., Tucker E.M., Hsueh A.J.W. Direct regulation of rat testicular steroidogenesis by neurohypophyseal hormones // J Biol Chem. 1984. V. 259. P. 5440-5445.

64. Ader R., Friedman S.B., Grota L.I. Emotionality and adrenal cortical function: effects of strain test and the 24-hour corticosterone rhythm // Animal Behav. 1967. V. 15. P. 37-44.

65. Agre P., Preston G.M., Smith B.L., Jung J.S., Raina S., Moon C., Guggino W.B., Nielsen S. Aguaporin CHIP: The archetypal molecular water channel // Am J Physiol. 1993. V. 265. P. F463-F476.

66. Aguilera G., Rabadan-Diehl C. Vasopressinergic regulation of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis: implications for stress adaptation // Regul Pept. 2000. V. 96. P. 23-29.

67. Alberts В., Bray D., Lewis J., Raff M., Roberts K., Watson, J.D. Molecular Biology of The Cell. Garland Publishing. 1994. P. 1-361.

68. Almeida T.A., Perez J.A., Pinto F.M. Size-fractionation of RNA by hot agarose electrophoresis // Bio.Techniques. 2000. V. 28. P. 414-416.

69. Andersson B. Regulation of water intake // Physiol Rev. 1978. V. 58. P. 582-603.

70. Andersson В., Leksell L.G., Olsson K. Role of sodium in cerebral control of body fluid homeostasis. In: Takacs L. (ed). Kidney and body fluids. Budapest. Pergamon Press. 1980. V. 11. P. 601-610.

71. Ando Y., Asano Y. Luminal prostaglandin E2 modulates sodium and water transport in rabbit cortical collecting ducts //Am J Physiol. 1995. V. 268. P. F1093-F1101.

72. Andreoli Т.Е., Grantham 1.1., Rector F.C. Disturbances in body fluid osmolality. NY. Am Physiol Soc. 1977. P. 85-97.

73. Ang V.T.Y., Jenkins J.S. Neurohypophyseal hormones in the adrenal medulla //J Clin Endocrinol Metab. 1984. V. 58. P. 688-691.

74. Angelogianni P., Li H.L., Gianoulakis C. Ontogenesis of proopiomelanocortin and its processing to beta-endorphin by the fetal and neonatal rat brain // Neuroendocrinology. 2000. V. 72. P. 231-241.

75. Antoni F.A. Novel ligand specificity of pituitary vasopressin receptors in the rat // Neuroendocrinology. 1984. V. 39. P. 186-188.

76. AshkarZ.M., Martial S., Isozaki Т., Price S.R., Sands J.M. Urea transport in initial IMCD of rats fed a low-protein diet: functional properties and mRNA abundance // Am J Physiol. 1995. V. 268. P. F1218-F1223.

77. Baddouri K., Marchetti J., Hilali M., Menard J. Measure de I'hormone antidiuretique et de I'activite renine plasmatiques (Jaculus orientalis et Jaculus deserti) // Endocrinologue. 1981. V. 292. P. 111-1143-111-1146.

78. Baertschi A.J., Friedli M. A novel type of vasopressin receptor on anterior pituitary corticotrophs? // Endocrinology. 1985. V. 116. P. 499-502.

79. Bagnasco S.M., Peng Т., Janech M.G., Karakashian A., Sands J.M. Cloning and characterization of the human urea transporter UT-A1 and mapping of the human Slc14a2 gene//Am J Physiol. 2001. V. 281. P. F400-F406.

80. Bahnsen U., Oosting P., Swaab D., Nahke P., Richter D., Schmale H. A missense mutation in the vasopressin-neurophysin precursor gene cosegregates with human autosomal dominant neurohypophyseal diabetes insipidus // EMBO J. 1992. V. 11. P. 19-23.

81. Bajjalieh S.M., Scheller R.H. The biochemistry of neurotransmitter secretion // J Biol Chem. 1995. V. 270. P. 1971-1974.

82. Bakker J.M., Schmidt E.D., Kroes H., Kavelaars A., Heijnen C.J., Tilders F.J., van Rees E.P. Effects of neonatal dexamethasone treatment on hypothalamo-pituitary adrenal axis and immune system of the rat//J Neuroimmunol. 1997. V. 74. P. 6976.

83. Bankir L., de Rouffignac C. Urinary concentrating ability: insights from comparative anatomy//Am J Physiol. 1985. V. 249. P. R643-R666.

84. Barany M., Barany K. Protein phosphorylation during contraction and relaxation. In: Barany M. (ed.). Biochemistry of Smooth Muscle Contraction. Academic Press. 1996. P. 321-339.

85. Barkalow K., Witke W., Kwiatkowski D. J., Hartwig J. H. Coordinated regulation of platelet actin filament barbed ends by gelsolin and capping protein // J Cell Biol. 1996. V. 134. P. 389-399.

86. Barnes L.D., Hiu Y., Frohnert P.O., Dousa T.P. Subcellular distribution of the enzymes related to the cellular action of vasopressin in renal medulla // Endocrinology. 1975. V. 96. P. 119-125.

87. Baron M. D., Davison M. D., Jones P., Critchley D. R. The sequence of chick alpha-actinin reveals homologies to spectrin and calmodulin // J Biol Chem. 1987. V. 262. P. 17623-17629.

88. Bartl S., Baltimore D., Weissman I.L. Molecular evolution of the vertebrate immune system // Proc Natl Acad Sci USA. 1994. V. 91. P. 10769-10770.

89. Bastien L., Sawyer N., Grygorczyk R., Metters K., Adam M. Cloning, functional expression, and characterization of the human prostaglandin E2 receptor EP2 subtype // J Biol Chem. 1994. V. 269. P. 11873-11877.

90. Bayle F., Eloy L., Trinh-Trang-Tan M.M., Grunfeld J.P., Bankir L. Papillary plasma flow in rats. 1. Regulation of urine osmolality in normal and Brattleboro rats with hereditary diabetes insipidus//Pflugers Arch. 1982. V. 394. P. 211-216.

91. Beach R.E., Good D.W. Effects of adenosine on ion transport in rat medullary thick ascending limb // Am J Physiol. 1992. V. 263. P. F482-F487.

92. Beane M.L., Cole M.A., Spencer R.L., Rudy J.W. Neonatal handling enhances contextual fear conditioning and alters corticosterone stress responses in young rats // Horm Behav. 2002. V. 41. P. 33-40.

93. Beisel K.W., Kennedy J. Identification of novel alternatively spliced isoforms of tropomyosin-encoding gene, TMnm, in the rat//Gene. 1994. V. 143. P. 251-256.

94. Bell J., Adler M.W., Greenstein J.I., Liu-Chen L.Y. Identification and characterization of 125l.arginine vasopressin binding sites on human peripheral blood mononuclear cells // Life Sci. 1993. V. 52. P. 95-105.

95. Bellon G., Pavirani A. Genetic therapy in mucoviscidosis//Arch Pediatr. 2000. V. 2. P. 355-357.

96. Bender W., Spierer P., Hogness D.S. Chromosomal walking and jumping to isolate DNA from the Ace and Rosy loci and the bithorax complex Drosophila // J Mol Biol. 1983. V. 168. P. 17-33.

97. Bennett M.K., Garcia-Arraras J.E., Elferink L.A., Peterson K., Fleming A.M., Hazuka C.D., Scheller R.H. The syntaxin family of vesicular transport receptors // Cell. 1993. V. 74. P. 863-8873.

98. Berliner R.W. The concentrating mechanism in the renal medulla // Kidney Internal 1976. V. 9. P. 214-222.

99. Bertranpetit J., Calafell F. Genetic and geographical variability in cystic fibrosis: evolutionary considerations. In: Weiss K. (ed) Variation in the human genome. England. Wiley. Chichester. 1996. P. 97-114.

100. Beuret N., Rutishauser J., Bider M.D., Spiess M. Mechanism of endoplasmic reticulum retention of mutant vasopressin precursor caused by a signal peptide truncation associated with diabetes insipidus // J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 18965-18972.

101. Bicknell R.J., Leng G. Endogenous opiates regulate oxytocin but not vasopressin secretion from the neurohypophysis // Nature. 1992. V. 298. P. 161162.

102. Biemesderfer D., Mentone S.A., Mooseker M,, Hasson T. Expression of myosin VI within the early endocytic pathway in adult and developing proximal tubules // Am J Physiol. 2002. V. 282. P. F785-F794.

103. Birnbaumer M., Seibold A., Gilberts., Ishido M., Barberis C., Antaramian A., Brabet P., Rosenthal W. Molecular cloning of the receptor for human antidiuretic hormone // Nature. 1992. V. 357. P. 333-335.

104. Birnbaumer M., Gilbert S., Rosenthal W. An extracellular CNDI mutation of the vasopressin receptor reduces cell surfase expression, affinity for ligand and coupling to the G/adenylyl cyclase system // Molec Endocrinol. 1994. V. 8. P. 886894.

105. Blackett P.R., Seif S.M., Altmiller D.H., Robinson A.G. Familial central diabetes insipidus: vasopressin and nicotine stimulated neurophysin deficiency with subnormal oxytocin and estrogen stimulated neurophysin //Am J Med Sci. 1983. V. 286. P. 42-46.

106. Blanchoin L., Pollard T.D. Mechanism of interaction of Acan-thamoeba actophorin (ADF/Cofilin) with actin filaments // J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 15538-15546.

107. Blass E.M., Epstein A.N. A lateral preoptic osmosensitive zone for thirst in the rat // J Comp Physiol Psychol. 1971. V. 76. P. 378-394.

108. Block L.H., Furrer J., Locher R.A., Siegenthaler W., VetterW. Changes in tissue sensitivity to vasopressin in hereditary hypothalamic diabetes insipidus // Klin Wochenschr. 1981. V. 59. P. 831-836.

109. Blondeau В., Lesage J., Czernichow P., Dupouy J.P., Breant B. Glucocorticoids impair fetal (3-cell development in rats // Am J Physiol. 2001. V. 281. P. E592-E599.

110. Blotner H. Primary or idiopathic diabetes insipidus: A system disease // Metabolism. 1958. V. 7. P. 191-200.

111. Bockaert J., Roy C., Rajerison R., Jard S. Specific binding of (3H) lysine-vasopressin to pig kidney plasma membranes: relationship of receptor occupancy to adenylate cyclase activity // J Biol Chem. 1973. V. 248. P. 5922-5930.

112. Bolognani F., Goya R.G. Gene therapy in the neuroendocrine system: its implementation in experimental models using viral vectors // Neuroendocrinology. 2001. V. 73. P. 75-83.

113. Bonilla-Felix M., Jiang W. Aquaporin-2 in the immature rat: expression, regulation, and trafficking // J Am Soc Nephrol. 1997. V. 8. P. 1502-1509.

114. Bonvalet J.-P., Champion M., Courtaion A., Farman N., Wandewalle A., Wanstok F. Number of glomeruli in normal and hypertrophied kidneys of mice and guinea pigs // J Physiol. 1977. V. 269. P. 627-641.

115. Bonvalet J.-P., Pradelles P., Farman N. Segmental synthesis and action of prostaglandins along nephron //Am J Physiol. 1987. V. 253. P. 377-387.

116. Bouby N., Trinh-Trang-Tan M., Doute M., Bankir L. Effects of osmolality and antidiuretic hormone on prostaglandin synthesis by renal papilla // Pflugers Arch. 1984. V. 400. P. 96-99.

117. Bourque C.W., OlietS.H.R., Richard D. Osmoreceptors, osmoreception and osmoregulation // Front Neuroendocrinol. 1994. V. 15. P. 231-274.

118. Braverman L.E., Mancini J.P., McGoldrick D.M. Hereditary idiopathic diabetes insipidus: a case report with autopsy findings // Ann Intern Med. 1965. V. 63. P. 503-508.

119. Brenner В., Seligsohn U., Hochberg Z. Normal response of factor VIII and von Willebrand factor to 1-deamino-8-D-arginine vasopressin in nephrogenic diabetes insipidus // J Endocrinol Metab. 1988. V. 67. P. 191-193.

120. Breyer M.D., Breyer R.M. Prostaglandin E receptors and the kidney//Am J Physiol. 2000. V. 279. P. F12-F23.

121. Brown J.H., Kim K.-H., Jun G., Greenfield N.J., Dominguez R, Volkmann N., Hitchcock-DeGregori S.E., Cohen C. Deciphering the design of the tropomyosin molecule // Proc Natl Acad Sci USA. 2001. V. 98. P. 8496-8501.

122. Bucher M., Hobbhahn J., Taeger K., Kurtz A. Cytokine-mediated downregulation of vasopressin V1A receptors during acute endotoxemia in rats //Am J Physiol. 2002. V. 282. P. R979-R984.

123. Buck J., Sinclair M.L., Schapal L., Cann M.J., Levin L.R. Cytosolic adenylyl cyclase defines a unique signaling molecule in mammals // Proc Natl Acad Sci USA. 1999. V. 96. P. 79-84.

124. Budd T.C., Morris J.F. Age-dependent accumulation of hybrid vasopressin-oxytocin gene products but not hybrid oxytocin-vasopressin products in the endoplasmic reticulum of Brattleboro rats // J Neuroendocrinol. 1997. V. 9. P. 873878.

125. Bugajski J., Borycz J., Glod R., Bugajski A.J. Crowding stress impairs the pituitary-adrenocortical responsiveness to the vasopressin but not corticotropin-releasing hormone stimulation // Brain Res. 1995. V. 681. P. 223-228.

126. Buijs R.M. Intra- and extrahypothalamic vasopressin and oxytocin pathways in the rat. Pathways to the limbic system, medulla oblongata and spinal cord // Cell Tis Res. 1978. V. 192. P. 423-435.

127. Buijs R.M., Van Heerikhuize J.J. Vasopressin and oxytocin release in the brain: a synaptic event//Brain Res. 1982. V. 252. P. 71-76.

128. Buijs R.M., Kalsbeek A., Van derWoude T.P., Van Heerikhuize J.J., Shinn S. Suprachiasmatic nucleus lesion increases corticosterone secretion //Am J Physiol. 1993. V. 264. P. R1186-R1192.

129. Burbach J.P., Hoop M.J., Schmale H., RichterD., De Kloet E.R., Ten Haaf J.A. Differential responses to osmotic stress of vasopressin-neurophysin mRNA in hypothalamic nuclei // Neuroendocrinology. 1984. V. 39. P. 582-584.

130. Burbach J.P.H., Luckman S.M., Murphy D., Gainer H. Gene Regulation in the Magnocellular Hypothalamo-Neurohypophysial System // Physiol. Rev. 2001. V. 81. P. 1197-1267

131. Burg M.B., Grantham J., Abramov M., Orloff J. Preparation and study of fragments of single rabbit nephrons//Am J Physiol. 1966. V. 210. P. 1293-1298.

132. Burg M.B., Green N. Function of the thick ascending limb of Henle's loop //Am J Physiol. 1973. V. 224. P. 659-668.

133. Burrell L.M., Phillips P.A., Risvanis J., Aldred K.L., Hutchins A.M., Johnston C.I. Attenuation of genetic hypertension after short-term vasopressin V1A receptor antagonism // Hypertension. 1995. V. 26. P. 828-834.

134. Butkevich I.P., Vershinina E.A. Prenatal stress alters time characteristics and intensity of formalin-induced pain responses in juvenile rats // Brain Res. 2001. V. 915. P. 88-93.

135. Calvo В., Bilbao J.R., Rodriguez A., Rodriguez-Arnao M.D., Castano L. Molecular analysis in familial neurohypophyseal diabetes insipidus: early diagnosis of an asymptomatic carrier//J Clin Endocrinol Metab. 1999. V. 84. P. 3351-3354.

136. Calzone W.L., Silva C., Keefe D.L., Stachenfeld N.S. Progesterone does not alter osmotic regulation of AVP // Am J Physiol. 2001. V. 281. P. R2011-R2020.

137. Cantau В., Keppens S., De Wulf H., Jard S. (3H)-vasopressin binding to isolated rat hepatocytes and liver membranes: regulation by GTP and relation to glycogen phosphorylase activation // J Recept Res. 1980. V. 1. P. 137-168.

138. Carlier M.-F., Ressad F., Pantaloni D. Control of actin dynamics in cell motility. Role of ADF/cofilin // J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 33827-33830.

139. Carlson D.E., Dornhorst A., Seif S.M., Robinson A.G., Gann D.S. Vasopressin-dependent and independent control of the release of adrenocorticotropin // Endocrinology. 1982. V. 110. P. 680-688.

140. Carr D.J. Neuroendocrine peptide receptors on cell of the immune system // Chem Immunol. 1992. V. 52. P. 84-105.

141. Carvounis C.P. Cell determinants of vasopressin-stimulated water flow// Biol Cell. 1985. V. 55. P. 207-212.

142. Cass L.A., Summers S.A., Prendergast G.V., Backer J.M., Birnbaum M.J., Meinkoth J.L. Protein kinase A-dependent and -independent signaling pathwayscontribute to cyclic AMP-stimulated proliferation // Mol Cell Biol. 1999. V. 19. P. 5882-5891.

143. Cauble M.S., Mack-Shipman L., Schaefer G.B., Balakrishnan S., Larsen J.L. Idiopathic hypothalamic dysfunction with precocious puberty and adipsic hypernatremia first presenting in adolescence // J Pediatr Endocrinol Metab. 2001. V. 14. P. 1163-1167.

144. Cemeroglu A.P., Buyukgebiz A. Psychogenic diabetes insipidus in toddlers with compulsive bottle-drinking: not a rare entity // J Pediatr Endocrinol Metab. 2002. V. 15. P. 93-94.

145. Ceriotti G., Spandrio L. A spectrophotometric method for determination of urea // Clin Chim Acta. 1963. V. 8. P. 295-299.

146. Chen Y., Yoo В., Lee J.В., Weng G., Iyengar R. The signal transfer regions of Galpha s // J Biol Chem. 2001. V. 276. P. 45751 -45754.

147. Ceremuga Т.Е., Yao X.L., McCabe J.T. Vasopressin-activated calcium-mobilizing (VACM-1) receptor mRNA is present in peripheral organs and the central nervous system of the laboratory rat // Endocr Res. 2001. V. 27. P. 433445.

148. Chase P.В., Chen Y., Kulin K.L., Daniel T.L. Viscosity and solute dependence of F-actin translocation by rabbit skeletal heavy meromyosin // Am J Physiol. 2000. V. 278. P. C1088-C1098.

149. Chikanza I.C., Grossman A.S. Hypothalamic-pituitary-mediated immunomodulation. arginine vasopressin is a neuroendocrine immune mediator// Br J Rheumatol. 1998. V. 37. P. 131-136.

150. Cho Y., Hitchcock-DeGregori S.E. Relationship between alternatively spliced exons and functional domains in tropomyosin // Proc Natl Acad Sci USA. 1991. V. 88. P. 10153-10157.

151. Chomczynski P., Sacchi N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidium thiocyanate-phenol-chloroforme extraction //Anal Biochem. 1987. V. 162. P. 156-159.

152. Chomczynski P. Solubilization in formamide protects RNA from degradation // Nucleic Acids Res. 1992. V. 20. P. 3791-3792.

153. Christensen B.M., Zelenina M., Aperia A., Nielsen S. Localization and regulation of PKA-phosphorylated AQP2 in response to V2-receptor agonist/antagonist treatment Am J Physiol. 2000. V. 278. P. F29-F42.

154. Civelli O., Birnberg N., Herbert E. Detection and quantitation of POMC mRNA in pituitary and brain tissues from different species // J Biol Chem. 1982. V. 257. P. 6783-6788.

155. Coggins C.H., Leaf A. Diabetes insipidus//Am J Med. 1967. V. 42. P. 807-813.

156. Cole D.G., Chin S.W., Wedaman K.L., Hall K„ Vuong Т., Scholey J.M. Novel heterotrimeric kinesin-related proteins purified from sea urchin eggs // Nature. 1993. V. 366. P. 268-270.

157. Colombo R., DalleDonne I., Milzani A. Alpha-actinin increases actin filament end concentration by inhibiting annealing //J Mol Biol. 1993. V. 230. P. 1151-1158.

158. Constantinescu A., Diamond I., Gordon A.S. Ethanol-induced Translocation of cAMP-dependent Protein Kinase to the Nucleus. Mechanism and functional consequences // J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 26985-26991.

159. Conti M. Phosphodiesterases and cyclic nucleotide signaling in endocrine cells // Mol Endocrinol. 2000. V. 14. P. 1317-1327.

160. CookT.A., Urrutia R., McNiven M.A. Identification of dynamin 2, an isoform ubiquitously expressed in rat tissues// Proc Natl Acad Sci USA. 1994. V. 91. P. 644-648.

161. Cooper C.L., Malic K.U. Effect of glucocorticoids on vascular reactivity to vasoactive hormones in rat isolated kidney: lack of relationship to prostaglandins // Br J Pharmacol. 1984. V. 82. P. 679-688.

162. Cooper K.E. Molecular biology of thermoregulation: some historical perspectives on thermoregulation // J Appl Physiol. 2002. V. 92. P. 1717-1724.

163. Cramer D.V. Biochemical linkage map. Rattus norvegicus. In: O'Brien S.J. (ed). Genetic maps. Cold Spring Harbor Lab. 1987. P. 464-469.

164. Crofton J.Т., Baer P.G., Share L., Brooks D.P. Vasopressin release in male and female rats: effects of gonadectomy and treatment with gonadal steroid hormones //Endocrinology. 1985. V. 117. P. 1195-1120.

165. Crofton J.Т., Share L. Sexual dimorphism in vasopressin and cardiovascular response to haemorrhage in the rat // Circ Res. 1990. V. 66. P. 1345-1353.

166. Csaba G. Hormonal regulation: morphogenetic and adaptive systems // Biol Rev. 1977. V. 52. P. 295-303.

167. Csaba G. Phylogeny and ontogeny of hormone receptors: the selection theory of receptor formation and hormonal inprinting // Biol Rev. 1980. V. 55. P. 47-63.

168. Csaba G., Ronai A., Laszlo V., Darvas Z., Berzetei I. Amplification of hormone receptors by neonatal oxytocin and vasopressin treatment // Horm Metab Res. 1980. V. 12. P. 28-31.

169. Culpepper R.M., Andreoli Т.Е. PGE2 , forskolin, and cholera toxin interactions in modulating NaCI transport in mouse mTALH //Am J Physiol. 1984. V. 247. P. F784-F792.

170. Cunningham A.J. A method of increased sensitivity for detecting single antibody forming cells // Nature. 1965. V. 207. P. 1106-1107.

171. Cunningham E.T., de Souza E.B. Interleukin 1 receptors in the brain and endocrine tissues // Immunol Today. 1993. V. 14. P. 171-176.

172. Dayanithi G., Weller U., Ahnert-Hilger G., Link H., Nordmann J.J., Gratzl M. The light chain of tetanus toxin inhibits calcium-dependent vasopressin release from permeabilized nerve endings // Neuroscience. 1992. V. 46. P. 489-493.

173. De Arruda M. V., Watson S., Lin C.-S., Leavitt J., P. Matsudaira. Fimbrin is a homologue of the cytoplasmic phosphoprotein plastin and has domains homologous with calmodulin and actin gelation proteins // J. Cell Biol. 1990. V. 111. P. 1069-1079.

174. De Bree F.M., Burbach J.P.H. Heterologous biosynthesis and processing of preprovasopressin in Neuro2A neuroblastoma cells// Biochimie. 1994. V. 76. P. 315-319.

175. De Camilli P., Emr S.D., McPherson P.S., Novick P. Phosphoinositides as regulators in membrane traffic // Science. 1996. V. 271. P. 1533-1539.

176. Deen P.M.T., Verdijk M.A.J., Knoers N.V.A.M., Wieringa В., Monnens L.A.H., van Os C.H., van Oost B.A. Requirement of human renal water channel aquqporin 2 for vasopressin-dependent concentration of urine // Science. 1994a. V. 264. P. 92-95.

177. Deen P.M.T., Croes H., Aubel R.A.M.H., Ginsel L.A., van Os C.H. Water channels encoded by mutant aquaporin-2 genes in nephrogenic diabetes insipidus are impaired in their cellular routing // J Clin Invest. 1995. V. 95. P. 2291-2296.

178. Defer N., Best-Belpomme M., Hanoune J. Tissue specificity and physiological relevance of various isoforms of adenylyl cyclase //Am J Physiol. 2000. V. 279. P. F400-F416.

179. De Keyzer Y., Auzan C., Lenne F., Beldjord C., Thibonnier M., Bertagna X., Clauser E. Cloning and characterization of the human Ve pituitary vasopressin receptor// FEBS Lett. 1994. V. 356. P. 215-220.

180. De Keyzer Y., Lenne F., Auzan C., Jegou S., Rene P., Vaudry H., Kuhn J.-M., Luton J.-P., Clauser E., Bertagna X. The pituitary V3 vasopressin receptor and the corticotroph phenotype in ectopic ACTH syndrome // J Clin Invest. 1996. V. 97. P. 1311-1318.

181. Denenberg V.H. Critical periods, stimulus input, and emotional activity: a theory of infantile stimulation // Psychol Rev. 1964. V. 71. P. 335-351.

182. Demarest K.T., McKay D.W., Riegle G.D., Moore K.E. Sexual differences in tuberoinfundibular dopamine nerve activity induced by neonatal androgen exposure//Neuroendocrinol. 1981. V. 32. P. 108-113.

183. Denker B.M., Smith B.L., Kuhajda F.P., Agre P. Identification, purification, and partial characterization of a novel Mr 28,000 integral membrane protein from erythrocytes and renal tubules // J Biol Chem. 1988. V. 263. P. 15634-15642.

184. Denton D.A., McKinley M.J., Weisinger R.S. Hypothalamic integration of body fluid regulation // Proc Natl Acad Sci USA. 1996. V. 93. P. 7397-7404.

185. Dessauer C.W., Gilman A.G. Purification and characterization of a soluble form of mammalian adenylyl cyclase//J Biol Chem. 1996. V. 271. P. 16967-16974.

186. Dessauer C.W., Scully T.T., Gilman A.G. Interactions of forskolin and ATP with the cytosolic domains of mammalian adenylyl cyclase // J Biol Chem. 1997. V. 272. P. 22272-22277.

187. Devoto M., Gaslini I.G. No evidense for segregation distortion of cystic fibrosis alleles among sibs of cystic fibrosis patients // Eur J Hum Genet. 1995. V. 3. P. 324-325.

188. De Vries G.J., Buijs R.M., Van Leeuwen F.W., Caffe A.R., Swaab D.F. The vasopressinergic innervation of the brain in normal and castrated rats // J Comp Neurol. 1985. V. 233. P. 236-254.

189. De Wied D., Diamant M., Fodor M. Central nervous system effects of the neurohypophyseal hormones and related peptides // Front Neuroendocrinol. 1993. V. 14. P. 251-302.

190. DiGiovanni S.R., Nielsen S., Christensen E.I., Knepper M.A. Regulation of collecting duct water channel expression by vasopressin in Brattleboro rat // Proc Natl Acad Sci USA. 1994. V. 91. P. 8984-8988.

191. Dillman J.F., Dabney L.P., Pfister K.K. Cytoplasmic dynein is associated with slow axonal transport // Proc Natl Acad Sci USA. 1996. V. 93. P. 141-144.

192. Dlouha H., Bibr В., Jezek J., Zicha J. Single nephron glomerular filtration rate ratios of superficial, intercortical and juxtamedullary nephrons in rats during development// Pflugers Arch. 1976. V. 366. P. 277-279.

193. Dlouha H., Krecek J., Zicha J. Hypertension in rats with hereditary diabetes insipidus. The role of age // Pflugers Arch. 1977. V. 369. P. 177-182.

194. Dlouha H., Krecek J., Zicha J. Unilateral nephrectomy and intake of 0,6% NaCI solution as a complex hypertensogenic stimulus in Brattleboro rats: its age-dissociation // Physiol Bohemoslov. 1980. V. 29. P. 97-106.

195. Dlouha H., Krecek J., Zicha J. Postnatal development and diabetes insipidus in Brattleboro rats//Ann N Y Acad Sci. 1982. V. 394. P. 10-19.

196. Doi Y. Interaction of gelsolin with covalently cross-linked actin dimer // Biochemistry. 1992. V. 31. P. 10061-10069.

197. Dominguez R., Freyzon Y., Trybus K.M., Cohen. C. Crystal structure of vertebrate smooth muscle myosin motor domain and its complex with the essential light chain: visualizatioin of the pre-power stroke state // Cell. 1998. V. 94. P. 559571.

198. Dohrman D.P., Diamond I., Gordon A.S. Ethanol causes translocation of cAMP-dependent protein kinase catalytic subunit to the nucleus // Proc Natl Acad Sci USA. 1996. V. 93. P. 10217-10221.

199. Doucet A., Barlet-Bas С., Siaume-Perez S., Khadouri C., Marsy S. Gluco- and mineralocorticoids control adenylate cyclase in specific nephron segments //Am J Physiol. 1990. V. 258. P. F812-F820.

200. Dousa T.P., Barnes L.D. Effects of colchicine and vinblastine on the cellular action of vasopressin in mammalian kidney. A possible role of microtubules // J Clin Invest. 1974a. V. 54. P. 252-262.

201. Dousa T.P., Barnes L.D. Effects of colchicine, vinblastine and cytochalasin В on renal response to vasopressin // Federation Proc. 1974b. V. 33. P. 388-389.

202. Dousa T.P., Valtin H. Cellular action of vasopressin in the mammalian kidney // Kidney Internal 1976. V. 10. P. 46-63.

203. Dousa T.P., Barnes L.D. Regulation of protein kinase by vasopressin in renal medulla//Am J Physiol. 1977. V. 232. P. F50-F58.

204. Dousa T.P. Cyclic-3',5'-nucleotide phosphodiesterase isozymes in cell biology and pathophysiology of the kidney // Kidney Internat. 1999. V. 55. P. 29-62.

205. Drowin J., Chamberland M., Charron J., Jeannotte L., Nemer M. Structure of the rat proopiomelanocortin (POMC) gene // FEBS L. 1985. V. 193. P. 54-58.

206. Dublineau I., Elalouf J.M., Pradelles P., de Rouffignac C. Independent desentitization of rat renal thick ascending limbs and collecting ducts to ADH // Am J Physiol. 1989. V. 256. P. F656-F663.

207. Dugard M.L., Tremblay-Leveau H., Mellier D., Caston J. Prenatal exposure to ethinylestradiol elicits behavioral abnormalities in the rat // Brain Res Dev Brain Res. 2001. V. 129. P. 189-199.

208. Dunn F.L., Brennan T.J., Nelson A.E., Robertson G.L. The role of blood osmolality and volume in regulating vasopressin secretion in the rat // J Clin Invest. 1973. V. 52. P. 3212-3219.

209. Du Vigneaud V., Lawler С., Popenoe E. Enzymatic cleavage of glycine-amide from vasopressin and a proposed structure for this pressor-antidiuretic hormone of the posterior pituitary // J Am Chem Soc. 1953. V. 75. P. 48-80.

210. Earnest S., Khokhlatchev A., Albanesi J.P., Barylko B. Phosphorylation of dynamin by ERK2 inhibits the dynamin-microtubule interaction // FEBS L. 1996. V. 396. P. 62-66.

211. Ecelbarger C.A., Terris J., Frindt G., Echevarria M., Marples D., Nielsen S., Knepper M.A. Aquaporin-3 water channel localization and regulation in rat kidney //Am J Physiol. 1995. V. 269. P. F663-F672.

212. Echevarria M., Windhager E.E., Tate S.S., Frindt G. Cloning and expression of AQP3, a water channel from the medullary collecting duct of rat kidney // Proc Natl Acad Sci USA. 1994. V. 91. P. 10997-11001.

213. Edwards R.M., Jackson B.A., Dousa T.P. Protein kinase activity in isolated tubules of rat renal medulla //Am J Physiol. 1980. V. 238. P. F269-F278.

214. Edwards R.M., Jackson B.A., Dousa T.P. ADH-sensitive cAMP system in papillary collecting duct: effect of osmolality and PGE // Am J Physiol. 1981. V. 240. P. F311-F318.

215. Edwards B.R., La Rochelle F.T., Gellai M. Concentration of urine by dehydrated Brattleboro homozygotes: is there a role for oxytocin? // Ann N Y Acad Sci. 1982. V. 394. P. 497-502.

216. Elands J., Resink A., de Kloet E.R. Neurohypophyseal hormone receptors in the rat thymus, spleen, and lymph nodes//Endocrinology. 1990. V. 126. P. 27032710.

217. Elkjaer M.L., Nejsum L.N., Gress V., Kwon Т.Н., Jensen V.B., Frokiaer J., Nielsen S. Immunolocalization of aquaporin-8 in rat kidney, gastrointestinal tract, testis, and airways //Am J Physiol. 2001. V. 281. P. F1047-F1057.

218. Eng C.M., Resnick-Silverman L.A., Niehaus D.J., Astrin K.H., Desnick R.J. Nature and frequency of mutations in the a-galactosidase A gene that cause Fabry disease // Am J Hum Genet. 1993. V. 53. P. 1186-1197.

219. Engelhardt V.A., Lyubimova M.N. Myosin and adenosinetriphosphatase// Nature. 1939. V. 144 . P. 668.

220. Erdosova R., Kraus M., Rehulka J. Influence of stress and phenobarbital on corticosterone metabolism during early postnatal life of rat // Life Sciences. 1977. V. 20. P. 459-466.

221. Erkut Z.A., Pool C., Swaab D.F. Glucocorticoids suppress соrticotropin-releasing hormone and vasopressin expression in human hypothalamic neurons // J Clin Endocrinol Metab. 1998. V. 83. P. 2066-2073.

222. Erskine M.S., Geller E., Juwiler A. Effect of neonatal hydrocorticosterone treatment on pituitary and adrenocortical response to stress in young rats // Neuroendocrinology. 1979. V. 29. P. 191-199.

223. Ervin M.G., SeidnerS.R., Leland M.M., Ikegami M., Jobe A.H. Direct fetal glucocorticoid treatment alters postnatal adaptation in premature newborn baboons//Am J Physiol. 1998. V. 274. P. R1169-R1176.

224. Eubanks S, Nguyen TL, Deeb R, Villafania A, Alfadhli A, Breslow E. Effects of diabetes insipidus mutations on neurophysin folding and function // J Biol Chem. 2001. V. 276. P. 29671-29680.

225. Evans D.A.P., Van der Kleu A.A.M., Sonnemans M.A.F., Burbach J.P.H., Van Leeuwen F.W. Frameshift mutations at two hotspots in vasopressin transcripts in postmitotic neurons // Proc Natl Acad Sci USA. 1994. V. 91. P. 6059-6063.

226. Evans S.J., Murray T.F., Moore F.L. Partial purification and biochemical characterization of a membrane glucocorticoid receptor from an amphibian brain // J Steroid Biochem Mol Biol. 2000. V. 72. P. 209-221.

227. Fahrenholz F., Boer R., Crause P., Fritzsch G., Grzonka Z. Interactions of vasopressin agonists and antagonists with membrane receptors // Eur J Pharmacol. 1984. V. 100. P. 47-58.

228. Falconer D.S. Introduction to quantitative genetics // Edinburgh. Oliver and Boyd. 1981. P. 1-290.

229. Feng J., Ito M., Ichikawa K., Isaka N., Nishikawa M., Hartshorne D.J., Nakano T. Inhibitory phosphorylation site for rho-associated kinase on smooth muscle myosin phosphatase//J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 37385-37390.

230. Ferguson G.D., Vician L., Herschman H.R. Synaptotagmin IV: biochemistry, genetics, behaviour, and possible links to human psychiatric disease // Mol Neurobiol. 2001. V. 23. P. 173-185.

231. Festing M.F.W., Staats J. Standardized nomenclature for inbred strains of rats // Transplantation. 1973. V. 16. P. 221-245.

232. Fine L.G., Trizna W. Influence of prostaglandins on sodium transport of isolated medullary nephron segments//Am J Physiol. 1977. V. 232. P. F383-F390.

233. Finer J.Т., Simmons R.M., Spudich J.A. Single myosin molecule mechanics: piconewton force and nanometre steps//Nature. 1994. V. 368. P. 113-119.

234. Fitzsimmons M.D., Roberts M.M., Sherman T.G., Robinson A.G. Mathematical models of vasopressin synthesis//Am J Physiol. 1992. V. 262. P. R1121-R1130.

235. Fitzsimmons M.D., Roberts M.M., Robinson A.G. Control of pituitary vasopressin content: implications for the regulation of the vasopressin gene // Endocrinology. 1994. V. 134. P. 1874-1878.

236. Flamion В., Spring K.R. Water permeability of apical and basolateral cell membranes of rat inner medullary collecting duct // Am J Physiol. 1990. V. 259. P. F986-F999.

237. Floderus Y., Iselius L., Lindstren J., Wetterburg L. Evidence for a major locus as well as a multifactorial component in the regulation of human red blood cell catechol-O-methyltransferase activity // Hum Hered. 1982. V. 32. P. 76-79.

238. Flynn F.W., KirchnerT.R., Clinton M.E. Brain vasopressin and sodium appetite //Am J Physiol. 2002. V. 282. P. R1236-R1244.

239. Fontana A., Grob P.J. Lymphokines and the brain // Springer Semin Immunopathol. 1984. V. 7. P. 375-386.

240. Franci C.R., Anselmo-Franci J.A., Kozlowski G.P. Actions of endogenous vasopressin and oxytocin on anterior pituitary hormone secretion // Neuroendocrinology. 1993. V. 57. P. 693-699.

241. Friedmann T. The human genome project-some implications of extensive reverse genetic medicine//Am J Hum Genet. 1990. V. 46. P. 407-414.

242. Frokiaer J., Marples D., Valtin H., Morris J.F., Knepper M.A., Nielsen S. Low aquaporin-2 levels in polyuric Dl severe mice with constitutively high cAMP-phosphodiesterase activity//Am J Physiol. 1999. V. 276. P. F179-F190.

243. Funk C.D., Furci L., FitzGerald G.A., Grygorczyk R., Rochette С., Bayne M.A., Abramovitz M., Adam M., Metters K M. Cloning and expression of a cDNA for the human prostaglandin E receptor EP: subtype // J Biol Chem. 1993. V. 268. P. 26767-26772.

244. Fushimi K., Uchida S., Hara Y., Hirata Y., Marumo F., Sasaki S. Cloning and expression of apical membrane water channel of rat kidney collecting tubule // Nature. 1993. V. 361. P. 549-552.

245. Fushimi K., Sasaki S., Marumo F. Phosphorylation of serine 256 is required for cAMP-dependent regulatory exocytosis of the aquaporin-2 water channel // J Biol Chem. 1997. V. 272. P. 14800-14804.

246. Gabreels B.A., Verwer R.W., Sonnemans M.A., Sluiter A.A., Ang C.W., van Leeuwen F.W. Lack of translation of normal 7B2 mRNA levels in hypothalamic mutant vasopressin cells of the homozygous Brattleboro rat// Neurosci Lett. 1997. V. 239. P. 5-8.

247. Galkin V.E., Orlova A., Lukoyanova N., Wriggers W., Edelman E.H. Actin depolymerizing factor stabilizes an existing state of f-actin and can change the tilt of f-actin subunits // J Cell Biol. 2001. V. 153. P. 75-86.

248. Gamba G. Alternative splicing and diversity of renal transporters //Am J Physiol. 2001. V. 281. P. F781-F794.

249. Ganguly R., Ganguly M., Menta N.M., Banerjee M.R. Absolute requirement of glucocorticoids for expression of the casein gene in the presence of prolactin // Proc Natl Acad Sci USA. 1980. V. 77. P. 5979-5983.

250. Gao В., Gilman A.G. Cloning and expression of a widely distributed (type IV) adenylyl cyclase // Proc Natl Acad Sci USA. 1991. V. 88. P. 10178-10182.

251. Gasser D.L. Seminal vesicle protein in rats: A gene in the fourth linkage group determining electrophoretic variants// Biochem Genet. 1972. V. 6. P. 61-63.

252. Gauer O.H., Henry J.P., Behn C. The regulation of extracellular fluid volume // Ann Rev Physiol. 1970. V. 12. P. 547-595.

253. Geeves M.A., Holmes K.C. Structural mechanism of muscle contraction //Annu Rev Biochem. 1999. V. 68. P. 687-728.

254. Gellai M., Edwards B.R., Valtin H. Urinary concentrating ability during dehydratation in the absence of vasopressin //Am J Physiol. 1979. V. 237. P. F100-F104.

255. Gilbert S.F., Opitz J.M., Raff R.A. Resynthesizing evolutionary and developmental biology// Develop Biol. 1996. V. 173. P. 357-372.

256. Gill S.R., Schroer T.A., Szilak I., Steuer E.R., SheetzM.P., Cleveland D.W. Dynactin, a conserved, ubiquitously expressed component of an activator of vesicle motility mediated by cytoplasmic dynein // J Cell Biol. 1991. V. 115. P. 1639-1650.

257. Gilman A.G. Guanine nucleotide binding regulatory proteins and dual control of adenylate cyclase // J Clin Invest. 1984. V. 73. P. 1-4.

258. Gilman A.G. G proteins: transducers of receptor-generated signals // Annu Rev Biochem. 1987. V. 56. P. 615-649.

259. Ginty D.D., Bonni A., Greenberg M.E. Nerve growth factor activates a Ras-dependent protein kinase that stimulates c-fos transcription via phosphorylation of CREB // Cell. 1994. V. 77 . P. 713-725.

260. Goll D.E., Suzuki A., Temple J., Holmes G.R. Studies on purified a-actinin. I. Effect of temperature and tropomyosin on the a-actinin/F-actin interaction // J Mol Biol. 1972. V. 67. P. 469-488.

261. Goncharevskaya O., Dlouha H. The development of various generations of nephrons during postnatal ontogenesis in the rat//Anat. Rec. 1975. V. 182. P. 367-376.

262. Gonzalez С.В., Figueroa C.D., Reyes C.E., Caorsi C.E., Troncoso S., Menzel D. Immunolocalization of V1 vasopressin receptors in the rat kidney using anti-receptor antibodies//Kidney Internat. 1997. V. 52. P. 1206-1215.

263. Gordon A.M., Homsher E., Regnier M. Regulation of contraction in striated muscle // Physiol Rev. 2000. V. 80. P. 853-924.

264. Gottlieb T.A., Ivanov I.E., Adesnik M., Sabatini D.D. Actin microfilaments play a critical role in endocytosis at the apical, but not the basolateral surface of polarized epithelial cells // J Cell Biol. 1993. V. 120. P. 695-710.

265. Grant F.D. Genetic models of vasopressin deficiency // Exp Physiol. 2000. V. 85. P. 203S-209S.

266. Grantham J.J. Vasopressin: effect on deformability of urinary surface of collecting duct cells // Science. 1970. V. 168. P. 1093-1095.

267. Graves Т.К., Patel S., Dannies P.S., Hinkle P.M. Misfolded growth hormone causes fragmentation of the Golgi apparatus and disrupts endoplasmic reticulum-to-Golgi traffic // J Cell Sci. 2002. V. 114. P. 3685-3694.

268. Green J.R., Buchan G.C., Alvord E.C.J., Swanson A.G. Hereditary and idiopathic types of diabetes insipidus // Brain. 1967. V. 90. P. 707-714.

269. Guillou J.-L., Nakata H., Cooper D.M.F. Inhibition by calcium of mammalian adenylyl cyclases //J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 35539-35545.

270. Gulcher J., Kong A., Stefansson K. The genealogic approach to human genetics of disease // Cancer J. 2001. V. 7. P. 61-68.

271. Guldenaar S.E., Noctor S.C., McCabe J.T. Fos-like immunoreactivity in the brain of homozygous diabetes insipidus Brattleboro and normal Long-Evans rats // J Comp Neurol. 1992. V. 322. P. 439-448.

272. Gunther R.A., Rabinowitz L. Urea and renal concentrating ability in the rabbit// Kidney Internat. 1980. V. 17. P. 205-222.

273. Hammell R.L., Hitchcock-DeGregori S.E. The Sequence of the alternatively spliced sixth exon of alpha -tropomyosin is critical for cooperative actin binding but not for interaction with troponin // J Biol Chem. 1997. V. 272. P. 22409-22416.

274. Handler J.S. Antidiuretic hormone moves membranes // Am J Physiol. 1988. V. 255. P. F375-F382.

275. Hansen L.K., Rittig S., Robertson G.L. Genetic basis of familial neurohypophyseal diabetes insipidus //Trends Endocrinol Metab. 1997. V. 8. P. 363-372.

276. Harmanci M.C., Kachadorian W.A., Valtin H., DiScala V.A. Antidiuretic hormone-induced intramembranous alterations in mammalian collecting ducts // Am J Physiol. 1978. V. 235. P. F440-F443.

277. Harris H.W., Strange J.K., Zeidel M.L. Current understanding of the cellular biology and molecular structure of the antidiuretic hormone-stimulated water transport pathway//J Clin Invest. 1991. V. 88. P. 1-8.

278. Harrison J.R., Woitge H.W., Kream B.E. Genetic approaches to determine the role of glucocorticoid signaling in osteoblasts // Endocrine. 2002. V. 17. P. 37-42.

279. Hasson Т., Mooseker M.S. Vertebrate unconventional myosins //J Biol Chem. 1996. V. 271. P. 16431-16434.

280. Hata Y., Slaughter C.A., Sudhof T.C. Synaptic vesicle fusion complex contains unc-18 homologue bound to syntaxin // Nature. 1993. V. 366. P. 347-351.

281. Hawthorn J., Nussey S.S., Henderson J.R., Jenkins J.S. Immunohistochemical localization of oxytocin and vasopressin in the adrenal glands of rat, cow, hamster and guinea pig // Cell Tis Res. 1987. V. 250. P. 1-6.

282. Hayden S.M., Miller P.S., Brauweiler A., Bamburg J.R. Analysis of the interactions of actin depolymerizing factor with G- and F-actin // Biochemistry. 1993. V. 32. P. 9994-10004.

283. Haylor J., Towers J. Renal vasodilatory activity of prostaglandin E2 in the rat anaesthetized with pentobarbitone//Br J Pharmacol. 1982. V. 76. P. 131-137.

284. Hays R.M. Alteration of luminal membrane structure by antidiuretic hormone // Am J Physiol. 1983. V. 245. P. C296-C298.

285. Hays R.M., Franki N., Simon H., Gao Y. Antidiuretic hormone and exocytosis: lessons from neurosecretion //Am J Physiol. 1994. V. 267. P. C1507-C1524.

286. Hays R.M. Cellular and molecular events in the action of antidiuretic hormone // Kidney Internat. 1996. V. 49. P. 1700-1705.

287. Hebert R., Jacobson H., Breyer M. PGE2 inhibits AVP induced water flow in cortical collecting ducts by protein kinase С activation //Am J Physiol. 1990. V. 259. P. F318-F325.

288. Helfman D.M., Cheley S., Kuismanen E., Finn L.A., Yamawaki-Kataoka Y. Nonmuscle and muscle tropomyosin isoforms are expressed from a single gene by alternative RNA splicing and polyadenylation // Mol Cell Biol. 1986. V. 6. P. 3582-3595.

289. Heppner C., Kotzka J., Bullmann C., Krone W., Muller-Wieland D. Identification of mutations of the arginine vasopressin-neurophysin II gene in two kindreds with familial central diabetes insipidus//J Clin Endocrinol Metab. 1998. V. 83. P. 693696.

290. Herskovits J.S., Burgess C.C., Obar R.A., Vallee R.B. Effects of mutant rat dynamin on endocytosis // J Cell Biol. 1993. V. 122. P. 565-578.

291. Herskovits J.S., Shpetner H.S., Burgess C.C., Vallee R.B. Microtubules and Src homology 3 domains stimulate the dynamin GTPase via its C-terminal domain // Proc Natl Acad Sci USA. 1993. V. 90. P. 11468-11472.

292. Hetman J.M., Soderling S.H., Glavas N.A., Beavo J.A. Cloning and characterization of PDE7B, a cAMP-specific phosphodiesterase // Proc Natl Acad Sci USA. 2000. V. 97. P. 472-476.

293. Higgs H.N., Pollard T.D. Regulation of actin polymerization byArp2/3 complex and WASp/Scar proteins //J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 32531-32534.

294. Highsmith S. Lever arm model for force generation by actin-myosin-ATP // Biochemistry. 1999. V. 38. P. 791-797.

295. Hill M.A., Schedlich L., Gunning P. Serum-induced signal transduction determines the peripheral location of beta-actin mRNA within the cell // J Cell Biol. 1994. V. 126. P. 1221-1229.

296. Hillhouse E.W. lnterleukin-2 stimulates the secretion of arginine vasopressin but not corticotropin-releasing hormone from rat hypothalamic cells in vitro // Brain Res. 1994. V. 650. P. 323-325.

297. Hinkle A., Goranson A., Butters C.A., Tobacman L.S. Roles for the troponin tail domain in thin filament assembly and regulation. A deletional study of cardiac troponin T//J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 7157-7164.

298. Hinshaw J.E., Schmid S.L. Dynamin self-assembles into rings suggesting a mechanism for coated vesicle budding // Nature. 1995. V. 374. P. 190-192.

299. Hirata F., Schiffmann E., Venkatasubramanian K., Salomon D., Axelrod J. A phospholipase A2 inhibitory protein in rabbit neutrophils induced by glucocorticoids // Proc Natl Acad Sci USA. 1980. V. 77. P. 2533-2536.

300. Hirokawa N. Kinesin and dynein superfamily proteins and the meschanism of organelle transport// Science. 1998. V. 279. P. 519-526.

301. Hitchcock-DeGregori S.E., An Y. Integral repeats and a continuous coiled coil are required for binding of striated muscle tropomyosin to the regulated actin filament // J Biol Chem. 1996. V. 271. P. 3600-3603.

302. Hoffman G.E., Smith M.S., Verbalis J.G. c-Fos and related immediate early gene products as markers for neuronal activity in neuroendocrine systems // Front Neuroendocrinol. 1993. V. 14. P. 173-213.

303. Holmes K.C., Popp D., Gebhard W., Kabsch W. Atomic model of the actin filament // Nature. 1990. V. 347. P. 44-49.

304. Holtzman D., Wertman K., Drubin D. Mapping actin surfaces required for functional interactions in vivo//J Cell Biol. 1994. V. 126. P. 423-432.

305. Homma S., GapsturS.M., Coffey A., Valtin H., Dousa T.P. Role of cAMP-phosphodiesterase isozymes in pathogenesis of murine nephrogenic diabetes insipidus//Am J Physiol. 1991. V. 261. P. F345-F353.

306. Hozawa S., Holtzman E.J., Ausiello D.A. cAMP motifs regulating transcription in the aquaporin 2 gene//Am J Physiol. 1996. V. 270. P. C1695-C1702.

307. Hurbin A., Orcel H., Alonso G., Moos F., Rabie A. The vasopressin receptors colocalize with vasopressin in the magnocellular neurons of the rat supraoptic nucleus and are modulated by water balance // Endocrinology. 2002. V. 143. P. 456-466.

308. Hurley J.H. Structure, mechanism, and regulation of mammalian adenylyl cyclase //J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 7599-7602.

309. Ibarrola I., Andres M., Marino A., Macarulla J.M., Trueba M. Purification of a Cortisol binding protein from hepatic plasma membrane // Biochim Biophys Acta. 1996. V. 1284. P. 41-46.

310. Iglesias P., Diez J.J. Lymphocytic hypophysis and diabetes insipidus in nonpregnant women // J Endocrinol Invest. 2002. V. 25. P. 93-94.

311. Imbert-Teboul M., Chabardes D., Montegut M., Clique A., Morel F. Vasopressin-dependent adenylate cyclase activities in the rat kidney medulla: evidence for two separate sites of action // Endocrinology. 1978. V. 102. P. 1254-1261.

312. Imbert-Teboul M., Chabardes D., Clique A., Montegut M., Morel F. Ontogenesis of hormone-dependent adenylate cyclase in isolated rat nephron segment //Am J Physiol. 1984. V. 247. P. F316-F325.

313. Imura H., Nakao K., Shimatsu A., Ogawa Y., Sando Т., Fujisawa I., Yamabe H. Lymphocytic infundibuloneurohypophysitis as a cause of central diabetes insipidus // N Engl J Med. 1993. V. 329. P. 683-689.

314. Imura H. Some new aspects in etiologies and diagnosis of neurogenic diabetes insipidus. In: Saito Т., Kurokawa K., Yoshida S. (eds). Neurohypophysis: recent progress of vasopressin and oxytocin research. Elsevier. 1995. P. 15-20.

315. Innamorati G., Sadegni H.M., Tran N.T., Birnbaumer M. A serine cluster prevents recycling of the V2 vasopressin receptor// Proc Natl Acad Sci USA. 1998. V. 95. P. 2222-2226.

316. Inoue Т., Nielsen S., Mandon В., Terris J., Kishore B.K., Knepper M.A. SNAP-23 in rat kidney: colocalization with aquaporin-2 in collecting duct vesicles // Am J Physiol. 1998. V. 275. P. F752-F760.

317. Ishikawa R., Yamashiro S., Kohama K., Matsumura F. Regulation of actin binding and actin bundling activities of fascin by caldesmon coupled with tropomyosin // J Biol Chem. 1998. V. 273. P. 26991-26997.

318. Ito M., Mori Y., Oiso Y., Saito H. A single base substitution in the coding region for neurophysin II associated with familial central diabeted insipidus // J Clin Invest. 1991. V. 87. P. 725-728.

319. Ito M., Yu R.N., Jameson J.L., Ito M. Mutant vasopressin precursors that cause autosomal dominant neurohypophyseal diabetes insipidus retain dimerization and impair the secretion of wild-type proteins//J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 90299037.

320. Ivanova L.N., Goryunova Т.Е., Nikiforovskaya L.F., Tischenko N.I. Hyaluronate hydrolase activity and glycosaminoglycans in the Brattleboro rat kidney //Ann N Y Acad Sci. 1982. V. 394. P. 503-508.

321. Ivanova L.N., Solyenov E.I., Zelenina M.N., Khegay I.I. Decrease in the response to ADH of the rat kidney as a result of early postnatal treatment with Cortisol // Pflugers Arch. 1987. V. 408. P. 328-332.

322. Ivell R., Richter D. Structure and comparison of the oxytocin and vasopressin genes from rat // Proc Natl Acad Sci USA. 1984. V. 81. P. 2006-2010.

323. Jahangeer S., Rodbell M. The disaggregation theory of signal transduction revisited: further evidence that G proteins are multimeric and disaggregate to monomers when activated // Proc Natl Acad Sci USA. 1993. V. 90. P. 8782-8786.

324. Jahnukainen Т., Chen M., Berg U., Celsi G. Antenatal glucocorticoids and renal function afterbirth //Semin Neonatol. 2001. V. 6. P. 351-355.

325. Jamison R.L., Bennett C.M., Berliner R.W. Countercurrent multiplication by the thin loops of Henle //Am J Physiol. 1967. V. 212. P. 357-366.

326. Jamison R.L. The renal concentrating mechanism // Kidney Internat. 1987. V. 32. P. S43-S50.

327. Janmey PA. Phosphoinositides and calcium as regulators of cellular actin assembly and disassembly//Annu Rev Physiol. 1994. V. 56. P. 169-191.

328. Jensen B.L., Stubbe J., Hansen P.В., Andreasen D., Skott 0. Localization of prostaglandin E2 EP2 and EP4 receptors in the rat kidney // Am J Physiol. 2001. V. 280. P. F1001-F1009.

329. Jessop D.S., Chowdrey H.S., Lightman S.L., Larsen P.J. Vasopressin is located within lymphocytes in the rat spleen // J Neuroimmunol. 1995a. V. 56. P. 219-223.

330. Jessop D.S., Murphy D., Larsen P.J. Thymic vasopressin (AVP) transgene expression in rats: a model for the study of thymic AVP hyper-expression in T cell differentiation //J Neuroimmunol. 1995b. V. 62. P. 85-90.

331. Johnson H.M., Farrar W.L., Torres B.A. Vasopressin replacement of interleukin 2 requirement in gamma interferon production: lymphokine activity of a neuroendocrine hormone//J Immunol. 1982. V. 129. P. 983-985.

332. Kabsch W., Mannherz E.G., Suck D., Pai, E.F., Holmes K.C. Atomic structure of the actin:DNase I complex // Nature. 1990. V. 347. P. 37-44.

333. Kai-Kai M.A., Swann R.W., Keen P. Localization of chromatographically characterized oxytocin and arginine-vasopressin to sensory neurones in the rat// Neuroscience Lett. 1985. V. 53. P. 83-88.

334. Kalenga K., Persu A., Goffin E., Lavenne-Pardonge E., Van Cangh P.J., Bichet D.G., Devuyst O. Intrafamilial phenotype variability in nephrogenic diabetes insipidus //Am J Kidney Dis. 2002. V. 39. P. 737-743.

335. Kambouris M., Hodes M.E., Conneally P.M., Trofatter J., Dlouhy S.R. Nephrogenic diabetes insipidus linked to Xq28 // Cytogenet Cell Genet. 1987. V. 46. P. 636.

336. Kamsteeg E.J., Deen P.M.T. Importance of aquaporin-2 expression levels in genotype -phenotype studies in nephrogenic diabetes insipidus //Am J Physiol. 2000. V. 279 . P. F778-F784.

337. Kamsteeg E.J., Heijnen I., van Os C.H., Deen P.M.T. The subcellular localization of an aquapirin-2 tetramer depends on the stoichiometry of phosphorylated and nonphosphorylated monomers //J Cell Biol. 2000. V. 151. P. 919-929.

338. Kaplowitz P.В., D'Ercole A.J., Robertson G.L. Radioimmunoassay of vasopressin in familial central diabetes insipidus // Pediatrics. 1982. V. 100. P. 7681.

339. Karakashian A., Timmer R.T., Klein J.D., Gunn R.B., Sands J.M., Bagnasco S.M. Cloning and characterization of two new isoforms of the rat kidney urea transporter: UT-A3 and UT-A4 //J Am Soc Nephrol. 1999. V. 10. P. 230-237.

340. Kasson B.G., Meidan R., Hsueh A.J.W. Identification and characterization of arginine vasopressin-like substances in the rat testis // J Biol Chem. 1985. V. 260. P. 5302-5306.

341. Kasson B.G., Hsueh A.J.W. Arginine vasopressin as an intragonadal hormone in Brattleboro rats: presence of a testicular vasopressin-like peptide and functional vasopressin receptors//Endocrinology. 1986. V. 118. P. 23-31.

342. Katsura Т., Gustafson C.E., Ausiello D.A., Brown D. Protein kinase A phosphorylation is involved in regulated exocytosis of aquaporin-2 in transfected LLC-PK1 cells//Am J Physiol. 1997. V. 41. P. F816-F822.

343. Kerem В., Rommens J.M., Buchanan J.A., Markiewicz D., Cox Т.К., Chakravarti A., Buchwald M., Tsui L.C. Identification of the cystic fibrosis gene: genetic analysis//Science. 1989. V. 245. P. 1073-1080.

344. Keyzer Y., Auzan C., Lenne F., Beldjord C., Thibonnier M., Bertagna X., Clauser E. Cloning and characterization of the human V3 pituitary vasopressin receptor // FEBS L. 1994. V. 356. P. 215-220.

345. Khanna S., Sibbald J.R., Day T.A. Neuropeptide Y modulation of A1 noradrenergic neuron input to supraoptic vasopressin cells // Neurosci Lett. 1993. V. 161. P. 60-64.

346. Khanna S., Sibbald J.R., Smith D.W., Day T.A. Initiation of rat vasopressin cell responses to stimulated hypotensive haemorrhage //Am J Physiol. 1994. V. 267. P. R1142-R1149.

347. Khegay 1.1., Golybjatnikova A.V. Localization in the fourth linkage group of a gene di affecting diabetes insipidus in rats // Biochem Genet. 1993. V. 31. P. 201204.

348. Khegay I.I. Localization of the vasopressin gene to rat chromosome 3 // Mammalian Genome. 1996. V. 7. P. 867.

349. Kim J., Kim W.-Y., Han K.-H., Knepper M.A., Nielsen S., Madsen K.M. Developmental expression of aquaporin 1 in the rat renal vasculature // Am J Physiol. 1999. V. 276. P. F498-F509.

350. Kim Y.-H., Kim D.-U., Han K.-H., Jung J.-Y., Sands J.M., Knepper M.A., Madsen K.M., Kim J. Expression of urea transporters in the developing rat kidney // Am J Physiol. 2002. V. 282. P. F530-F540.

351. Kinsley C., Svare B. Prenatal stress alters intermale aggression in mice // Physiol Behav. 1986. V. 36. P. 783-786.

352. Kinsella J., Cujdik Т., Sacktor B. Na-H exchange activity in renal brush border membrane vesicles in response to metabolic acidosis: the role of glucocorticoids // Proc Natl Acad Sci USA. 1984. V. 81. P. 630-634.

353. Kinter L.B., Huffman W.F., Stassen F.L. Antagonists of the antidiuretic activity of vasopressin //Am J Physiol. 1988. V. 254. P. F165-F177.

354. Kishore B.K., Terris J.M., Knepper M.A. Quantitation of aquaporin-2 abundance in microdissected collecting ducts: axial distribution and control by AVP //Am J Physiol. 1996. V. 271. P. F62-F70.

355. Kiss J.Z., Mezey E., Skirboll L. Corticotropin-releasing factor-immunoreactive neurons of the paraventricular nucleous become vasopressin-positive after adrenalectomy // Pron Natl Acad Sci USA. 1984. V. 81. P. 1854-1858.

356. Kjaer A. Vasopressin as a neuroendocrine regulator of anterior pituitary hormone secretion //Acta Endocrinol. 1993. V. 129. P. 489-496.

357. Klein J.D., Price S.R., Bailey J.L., Jacobs J.D., Sands J.M. Glucocorticoids mediate a decrease in AVP-regulated urea transporter in diabetic rat inner medulla //Am J Physiol. 1997. V. 273. P. F949-F953.

358. Kleuss C., Gilman A.G. Gsa contains an unidentified covalent modification that increases its affinity for adenylyl cyclase // Proc Natl Acad Sci USA. 1997. V. 94. P. 6116-6120.

359. Kluger M.J. Fever: role of pyrogens and cryogens // Physiol Rev. 1991. V. 71. P. 93-127.

360. Knepper M.A., Danielson R.A., Saidel G.M., Johnston K.H. Effects of dietary protein restriction and glucocorticoid administration on urea excretion in rats // Kidney Internal 1975. V. 8. P. 303-315.

361. Knepper M.A. The aquaporin family of molecular water channels // Proc Natl Acad Sci USA. 1994. V. 91. P. 6255-6258.

362. Knepper M.A., Nielsen S., Chou C.L., DiGiovanni S.R. Mechanism of vasopressin action in the renal collecting duct // Semin Nephrol. 1994. V. 14. P. 302-321.

363. Knepper M.A. Molecular physiology of urinary concentrating mechanism: regulation of aquaporin water channels by vasopressin // Am J Physiol. 1997. V. 272. P. F3-F12.

364. Knepper M.A., Inoue T. Regulation of aquaporin-2 water channel tarfficking by vasopressin // Curr Opin Cell Biol. 1997. V. 9. P. 560-564.

365. Kojro E., Eich P., Gimpl G., Fahrenholz F. Direct identification of an extracellular agonist binding site in the renal V2 vasopressin receptor// Biochemistry. 1993. V. 32. P. 13537-13544.

366. Kokko J.P. Sodium chloride and water transport in the descending limb of Henle //J Clin Invest. 1970. V. 49. P. 1836-1846.

367. Kokko J.P., Rector F.C. Countercurrent multiplication system without active transport in inner medulla // Kidney Internal 1972. V. 2. P. 214-223.

368. Konrad D., Gartenmann M., Martin E., Schoenle E.J. Central diabetes insipidus as the first manifestation of neurosarcoidosis in a 10-year-old girl // Horm Res. 2000. V. 54. P. 98-100.

369. Kozasa Т., Itoh H., Tsukamoto Т., Kaziro Y. Isolation and characterization of the human Gs alpha gene // Proc Natl Acad Sci USA. 1988. V. 85. P. 2081-2085.

370. Kraus M., Krecek J., Popp M. The development of aldosterone production by the adrenal glands of normally and prematurely weaned rats // Biol Neonate. 1967. V. 11. P. 338-347.

371. Kraut J.A., Helander K.G., Helander H.F., Iroezi N.D., Marcus E.A., Sachs G. Detection and localization of H1-K1-ATPase isoforms in human kidney//Am J Physiol. 2001. V. 281. P. F763-F768.

372. Krawczak M., Cooper D.N. Gene deletion causing human genetic disease: mechanisms of mutagenesis and the role of the local DNA sequence environment // Num Genet. 1991. V. 86. P. 425-441.

373. Krawczak M., Ball E.V., Fenton I., Stenson P.D., Abeysinghe S., Thomas N., Cooper D.N. Human gene mutation database A biomedical information and research resource // Hum Mutat. 2000. V. 15. P. 45-51.

374. Krecek J. The theory of critical developmental periods and postnatal development of endocrine functions". In: Tobak E., Aronson L.R., Shaw E.I. (eds). "The biopsychology of development. New York. Academic Press. 1971. P. 233248.

375. Krecek J., Panek M., Salatova M., Zicha J. The pineal glands and the effect of neonatal administration of androgen upon the development of spontaneous salt and water intake in female rats // Neuroendocrinology. 1975. V. 18. P. 137-143.

376. Krecek J. Effect of ovaryectomy of females and oestrogen administration to males during the neonatal critical period on the salt intake in adulthood in rats // Physiologia Bohemoslovaca. 1978. V. 27. P. 1-5.

377. Krecek J., Dlouha H., Lavrova E.A., Zicha J. Sensitivity of prepubertal rats to the hypertensogenic effects of salt a lack of natriuretic factors?. In: Hormonal regulation of sodium excretion. Amsterdam. Elsevier. 1980. P. 289-297.

378. Krieger D.T. Effect of neonatal hydrocortisone on corticosteroid circadian periodicity responsiveness to ACTH and stress in prepubertal and adult rats // Neuroendocrinology. 1974. V. 16. P. 355-363.

379. Kriz W. Structural organization of the renal medulla: comparative and functional aspects//Am J Physiol. 1981. V. 241. P. R3-R16.

380. Kruimel J.W., Pesman G.J., Sweep C.G., van der Vliet J.A., Liem Т., Jansen

381. J.В., van der Meer J.W., Naber A.H. Depression of plasma levels of cytokines and ex-vivo cytokine production in relation to the activity of the pituitary-adrenal axis, in patients undergoing major vascular surgery//Cytokine. 1999. V. 11. P. 382-388.

382. Kull F.J., Sablin E.P., Lau R., Fletterick R.J., Vale R.D. Crystal structure of the kinesin motor domain reveals a structural similarity to myosin // Nature. 1996. V. 380. P. 550-555.

383. Kuwahara M., Shi L.-B., Marumo F., Verkman A.S. Transcellular water flow modulates water channel exocytosis and endocytosis in kidney collecting tubule // J Clin Invest. 1991. V. 88. P. 423-429.

384. Kuwahara M., Fushimi K., Terada Y., Bai L., Marumo F., Sasaki S. cAMP-dependent phosphorylation stimulates water permeability of aquaporin-collecting duct water channel protein expressed in Xenopus oocytes // J Biol Chem. 1995. V. 270. P. 10384-10387.

385. KwonT., FrokiaerJ., KnepperMA, Nielsen S. Downregulation ofAQPI, AQP2, and AQP3 in kidneys of rats with experimental chronic renal failure //Am J Physiol. 1998. V. 275. P. F724-F741.

386. Lacey M.L., Haimo L.T. Cytoplasmic dynein is a vesicle protein // J Biol Chem. 1992. V. 267. P. 4793-4798.

387. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 // Nature. 1970. V. 227. P. 680-685.

388. Laing R.B.S., Dean J.C.S., Pearson D.W.M., Johnston A.W. Facial dysmorphism: a marker of autosomal dominant cranial diabetes insipidus // J Med Genet. 1991. V. 28. P. 544-546.

389. Land H., Schutz G., Schmale H., Richter D. Nucleotide sequence of cloned cDNA encoding bovine arginine vasopressin-neurophysin II precursor// Nature. 1982. V. 295. P. 299-303.

390. Landis C., Back N., Homsher E., Tobacman L.S. Effects of tropomyosin internal deletions on thin filament function //J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 31279-31285.

391. Landry M., Roche D., Calas A. Short-term effects of centrally administered galanin on the hyperosmotically stimulated expression of vasopressin in the rat hypothalamus// Neuroendocrinology. 1995. V. 61. P. 393-404.

392. LaPorte D.C., Builder S.E., Storm D.R. Spectroscopic studies of the cAMP binding sites of the regulatory subunits of types I and II protein kinase // J Biol Chem. 1980. V. 255. P. 2343-2349.

393. La Rochelle F.T., North W.G., Stern P. A new extraction of arginine vasopressin from blood: the use of octadecasilyl-Silica // Pflugers Arch. 1980. V. 387. P. 79-81.

394. Lebart M.-C., Mejean C., Roustan C., Benyamin Y. Further characterization of the alpha-actinin-actin interface and comparison with filamin-binding sites // J Biol Chem. 1993. V. 268. P. 5642-5648.

395. Lehman W., Craig R., Vibert P. Ca2+ -induced tropomyosin movement in Limulus thin filaments revealed by three-dimensional reconstruction // Nature. 1994. V. 368. P. 65-67.

396. Lehman W., Vibert P., Craig R. Visualization of caldesmon on smooth muscle thin filaments // J Mol Biol. 1997. V. 274. P. 310-317.

397. Leinweber В., Tang J.X., Stafford W.F., Chalovich J.M. Calponin interaction with alpha -actinin-actin: evidence for a structural role for calponin // Biophys J. 1999. V. 77. P. 3208-3217.

398. Leung C., Sun D., Zheng M., Knowles D.R., Liem R.K.H. Microtubule actin cross-linking factor (MACF): a hybrid of dystonin and dystrophin that can interact with the actin and microtubule cytoskeletons // J Cell Biol. 1999. V. 147. P. 12751285.

399. Levan G. Nomenclature for G-bands in rat chromosomes // Hereditas. 1974. V. 77. P. 37-52.

400. Levine S. Plasma-free corticosteroid response to electric shock in rats stimulated in infancy//Science. 1962. V. 135. P. 795-796.

401. Levine M.A., Modi W.S., O'Brien S.J. Mapping of the gene encoding the alpha subunit of the stimulatory G protein of adenylyl cyclase (GNAS1) to 20q13.2-q13.3 //Genomics. 1991. V. 11. P. 478-479.

402. Levitsky D.I., Rostkova E.V., Orlov V.N., Nikolaeva О P., Moiseeva L.N., Teplova M.V., Gusev N.B. Complexes of smooth muscle tropomyosin with F-actin studied by differential scanning calorimetry // Eur J Biochem. 2000. V. 267. P. 1869-1877.

403. Li Z., Inenaga K., Kawano S., Kannan H., Yamashita H. Interleukin-1b directly excites hypothalamic neurons in rats in vitro// NeuroReport. 1992. V. 3. P. 91-93.

404. Liebenhoff U., Rosenthal W. Identification of Rab3-, Rab5a- and synaptobrevin ll-like proteins in a preparation of rat kidney vesicles containing the vasopressin-regulated water channel // FEBS L. 1995. V. 365. P. 209-213.

405. Lim A., Lolait S., Barlow J., Autelitano D., Ton В., Boublick J., Abraham J., Johnston C., Funder J. Immunoreactive arginine-vasopressin in Brattleboro rat ovary// Nature. 1984. V. 310. P. 61-64.

406. Litt M., Buroker N.E., Kondoleon S., Douglass J., Liston D., Sheehy R., Magenis R.E. Chromosomal localization of the human proenkephalin and prodynorphin genes //Am J Hum Genet. 1988. V. 42. P. 327-334.

407. Liu A. Modulation of the function and activity of cAMP-dependent protein kinase by steroid hormones//Trends Pharmacol. 1984. V. 5. P. 106-108.

408. Liu J.-P., Robinson P.J. Dynamin and endocytosis // Endocrinol Rev. 1995. V. 16. P. 590-607.

409. Liu X., Wang C.A., Chen Y.Z. Nongenomic effect of glucocorticoid on the release of arginine vasopressin from hypothalamic slices in rats // Neuroendocrinology. 1995. V. 62. P. 628-633.

410. Liu J.-P. Protein phosphorylation events in exocytosis and endocytocic // Clin Exp Pharmacol Physiol. 1997. V. 24. P. 611-618.

411. Lolait S.J., O'Carroll A.M., McBride O.W., Koning M., Morel A., Brownstein M.J. Cloning and characterization of a vasopressin V2 receptor and possible link to nephrogenic diabetes insipidus // Nature. 1992. V. 357. P. 336-339.

412. Lowbridge J., Manning M., Haldar J., Sawyer W.S. 1-(L-2-hydroxy-3-mercaptopropanoic acid) analogues of arginine-vasopressin, (8-D-arginine)vasopressin and (4-valine, 8-D-arginine)vasopressin // J Med Chem. 1977. V. 20. P. 1173-1176.

413. Lowey S., Slayter H.S., Weeds A.G., Baker H. Substructure of the myosin molecule I. Subfragments of myosin by enzymic degradation // J Mol Biol. 1969. V. 42. P. 1-20.

414. Lu M., Lee M.D., Smith B.L., Jung J.S., Agre P., Verdijk M.A.J., Merkx G., Rijss J.P.L., Deen P.M.T. The human AQP4 gene: Definition of the locus encoding two water channel polypeptides in brain // 1996. V. 93. P. 10908-10912.

415. Luna E.J., HiltA.L. Cytoskeleton-plasma membrane interactions//Science. 1992. V. 258. P. 955-964.

416. Macey R.I., Farmer R.E.L. Inhibition of water and solute permeability in human red cells// Biochim Biophys Acta. 1970. V. 211. P. 104-106.

417. Maeda Y., Han J.S., Gibson C., Knepper M. Vasopressin and oxytocin receptors coupled to Ca2+ mobilization in rat inner medullary collecting duct // Am J Physiol. 1993. V. 265. P. F15-F25.

418. Malic K.U., Cooper C.L. Effect of dexamethasone, corticosterone and mepacrine on prostaglandin synthesis elicited by vasoactive hormones in the isolated rat kidney // Feder Pros. 1983. V. 47. P. 640-641.

419. Mandelkow E., Johnson K.A. The structural and mechanochemical cycle of kinesin //TIBS. 1998. V. 23. P. 429-433.

420. Mandon В., Bellanger A.C., Elalouf J.M. Inverse PCR-mediated cloning of the promoter for the rat vasopressin V2 receptor gene // Pflugers Arch. 1995. V. 430. P. 12-18.

421. Mandon В., Chou C.-L., Nielsen S., Knepper M.A. Syntaxin-4 is localized to the apical plasma membrane of rat renal collecting duct cells: possible role in aquaporin-2 trafficking //J Clin Invest. 1996. V. 98. P. 906-913.

422. Manning M., Olma A., Klis W., Kolodziejcyzk A., Nawrocka E., Misicka A., Seto J., Sawyer W.H. Carboxy terminus of vasopressin required for activity but not binding // Nature. 1984. V. 308. P. 652-653.

423. Manning M., Sawyer W.H. Design, synthesis and some uses of receptor-specific agonists and antagonists of vasopressin and oxytocin // J Recept Res. 1993. V. 13. P. 195-214.

424. Markel E., Scaccianoce S., Koranyi L., Endroczi E. Effrect of arginine-vasopressin and ACTH 4-10 on acquisition of active avoidance response in rats with alcohol pretreatment in prenatal and adult age //Acta Physiol. 1986. V. 68. P. 221-227.

425. Markwick A.J., Lolait S.J., Funder J.W. Immunoreactive arginine vasopressin in the rat thymus // Endocrinology. 1986. V. 119. P. 1690-1696.

426. Marples D., Knepper M.A., Christensen E.I., Nielsen S. Redistribution of aquaporin-2 water channels induced by vasopressin in rat kidney inner medullary collecting duct//Am J Physiol. 1995. V. 269. P. C655-C664.

427. Marples D., SchroerT.A., Ahrens N., Taylor A., Knepper M.A., Nielsen S. Dynein and dynactin colocalize with AQP2 water channels in intracellular vesicles from kidney collecting duct //Am J Physiol. 1998. V. 274. P. F384-F394.

428. Marples D., Frokiaer J., Nielsen S. Long-term regulation of aquaporins in kidney //Am J Physiol. 1999. V. 276. P. F331-F339.

429. Marquardt Т., Helenius A. Misfolding and aggregation of newly synthesized proteins in the endoplasmic reticulum // J Cell Biol. 1992. V. 117. P. 505-513.

430. Marsh D.J., Knepper M.A. Renal handling of urea. In: Windhager E.E. (ed). Handbook of physiology section 8. Renal physiology. Oxford University Press. 1992. V. 2. P. 1317-1347.

431. Martin P.-Y., Bianchi M., Roger F., Niksic L., Feraille E. Arginine vasopressin modulates expression of neuronal NOS in rat renal medulla // Am J Physiol. V. 2002. P. F559-F568.

432. Matsudaira P. Modular organization of actin crosslinking proteins // Trends Biochem Sci. 1991. V. 16. P. 87-92.

433. Matsumura Y., Uchida S., Rai Т., Sasaki S., Marumo F. Transcriptional regulation of aquaporin-2 water channel gene by cAMP // J Am Soc Nephrol. 1997. V. 8. P. 861-867.

434. Matteoli M., Takei K., Cameron R., Hurlbut P., Johnston P.A., Sudhof T.C., Jahn R., De Camilli P. Association of Rab 3a with synaptic vesicles at late stages of the secretory pathway // J Cell Biol. 1991. V. 115. P. 625-633.

435. Mazumdar M., Cross R.A. Engineering a lever into the kinesin neck // J Biol Chem. 1998. V. 273. P. 29352-29359.

436. McAuliffe W.G. Histochemistry and ultrastructure of the interstitium of the renal papilla in rats with hereditary diabetes insipidus //Am J Anat. 1980. V. 157. P. 1723.

437. McGough A., Way M., DeRosier D. Determination of the alpha-actinin binding site on actin filaments by cryo-electron microscopy and image analysis // J Cell Biol. 1994. V. 126. P. 433-443.

438. McGough A., Chiu W. ADF/cofilin weakens lateral contacts in the actin filament //J Mol Biol. 1999. V. 291. P. 513-519.

439. McGrath J.L., Osborn E.A., Tardy Y.S., Dewey C.F.Jr., Hartwig J.H. Regulation of the actin cycle in vivo by actin filament severing // Proc Natl Acad Sci USA. 2000. V. 97. P. 6532-6537.

440. McKusick V.A. Mendelian Inheritance in Man. Catalogs of Human Genes and Genetic Disorders. Baltimore. Johns Hopkins University Press. 1998. P. 1-2000.

441. McLaughlin P.J., Gooch J.T., Mannherz H.-G., Weeds A.G. Structure of gelsolin segment 1-actin complex and the mechanism of filament severing // Nature. 1993. V. 364 . P. 685-692.

442. McLeod J., Kovacs L., Gaskill M., Rittig S., Bradley G., Robertson G. Familial neurohypophyseal diabetes insipidus associated with a signal peptide mutation // J lin Endocrinol Metab. 1993. V. 77. P. 599A-599G.

443. Melis M.R., Stancampiano R., Argiolas A. Oxytocin- and vasopressin-like immunoreactivity in the rat thymus: characterization and possible involvement in the immune response // Regul Pept. 1993. V. 45. P. 269-272.

444. Merkulov V.M., Merkulova T.I. Nucleotide sequence of a fragment of the rat tryptophan oxygenase gene showing high affinity to glucocorticoid receptor in vitro //Biochimica et Biophysica Acta. 1992. V. 1132. P. 100-102.

445. Meyer R. K., Aebi U. Bundling of actin filaments by a-actinin depends on its molecular length // J. Cell Biol. 1990. V. 110. P. 2013-2024.

446. Miller W.L. Editorial: molecular genetics of familial central diabetes Insipidus // J Clin Endocrinol Metab. 1993. V. 77. P. 592-595.

447. Milligan R.A., Flicker P.F. Structural relationships of actin, myosin, and tropomyosin revealed by cryo-electron microscopy // J Cell Biol. 1987. V. 105. P. 29-39.

448. Milligan R.A., Whittaker M., Safer D. Molecular structure of F-actin and localization of surface binding sites//Nature. 1990. V. 348. P. 217-221.

449. Mitchison T.J., Cramer L.P. Actin-based cell motility and cell locomotion // Cell. 1996. V. 84. P. 371-379.

450. Mohr E., Hillers M., Ivell R., Haulica I., Richter D. Expression of the vasopressin and oxytocin genes in human hypothalami // FEBS Lett. 1985. V. 193. P. 12-16.

451. Mohr E., Schmitz E., Richter D. A single rat genomic DNA fragment encodes both the oxytocin and vasopressin genes separated by 11 kilobases and oriented in opposite transcriptional directions // Biochimie. 1988. V. 70. P. 649-654.

452. Mohr E., Fehr S., Richter D. Axonal transport of neuropeptide encoding mRNAs within the hypothalamo-hypophyseal tract of rats // EMBO J. 1991. V. 10. P. 24192424.

453. Mohr E., Richter D. Diversity of mRNAs in the axonal compartment of peptidergic neurons in the rat//Eur J Neurosci. 1992. V. 4. P. 870-876.

454. Mohr E., Terjung D., Martin R., Richter D. Vasopressin mRNA in the hypothalamo-hypophyseal tract. In: Gross P., Richter D., Robertson G.L. (eds). Vasopressin. Paris. John Libbey Eurotext. 1993. P. 119-129.

455. Mohr E., Peters A., Morris J.F., Richter D. Somatic nonhomologous crossing-over between neuropeptide genes in rat hypothalamic neurons // Proc Natl Acad Sci USA. 1994. V. 91. P. 11403-11407.

456. Moll U.M., Lane B.L., Robert F., Geenen V., Legros J.J. The neuroendocrine thymus: abundant occurrence of oxytocin-, vasopressin-, and neurophysin-like peptides in epithelial cells // Histochemistry. 1988. V. 89. P. 385-390.

457. Morel F., Doucet A. Hormonal control of kidney functions at the cell level // Physiol Rev. 1986. V. 66. P. 377-468.

458. Morel F., Imbert-Teboul M., Chabardes D. Receptors to vasopressin and other hormones in the mammalian kidney// Kidney Internat. 1987. V. 31. P. 512-520.

459. Morel A., O'Carroll A., Brownstein M.J., Lolait S.J. Molecular cloning and expression of a rat V1a arginine vasopressin receptor// Nature. 1992. V. 356. P. 523-526.

460. Morgan Т.Н. Sex-limited inheritance in drosophila // Science. 1910. V. 32. P. 120-122.

461. Morin S.M., Stotz-Potter E.H., Dimicco J.A. Injection of muscimol in dorsomedial hypothalamus and stress-induced Fos expression in paraventricular nucleus // Am J Physiol. 2001. V. 280. P. R1276-R1284.

462. Morris A.P., Whittaker J.C., Balding D.J. Fine-scale mapping of disease loci via shattered coalescent modeling of genealogies // Am J Hum Genet. 2002. V. 70. P. 686-707.

463. Moses A.M., Notman D.D. Diabetes insipidus and syndrome of inappropriate antidiuretic secretion (SIADH) //Adv Intern Med. 1982. V. 27. P. 73-100.

464. Motulsky A.G. Impact of genetic manipulation on society and medicine // Science. 1983. V. 219. P. 135-140.

465. Moutier R., Toyama K., Charrier M.F. Biochemical polymorphism in the rat Rattus norvegicus: genetic study of four markers // Biochem Genet. 1973. V. 8. P. 321-328.

466. Mullins R.D., Heuser J.A., Pollard T.D. The interaction of Arp2/3 complex with actin: Nucleation, high affinity pointed end capping, and formation of branching networks of filaments // Proc Natl Acad Sci USA. 1998. V. 95. P. 6181-6186.

467. Munck A., Guyre P., Holbrook N.J. Physiological functions of glucocorticoids in stress and their relation to pharmacological actions // Endocrinol Rev. 1984. V. 5. P. 25-44.

468. Mundschenk J., Rittig S, Siggaard C, Hensen J, Lehnert H. A new mutation of the arginine vasopressin-neurophysin II gene in a family with autosomal dominant neurohypophyseal diabetes insipidus// Exp Clin Endocrinol Diabetes. 2001. V. 109. P. 406-409.

469. Murphy D., Carter D.A. Transgenic approaches to modifying cell and tissue function // Curr Opin Cell Biol. 1992. V. 4. P. 274-279.

470. Nagai I., Li C.H., Hsieh S.M., Kizaki Т., Urano Y. Two cases of hereditary diabetes insipidus, with an autopsy finding in one //Acta Endocr. 1984. V. 105. P. 318-323.

471. Nakao A., Allen M.L., Sonnenburg W.K., Smith W.L. Regulation of cAMP metabolism by PGE2 in cortical and medullary thick ascending limb of Henle's loop //Am J Physiol. 1989. V. 256. P. C652-C657.

472. Nardo L., Soong Y., Wu D„ Young I.R., Walker D., Szeto H.H. Site and mechanism of action of dynorphin A-(1-13) and N-methyl-D-aspartate on ACTH release in fetal sheep //Am J Physiol. 2002. V. 282. P. E1301-E1307.

473. Naruse M., Klein J.D., Ashkar Z.M., Jacobs J.D., Sands J.M. Glucocorticoids downregulate the rat vasopressin-regulated urea transporter in rat terminal inner medullary collecting ducts // J Am Soc Nephrol. 1997. V. 8. P. 517-523.

474. Nash M.A., Edelman C.M. The developing kidney. Immature function or inappropriate standart? // Nephron. 1973. V. 11. P. 71-90.

475. Naumenko E.V., Markel A.L., Lurie S.B., Kazin E.M. Circadian adrenocortical periodicity changes in adult rats stimulated during early development. II. Effect of cold stress // Chronobiol Int. 1985. V. 2. P. 253-259.

476. Naumenko E.V., Maslova L.N. Stress in early ontogenesis and reactivity of hypothalamo-pituitary-adrenal system in adult rats // Endocr Exper. 1985. V. 19. P. 171-178.

477. Naylor A.M., Pittman Q.J., Veale W.L. Stimulation of vasopressin release in the ventral septum of the rat brain suppresses prostaglandin E1 fever// J Physiol. 1988. V. 399 . P. 177-189.

478. Nejsum L.N., Kwon T.-H., Marples D., Flyvbjerg A., Knepper M.A., Fr0kiaer J., Nielsen S. Compensatory increase in AQP2, p-AQP2, and AQP3 expression in rats with diabetes mellitus // Am J Physiol. 2001. V. 280. P. 715F-F726.

479. Newton M.A., Kendziorski C.M., Richmond C.S., Blattner F.R., Tsui K.W. On differential variability of expression ratios: improving statistical inference about gene expression changes from microarray data // J Comput Biol. 2001. V. 8. P. 3752.

480. Nicholson H.D., Swann R.W., Burford G.D., Wathes D.C., Porter D.G., Pickering B.T. Identification of oxytocin and vasopressin in the testis and in adrenal tissue // Regul Pept. 1984. V. 8. P. 141-146.

481. Nielsen S., DiGiovanni S.R., Christensen E.I., Knepper M.A., Harris H.W. Cellular and subcellular immunolocalization of vasopressin-regulated water channel in rat kidney// Proc Natl Acad Sci USA. 1993a. V. 90. P. 11663-11667.

482. Nielsen S., Muller J., Knepper M.A. Vasopressin- and cAMP-induced changes in ultrastructure of isolated perfused inner medullary collecting ducts //Am J Physiol. 1993b. V. 265. P. F225-F238.

483. Nielsen S., Smith B.L., Christensen E.I., Knepper M.A., Agre P. CHIP28 water channels are localized in constitutively water-permeable segments of the nephron //J Cell Biol. 1993c. V. 120. P. 371-383.

484. Nielsen S., Agre P. The aquaporin family of water channels in kidney // Kidney Internal 1995. V. 48. P. 1057-1068.

485. Nielsen S., Marples D., Mohtashami M., Dalby N.O., Trimble W., Knepper M. Expression of VAMP2-like protein in kidney collecting duct intracellular vesicles: co-localization with aquaporin-2 water channels // J Clin Invest. 1995b. V. 96. P. 1834-1844.

486. Nielsen S., Pallone Т., Smith B.L., Christensen E.I., Agre P., Maunsbach A.B. Aquaporin-1 water channels in short and long loop descending thin limbs and in descending vasa recta in rat kidney//Am J Physiol. 1995c. V. 268. P. F1023-F1037.

487. Nielsen S., Terris J., Smith C.P., Hediger M.A., Ecelbarger C.A., Knepper M.A. Cellular and subcellular localization of the vasopressin-regulated urea transporter in rat kidney // Proc Natl Acad Sci USA. 1996. V. 93. P. 5495-5500.

488. Nielsen S., Maunsbach A.B., Ecelbarger C.A., Knepper M.A. Ultrastructural localization of Na-K-2CI cotransporter in thick ascending limb and macula densa of rat kidney //Am J Physiol. 1998. V. 275. P. F885-F893.

489. Nielsen S., Frokiaer J., Marples D., Kwon Т.Н., Agre P., Knepper M.A. Aquaporins in the kidney: from molecules to medicine // Physiol Rev. 2002. V. 82.1. P. 205-244.

490. Nijenhuis M., Zalm R., Burbach J.P. Mutations in the vasopressin prohormone involved in diabetes insipidus impair endoplasmic reticulum export but not sorting // J Biol Chem. 1999. V. 74. P. 21200-21208.

491. Nijenhuis M., Zalm R., Burbach J.P. A diabetes insipidus vasopressin prohormone altered outside the central core of neurophysin accumulates in the endoplasmic reticulum // Mol Cell Endocrinol. 2000. V. 167. P. 55-67.

492. Nilsson C., Jennische E., Но H.P., Eriksson E., Bjorntorp P., Holmang A. Increased insulin sensitivity and decreased body weight in female rats after postnatal corticosterone exposure // Eur J Endocrinol. 2002. V. 146. P. 847-854.

493. Nishida E., Maekawa S., Sakai H. Cofilin, a protein in porcinebrain that binds to actin filaments and inhibits their interactions withmyosin and tropomyosin // Biochemistry. 1984. V. 23. P. 5307-5313.

494. Nishigaki N, Negishi M, Honda A, Sugimoto Y, Namba T, Narumiya S, and Ichikawa A. Identification of prostaglandin E receptor EP2 cloned from mastocytoma cells as EP4 subtype// FEBS Letters. 1995. V. 364. P. 339-341.

495. Nishimoto G., Zelenina M., Li D., Yasui M., Aperia A., Nielsen S., Nairn A.C. Arginine vasopressin stimulates phosphorylation of aquaporin-2 in rat renal tissue //Am J Physiol. 1999. V. 276. P. F254-F259.

496. North W.G., Maurer L.H., Valtin H., O'Donnell J.F. Human neurophysins as potential tumor markers for small cell carcinoma of the lung: application of specific radioimmunoassays//J Clin Endocrinol Metab. 1980. V. 51. P. 892-896.

497. North W.G., LaRochelle F.T., Hardy J., Hardy G.R. Radioimmunoassays for individual rat neurophysins // J Endocrinol. 1983. V. 96. P. 373-386.

498. Nudel U., Zakut R., Shani M., Neuman S., Levy Z., Yaffe A. The nucleotide sequence of the rat cytoplasmic beta-actin II Nucleic Acids Res. 1983. V. 11. P. 1759-1771.

499. Nuoffer C., Balch W.E. GTPases: multifunctional molecular switches regulating vesicular traffic//Ann Rev Biochem. 1994. V. 63. P. 949-990.

500. Nussey S.S., Ang V.T.Y., Jenkins J.S., Chowdrey H.S., Bisset G.W. Brattleboro rat adrenal contains vasopressin // Nature. 1984. V. 310. P. 64-66.

501. Obar R.A., Collins C.A., Hammarback J.A., Shpetner H.S., Vallee R.B. Molecular cloning of the microtubule-associated mechanochemical enzyme dynamin reveals homology with a new family of GTP-binding proteins // Nature. 1990. V. 347 . P. 256-261.

502. Ohara M., Marith P.-Y., Xu D.-L. Upregulation of aquaporin-2 water channel expression in pregnant rats //J Clin Invest. 1998. V. 101. P. 1076-1083.

503. Ohno S. Major regulatory genes for mammalian sexual development // Cell. 1976. V. 7. P. 315-321.

504. O'Neil R.G., Hayhurst R.A. Functional differentiation of cell types of cortical collecting duct//Am J Physiol. 1985. V. 248. P. F449-F453.

505. Orchinik M., Murray T.F., Moore F.L. A corticosteroid receptor in neuronal membranes//Science. 1991. V. 252. P. 1848-1851.

506. Orlova A., Egelman E.H. Structural basis for the destabilization of F-actin by phosphate release following ATP hydrolysis // J Mol Biol. 1992. V. 227. P. 10431053.

507. Orlova A., Egelman E.H. A conformation change in the actin subunit can change the flexibility of the actin filament//J Mol Biol. 1993. V. 232. P. 334-341.

508. Os I., Aakesson I., Enger E. Plasma vasopressin in hereditary cranial diabetes insipidus //Acta Med Scand. 1985. V. 217. P. 429-434.

509. Pallone T.L. Characterization of the urea transporter in outer medullary descending vasa recta //Am J Physiol. 1994. V. 267. P. R267-R269.

510. Pallone T. Vasoconstriction of outer medullary vasa recta by angiotensin II is modulated by prostaglandin E2 //Am J Physiol. 1994. V. 266. P. F850-F857.

511. Pallone T.L., Work J., Myers R.L., Jamison R.L. Transport of sodium and urea in outer medullary descending vasa recta//J Clin Invest. 1994. V. 93. P. 212-222.

512. Pang P.K.T. Osmoregulatory functions of neurohypophysial hormones in fishes and amphibians // Am Zool. 1977. V. 17. P. 739-749.

513. Pardee A.B. Multiple molecular levels of cell cycle regulation // J Cell Biochem. 1994. V. 54. P. 375-378.

514. Pardy K., Murphy D., Carter D., Hui K.M. The influence of interleukin-2 on vasopressin and oxytocin gene expression in the rodent hypothalamus // J Neuroimmunol. 1993. V. 42. P. 131-138.

515. Park J.H., Saier M.H. Phylogenetic characterization of the MIP family of transmembrane channel proteins //J Membrane Biol. 1996. V. 153. P. 171-180.

516. Parnova R.G. Molecular mechanisms of action of prostaglandin E2 in the regulation of water osmotic permeability // Membr Cell Biol. 2000. V. 13. P. 287301.

517. Pearlmutter A.F., Rapino E., Saffran M. ACTH and cyclic adenine nucleotides do not provoke identical adrenocortical responses // Endocrinology. 1971. V. 89. P. 963-968.

518. Peng Т., Sands J.M., BagnascoS.M. Glucocorticoids inhibit transcription and expression of the UT-A urea transporter gene // 2002. V. 282. P. F853-F858.

519. Penit J., Faure M., Jard S. Vasopressin and angiotensin II receptors in rat aortic smooth muscle cells in culture//Am J Physiol. 1983. V. 244. P. E72-E82.

520. Perkins S.N., Husten E.J., Eipper B.A. The 108-kDa peptidylglycine alpha-amidating monooxygenase precursor contains two separate enzymatic activities involved in peptide amidation // Biochem Biophys Res Commun. 1990. V. 171. P. 926-932.

521. Pleasure S.J., Lee V.M.Y. Ntera 2 cells: A human cell line which displays characteristics expected of a human committed neuronal progenitor cell // J Neurosci Res. 1993. V. 35. P. 585-602.

522. Pollard T.D., Cooper J.A. Actin and actin-binding proteins. A critical evaluation of mechanisms and functions//Annu Rev Biochem. 1986. V. 55. P. 987-1035.

523. Pope B.J., Gonsior S.M., Yeoh S., McGough A., Weeds A.G. Un-coupling actin filament fragmentation by cofilin from increased subunit turnover // J Mol Biol. 2000. V. 298. P. 649-661.

524. Poulain D.A., Wakerley J.B. Electrophysiology of hypothalamic magnocellular neurones secreting oxytocin and vasopressin // Neuroscience. 1982. V. 7. P. 773808.

525. Pow D.V., Morris J.F., Ward A.R. Immunoelectron microscopic evidence for two different types of partial somatic repair of the mutant Brattleboro vasopressin gene // Neuroscience. 1992. V. 50. P. 503-512.

526. Preisser L., Teillet L., Aliotti S., Gobin R., Berthonaud V., Chevalier J., Corman В., Verbavatz J.-M. Down regulation of aquaporin-2 and -3 in aging kidney is independent of V2 vasopressin receptor//Am J Physiol. 2000. V. 279. P. 144F-F152.

527. Preston G.M., Jung J.S., Guggino W.B., Agre P. Membrane topology of aquaporin CHIP-analysis of function epitope scanning mutants by vectorial proteolysis // J Biol Chem. 1994. V. 269. P. 1668-1673.

528. Pret A.-M., Fiszman M.Y. Sequence divergence associated with species-specific splicing of the nonmuscle -tropomyosin alternative exon // J Biol Chem. 1996. V. 271. P. 11511-11517.

529. PromeneurD., Kwon T.-H., Frokiaer J., Knepper M.A., Nielsen S. Vasopressin V2-receptor-dependent regulation of AQP2 expression in Brattleboro rats // Am J Physiol. 2000a. V. 279. P. F370-F382.

530. Purdy K.E., Arendshorst W.A. EP-i and EP4 receptors mediate prostaglandin E2 actions in the microcirculation of rat kidney //Am J Physiol. 2000. V. 279. P. F755-F764.

531. Qualmann В., Kelly R.B. Syndapin isoforms participate in receptor-mediated endocytosis and actin organization //J Cell Biol. 2000. V. 148. P. 1047-1061.

532. Qualmann В., Kessels M.M., Kelly R.B. Molecular links between endocytosis and the actin cytoskeleton //J Cell Biol. 2000. V. 150. P. F111-F116.

533. Quinzii C., Castellani C. The cystic fibrosis transmembrane regulator gene and male infertility // J Endocrinol Invest. 2000. V. 23. P. 684-689.

534. Raber J., Bloom F.E. IL-2 induces vasopressin release from the hypothalamus and the amygdala: role of nitric oxide-mediated signaling // J Neurosci. 1994. V. 14. P. 6187-6195.

535. Raber J., Pich E.M., Koob G.F., Bloom F.E. IL-1 beta potentiates the cetylcholine-induced release of vasopressin from the hypothalamus in vitro, but not from the amygdala // Neuroendocrinology. 1994. V. 59. P. 208-217.

536. Raber J., Bloom F.E. Arginine vasopressin release by acetylcholine or norepinephrine: region- specific and cytokine-specific regulation // Neuroscience. 1996. V. 71. P. 747-759.

537. Raber J., Pich E.M., Koob G.F., Bloom F.E. IL-1 beta potentiates the acetylcholine-induced release of vasopressin from the hypothalamus in vitro, but not from the amygdala // Neuroendocrinology. 1994. V. 59. P. 208-217.

538. Rajerison R., Marchetti J., Roy C., Bockaert J., lard S. The vasopressin-sensitive adenylate cyclase of the rat kidney; effects of adrenalectomy and corticosteroids on hormonal receptor-enzyme coupling // J Biol Chem. 1974. V. 249. P. 6390-6400.

539. Rajerison R., Butlen D., Jard S. Ontogenic development of antidiuretic hormone receptors in rat kidney: comparison of hormonal binding and adenylate cyclase activation // Mol Cell Endocrinol. 1976. V. 4. P. 271-277.

540. Rane S., Aperia A. Ontogeny of Na-K-ATPase activity in thick ascending limb and of concentrating capacity//Am J Physiol. 1985. V. 249. P. F723-F728.

541. Rao V.V.N.G., Loffler C., Schmittger S., Hansmann I. The gene for human growth hormone-releasing factor (GHRF) maps to or near chromosome 20p12 // Cytogenet Cell Genet. 1991a. V. 57. P. 39-40.

542. Rao W, Schnittger S, Hansmann I. G protein Gs alpha (GNAS 1), the probable candidate gene for Albright hereditary osteodystrophy, is assigned to human chromosome 20q12-q13.2 //Genomics. 1991b. V. 10. P. 257-261.

543. Rao V.V.N.G., Loffler C., Battey J., Hansmann I. The human gene for oxytocin-neurophysin I (OXT) is physically mapped to chromosome 20p13 by in situ hybridization //Cytogenet Cell Genet. 1992. V. 61. P. 271-273.

544. Rayment I., Rypniewski W.R., Schmidt-Base K., Smith,R., Tomchick D.R., Benning M.M., Winkelman D.A., Wesenberg G., Holden H.M. Three-dimensional structure of myosin subfragment-1: a molecular motor//Science. 1993. V. 261. P. 50-58.

545. Renfranz P.J., Cunningham M.G., McKay R.D.G. Region-specific differentiation of the hippocampal stem cell line HiB5 upon implantation into developing mammalian brain //Cell. 1991. V. 66. P. 713-729.

546. Repaske D.R., Phillips J.A., Kirby L.T., TzeW.J., D'Ercole A.J., Battey J. Molecular analysis of autosomal dominant neurohypophyseal diabetes insipidus // J. Clin. Endocr. Metab. 1990. V. 70. P. 752-757.

547. Reppert S.M., Schwartz W.J., Uhl G.R. Arginine vasopressin: a novel peptide rhythm in cerebrospinal fluid //Trends Neurosci. 1987. V. 10. P. 76-80.

548. Ressad F., Didry D., Xia G.X., Hong Y., Chua N.H., Pantaloni D., Carlier M.F. Kinetic analysis of the interaction of actin-depolymerizing fac-tor (ADF)/cofilin with

549. G- and F-actins. Comparison of plant and humanADFs and effect of phosphorylation // J Biol Chem. 1998. V. 273. P. 20894-20902.

550. Rich T.C., Fagan K.A., Tse Т.Е., Schaack J., Cooper D.M.F., Karpen J.W. A uniform extracellular stimulus triggers distinct cAMP signals in different compartments of a simple cell // Proc Natl Acad Sci USA. 2001. V. 98. P. 1304913054.

551. Richards S.J., Morris R.J., Raisman G. Solitary magnocellular neurones in the homozygous Brattleboro rat have vasopressin and glycopeptide immunoreactivity // Neuroscience. 1985. V. 16. P. 617-623.

552. Rivier C., Rivier J., Mormede P., Vale W. Studies of the nature of the interaction between vasopressin and corticotropin-releasing factor on adrenocorticotropin release in the rat // Endocrinology. 1984. V. 115. P. 882-886.

553. Rivier C. Alcohol stimulates ACTH secretion in the rat: mechanisms of action and interactions with other stimuli //Alcohol Clin Exp Res. 1996. V. 20. P. 240254.

554. Rizoli S.B., Rotstein O.D., Parodo J., Phillips M.J., Kapus A. Hypertonic inhibition of exocytosis in neutrophils: central role for osmotic actin skeleton remodeling //Am J Physiol. 2000. V. 279. P. C619-C633.

555. Robinson R. Genetics of the norway rat // New York. Oxford. Pergamon Press. 1965. P. 1-601.

556. Robinson B.G., Emanuel R.L., Frim D.M., Majzoub J.A. Glucocorticoid stimulates expression of corticotropin-releasing hormone gene in human placenta // Proc Natl Acad Sci USA. 1988. V. 85. P. 5244-5248.

557. Robinson P.J., Sontag J.-M., Liu J.-P., Fykse E.S., Slaughter C., McMahon H., Sudhof T.C. Dynamin GTPase regulated by protein kinase С phosphorylation in nerve terminals // Nature. 1993. V. 365. P. 163-166.

558. Robinson R.C., Mejillano M., Le V.P., Burtnick L.D., Yin H.L., Choe S. Domain movement in gelsolin: a calcium-activated switch // Science. 1999. V. 286. P. 1939-1942.

559. Rocha A.S., Kokko J.P. Sodium chloride and water transport in the medullary thick ascending limb of Henle // J Clin Invest. 1973. V. 52. P. 612-624.

560. Roos T.B. Steroid synthesis in embrionic and fetal rat adrenal tissue // Endocrinology. 1967. V. 81. P. 716-728.

561. Rosenthal W., Seibold A., Antaramian A., Lonergan M., Arthus M.-F., Hendy G.N., Birnbaumer M., Bichet D.G. Molecular identification of the gene responsible for congenital nephrogenic diabetes insipidus // Nature. 1992. V. 359. P. 233-235.

562. Rosenthal W., Antaramian A., Gilbert S., Birnbaumer M. Nephrogenic diabetes insipidus: a V2 vasopressin receptor unable to stimulate adenylyl cyclase // J Biol Chem. 1993. V. 268. P. 13030-13033.

563. Rosner W. The functions of corticosteroid-binding globulin and sex hormone-binding globulin: recent advances // Endocrin Rev. 1990. V. 11. P. 80-91.

564. Rothman J.E. Mechanisms of intracellular protein transport// Nature. 1994. V. 372. P. 55-63.

565. Rousseau-Merck M.-F., Rene P., Derre J., Bienvenu Т., Berger R., de Keyzer Y. Chromosomal localization of the human V3 pituitary vasopressin receptor gene (AVPR3) to 1q32 // Genomics. 1995. V. 30. P. 405-406.

566. Roy D.R., Jamison R.L. Countercurrent system and its regulation. In: The kidney: physiology and pathophysiology. New York. Raven Press. 1985. P. 903932.

567. Rubinsztein D.C. Lessons from animal models of Huntington's disease //Trends Genet. 2002. V. 18. P. 202-209.

568. Sadeghi H.M., Innamorati G., Birnbaumer M. Functional properties of mutant V2 receptors. In: Saito Т., Kurokawa K., Yoshida S. (eds). Neurohypophysis: recent progress of vasopressin and oxytocin research. Elsevier. 1995. P. 445-451.

569. Sadeghi H.M., Innamorati G., Birnbaumer M. An X-linked NDI mutation reveals a requirement for cell surface V2R expression // Molec Endocr. 1997. V. 11. P. 706-713.

570. Samso M., Radermacher M., Frank J., Koonce M.P. Structural characterization of a dynein motor domain // J Mol Biol. 1998. V. 276. P. 927-937.

571. Sands J.M., Nonoguchi H., Knepper M.A. Vasopressin effects on urea and H2O transport in inner medullary collecting duct subsegments // Am J Physiol. 1987. V. 253. P. F823-F832.

572. Sanmarti A., Galard R., Catalan R., Foz M., Castellanos J.M. Plasmatic arginine vasopressin levels in total and partial diabetes insipidus // J Endocrinol Invest. 1985. V. 8. P. 127-130.

573. Sasaki S., Imai M."Effects of vasopressin on water and NaCI transport across the in vitro perfused medullary thick ascending limb of Henle's loop of mouse, rat and rabbit kidneys//Pflugers Arch. 1980. V. 383. P. 215-221.

574. Sato M., Dunn M.J. Osmolality, vasopressin-stimulated cAMP and PGE2 synthesis in rat collecting tubule cells //Am J Physiol. 1986. V. 250. P. F802-F810.

575. Saul G.B., Garrity E.B., Benirschke K., Valtin H. Inherited hypothalamic diabetes insipidus in the Brattleboro strain of rats // J Heredity. 1968. V. 59. P. 113-117.

576. Sausville E., Carney D., Battey J. The human vasopressin gene is linked to the oxytocin gene and is selectively expressed in the cultured lung cancer cell line // J Biol Chem. 1985. V. 260. P. 10236-10241.

577. Sawyer W.H., Pang P.K.T. Vasopressin analogs that antagonize antidiuretic responses by rats to the antidiuretic hormone // Science. 1981. V. 212. P. 49-51.

578. Schafer D.A., GillS.R., Cooper J.A., Heuser J.E., SchroerT.A. Ultrastructural analysis of the dynactin complex: an actin-related protein is a component of a filament that resembles F-actin // J Cell Biol. 1994. V. 126. P. 403-412.

579. Schafer J.A., Watkins M.L., Li L., Herter P., Haxelmans S., Schlatter E. A simplified method for isolation of large numbers of defined nephron segments // Am J Physiol. 1997. V. 273. P. F650-F657.

580. Schapiro S. Pituitary ACTH and compensatory adrenal hypertrophy in stress-non-responsive infant rats // Endocrinology. 1962.V. 71. P. 986-989.

581. Schapiro S. Neonatal Cortisol administration effect on growth the adrenal glands and pituitary-adrenal response to stress // Proc Soc Expt Biol&Med. 1965. V. 120. P. 771-779.

582. Schekman R., Orci L. Coat proteins and vesicle budding // Science. 1996. V. 271. P. 1526-1533.

583. Scherbaum W.A., Bottazzo G.F. Autoantibodies to vasopressin cells in idiopathic diabetes insipidus: evidence for an autoimmune variant// Lancet. 1983. V. 1. P. 897-901.

584. Scherbaum W.A., Bottazzo G.F., Czernichow P., Wass J.A.N., Doniach D. Role of autoimmunity in central diabetes insipidus // Front Horm Res. 1985. V. 13. P. 232-238.

585. Schluter K., Jockusch B.M., Rothkegel M. Profilins as regulators of actin dynamics // Biochem Biophys Acta. 1997. V. 1359. P. 97-109.

586. Schmale H., Heinsohn S., Richter D. Structural organization of the rat gene for the arginine vasopressin-neurophysin precursor// EMBO J. 1983. V. 2. P. 763767.

587. Schmale H., Richter D. Single base deletion in the vasopressin gene is the cause of diabetes insipidus in Brattleboro rats // Nature. 1984. V. 308. P. 705-709.

588. Schmale H., Fehr S., Richter D. Vasopressin biosynthesis from gene to peptide hormone // Kidney Internat. 1987. V. 32. P. S8-S13.

589. Schobitz В., de Kloet S.W., Holsboer F. Cellular localization of interleukin 6 mRNA and interleukin 6 receptor mRNA in rat brain // Eur J Neurosci. 1993. V. 5. P. 1426-1435.

590. Scholey J.M. Kinesin II, a membrane traffic motor in axons, axonemes and spindles//J Cell Biol. 1996. V. 133. P. 1-4.

591. Schroeder H.A., Vinton W.H., Balassa J., Balassa JJ. Effects of chromium, cadmium and lead on the growth and survival of rats // J Nutrition. 1963. V. 80. P. 48-54.

592. Schoenfeld H.M., Leathern J.H., Rabii J. Maturation of adrenal stress responsiveness in the rat//Neuroendocrinology. 1980. V. 31. P. 101-105.

593. Schroer T.A., Steuer E.R., Sheetz M.P. Cytoplasmic dynein is a minus end-directed motor for membranous organelles // Cell. 1989. V. 56. P. 937-946.

594. Schule R., Muller M., Kaltschmidt C., Renkawitz R. Many transcription factors interact synergistically with steroid receptors // Science. 1988. V. 242. P. 14181420.

595. Schuster V.L. Mechanism of bradikinin, ADH and cAMP interaction in rabbit cortical collecting duct//Am J Physiol. 1985. V. 249. P. F645-F653.

596. Schutt C.E., Lindberg U. Actin as the generator of tension during muscle contraction // Proc Natl Acad Sci USA. 1992. V. 89. P. 319-323.

597. Schutt C.E., Myslik J., Rozycki M.D., Gonnesekere N.C.W., Lindberg U. The structure of crystalline profilin-beta-actin // Nature. 1993. V. 365. P. 810-816.

598. Schwartzman M., Liberman E., Raz A. Bradykinin and angiotensin II activation of arachidon acid deacylation and prostaglandin E2 formation in rabbit kidney // J Biol Chem. 1981. V. 256. P. 2329-2333.

599. Schwartz J., Derdowska I., Sobocinska M., Kupryszewski G. A potent new synthetic analog of vasopressin with relative agonist specificity for the pituitary // Endocrinology. 1991. V. 129. P. 1107-1109.

600. Scott L.V., Dinan T.G. Vasopressin and the regulation of hypothalamic-pituitary-adrenal axis function: implications for the pathophysiology of depression // Life Sci. 1998. V. 62. P. 1985-1998.

601. Scriver C.R., Waters P.J. Monogenic traits are not simple: lessons from phenylketonuria//Trends in Genetics. 1999. V. 157. P. 267-272.

602. Sczepanska-Sadowska E., Gray D., Simon-Opperman C. Vasopressin in blood and third ventricle CSF during dehydratation, thirst and hemorrhage //Am J Physiol. 1983. V. 245. P. 549-R555.

603. Seedorf K., Kostka G., Lammers R., Bashkin P., Daly R., Burgess H., van der Bliek A.M., Schlessinger J., Ullrich A. Dynamin binds to SH3 domains of phospholipase С gamma and GRB-2 // J Biol Chem. 1994. V. 269. P. 1600916014.

604. Shah J.V., Flanagan L.A., Janmey P.A., Leterrier J.-F. Bidirectional translocation of neurofilaments along microtubules mediated in part by dynein/dynactin // Mol Biol Cell. 2000. V. 11. P. 3495-3508.

605. Shayakul С., Steel A., Hediger M.A. Molecular cloning and characterization of the vasopressin-regulated urea transporter of rat kidney collecting ducts // J Clin Invest. 1996. V. 98. P. 2580- 2587.

606. Shayakul C., Knepper M.A., Smith C.P., Digiovanni S.R., Hediger M.A. Segmental localization of urea transporter mRNAs in rat kidney //Am J Physiol. 1997. V. 272. P. F654-F660.

607. Shayakul C., Smith C.P, Mackenzie H.S., Lee W,-S., Brown D.,Hediger M.A. Long-term regulation of urea transporter expression by vasopressin in Brattleboro rats //Am J Physiol. 2000. V. 278. P. F620-F627.

608. Sherman T.G., Olivier C., Douglas J., Herbert E., Watson S.J. Coordinate expression of hypothalamic pro-dynorphin and pro-vasopressin mPNAs with osmotic stimulation // Neuroendocrinology. 1986. V. 44. P. 222-228.

609. Shows T.B., Lalley P.A. Control of lysosomal acid phosphatase expression in man-mouse cell hybrids // Biochem Genet. 1974. V. 11. P. 121-139.

610. Shpetner H.S., Vallee R.B. Identification of dynamin, a novel mechanochemical enzyme that mediates interaction between microtubules // Cell. 1989. V. 59. P. 421-432.

611. Shukla A., Hager H., Corydon T.J., Bean A.J., Dahl R., Vajda Z., Li H., Hoffmann H.J., Nielsen S. SNAP-25-associated Hrs-2 protein colocalizes with AQP2 in rat kidney collecting duct principal cells //Am J Physiol. 2001. V. 281. P. F546-556.

612. Siebold A., Brabet P., Rosenthal W., Birnbaumer M. Structure and chromosomal localization of the human antidiuretic hormone receptor gene //Am J Hum Genet. 1992. V. 51. P. 1078-1083.

613. Sinding C., Seif S.M., Robinson A.G. Levels of neurohypophyseal peptides in the rat during the first month of life. I. Basal levels in plasma, pituitary and hypothalamus// Endocrinol. 1980a. V. 107. P. 749-754.

614. Sinding C., Robinson A.G., Seif S.M. Levels of neurohypophyseal peptides in the rat during the first month of life. II. Response to physiological stimuli // Endocrinol. 1980b. V. 107. P. 755-760.

615. Skofitsch G., Jakobowitz D.M., Amann R., Lembeck F. Galanin and vasopressin coexist in the rat hypothalamo-neurohypophyseal system // Neuroendocrinology. 1989. V. 49. P. 419-427.

616. Skoufias D.A., Cole D.G., Wedawan K.P., Scholey J.M. The carboxyl-terminal domain of kinesin heavy chain is important for membrane binding // J Biol Chem. 1994. V. 269. P. 1477-1485.

617. Smillie, L.B. Tropomyosin. In: M. Barany (ed.) Biochemistry of smooth muscle contraction. Academic Press. 1996. P. 63-90.

618. Smith A.I., Funder J.W. POMC processing in the pituitary, central nervous system, and peripheral tissues // Endocr Rev. 1988. V. 9. P. 159-179.

619. Smith D.W., Day T.A. c-Fos expression in hypothalamus neurosecretory and brainstem catecholamine cells following noxious somatic stimuli // Neurosci. 1994. V. 58. P. 765-775.

620. Smith C.P., Lee W.-S., Martial S., Knepper M.A., You G., Sands J.M., Hediger M.A. Cloning and regulation of expression of the rat kidney urea transporter (rUT2) // J Clin Invest. 1995a. V. 96. P. 1556-1563.

621. Smith D.W., Sibbald J.R., Khanna S., Day T.A. Rat vasopressin cell responses to simulated haemorrhage: stimulus-dependent role for A1 noradrenaline neurons //Am J Physiol. 1995b. V. 268. P. R1336-R1342.

622. Smith L.M., Ervin M.G., Wada N., Ikegami M., Polk D.H., Jobe A.H. Antenatal glucocorticoids alter postnatal preterm lamb renal and cardiovascular responses to intravascular volume expansion // Pediatr Res. 2000. V. 47. P. 622-627.

623. Snyder H.M., Noland T.D., Breyer M.D. cAMP-dependent protein kinase mediates hydroosmotic effect of vasopressin in collecting duct//Am J Physiol. 1992. V. 263. P. C147-C153.

624. Soderling S.H., Bayuga S.J., Beavo J.A. Cloning and characterization of a cAMP-specific cyclic nucleotide phosphodiesterase // Proc Natl Acad Sci USA. 1998. V. 95. P. 8991-8996.

625. Sokol H.W., Zimmerman E.A. The hormonal status of the Brattleboro rat// Ann N Y Acad Sci. 1982. V. 394. P. 535-548.

626. Standard nomenclature for structure of the kidney // Kidney Internat. 1988. V. 33. P. 1-7.

627. Stefancsik R., Jha P.K., Sarkar S. Identification and mutagenesis of a highly conserved domain in troponin T responsible for troponin I binding: Potential role for coiled coil interaction // Proc Natl Acad Sci USA. 1998. V. 95. P. 957-962.

628. Stern M., Picard C., Grenet D. Mucoviscidosis in adults // Presse Med. 2002. V. 31. P. 263-270.

629. Steuer E.R., Wordeman L., Schroer T.A., Sheetz M. P. Localization of cytoplasmic dynein to mitotic spindles and kinetochores // Nature. 1990. V. 345. P. 266-268.

630. Stewart W. Structural basis for bending tropomyosin around actin in muscle // Proc Natl Acad Sci USA. 2001. V. 98. P. 8165-8166.

631. Stocker S.D,, Strieker E.M., Sved A.F. Arterial baroreceptors mediate the inhibitory effect of acute increases in arterial blood pressure on thirst // Am J Physiol. 2002. V. 282. P. R1718-R1729.

632. Stossel T.P. From signal to pseudopod. How cells control cytoplasmic actin assembly // J Biol Chem. 1989. V. 264. P. 18261-18264.

633. Strahle U., Klock G., Schutz G. A DNA sequence of 15 base pairs is sufficient to mediate both glucocorticoid and progesterone induction of gene expression // Proc Natl Acad Sci USA. 1987. V. 84. P. 7871-7875.

634. Strange K., Spring K.R. Cell membrane water permeability of rabbit cortical collecting duct//J Membrane Biol. 1987. V. 96. P. 27-43.

635. Straub F.B., Feuer G. Adenosinetriphosphate the functional group of actin // Biochim Biophys Acta. 1949. V. 4. P. 455-470.

636. Strieker E.M., Callahan J.В., Huang W., Sved A.F. Early osmoregulatory stimulation of neurohypophyseal hormone secretion and thirst after gastric NaCI loads //Am J Physiol. 2002. V. 282. P. R1710-R1717.

637. Sudhof T.C. The synaptic vesicle cycle: a cascade of protein-protein interactions // Nature. 1995. V. 375. P. 645-653.

638. Sugimoto Т., Saito M., Mochizyki S., Watanabe Y., Hashimoto S., Kawashima H. Molecular cloning and functional expression of a cDNA encoding the human V^ vasopresin receptor//J Biol Chem. 1994. V. 269. P. 27088-27092.

639. Summy-Long J.Y., Bui V., Gestl S., Kadekaro M. Nitric oxide, interleukin and prostaglandin interactions affecting the magnocellular system // Brain Res. 2002. V. 940. P. 10-20.

640. Sun H.Q., Yamamoto M., Mejillano M., Yin H. L. Gelsolin, a multifunctional actin regulatory protein //J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 33179-33182.

641. Sun T.-X., Hoek A.V., Huang Y., Bouley R., McLaughlin M., Brown D. Aquaporin-2 localization in clathrin-coated pits: inhibition of endocytosis by dominant-negative dynamin //Am J Physiol. 2002. V. 282. P. F998-F1011.

642. Sunahara R.K., Dessauer C.W., Gilman A.G. Complexity and Diversity of Mammalian Adenylyl Cyclases //Annu Rev Pharmacol Toxicol. 1996. V. 36. P. 461-480.

643. Sunahara R.K., Dessauer C.W., Whisnant R.E., Kleuss C., Gilman A.G.1.teraction of Gs alpha with the cytosolic domains of mammalian adenylyl cyclase //J Biol Chem. 1997a. V. 272. P. 22265-22271.

644. Sunahara R.K., Tesmer J.J., Gilman A.G., Sprang S.R. Crystal structure of the adenylyl cyclase activator Gsa // Science. 1997b. V. 278. P. 1943-1947.

645. Swain K.E., Mitchison T.J., Wordeman L.G. Evidence for kinesin-related proteins in the mitotic apparatus using peptide antibodies // J Cell Sci. 1992. V. 101. P. 303-313.

646. Sze P.Y., Towle A.C. Developmental profile of glucocorticoid binding to synaptic plasma membrane from rat brain // Int J Dev Neurosci. 1993. V. 11. P. 339-346.

647. Takahashi N., Kondo Y., Ito O., Igarashi Y., Omata K., Abe K. Vasopressin stimulates СГ transport in ascending thin limb of Henle's loop in hamster // J Clin Invest. 1995. V. 95. P. 1623-1627.

648. Tamarappoo B.K., Verkman A.S. Defective trafficking of AQP2 water channels in nephrogenic diabetes insipidus and correction by chemical chaperones // J Clin Invest. 1998. V. 101. P. 2257-2267.

649. Tang M., Gandelman R., Falk J.L. Amelioration of genetic (SHR) hypertension: a consequence of early handling // Physiol & Behav. 1982. V. 28. P. 1089-1091.

650. Tang W.-J., Hurley J.H. Catalytic mechanism and regulation of mammalian adenylyl cyclases // Mol Pharmacol. 1998. V. 54. P. 231-240.

651. Taniguchi J., Tabei K., Imai M. Profiles of water and solute transport along the descending limb: analysis by mathematical model //Am J Physiol. 1987. 252:F393-F402.

652. Tatsuto K., Lima V.J. "Effect of plasma corticosteroid concentration on the osmotic threshold for vasopressin releasing in Chagas disease". Rev Soc Brasil Med Trop. 1983. V. 16. P. 139-143.

653. Taylor A., Mamelak M., Reaven E., Maffly R. Vasopressin: possible role of microtubules and microfilaments in its action // Science. 1973. V. 181. P. 347-350.

654. Taylor К. A., Taylor D. W., Schachat F. Isoforms of {alpha}-Actinin from Cardiac, Smooth, and Skeletal Muscle Form Polar Arrays of Actin Filaments // J Cell Biol. 2000. V. 149. P. 635-646.

655. Terris J.M., Ecelbarger C.A., Marples D., Knepper M.A., Nielsen S. Distribution of aquaporin-4 water channel expression within rat kidney //Am J Physiol. 1995. V. 269. P. F775-F785.

656. Terris J.M., Ecelbarger C.A., Nielsen S., Knepper M.A. Long-term regulation of four renal aquaporins in rats//Am J Physiol. 1996. V. 271. P. F414-F422.

657. Terris J.M., Knepper M.A., Wade J.B. UT-A3: Localization and characterization of an additional urea transporter isoform in the IMCD // Am J Physiol. 2001. V. 280. P. F325-F332.

658. Tesmer J.J., Sunahara R.K., Gilman A.G., Sprang S.R. Crystal structure of the catalytic domains of adenylyl cyclase in a complex with Gsa GTPyS // Science. 1997. V. 278. P. 1907-1916.

659. Thibonnier M. Signal transduction of V1-vascular vasopressin receptors // Reg Peptides. 1992. V. 38. P. 1-11.

660. Thibonnier M., Goyara T. G-protein coupling of human platelet Vi-vascular vasopressin receptors//Am J Physiol. 1993. V. 264. P. C1336-C1344.

661. Thibonnier M., Auzan C., Madhun Z., Wilkins P., Berti-Mattera L., Clauser E. Molecular cloning, sequencing, and functional expression of a cDNA encoding the human Via vasopressin receptor//J Biol Chem. 1994. V. 269. P. 3304-3310.

662. Thibonnier M., Graves M.K., Wagner M.S., Auzan C., Clauser E., Willard H.F. "Structure, sequence, expression, and chromosomal localization of the human V(1a) vasopressin receptor gene". Genomics. 1996. 31:327-334.

663. Thierauch K.H., Crause P. Synthesis and biological activities of arginine-vasopressin analogues with reactive groups // J Biol Chem. 1980. V. 255. P. 153167.

664. Thompson A., Arany E.J., Hill D.J., Yang K. Glucocorticoid receptor expression is altered in pancreatic beta cells of the non-obese diabetic mouse during postnatal development// Metabolism. 2002. V. 51. P. 765-768.

665. Thrasher T.N. Unloading arterial baroreceptors causes neurogenic hypertension // 2002. V. 282. P. R1044-R1053.

666. Tinnikov A.A. Corticosteroid-binding globulin levels in the rat serum under conditions of starvation and restriction of motions // Horm Metab Res. 1993. V. 25. P. 88-89.

667. Toth E.L., Bowen P.A., Crockford P.M. Hereditary central diabetes insipidus: plasma levels of antidiuretic hormone in a family with a possible osmoreceptor defect//Canad Med Assoc J. 1984. V. 131. P. 1237-1241.

668. Towbin H., Staehelin Т., Gordon J. Electrophoretic transfer of proteins from polyacrilamide gels to nitrocellulose sheets procedure and some applications // Proc Natl Acad Sci USA. 1979. V. 76. P. 4350-4354.

669. Triggle D.J. Receptor-hormone interrelationships. In: Bittar E.B. (ed). Membrane structure and function. New York. Wiley Interscience publication. 1980. P. 10-59.

670. Tsukaguchi H., Shayakul C., Berger U.V., Tokui Т., Brown D., Hediger M.A. Cloning and characterization of the urea transporter UT3 . Localization in rat kidney and testis // J Clin Invest. 1997. V. 99. P. 1506-1515.

671. Tsukaguchi H., Shayakul C., Berger U.V., Hediger M.A. Urea transporters in kidney: molecular analysis and contribution to the urinary concentrating process // Am J Physiol. 1998. V. 275. P. F319-F324.

672. Tucker C., Goldstein L.S.B. Probing the kinesin-microtubule interaction //J Biol Chem. 1997. V. 272. P. 9481-9488.

673. Tuma P.L., Collins C.A. Dynamin forms polymeric complexes in the presence of lipid vesicles. Characterization of chemically cross-linked dynamin molecules // J Biol Chem. 1995. V. 270. P. 26707-26714.

674. Turnbull A.V., Smith G.W., Lee S„ Vale W.W., Lee K.F., Rivier C. CRF type I receptor-deficient mice exhibit a pronounced pituitary-adrenal response to local inflammation // Endocrinology. 1999. V. 140. P. 1013-1017.

675. Uchida S., Sasaki S., Fushimi K., Marumo F. The isolation of human Acuaporin-CD gene//J Biol Chem. 1994. V. 269. P. 23451-23455.

676. Ugrumov M.V. Magnocellular vasopressin system in ontogenesis: development and regulation // Microsc Res Tech. 2002. V. 56. P. 164-171.

677. Urade R., Kito M. Inhibition by acidic phospholipids of protein degradation by ER-60 protease, a novel cysteine protease, of endoplasmic reticulum // FEBS Lett. 1992. V. 312. P. 83-86.

678. Vacher C.M., Fretier P., Creminon C., Calas A., Hardin-Pouzet H. Activation by serotonin and noradrenaline of vasopressin and oxytocin expression in the mouse paraventricular and supraoptic nuclei//J Neurosci. 2002. V. 22. P. 1513-1522.

679. Vaisberg E.A., Koonce M.P., Mcintosh J.R. Cytoplasmic dynein plays a role in mammalian mitotic spindle formation //J Cell Biol. 1993. V. 123. P. 849-858.

680. Vale R.D., Reese T.S., Sheetz M.P. Identification of a novel force-generaring protein, kinesin, involved in microtubule-based motility//Cell. 1985. V. 42. P. 3950.

681. Vale R.D., Toyoshima Y.Y. Rotation and translocation of microtubules in vitro induced by dyneins from Tetrahymena cilia // Cell. 1988. V. 52. P. 459-469.

682. Vallee R.B., Okamoto P.M. The regulation of endocytosis: identifying dynamin's binding partners//Trends Cell Biol. 1995. V. 5. P. 43-47.

683. Vallee R.B., Sheetz M.P. Targeting of motor proteins//Science. 1996. V. 271. P. 1539-1544.

684. Valtin H., Schroeder H.A. Familial hypothalamic diabetes insipidus in rats (Brattleboro strain) //Am J Physiol. 1964. V. 206. P. 425-430.

685. Valtin H., Sawyer W.H., Sokol H.W. Neurohypophysial principles in rats homozygous and heterozygous for hypothalamic diabetes insipidus (Brattleboro strain) // Endocrinology. 1965. V. 77. P. 701-706.

686. Valtin H. Structural and functional heterogeneity of mammalian nephrons //Am J Physiol. 1977. V. 233. P. F491-F501.

687. Valtin H. The discovery of the Brattleboro rat, recommended nomenclature, and the question of proper controls // Ann N Y Acad Sci. 1982. V. 394. P. 1-9.

688. Valtin H., North W.G., Edwards B.R., Gellai M. Animal models of diabetes insipidus // Front Horm Res. 1985. V. 13. P. 105-126.

689. Van Acker S.A., Oitzl M.S., Fluttert M.F., de Kloet E.R. Centrally regulated blood pressure response to vasoactive peptides is modulated by corticosterone // J Neuroendocrinol. 2002. V. 14. P. 56-63.

690. Van Buren P., Palmiter K.A., Warshaw D.W. Tropomyosin directly modulates actomyosin mechanical performance at the level of a single actin filament // Proc Natl Acad Sci USA. 1999. V. 96. P. 12488-12493.

691. Van Buren P., Alix S.L., Gorga J.A., Begin K.J., LeWinter M.M., Alpert N.R. Cardiac troponin T isoforms demonstrate similar effects on mechanical performance in a regulated contractile system //Am J Physiol. 2002. V. 282. P. H1665-H1671.

692. Van Dam A.M., Bauer J., Tilders F.J.H., Berkenbosch F. Endotoxin-induced appearance of immunoreactive interleukin-1 p in ramified microglia in rat brain: a light and electron microscopic study// Neuroscience. 1995. V. 65. P. 815-826.

693. Van de Heijning B.J., Maigret C., Koekkoek-van den Herik I., Smelik W.F., van Wimersma Greidanus T.B. Dynorphin-A and vasopressin release in the rat: a structure-activity study// Neuropeptides. 1994. V. 26. P. 371-378.

694. Van der Zee E.A., Oklejewicz M., Jansen K., Daan S., Gerkema M.P. Vasopressin immunoreactivity and release in the suprachiasmatic nucleus of wild-type and tau mutant Syrian hamsters // Brain Res. 2002. V. 936. P. 38-46.

695. Van Leeuwen F.W., Evans D.A.P., Meloen R., Sonnemans M.A.F. Differential neurophysin immunoreactivities in solitary magnocellular neurons of thehomozygous Brattleboro rat indicate an altered neurophysin moiety // Brain Res. 1994. V. 635. P. 328-330.

696. Van Wimersma Greidanus T.B., Maigret C. The role of limbic vasopressin and oxytocin in social recognition // Brain Res. 1996. V. 713. P. 153-159.

697. Vassylyev, D.G., Takeda, S., Vakatsuki, S. Maeda, K., and Maeda, Y. Crystal structure of troponin С in complex with troponin I fragments at 2.3-A resolution // Proc Natl Acad Sci USA. 1998. V. 95. P. 4847-4852.

698. Verbalis J.G., Robinson A.G. Neurophysin and vasopressin: newer concepts of secretion and regulation. In: Imura H. (ed). The pituitary gland. Raven Press. N Y. 1985. P. 307-320.

699. Verbalis J.G., Dohanics J. Vasopressin and oxytocin secretion in chronically hyposmolar rats // Am J Physiol. 1991. V. 261. P. R1028-R1038.

700. Verkman A.S. Mechanisms and regulation of water permeability in renal epithelia //Am J Physiol. 1989. V. 257. P. C837-C850.

701. Verkman A.S., Mitra A.K. Structure and function of aquaporin water channels // Am J Physiol. 2000. V. 278. P. F13-F28.

702. Vibert P.V., Craig R., Lehman W. Three-dimensional reconstuction of caldesmon-containing smooth muscle thin filaments//J. Cell Biol. 1993. V. 123. P. 313-321.

703. Vibert P., Craig R., Lehman W. Steric-model for activation of muscle thin filaments // J Mol Biol. 1997. V. 266. P. 8-14.

704. Voisin D.L., Bourque C.W. Integration of sodium and osmosensory signals in vasopressin neurons//Trends Neurosci. 2002. V. 25. P. 199-205.

705. Wade J.В., Stetson D.L., Lewis S.A. ADH action: evidence for a membrane shuttle mechanism//Ann N Y Acad Sci. 1981. V. 372. P. 106-117.

706. Wade J.B. Membrane structural studies of the action of vasopressin // Feder Proc. 1985. V. 44. P. 2687-2692.

707. Walz Т., Smith B.L., Agre P., Engel A. The three-dimensional structure of human erythrocyte aquaporin CHIP// EMBO J. 1994. V. 13. P. 2985-2993.

708. Wang X., Thomas S.R., Wexler A.S. Outer medullary anatomy and the urine concentrating mechanism //Am J Physiol. 1998. V. 274. P. F413-F424.

709. Wang X.-Y., Beutler K., Nielsen J., Nielsen S., Knepper M.A., Masilamani S. Decreased abundance of collecting duct urea transporters UT-A1 and UT-A3 with ECF volume expansion //Am J Physiol. 2002. V. 282. P. F577-F584.

710. Watts A.G. Neuropeptides and the integration of motor responses to dehydration //Annu Rev Neurosci. 2001. V. 24. P. 357-384.

711. Way M., Pope В., Weeds A.G. Evidence for functional homology in the F-actin binding domains of gelsolin and a-actinin: Implications for the requirements of severing and capping//J Cell Biol. 1992. V. 119. P. 835-842.

712. Weatherall D.J. Phenotype-genotype relationships in monogenic disease: lessons from the thalassaemias // Nat Rev Genet. 2001. V. 2. P. 245-255.

713. Weber A., Pennise C.R., Fowler V.M. Tropomodulin increases the critical concentration of barbed end-capped actin filaments by converting ADP{middle dot}Pi-actin to ADP-actin at all pointed filament ends // J Biol Chem. 1999. V. 274. P. 34637-34645.

714. Wei Y., Wang W.-H. Role of the cytoskeleton in mediating effect of vasopressin and herbimycin A on secretory К channels in CCD //Am J Physiol. 2002. V. 282. P. F680-F686

715. Weinstein L.S., Yu S, Ecelbarger C.A. Variable imprinting of the heterotrimeric G protein Gs -subunit within different segments of the nephron //Am J Physiol. 2000. V. 278. P. F507-F514.

716. Weisz J., Ward I.L. Plasma testosterone and progesterone titers of pregnant rats, their male and female fetuses and neonatal offspring // Endocrinology. 1980. V. 106. P. 306-316.

717. White P., Doctor R.B., Dahl R.H., Chen J. Coincident microvillar actin bundle disruption and perinuclear actin sequestration in anoxic proximal tubule //Am J Physiol. 2000.V. 278. P. F886-F893.

718. Whitnall M.H., Gainer H., Сох B.M., Molineaux J. Dynorphin-A-(1-8) is contained within vasopressin neurosecretory vesicles in rat pituitary // Science. 1983. V. 222. P. 1137-1139.

719. Whittaker P.A. From symptomatic treatments to causative therapy? // Current Opinion in Chemical Biology. 2001. V. 4. P. 352-359.

720. Whittingham S., Mathews J.D., Schanfield M.S., Tait B.D., Mackay I.R. Interactions of HLA and Gm in autoimmune chronic active hepatitis // Clin Exp Immunol. 1981. V. 43. P. 80-86.

721. Wilkie T.M., Chen Y., Gilbert D.J. Identification, chromosomal location, and genome organization of mammalian G-protein-coupled receptors // Genomics. 1993. V. 18. P. 175-184.

722. Wilkinson M.F., Kasting N.W. Central vasopressin Vrreceptors mediate indomethacin-induced antipyresis in rats //Am J Physiol. 1989. V. 256. P. R1164-R1168.

723. Wilkinson M.F., Kasting N.W. Vasopressin release within the ventral septal area of the rat brain during drug-induced antipyresis //Am J Physiol. 1993. V. 264. P. R1133-R1138.

724. Wilkinson M.F., Horn T.F., Kasting N.W., Pittman Q.J. Central interleukin-1 beta stimulation of vasopressin release into the rat brain: activation of an antipyretic pathway // J Physiol. 1994. V. 481. P. 641-646.

725. Willcutts M.D., Felner E., White P.C. Autosomal recessive familial neurohypophyseal diabetes insipidus with continued secretion of mutant weakly active vasopressin // Hum Molec Genet. 1999. V. 8. P. 1303-1307.

726. Williamson G.L., Edwards B.R. Changes in the cortico-papillary osmotic gradient during prolonged dehydratation of the Brattleboro rat//Ann N YAcad Sci. 1982. V. 394. P. 529-534.

727. Windle R.J., Forsling M.L., Guzek J.W. Daily rhythms in the hormone content of the neurohypophysial system and release of oxytocin and vasopressin in the male rat: effect of constant light //J Endocrinol. 1992. V. 133. P. 283-290.

728. Wine J.J. Cystic fibrosis: The 'bicarbonate before chloride' hypothesis // Current Biology. 2001. V. 1112. P. R463-R466.

729. Winslow J.T., Hastings N., Carter C.S., Harbaugh C.R., Insel T.R. A role for central vasopressin in pair bonding in monogamous prairie voles // Nature. 1993. V. 365. P. 545-548.

730. Wittpoth С., Scholich К., Bilyeu J.D., Patel T.B. Adenylyl cyclase regulatessignal onset via the inhibitory GTP-binding protein, Gj // J Biol Chem. 2000. V. 275. P. 25915-25919.

731. Woehlke G., Ruby A.K., Hart C.L., Ly В., Hom-Booher N., Vale R.D. Microtubule interaction site of the kinesin motor// Cell. 1997. V. 90. P. 207-216.

732. Wolfson В., Manning R.W., David L.G. Co-localization of corticotropin releasing factor and vasopressin mRNA in neurones after adrenalectomy // Nature. 1985. V. 315. P. 59-63.

733. Womack J.E. Biochemical loci of the mouse (Mus musculus). In: Bewley G.C. (ed). Isozyme bulletin. North Caroline State University. 1984. P. 29-38.

734. Wood R.J., Rolls B.J., Ramsay D.J. Drinking following intracarotid infusions of hypertonic solutions in dogs //Am J Physiol. 1977. V. 232. P. R88-R92.

735. Woodcock E.A., McLeod J.K., Johnston C.I. Vasopressin stimulates phosphatidylinositol turnover and aldosterone synthesis in rat adrenal glomeruloza cells: comparison with angiotensin II // Endocrinology. 1986. V. 118. P. 2432-2435.

736. Xu Z., Glenda C., Day L., Yao J., Ross M.G. Central angiotensin induction of fetal brain с-fos expression and swallowing activity // Am J Physiol. 2001. V. 280. P. R1837-R1843.

737. Yamamoto M., Arishima K., Eguchi G. The sensitivity of the fetal rat adrenal gland to adrenocorticotropic hormone in vivo and in vitro // Biol Neonate. 1986. V. 50. P. 48-54.

738. Yamamoto S., Inenaga K., Kannan H., Eto S., Yamashita H. The actions of endithelin on single cells in the anteroventral third ventricular region and supraoptic nucleus in rat hypothalamic slices // J Neuroendocrinol. 1993. V. 5. P. 427-434.

739. Yamamoto Т., Sasaki S., Fushimi K., Kawasaki K., Oota K., Hirata Y., Marumo F., Kihara I. Localization and expression of kidney collecting duct aquaporin in hydrated and dehydrated rats II Exp Nephrol. 1995. V. 3. P. 193-201.

740. Yamashita Y., Hirai K., Katayama Y., Fushimi K., Sasaki S., Marumo F. Mutations in sixth transmembrane domain of AQP2 inhibit its translocation induced by vasopressin // Am J Physiol. 2000. V. 278. P. F395-F405.

741. Yang J.Т., Laymon R.A., Goldstein L.S. A three-domain structure of kinesin heavy chain revealed by DNA sequence and microtubule binding analyses // Cell. 1989. V. 56. P. 879-889.

742. Yang J, Xia M, Goetzl E, and Songzhu A. Cloning and expression of the EP3 -subtype of human receptors for prostaglandin E2 // Biochem Biophys Res Commun. 1994. V. 198. P. 999-1006.

743. Yang В., Verkman A.S. Urea Transporter UT3 Functions as an Efficient Water Channel. Direct evidence for a common water/urea pathway // J Biol Chem. 1998. V. 273. P. 9369-9372.

744. Yao J., Keri J.E., Taffs R.E., Colton C.A. Characterization of interleukin-1 production by microglia in culture // Brain Res. 1992. V. 591. P. 88-93.

745. Yasui M., Zelenin S.M., Celsi G., Aperia A. Adenylate cyclase-coupled vasopressin receptor activates AQP2 promoter via a dual effect on CRE and AR1 elements //Am J Physiol. 1997. V. 272. P. F443-F450.

746. Yasui M., Kwon T.-H., Knepper M.A., Nielsen S., Agre P. Aquaporin-6: An intracellular vesicle water channel protein in renal epithelia // Proc Natl Acad Sci USA. 1999. V. 96. P. 5808-5813.

747. Ybe J.A., Greene В., Liu S.-H., Pley U., Parham P., Brodsky F.M. Clathrin self-assembly is regulated by three light-chain residues controlling the formation of critical salt bridges // EMBO J. 1998. V. 17. P. 1297-1303.

748. Ye L., Chan S., Chow Y.H., Tsui L.C., Hu J. Regulated expression of the human CFTR gene in epithelial cells // Mol Ther. 2001. V. 3. P. 723-733.

749. Yoshida Т., Takanari H., Izutzu K. Distribution of cytoplasmic and axonemal dyneins in rat tissues//J Cell Sci. 1992. V. 101. P. 579-587.

750. You G., Smith C.P., Kanai Y., Lee W.-S., Stelzner M., Hediger M.A. Expression, cloning and characterization of the vasopressin-regulated urea transporter// Nature. 1993. V. 365. P. 844-847.

751. Yucel M., Ozer I. Kinetic studies on the interaction of cAMP with bovine cardiac protein kinase//FEBS L. 1981. V. 125. P. 120-122.

752. Zaninetti M., Tribollet E., Bertrand D., Raggenbass M. Nicotinic cholinergic activation of magnocellular neurons of the hypothalamic paraventricular nucleus // Neuroscience. 2002. V. 110. P. 287-299.

753. Zarrow M.X., Haltmeyer G.C., Denenberg V.H. Response of the infantile rat to stress // Endocrinology. 1966. V. 79. P. 631-634.

754. Zarrow M.X., Denenberg V.H., Haltmeyer G.C., Brumaghin J.T. Plasma and adrenal corticosterone levels following exposure of two day old rats to various stressors//Proc Soc Exptl Biol Med. 1967. V. 125. P. 113-116.

755. Zarrow M.X., Philpott J.E., Denenberg V.H. Passage of C14-11-corticosterone from the rat mother to the foetus and neonate // Nature. 1970. V. 226. P. 10581059.

756. Zawada E.J. The adaptive role of renal prostaglandin production: current clinical problems and future clinical horizonts // Nephron. 1984. V. 36. P. 77-79.

757. Zeece M.G., Robinson R.M., Bechtel P.J. Interaction of a-actinin, filamin, and tropomyosin with F-actin // Biochim Biophys Acta. 1979. V. 581. P. 365-370.

758. Zeisberger E. Role of vasopressin in fever regulation and suppression // TIPS. 1985. V. 6. P. 428-430.

759. Zelenina M., Christensen M.B., Palmer J., Nairn A.C., Nielsen S., Aperia A. Prostaglandin E2 interaction with AVP: effects on AQP2 phosphorylation and distribution //Am J Physiol. 2000. V. 278. P. F388-F394.

760. Zelenina M., Zelenin S., Bondar A.A., Brismar H., Aperia A. Water permeability of aquaporin-4 is decreased by protein kinase С and dopamine //Am J Physiol. 2002. V. 283. P. F309-F318.

761. Zemo D.A., McCabe J.Т. Salt-loading increases vasopressin and vasopressin 1b receptor mRNA in the hypothalamus and choroid plexus // Neuropeptides. 2001. V. 35. P. 181-188.

762. Zeng Q., Carter D.A., Murphy D. Cell specific expression of a vasopressin transgene in rats // J Neuroendocrinol. 1994. V. 6. P. 469-477.

763. Zenser T.V., Rapp N.S., Spry L.A., Davis B.B. Independent effects of bradykinin on adenosine 3',5'-monophosphate and prostaglandin E2 metabolism by rabbit renal medulla//Endocrinology. 1984. V. 114. P. 541-544.

764. Zerbe R., Palkovits M. Changes in the vasopressin content of discrete brain regions in response to stimuli for vasopressin secretion // Neuroendocrinology.1984. V. 38. P. 285-289.

765. Zhang C., Sands J.M., Klein J.D. Vasopressin rapidly increases phosphorylation of UT-A1 urea transporter in rat IMCDs through PKA //Am J Physiol. 2002. V. 282. P. F85-F90.

766. Zhuang S., Wang E., Wang C.-L.A. Identification of the functionally relevant calmodulin binding site in smooth muscle caldesmon // J Biol Chem. 1995. V. 270. P. 19964-19968.

767. Zhuang S., Mabuchi K., Wang C.-L.A. Heat treatment could affect the biochemical properties of caldesmon//J Biol Chem. 1996. V. 271. P. 3024230248.

768. Zicha J., Kunes J., Lebl M., Pohlova I., Slaninova J., Jelinek J. Antidiuretic and pressor actions of vasopressin in age-dependent DOCA-salt hypertension //Am J Physiol. 1989. V. 256. P. R138-R145.

769. Zielenski J., Corey M., Rozmahel R. Detection of a cystic fibrosis modifier locus for meconium ileus on human chromosome 19q13//Nat Genet. 1999. V. 22. P. 128-129.

770. Zimmerman E.A. Anatomy of vasopressin-producing cells // Front Horm Res.1985. V. 13. P. 1-21.

771. Zimmerman E.A., Ma L.-Y., Nilaver G. Anatomical basis of thirst and vasopressin secretion // Kidney Internat. 1987. V. 21. P. S14-S19.

772. Zingg H.H., Lefebvre D., Almazan G. Regulation of vasopressin gene expression in rat hypothalamic neurons // J Biol Chem. 1986. V. 261. P. 1295612959.