Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Биологические основы совершенствования методов борьбы с кровососущими комарами

ВАК РФ 03.00.09, Энтомология

Содержание диссертации, доктора биологических наук, Ганушкина, Людмила Алимпьевна

Общая характеристика работы

Глава 1. Современное состояние применения бактериальных препаратов для борьбы с личинками комаров.

1.1. Особенности экологии личинок комаров.

1.2. Роль комаров как переносчиков возбудителей болезней на территории России.

1.3. Характеристика энтомопатогенных бактерий Bacillus - 20 thuringiensis

1.3.1. Классификация белков Bt.

1.3.2. Характеристика белков, синтезируемых штаммами Bt

1.3.3. Структура Cry - эндотоксинов.

1.3.4. Характеристика Cyt - эндотоксинов.

1.3.5. Наличие других токсинов в Bt.

1.3.6. В егетативные инсектицидные белки.

1.4. Штаммы В .thuringiensis, активные по отношению к личинкам комаров.

1.4.1. Механизм действия.

1.5. Характеристика энтомопатогенных бактерий Bacillus sphaericus 37 1.5.1. Механизм действия кристаллических токсинов Bsph.

1.6. Резистентность насекомых к бактериальным препаратам.

1.7. Клонирование генов Bt и Bsph.

Глава 2. Методика исследований и объем биологического материала.,

Глава 3. Биологическая характеристика энтомопатогенных видов и штаммов бактерий.

3.1. Выделение, характеристика и активность новых штаммов бактерий.

3.1.1 .Bacillus thuringiensis.

• 3.1.2. Создание рекомбинантного штамма

3.1.3. Bacillus sphaericus.

3.1.4. Продолжительность ларвицидного действия споро-кристаллических комплексов бактерий Bti и Bsph в лабораторных условиях.

3.1.5. Brevibacillus laterosporus.

Глава 4. Экспериментальное исследование взаимоотношений энтомопатогенных бактерий с простейшими водных экосистем

4.1. Инсектицидная характеристика энтомопатогенных бактерий после инкапсуляции их в простейшие.

4.1.1. Бактерии Bacillus thuringiensis ssp.israelensis.

4.1.2. Бактерии Bacillus sphaericus.

4.1.3. Рекомбинантный штамм Methylobacillusßagellatum с клонированным геном синтеза Сгу4В токсического белка Bti.

4.1.4. Бактерии Brevibacillus laterosporus.

4.2. Продолжительность действия бактерий Bti и Bsph после инкапсуляции их инфузорями Tetrahymena pyriformis.

4.2.1. Продолжительность действия смеси Т. pyriformis+ Bti.

4.2.2. Продолжительность действия смеси Т. pyriformis+Bsph

4.3. Взаимодействие энтомопатогенных бактерий с простейшими в питательных средах для их культивирования.

4.4. Испытание инкапсулированного споро-кристаллического комплекса Bti в Т. pyriformis в полупроизводственных условиях . 156 Заключение 159 Выводы 164 Практические рекомендации 166 Список литературы

Общая характеристика работы

Введение Диссертация по биологии, на тему "Биологические основы совершенствования методов борьбы с кровососущими комарами"

В настоящее время основным средством борьбы с кровососущими насекомыми остаются химические инсектициды, к которым у насекомых достаточно быстро развивается устойчивость, что требует либо повышения дозировок, либо ротации инсектицидов. Не обладая избирательностью действия, химические инсектициды вызывают гибель не целевых, зачастую полезных организмов. Накопление инсектицидов в природных компонентах (воде, почве и др.) делает их экологически опасными. Указанные недостатки обуславливают необходимость поиска новых экологически безопасных методов борьбы с кровососущими насекомыми. Для борьбы с взрослыми комарами альтернативы химическим препаратам до сих пор нет, однако для уничтожения личинок все шире применяют биологические препараты.

Использование бактериальных препаратов против насекомых, имеющих медицинское значение (в первую очередь против комаров и мошек), началось в конце 70 годов XX столетия. Связано это было с открытием бактерий Bacillus thuringiensis ssp. israelensis (Bti). Позднее было показано, что бактерии Bacillus sphaericus (Bsph) также могут быть использованы в качестве средств борьбы с личинками комаров.

Основным преимуществом биологических препаратов при сравнении с химическими является избирательность действия. Препараты на основе Bti используют на протяжении более 20 лет, и за это время не было зафиксировано ни одного случая их отрицательного воздействия на другие организмы. Не отмечено также возникновения у насекомых устойчивости к этим препаратам. Учитывая способность Bti к синтезу 4 типов белковых токсинов, вряд ли возможно прогнозировать появление устойчивости и в дальнейшем. Несколько иная картина выявляется при использовании препаратов, изготовленных на основе Bsph. Сохраняя высокую избирательность действия, определяемую двумя белками, составляющими бинарный токсин, препараты на основе Bsph при длительном применении в некоторых случаях приводят к появлению резистентных популяций комаров, что было выявлено в Индии, Бразилии, Франции. Тем не менее, отказываться от использования препаратов на основе этой бактерии нецелесообразно, т.к. их перспективность связана с длительным остаточным действием как в водоемах с чистой, так и загрязненной водой. Устойчивость насекомых к препаратам на основе Bsph возможно преодолеть ротацией с ßi-содержащими препаратами и другими ларвицидами.

К недостаткам бактериальных инсектицидов следует отнести относительно непродолжительное остаточное действие. Отсутствие воспроизводства бактерий Bti в природных условиях диктует необходимость повторных обработок водоёмов. Bsph способна воспроизводиться в окружающей среде на погибших личинках комаров, что делает препараты на их основе в ряде случаев более предпочтительными. Однако, следует отметить более узкий спектр инсектицидного действия Bsph, что не позволяет примененять их для борьбы с комарами р. Aedes и вынуждает увеличивать дозировки для воздействия на личинок p. Anopheles.

По экспертным оценкам в дальнейшем доля биологических препаратов для борьбы с кровососущими комарами должна увеличиваться за счет совершенствования препаративных форм, снижения стоимости и разработки рациональной тактики их применения (84, 85, 169, 189, 288). Приведённые соображения подтверждают актуальность проведенных исследований.

Цель и задачи исследования. Поиск и отбор новых активных видов и штаммов энтомопатогенных бактерий и совершенствование биологического метода борьбы с личинками кровососущих комаров. Дня достижения поставленной цели потребовалось решить следующие задачи:

• провести отбор новых более эффективных штаммов бактерий Bti и Bsph;

• осуществить поиск бактерий, обладающих ларвицидной активностью, в других таксонономических группах;

• оценить эффективность инсектицидного действия рекомбинатнтного штамма с клонированным геном синтеза ларвицидного токсина;

• выявить факторы, влияющие на сохранение и продолжительность ларвицидного действия Bti и Bsph в водной среде;

• изучить особенности взаимодействия энтомопатогенных бактерий с простейшими в водных экосистемах;

• создать биологическую систему, обеспечивающую длительное сохранение ларвицидных свойств энтомопатогенных бактерий.

Научная новизна результатов исследования. В результате проведенных исследований нами впервые:

• Выявлены и охарактеризованы новые штаммы бактерий Bti и Bsph, эффективность которых превышает известные ранее штаммы.

• Создан рекомбинанатный штамм Ме1ку1оЪасИ1и$ flagellatum с клонированным геном синтеза Сгу4В токсического белка Вй, эффективный по отношению к личинкам малярийных комаров.

• Выделены 4 кристаллообразующих штамма ВгепЬасШш ШегоБрогш, обладающих высокой ларвицидной активностью.

• - Определены факторы, влияющие на сохранение и продолжительность ларвицидного действия ВЦ и ВБрк. Установлена значительная устойчивость споро-кристаллической смеси Вй в водной среде (24 недели).

• Охарактеризованы параметры пролонгирования действия энтомопатогенных бактерий в водной среде. Сроки действия Вй зависят от исходной концентрации споро-кристаллического комплекса и численности личинок комаров.

• Показано, что простейшие Т. руг1/огт1в и Е. .товккоуБкИ потенциируют основные ларвицидные свойства энтомопатогенных бактерий Вй, Вярк, В. ШегоБрогт и рекомбинантного штамма М. flagellatum (снижение эффективных концентраций и увеличение скорости действия).

• Выявлены различия в характере взаимоотношений простейших с разными видами энтомопатогенных бактерий при длительном контакте.

• Разработана методология создания симбиотической системы Т. руп/огт15+ Вй, позволяющая без дополнительного введения бактерий поддерживать их активность на протяжении длительного времени (72 недели срок наблюдений).

Практическая ценность работы. Результаты исследований вносят вклад в решение важной медико-биологической проблемы - контроль численности комаров (переносчиков возбудителей инфекционных болезней) эффективными и экологически безопасными средствами. Значимость работы для практического использования заключается в следующем:

• Получены новые эффективные штаммы бактерий Вй и ВБрН, пригодные для промышленного производства.

• Выделенные кристаллообразующие штаммы В. laterosporus могут быть использованы в качестве альтернативы биологическим ларвицидам, изготовленным на основе Bti и Bsph.

• Доказана возможность пролонгирования действия при инкапсуляции споро-кристаллического комплекса Bti в инфузории T.pyriformis. Однократное введение этого комплекса в условия изолированных природных водоемов обеспечивает гибель личинок комаров рAnopheles на протяжении сезона потенциальной передачи малярии (10 недель).

• Предложена симбиотическая система «инфузории Т. pyriformis + бактерии Bti», сохраняющая ларвицидные свойства бактерий в течение 72 недель (срок наблюдений).

Материалы диссертации были использованы в педагогической работе на курсах, организованных ВОЗ для стран Европейского региона «Малярия и борьба с ней» (Москва, 2002г.) и для специалистов центров Госсанэпиднадзора Москвы и Московской области (2001-2002гг.), на курсах по систематике, морфологии, биологии, экологии переносчиков малярии Средней Азии и методам борьбы с ними (республика Таджикистан, г. Душанбе, 2004), а также на курсах усовершенствования для эпидемиологов, энтомологов ЦГСЭН на медико-профилактическом факультете ППОТОУ ММА им. И.М.Сеченова (2000-2004гг.)

Внедрение результатов исследования в практику. Материалы исследований по диссертации использованы в следующих нормативно-методических документах, разработанных с участием автора:

1. СанПин 3.2.1333-03 «Профилактика паразитарных болезней на территории Российской Федерации». Утверждены Министерством здравоохранения РФ 28.05.03 г. Зарегистрированы в Министерстве Юстиции РФ 09.06.03 №4662

2. Дезинсекция 3.5.2 «Борьба с комарами, выплаживающимися в подвальных помещениях» МУ 3.5.2.705-98. Минздрав России, Москва-1998

3. Профилактика паразитарных заболеваний 3.2. «Малярийные комары и борьба с ними на территории Российской Федерации» МУ 3.2.974—00. Минздрав России, Москва-2000.

4. Дезинсекция 3.5.2. Методы определения эффективности инсектицидов, акарицидов, регуляторов развития и репеллентов, используемых в медицинской дезинсекции. МУК 3.5.2. - 1759-03

5. Методические указания «Эпиднадзор за паразитарными болезнями». МУК 3.2.1756-03

6. Получены патенты на изобретение:

• «Штамм бактерий Bacillus sphaericus, предназначенный для получения препарата, активного против комаров» Патент № 2080066, 1997

• «Штамм бактерий Bacillus thuringiensis var.israelensis , предназначенный для получения препарата, активного против личинок комаров». Патент на изобретение № 2122791, 1998

7. Штаммы депонированы во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов.

Апробация работы. Основные результаты исследования были доложены и обсуждены со специалистами на чтениях, посвященных 60-летию кафедры медицинской энтомологии в РМАПО (1996), на Международном генетическом конгрессе в Бирмингеме (Англия, 1993), на рабочей встрече ВОЗ по генетическим изменениям ларвицидных бактерий, используемых для борьбы с переносчиками в Кордобе (Испания, 1996), на 9ой Международной конференции по бациллам в Лозанне (Щвейцария, 1997), на VII Съезде Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов (Москва, 1997), заседании общества протозоологов (Москва, 1999), на 10он Международной конференции по бациллам в Бавено (Италия, 1999), на ежегодном координационном совещании (Annual Coordination

Workshop US AID CDR/CAR and INTAS European Union, Ben Gurion, Israel, april-may, 1999), Субрегиональном совещании экспертов по проблеме пестицидов из числа стойких органических загрязнителей, интегрированным системахм защиты растений и контролю сельскохозяйственных вредителей и переносчиков инфекционных заболеваний (Санкт-Петербург, 2000 г), на конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» (Москва, 2002), в отделе биохимии Кембриджеского Университета (Англия, 2003), на Бюро отделения профилактической медицины РАМН (Москва, 2003), на Ученом Совете ИМПиТМ им. Е.И.Марциновского ММА им. И.М.Сеченова, на коллоквиумах отдела медицинской энтомологии.

Диссертация апробирована на заседании Специализированной комиссии по предварительной экспертизе диссертаций в ИМПиТМ им. Е.И.Марциновского ГОУ ММА им. И.М.Сеченова (протокол №77 от 18 ноября 2003 г.).

Публикации по теме работы. Результаты диссертации отражены в 26 печатных работах (из них 6 в зарубежных изданиях), 1 СанПиНе, 4 методических указаниях, 2 патентах.

Положения, выносимые на защиту.

1. Направленный поиск природных видов и штаммов энтомопатогенных бактерий, выделение генов токсинообразования, получение рекомбинантных штаммов - продуцентов биологических инсектицидов, перспективных для промышленного производства, позволяют расширить возможности, повысить эффективность биологического метода борьбы с переносчиками возбудителей болезней и кровососущими насекомыми. Изучение выделенных нами штаммов Brevibacillus laterosporus доказало способность некоторых штаммов продуцировать кристаллы, обладающие инсектицидной активностью, что делает этот вид потенциальным кандидатом для биологической борьбы с кровососущими комарами. В результате проведения комплексных исследований по выделению и изучению природных бактериальных изолятов, получению генов токсинообразования и создания рекомбинантного штамма Methylobacillus flagellatum с клонированным геном синтеза Сгу4В токсического белка Bti предложены новые, обладающие инсектицидной активностью штаммы Bacillus thuringiensis var.israelensis 1-5 и JI2 и штамм Bacillus sphaericus 16 - S25, включенные во Всероссийскую коллекцию промышленных микроорганизмов, перспективных продуцентов биологических инсектицидов для борьбы с двукрылыми насекомыми.

2. Продолжительность действия биологических препаратов зависит от влияния ряда биотических и абиотических факторов. При этом выраженность воздействия одних и тех же факторов на различные биологические агенты существенно отличается. Сроки действия Bti и Bsph значительно варьируют в присутствии погибших личинок комаров и при увеличении исходной концентрации споро-кристаллической смеси. Наличие первого условия более важно для Bsph , а второго - для Bti.

Воздействие даже слабого неионизирующего излучения (микроволн и магнитных полей) приводит к снижению эффективности биологических препаратов. Поэтому антропогенные источники таких излучений могут опосредованно влиять на эффективность биологической борьбы с насекомыми.

3. Контакт простейших и энтомопатогенных бактерий потенциирует ларвицидные свойства последних. Обнаруженный феномен имеет универсальный характер образования симбиотической системы. При кратковременном контакте простейшие (Tetrahymena pyriformis и Entamoeba moshkovskii) увеличивают основные ларвицидные свойства энтомопатогенных бактерий Bti, Bsph, В. laterosporus и рекомбинантного штамма М. flagellatum (снижение эффективных концентраций и увеличение скорости действия). При длительном контакте инфузории Т. pyriformis пролонгируют инсектицидное действие бактерий Bti. Смесь Т. pyriformis и

Вй в условиях изолированных природных водоемов на личинках малярийных комаров первой генерации обеспечила их отсутствие на протяжении сезона потенциальной передачи малярии (2 месяца). Взаимодействие Т. руп/огт15 и Вй в питательной среде позволило без дополнительного введения бактерий поддерживать активность симбиотической системы на протяжении длительного времени -72 недели (срок наблюдений).

Заключение Диссертация по теме "Энтомология", Ганушкина, Людмила Алимпьевна

Выводы

1. Выделены из природных условий и охарактеризованы оригинальные штаммы энтомопатогенных бактерий Bti (2 штамма), Bsph (1 штамм) и 4 кристалл ообразующих штамма B.laterosporus (новый научный факт), пригодные для промышленного производства бактериальных препаратов для борьбы с личинками кровососущих комаров. На штаммы Bti и Bsph получены патенты № 2122791, 1998 и № 2080066, 1997. Штаммы депонированы во Всероссийскую коллекцию промышленных микроорганизмов.

2. Получен рекомбинантный штамм M.flagellatum с клонированным, оригинальным геном Сгу4В, ответственным за синтез токсического белка Bti, обладающий выраженной эффективностью по отношению к личинкам малярийных комаров и высоким потенциалом для промышленного производства.

3. Изучена устойчивость споро-кристаллических комплексов Bti и Bsph в водной среде. В модельных условиях, приближенных к природным, споро-кристаллический комплекс Bsph сохраняет активность свыше 60 недель, Bti-12 недель. Сохранение эффективности споро-кристаллического комплекса Bsph в условиях, приближенных к природным, объясняется размножением бактерий на каркасах погибших личинок, Bti практически не способны развиваться на погибших личинках. При отсутствии личинок споро-кристаллический комплекс Bti сохраняет свою активность в течение 24 недель, Bsph - 4 недели.

4. Даже слабое неионизирующее излучение - облучение магнитным А полем и микроволнами (десятки мкТ и до сотен мкВ/см соответственно) -препаратов, изготовленных на основе Bsph, уменьшает их инсектицидную активность. Это подтверждает, что антропогенные источники магнитных полей и микроволновых излучений могут негативно влиять на эффективность биологических препаратов.

5. Инкапсуляция энтомопатогенных бактерий ВН, Вэрк, В.ШегоБрогт и рекомбинантного штамма М. fla.gela.tum в простейшие (Т. руп^гт\Б и Е. тоэккоУБкИ) приводит к кратковременному усилению основных ларвицидных свойств (позволяет снизить концентрации вводимых бактерий и повышает скорость гибели личинок комаров).

6. Возникновение симбиоза в биологической системе Т.руп^гт1з + ВН приводит к пролонгированию (до 22 недель) ларвицидного эффекта бактерий ВН. С другими энтомопатогенными бактериями такого эффекта не наблюдается.

7. Отработана методология создания симбиотической перевиваемой культуры "Т.ру^огтьу+ ВН", позволяющая без дополнительного введения бактерий поддерживать их ларвицидную активность на протяжении не менее 72 недель.

8. Однократное введение смеси споро-кристаллического комплекса ВН и Т.руггрогтгя в изолированные природные водоемы обеспечивает гибель личинок комаров рЛпорке1еБ на протяжении сезона потенциальной передачи малярии (срок наблюдений 10 недель).

Практические рекомендации.

Использование биологического метода борьбы с кровососущими комарами, несмотря на экологические преимущества (воздействие только на целевую фауну, отсутствие опасного загрязнения окружающей среды) пока сдерживается рядом проблем технико-экономического характера: относительно медленным проявлением ларвицидных свойств и непродолжительным остаточным действием, в результате чего требуются повторные обработки, которые приводят к увеличению стоимости противокомаринных мероприятий.

С целью увеличения эффективности бактериальных препаратов для борьбы с комарами нами проведен поиск новых штаммов бактерий из разных таксономических групп, выделены высокоактивные штаммы энтомопатогенных бактерий Bti, Bsph , а также впервые изолированы кристаллообразующие штаммы B.laterosporus. Созданный рекомбинантный штамм M.ßagellatum с клонированным, оригинальным геном, ответственным за синтез токсического белка Cry4B Bti, обладает выраженной эффективностью по отношению к личинкам малярийных комаров. Полученные штаммы могут быть использованы в качестве продуцентов биологических ларвицидных препаратов, что позволит значительно расширить их ассортимент.

Продолжительность действия бактериальных препаратов зависит от влияния ряда биотических и абиотических факторов. При этом выраженность воздействия одних и тех же факторов на различные биологические агенты существенно отличается. Сроки действия Bti и Bsph значительно варьируют в присутствии погибших личинок комаров и при увеличении исходной концентрации споро-кристаллической смеси. Наличие первого условия более важно для Bsph , а второго - для Bti. В модельных условиях, приближенных к природным (при наличии личинок), спорокристаллический комплекс ВБрк сохраняет активность свыше 60 недель, ВЦ -12 недель. При отсутствии личинок споро-кристаллический комплекс ВН сохраняет свою активность в течение 24 недель, Вьрк - 4 недели.

Таким образом, чем выше численность личинок в водоёмах, тем менее продолжительно действует ВН. Погибшие личинки незначительно пролонгируют действие ВН. Проблему увеличения продолжительности действия ВН может решить создание препаративной формы с дискретным выходом кристаллов из нее, т.к. в воде споры и кристаллы сохраняют свою активность не менее 6 месяцев.

При использовании препаратов, изготовленных на основе ВБрИ, в оптимальной концентрации высокая численность личинок увеличивает продолжительность их действия, т.к. в каркасах погибших личинок происходит активное размножение бактерии.

Для пролонгирования остаточного действия, ускорения гибели личинок комаров и снижения концентрации действующего вещества предложена методика инкапсуляции споро-кристаллических комплексов энтомопатогенных бактерий в простейшие (Т. руг1/огт1я и Е. тоБИкоУБки). Возникновение симбиоза в биологической системе Т.руп/огтгБ + ВЦ приводит к пролонгированию (до 22 недель) ларвицидного эффекта бактерий ВН. Лабораторные данные подтверждены в полевых условиях средней полосы России. Однократное введение с*меси споро-кристаллического комплекса ВН и Т.руп/огтгБ в изолированные природные водоемы обеспечивает гибель личинок комаров Ап. теББеае на протяжении сезона потенциальной передачи малярии (срок наблюдений 10 недель). Результаты наших исследований по созданию биологической системы ВН +Т.руН/огт1Б доказывают возможность устранения основного недостатка, который присущ современным бактериальным ларвицидам - непродолжительное остаточное действие в обработанных водоемах.

Практическое использование биологической системы ВЦ +Т.руп/огт1я в разных ландшафтно-климатических зонах необходимо предварять испытаниями по уточнению реальной эффективности и продолжительности ларвицидного действия в конкретных условиях в зависимости от специфики регионов и экологических требований разных видов комаров. Следует иметь в виду, что продолжительность может зависеть не только от конкретных природных условий, но и, как показано в диссертации, от антропогенного воздействия (неионизирующее излучение).

Работа выполнена в отделе медицинской энтомологии Института медицинской паразитологии и тропической медицины им. Е.И.Марциновского Московской медицинской академии им. И.М.Сеченова. Автор выражает глубокую благодарность Академику РАМН, профессору В.П. Сергиеву за постоянный интерес, плодотворные дискуссии и поддержку данной работы.

Работа осуществлялась в сотрудничестве с лабораторией генетики биопестицидов Государственного научно-исследовательского института генетики и селекции промышленных микроорганизмов. Искренне благодарю сотрудников лаборатории и её руководителя профессора Р.Р.Азизбекяна за участие в разработках представленного к защите исследования.

Выражаю глубокую признательность за ценные советы по улучшению работы профессору В.П. Дремовой, профессору Р.Л. Наумову, академику РАЕН, профессору Н.А.Романенко, а также всем сотрудникам отдела, проявившим интерес к данной работе.

Библиография Диссертация по биологии, доктора биологических наук, Ганушкина, Людмила Алимпьевна, Москва

1. Азизбекяи P.P., Богданова Т.А., Миненкова И.Б. Характеристика выделенных из почвы фагов спорообразующих бактерий // Микробиология. 1977, т.46. - С. 554-559.

2. Аксенова A.C. О местах выплода комаров Culex pipiens pipiens L. Culex pipiens moles tus Forsk. на территории большого города // Мед. паразитол. -1981, №4.-С. 30-34.

3. Алексеев А.Н., Соколова Э.И., Расницын С.П., Ганушкина JI.A., Бикунова

4. A.Н. Влияние плотности личинок комаров Aedes aegypti на их гибель под воздействием препаратов Bacillus thuringiensis Berl II Мед. паразитол. -1983, №1.-С. 78-80.

5. Артемьев М.М., Баранова A.M., Ганушкина JI.A., Горностаева P.M., Дарченкова H.H., Дремова В.П., Ермишев Ю.В., Маркович Н.Я., Сергиев

6. B.П. Малярийные комары и борьба с ними на территории Российской Федерации // МУ 3.2.974 00.

7. Баранова A.M. Паразитарные системы малярии на территории СНГ, разработка мероприятий по борьбе и профилактике в современных условиях // Дисс. на соискание ученой степени доктора медицинских наук,- 2001.

8. Беклемишев В.Н. Экология малярийного комара (Anopheles maculipennis Mg) //М: Медгиз. 1944. - 229с.

9. Бухарин О.В., Литвин В.Ю. Патогенные бактерии в природных экосистемах // Екатеринбург.- 1997. 271с.

10. Виноградова Е.Б. Комары комплекса Culex pipiens в России. //Труды ЗИН РАН.- 1977.-307с.

11. Войцик A.A., Расницын С.П. Оптимизация метода определния инсектицидной активности бактериальных препаратов по отношению к личинкам комаров // Мед. паразитол. 1992.- №4. - С. 55-57.

12. Ю.Гоженко В.А., Титова Л.М. К изучению питания кровососущих комаров (<Culicidae) // Паразитология. 1981. - 15,3. - С.265-269.

13. Гомельский М. Клонирование и изучение структуры и регуляции гена гесА из Meihylobacillus flagellatum II Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. Москва. 1991.

14. Горностаева P.M., Данилов А.В. Комары Москвы и Московской области // Москва: КМК Scientific Press. 1999. - 342 с.

15. Данилова Э.Б., Барбашова P.M. Спектрофотометрическое определение экзотоксина в культуральной жидкости Bac.thuringiensis II Тр. ВНИИ с/х микробиологии. М.1985, т.55.- С. 115-119.

16. Детинова Т.С. К вопросу о биологии комаров p. Aedes // Мед. паразитол. -1941, 1-2. С.44-52

17. Догель В.А. Зоология беспозвоночных // М.: «Высшая школа».- 1981. -606 с.

18. Залунин И.А., Чайка С.Ю., Дронина М.А., Ревина Л.П. Цитопатологическое влияние эндотоксинов Bacillus thuringiensis israelensis на кишечник личинок комаров Aedes aegypti II Паразитология. -2002.-36, 5.-С. 337-343.

19. Ирлина И.С., Меркулова Н.А. Выращивание больших масс Tetrahemena pyriformis, пригодных для биохимических исследований и синхронизация деления инфузорий // Цитология. 1975, XVII, №10. - С. 23-28.

20. Королева Ю.В. Григорьева Т.М., Смирнова Т.А. Азизбекян P.P. Бактериальная модификация фагов Bacillus thuringiensis II Биотехнология. 1990,№6.-С. 12-20.

21. Кригер И.В., Ревина Л.П., Костина Л.И., Буздин А.А., Честухина Г.Г., Степанов В.М. Белки из мембран личинок Aedes aegypti, связывающие токсины Сгу4В и CryllA Bacillus thuringiensis подвида israelensis II Биохимия. 1999, 64. - С. 81-88.

22. Литвин В.Ю., Гинцбург А.Л., Пушкарева В.И., Романова Ю.М., Боев Б.В. Эпидемиологические аспекты экологии бактерий // Москва, Фармарус-принт.- 1998.-256 с.

23. Львов Д.К. Проблемы нерегистрируемых и непредсказуемых инфекций // Журнал микробиол.- 1997,5. С. 104-109.

24. Маркович Н.Я., Заречная С.Н. Материалы по распространению Culex pipiens на территории СССР // Мед. паразитол. 1992, №1. - С. 5-9.

25. Онищенко Г.Г. Об эпидемической ситуации и заболеваемости природно-очаговыми инфекциями в Российской Федерации и мерах по их профилактике //Журнал микробиол. 2001, 3. - С. 22-28.

26. Осипов Д.В., Подлипаев С.А. Теоретические и практические аспекты изучения взаимоотношений простейших с микроорганизмами // Взаимоотношения простейших с вирусами, Изд-во "Наука", Ленинградское отделение. 1981. - С. 3-30.

27. Программа микробиологической защиты от кровососущих комаров и мошек // ПО «Сиббиофарм». 2004.- 8 с.

28. Пушкарева В.И., Литвин В.Ю. Усиление вирулентности Yersinia enterocolitica в процессе пассирования через макрофаги и инфузорий // ЖМЭИ. 1991, №7. - С. 2-5.

29. Пушкарева В.И., Константинова Н.Д., Литвин В.Ю. и др. Псевдомонады как паразиты простейших // ЖМЭИ. 1992, №2. - С. 3-10.

30. Пушкарева В.И., Литвин В.Ю. , Константинова Н.Д. и др. Анализ механизмов межпопуляционных взаимодействий иерсиний с инфузорями

31. Tetrahymena pyriformis на клеточном и субклеточном уровнях // ЖМЭИ. -1990, №1.-С. 3-8.

32. Пушкарева В.И., Литвин В.Ю., Тартаковский И.С. Популяционная динамика Y.pseudotuberculosis в ассоциации с инфузорями // ЖМЭИ. -1989, №1.-С. 17-21.

33. Пушкарева В.И., Литвин В.Ю., Шустрова Н.М. Потенциальные хозяева и пути циркуляции Yersinia pseudotuberculosis в водной экосистеме // ЖМЭИ. 1994, №3. - С.52-57.

34. Пушкарева В.И. Экспериментальная оценка взаимодействий Yersinia pestis ev с почвенными инфузориями и возможности длительного сохранения бактерий в цистах простейших // ЖМЭИ. 2003, 4. - С. 40-44.

35. Расницын С.П., Ясюкевич В.В., Войцик А.А. Связь между способом питания личинок малярийных комаров и их устойчивостью к бактериальным препаратам // Мед.паразитол. 1992, № 3. - С. 10-12.

36. Расницын С.П., Войцик А.А., Скидан К.П. Возможность использования бактериальных препаратов в соленой воде // Мед.паразитол. 1993, № 3. -С. 33-34.

37. Резистентность переносчиков болезней к пестицидам // 15 Доклад Экспертов ВОЗ по биологии переносчиков и борьбе с ними. Женева. -1995.-77 с.

38. Синицына Л.П., Острогская Н.А. Разработка методов биологической оценки энтомопатогенных препаратов для целей стандартизации // Микробиологические средства защиты растений и бактериальные препараты. М, 1978. - С. 62-73.

39. Смирнов В.В., Резник С.Р., Василевская И.А. Спорообразующие аэробные бактерии-продуценты биологически активных веществ // Киев, Наукова думка. 1982. - 148 с.

40. Смирнова Т.А. Михайлов A.M., Тюрин B.C., Азизбекян P.P. Ультраструктура спор и кристаллов бактерий различных серотипов Вас. thuringiensis II Микробиология. 1984, Т. 53, №3. - С. 455-462.

41. Смирнова Т.А., Кулинич А.И., Гальперин М.Ю., Азизбекян P.P. Морфологические особенности и адгезивные свойства выростов на спорах Вас. thuringiensis. //Микробиология. 1989, Т. 59, №5. - С. 835-839.

42. Смирнова Т.А., Шамшина Т.Н., Константинова Г.Е., Ганушкина JI.A, Кузнецова Н.И., Николаенко М.А., Азизбекян P.P. Штамм Bacillus laterosporus с множественной биологической активностью // Биотехнология. 1993, №9. - С. 11-15.

43. Смирнова Т.А., Погласова М.Н., Орлова М.В., Азизбекян P.P. Ультраструктура спор и кристаллов Bacillus laterosporus II Биотехнология. 1997, 1.-С. 29-36.

44. Тарасов В.В. Экология кровососущих комаров и клещей // Москва. Изд-во МГУ. 1988.-264 с.

45. Терас Ю.Х. Формы взаимоотношений простейших с вирусами // Взаимоотношения простейших с вирусами. Изд-во "Наука", Ленинградское отделение. 1981. - С. 31-55.

46. Терас Ю.Х., Кеса Л.Ю. Экспериментальное исследование взаимоотношений Tetrahymena pyriformis с РНК- и ДНК-вирусами. Сообщение 1. Персистенция и мультипликация пикорна-и аденовирусов в

47. T. pyriformis II Взаимоотношения простейших с вирусами. Изд-во "Наука", Ленинградское отделение. 1981. - С. 73-95.

48. Черкасский Б.Л. Инфекционные и паразитарные болезни человека // М: Изд-во «Медицинская газета». 1994. - 617с.

49. Шагов Е.М., Миненкова И.Б., Константинова Г.Е. Метод биологической оценки автивности бактериального инсектицида против жесткокрылых // Биотехнология. 1992, №1. - С. 75-77.

50. Шипицина Н.К. Эффективность фильтрации у личинок Anopheles maculipennis и применение пылевидных инсектицидов // Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. 1943. — 224 с.

51. Шипицина Н.К. Максимальный и минимальный размер частиц, улавливаемых личинками Anopheles maculipennis II Мед. паразитол.-1935, 4(5).-С. 381-388.

52. Шипицина Н.К. Абсолютные размеры поверхностной пленки, облавливаемой личинкой Anopheles при фильтрации // Мед. паразитол. -1941, 10(3-4).-С. 14-24.

53. Шленова М.Ф. Скорость развития личинок Aedes при разных температурах и сроки их появления в природе // Мед. паразитол. -1952, 1. -С. 40-48.

54. Шленова М.Ф. Биология важнейших видов Aedes в средней полосе европейской части СССР //Мед. паразитол. 1959, 2. - С. 193-198.

55. Ясюкевич В.В. О питании личинок кровососущих комаров (Diptera, Culicidae) // Энтомологическое обозрение. 2003, т. LXXXII, № 1. - С. 6371.

56. Abbott Laboratories. Vectobac. Tomorrow's answer, Today // Product Infotmation. 1993.- 7p. AG 4864/R3.

57. Adams L.F., Visick J.E., Whiteley H.R. A 20-kilodalton protein is required for efficient production of the Bacillus thuringiensis subsp. israelensis 27kilodalton crystal protein in Escherichia coli // J. Bacterid. 1989. - 171. - 1. -P. 521-530.

58. Ali A. Bacillus thuringiensis serov. israelensis (ABG-6108) against chironomids and some nontarget aquatic invertebrates I I J.Invertebr. Pathol. -1981.-38.- P.264-272.

59. Ali A. Nuisance chiromomids and their control: a review // Bull.Entomol.Soc. Am. 1980.-26.-P. 3-16.

60. Ali A., Baggs R.D., Stewart J.P. 1981. Susceptibility of some Florida chrironomids mosquitoes to various formulation of Bacillus thuringiensis serovar israelensis // J. Econ. Entomol. 74. - P. 672-677.

61. Alien B., Cadlar S.S., Ozer N., Tabuk C. Historical perspectives and the future of vector control in Turkey // Xllth European Meeting, Society for Vector Ecology, Wageningen, 6-11 September. 1999. - P. 45.

62. Aly C. Filter feeding of mosquito larvae (Diptera:Culicidae) in the presence of the bacterial pathogen Bacillus thuringiensis var. israelensis II J.Appl. Entomol. 1988, 105.-P. 160-166.

63. Aly C. Germination of Bacillus thuringiensis var. israelensis spores in the gut of Aedes larvae (Diptera:Culicidae) // J.Invertebr. Pathol. 1985. - 45. - P. 1-8.

64. Aly C., Mulla M.S. Effect of two microbial incecticides on aquatic predators of mosquitoes // J.Appl.Entomol. 1987, 103. - P. 113-118.

65. Aly C., Mulla M.S., Federici B:A. Ingestion, dissolution and proteolysis of the Bacillus sphaericus toxin by mosquito larvae // J. Invertebr. Pathol. 1989. - 53. - P. 15-20.

66. Aly C., Mulla M.S., Federici B.A. Sporulation and toxin production by Bacillus thuringiensis var. israelensis in cadavers of mosquito larvae (Diptera: Culicidae) // J. Invertebr. Pathol. 1985. - 46. - P. 251-258.

67. Angsuthanasombat C., Crickmore N., Ellar D.J. Effects on toxicity of eliminating a cleavage site in a predicted interhelical loop in Bacillus thuringiensis CrylVB delta-endotoxin // FEMS Microbiology Letters. 1992, V94. - P. 63-68.

68. Aran, E.U. and Toomasu, J.P. INSECTICIDAL POLYPEPTIDE // Patent: JP 1986005098-A 1 10-JAN-1986.

69. Armstrong J., Rohrmann G., Beaudreau G. Delta endotoxin of Bacillus thuringiensis subsp. israelensis Hi. Bacteriol. 1985. - 161, 1.- P. 39-46.

70. Aronson A.I., Berckman W., Dunn P. Bacillus thuringiensis and related insect pathogens // Microbiol. Rev. 1986, V. 50. - P. 1-24.

71. Aronson A.I. Wu D., Zhang C. Mutagenesis of specificity and toxicity regions of a Bacillus thuringiensis protoxin gene // J. Bacteriology. 1995, V. 177. - P. 4059-4065.

72. Ash, C., Priest, F. G., and Collins, M. D. Phylogenetic heterogeneity of the genus Bacillus revealed by comparative analysis of small-subunit-ribosomal RNA sequence // Lett. Appl. Microbiol. 1991. - V. 13. - P. 202-206.

73. Bakr HA., Husseini M.M., Merdan A.I. Breeding water and mosquito strain as factors influencing susceptibility of Culex pipiens L. to Bacillus thuringiensis serotype H-14 //J.Egypt. Soc. Parasit. 1986, 16.- P. 235-241.

74. Balaram K. Comparative studies on the virulence of three strains of Bacillus sphaericus Myer and Neide against mosquito larvae // Indian J. Med.Res. -1980, 72.-P. 55-59.

75. Balaram K., Balasubramania M., Manonmani LM. Bacillus thuringiensis H-14 (VCRCB B-17) formulation as mosquito larvicide // Indian J. Med. Res. 1983, 77. - P. 33-37.

76. Baptist, J. N., Mandel, M., and Gherna, R. L. Comparative zone electrophoresis of enzymes in the genus Bacillus // Int. J. Syst. Bacterid. -1978, V. 28, P. 229-244.

77. Barloy F., Lecadet M.M., Delecluse A. Cloning and sequencing of three new putative toxin genes from Clostridium bifermentans CHI8. // Gene . -1998,211 (2).-P. 293-299.

78. Baumann P., Clark M.A., Baumann L., Broadwell A.H. Bacillus sphaericus as a mosquito pathogen: properties of the organism and its toxins // Microbiol. Rev. 1991, 55.-P. 425-436.

79. Baumann P., Unterman B.M., Bauman L., Broadwell A.H., Abbene S.J., et al. Purification of the larvicidal toxin of Bacillus sphaericus and evidence for high-molecular-weight precursors // J.Bacteriol. 1985, 163. - P.738-747.

80. Beck W.R. Current status of the biological larvicide. Teknar //Proc. 69th Ann. Meet. New Jersey Mosq. Contr.Assoc. Atlantic City, New Jersey 1982. -P.83-90

81. Becker N. Bacterial Control of Dipterans general strategy and further development // Proceedings of the 13th European SOVE Meeting. Society for Vector Ecology. Ankara - Turkey. - 2000. - P. 63-70.

82. Becker N. Bacterial control of disease vectors general strategy and further development, in WHO //Informal' Consultation on Genetic manipulation with larvicidal bacteria for disease vector control, September 6-8, 1996, Cordoba, Spain.

83. Becker N. Microbial Control of Mosquitoes // Parasitology Today. 1997, 13 (12). - P. 485-487.

84. Becker N. Ice granules containing endotoxins of microbial agents for the control of mosquito larvae a new application technique.// J Am Mosq Control Assoc. - 2003, Mar; 19 (1). - P. 63-66.

85. Becker N., Ludwig M. Investigations on possible resistance in Aedes vexans field populations after a 10-years applications of Bacillus thuringiensis israelensis II Journal of the American Mosquito Control Association. 1994, 9. -P. 221-224.

86. Becker N., Mercatoris P. Efficacy of new tailor-made Bti formulations against mosquitoes // Abstracts of Second International Congress of Vector Ecology, Orlando, Florida, USA. 1997. - P.44-45.

87. Becker N., Zgomba M., Ludwig M., Pétrie D, Rettich F. Factors influencing the activioty Bacillus thuringiensis var. israelensis treatments // J. Amer. Mosq. Con.Assoc. 1992, 8. - P. 285-289.

88. Becker N. Microbial control of mosquitoes: management of the Upper Rhine mosquito population as a model programme // Parasitol. Today. 1997, 13. - P. 485-487.

89. Becnel J. J., Garcia J., Jonson M. Effect of three larvicides on the production of Aedes albopictus based on removal of pupal exuviae // J.Amer.Mosq.Assoc. -1996, 12, part 1.-P. 499-502.

90. Beehler J.W., Quick T.C., De Foliart. Residual toxity of four insecticides to Aedes triseriatus in scrap tires // J.Amer.Mosq.Con. Assoc. 1991, 7. - P. 121122:

91. Ben-Dov E., Zalkinder V., Shagan T., Barak Z., Zaritsry A. Spores of Bacillus thuringiensis var. israelensis as tracers for ingestion rates by Tetrahymena pyriformis II J. Invertebr. Pathol. 1994, 63. - P. 220-222.

92. Benz G., Joeressen H.J. A new pathotype of Bacillus thuringiensis with pathogenic action against sawflies (Hemenoptera, Symphyta) //Bull. OILB-SROP. 1994, 17.-P. 35-38.

93. Berry C., Hindley J., Ehrhardt A.F., Grounds T., de Souza I., et al. Genetic determinants of host ranges of Bacillus sphaericus mosquito larvicidal toxins // J.Bacteriol.- 1993, 17. P. 510-518.

94. Billington S. J., Jost B. H:, Songer J. G. Thiol-activated cytolysins: structure, function and role in pathogenesis // FEMS Microbiol. Lett. 2000, V. 182. - P. 197-205.

95. Blawat F., Kowalska Z. Investigations in vitro on the influence of some amoeba on survival of poliomyelitis virus // Bull. Inst. Marine Med. In Gdansk. 1963, V.14. - P. 15-24.

96. Boucias D.G., Pendland J.C. Principles of Insect Pathology // Kluwer Academic Publishers, Norwell, Massachusetts. 1998.

97. Bourgouin C., Delecluse A., Riblier J. et al. A Bac.thuringiensis ssp. israelensis gene encoding a 125-kDa larvicidal polypeptide is associated with inverted repeat sequences I I J.Bacteriol. 1988, V.170. - P. 3575-3583.

98. Bourgouin C., Klier A., Rappoport G. Characterization of the genes encoding the haemolitic toxin and the mosquitocidal delta-endotoxin gene of B.thuringiensis var. israelensis II Mol. Gen.Genet. 1986, 205. - P. 390-397.

99. Bradford M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle dye binding //Analyt. Biochem. -1976, 72. P. 248-254.

100. Burges H. D. (ed.). Microbial control of pests and plant disiases, 1970-1980 //Academic Press, Inc., London. 1981.

101. Burges H. D. Control of insects by bacteria // Parasitology. 1982. V. 84. - P. 299-117.

102. Burke W.F.Jr., McDonald K.O., Davidson E.W. Effect of UV light on spore viability and mosquito larvicidal activity of Bacillus sphaericus 1593 // Appl. Environ.Microbiol. 1983, 46. - P. 954-956.

103. Butko P. Cytolytic Toxin CytlA and Its Mechanism of Membrane Damage: Data and Hypotheses // Appl. Environ. Microbiol. 2003, Vol. 69, No. 5. - P: 2415-2422.

104. Butko P., Huang F., Pusztai-Carey M., Surewicz W. K. Membrane permeabilization induced by cytolytic delta-endotoxin CytA from Bacillus thuringiensis var. israelensis II Biochemistry. 1996, 35. - P. 11355-11360.*

105. Butko P., Huang F., Pusztai-Carey M., Surewicz W. K. Interaction of the delta-endotoxin CytA from Bacillus thuringiensis var. israelensis with lipid membranes // Biochemistry. 1997, 36. - P. 12862-12868.

106. Butko P., Cournoyer M!, Pusztai-Carey M., Surewicz W. K. Membrane interactions and surface hydrophobicity of Bacillus thuringiensis delta-endotoxin CrylC // FEBS Lett. -1994, 340. P. 89-92.

107. Cameron I.L. Growth characteristics of Tetrahymena. In A.M. Elliot (ed.), Biology of Tetrahymena II Dowden, Hutchinson and Ross, Inc., Stroudsburg. -1973.-P. 217-224.

108. Chamberes J.A., Jelen A., Gilbert M.P., Jany C.S., Jonson T.B., Cawron C. Isolation and characterisation of a novel insecticidal crystal protein from B.thuringiensis spp. aizawa II J. Bacterid. 1991, 173. - P. 6532-6537.

109. Chang S. F., Wan Y. L., Cui J. Y., Wang B. S. Experiments of the pathogenicity of Bacillus laterosporus against white grubs II Acta Entomol. Sin. 1984. ,V. 26.-P. 419-425.

110. Chapman-Andresen C., Nilsson J.R. On vacuole formation in Tetrahymena pyriformis //GL. C. R. Trav. Lab. Carlsberg. 1968, 36. - P. 405-432.

111. Charles J.F., Nielsen-LeRoux C., Delecluse A. Bacillus sphaericus toxins molecular biology and mode of action // Annu. Rev. Entomol. 1996, 41. - P. 451-472.

112. Charles J-F., de Baijac H. Variation du pH de I intestin moyen d Aedes aegypti en relation avec I intoxication par les cristaux de Bacillus thuringiensis var. israelensis (serotype H-14 ) // Bull. Soc. Pathol. Exot. -1981,74.-P. 91-95.

113. Charles J-F., Nicolas L. Recycling of Bacillus sphaericus 2362 in mosquito larvae: a laboratory study // Ann. Inst. Pasteur Microbiol. 1986, 137B. - P. 101-111.

114. Chen S.F, Xiao T.C, Lu J.F. A study on the toxity of Bacillus thuringiensis var. israelensis to mosquito larvae and factors affectingit // Natural Enemiesoflnsect. 1984, 6. - P. 115-117.

115. Cheong, H. and Gill, S.S. Cloning and characterization of a cytolytic and mosquitocidal delta-endotoxin from Bacillus thuringiensis subsp. jegathesan II Appl. Environ. Microbiol. 1997, 63 (8), P. 3254-3260

116. Chestukhina G.G. Kostina A.L., Mikhailova A.L.et all. The main features of Bacillus thuringiensis d-endotoxin molecular structure //Arch. Microbiol. -1982, V. 132.-P. 159-162.

117. Chicott C., Ellar D., Comparative study of B.thuringiensis subsp. israelensis crystal proteins in vivo and in vitro // J.Gen.Microbiol. 1988, 134. - P. 25512558.

118. Chungjatupornshai T., Hofte H., Seurinch H., Angsuthanasombat C.,Vaeck

119. M. Common features of B.thuringiensis delta-endotoxin specific for Diptera and Lepidoptera// Eur J. Biochem. 1988, 173. - P. 9-16.

120. Claus D., Berkeley R. C. W. Genus Bacillus Cohn 1872 // In P. H. A. Sneath, N.S. Mair, M.E. Sharpe, and J.G. Holt (ed.), Bergey's manual of systematic bacteriology, vol. 2. The Williams & Wilkins Co., Baltimore, Md. 1986. P. 1105-1139.

121. Colbo M.H., Undeen A.H. Effect of Bacillus thuringiensis var. israelensis on non-target insect in stream trials for control of Simuliidae // Mosq. News. -1980, 40.-P. 368-371.

122. Correa M, Yousten A.A. Bacillus sphaericus spore germination and and recycling in mosquito larval cadavers // J. Invertebr. Pathol. 1995, 66. - P. 76-81.

123. Correa M, Yousten A.A. Conjugation by mosquito pathogenic strains of Bacillus sphaericus II Mem Inst Oswaldo Cruz. 1997, May-Jun; 92 (3). - P.415.419.

124. Crickmore N., Zeigler D.R., Feitelson J., Schnepf E., van Rie J., Lereclus D., Baum J., Dean D.H. Revision of the nomenclature for the Bacillus thuringiensis pesticidal crystal protein II Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1998, 62. - P. 807-813.

125. Crickmore, N., Bone E. J., Williams J. A., Ellar D. J. Contribution of the individual components of the -endotoxin crystal to the mosquitocidal activity of Bacillus thuringiensis subsp. israelensis IIFEMS Microbiol. Lett. 1995, 131. -P. 249-254.

126. Dadd R.H. Alkalinity within the midgut of mosquito larvae with alkaline-active digestive enzymes //J. Insect Physiol. 1975, 21.- P. 1847-1853.

127. Dai S.M., Gill S.S. In vitro and in vivo proteolysis of the Bacillus thuringiensis subsp. israelensis CrylVD protein by Culex quinquefasciatus larval midgut proteases // Insect Biochem. Molecular Biology. 1993, V.23. - P. 273-283.

128. Dai L.Y., Wang B., Luo X.X., Zan X.M., Yu Z.N. A study on 410 strains of Bacillus thuringiensis isolated soils // J. Huanzhong Agric. Univ. 1994, 13. -P. 144-152.

129. Damgaard P.H., Granum P.E. Bresciani J., Torregrossa M.V., Eilenberg J, Valentino L. Characterization of Bacillus thuringiensis isolated from infection in burn wouds // FEEMS Immunol. Med. Microbiol. 1997, 18. - P. 47-53.

130. Damgaard P.H., Habsen B.M., Pedersen J.C., Eilenberg J. Natural occurrence of B.thuringiensis on cabbage foliage and in insects associated with cabbage crops // J. Appl. Bacteriol. 1997, 82. - P. 253-258.

131. Dash A.P. Bacillus sphaericus interferes with transmission of lymphatic filariasis // 3th International Congress of Vector Ecology. Vector Ecology at the dawn of 21 century. Barcelona, Spain. 2001.- P. 35.

132. Davidson E.W. A review of the pathology of bacilly infecting mosquitoes,. including an ultrastructural study of larvae fed Bacillus sphaericus 1593 spores // Dev. Ind. Microbiol. 1981, 22. - P. 69-81.

133. Davidson E.W. Microbiology, pathology and genetics of Bacillus sphaericus: biological aspects which are important to the field use // Mosquito News. -1984. Vol. 44, No 2. - P. 147-152.

134. Davidson E.W., Bieger AL., Meyer M., Shellabarge RC. Enzymatic activation of the Bacillus sphaericus mosquito larvicidal toxin // J. Invertebr. Pathol. 1987, 50. - P. 40-44.

135. Davidson E.W., Binding of the Bacillus sphaericus (Eubacteriales: Bacillaceae) toxin to midgut cells of mosquito (Diptera:Culicidae) larvae relatioship to host range // J. Med.Entomol. 1988, 25. - P. 151-157.

136. Davidson E.W., Myers P. Parasporal inclusions in fed Bacillus sphaericus II FEEMS Microbiol. Lett. 1981, 10. - P. 261-265.

137. Davidson E.W., Singer S., Briggs J. Pathogenesis of Bacillus sphaericus strain SSII-1 infections in Culex pipiens quiquefasciatus larvae // J. Invertebr. Pathol. 1975, 25.-P. 179-184.

138. Davidson E.W., Sweeney A.W., Cooper R. Comparative field trials of Bacillus sphaericus strain 1593 and Bacillus thuringiensis var. israelensis commercial powder formulation // J. Econ. Entomol. 1981, 74. - P. 350-354.

139. Davidson E.W., Urbina M., Payne J., Mulla H., Darwazeh, Dulmage H.T., Corea J.A. Fate of Bacillus sphaericus 1593 and 2362 spores used as larvicides in the aquatic environment // Appl. Environ. Microbiol. 1984, 47. - P. 125129.

140. Davidson E.W. Variation in binding of Bacillus sphaericus toxin and wheat germ agglutinin to larval midgut cells of six species of mosquitoes // J. Invertebr. Pathol. 1989, 53. - P. 251-259.

141. Davidson E.W., Yousten A.A. The mosquito larval toxin of Bacillus sphaericus // See Ref. 1990. 38a. - P. 237-255.

142. Delecluse A., Bourgouin C., Klier A. Nucleotide sequence and characterization of a new insertion elements IS240 from B.thuringiensis var. israelensis II Plasmid. 1989, 21. - P. 71-78.

143. Delecluse A., Rosso M.L., Ragni A. Cloning and expression of a novel toxin gene from Bacillus thuringiensis subsp. jegathesan encoding a highly mosquitocidal protein // Appl. Environ. Microbiol. 1995, 61 (12). - P. 42304235.

144. Diaz T., Restrepo N., Orduz S., Rojas W. Distribution and isolation of Bacillus thuringiensis in Colombia // Rev. Colombiana Entomol. 1993, 19. -P. 35-40.

145. Donovan W.P., Dankocsik C., Gilbert, M.P. Molecular characterization of a gene encoding a 72-kilodalton mosquito-toxic crystal protein from Bacillus thuringiensis subsp. israelensis. I I J. Bacterid. 1988, 170 (10). - P. 47324738.

146. Ellar D., Knowles B., Caroll J., Horshell J., Haider M. Genetic and biochemical studies of the mechanism action of B. thuringiensis entomocidal toxin. Bacterial. Protein Toxins// Ibl. Bact. Suppl., 1990, 19. P. 499-506.

147. Ellar D., Ward S. New toxin encoding DNA fragments B. thuringiensis var. israelensis II European patenat application: 0296871 Al. 1988.

148. Farghal A.I, Ahmed S.A, Salit A.M. Effect of overcrowding on the biolethal efficiency of Bacillus thuringiensis var. israelensis against Culex pipiens molestus and Theobaldia longiareolata larvae //Z.Angew. Entomol. 1983, 95. P. 457-460.

149. Favret M. E. Yousten, A. A. Insecticidal activity of Bacillus laterosporus II J. Invertebr. Pathol. 1985, 45. - P. 195-203.

150. Federici B. A. The future of microbial insecticides as vector control agents // J. Am. Mosquito Control Assoc. 1995, 11. - P. 260-268.

151. Federici B. A., Park H.W., Bideshi D. K., Wirth M. C., Johnson J. J. Recombinant bacteria for mosquito control // J. Exp Biol. 2003, 206. - P. 3877-3885.

152. Feldmann F, Dullemans A. Waalwijk C. Binding of the CrylVD Toxin of Bacillus thuringiensis subsp. israelensis to Larval Dipteran Midgut Proteins // Appl. Environ. Microbiol. 1995, Vol. 61, No. 7. - P. 2601-2605.

153. Finney D. Probit analysis // Cambridge University Press, Cambridge, United Kingdom. 1971.

154. Fitz-James P. C., Young I. E. Morphological and chemical studies of the spores and parasporal bodies of Bacillus laterosporus II J. Biochem. Cytol. -1958, Vol.4.-P. 639-649.

155. Galjart, N. J., Sivasubramanian N., Federici B. A. Plasmid location, cloning and sequence analysis of the gene encoding a 23-kilodalton cytolytic protein from Bacillus thuringiensis subsp. morrisoni (PG-14) // Curr. Microbiol. 1987, 16.-P. 171-177.

156. Garsia R., des Rochers B., Tozer W. Studies on Bacillus thuringiensis var. israelensis against organisms found in association with mosquito larvae // Proc.

157. Papers 48th Ann. Conf. Calif. Mosq. Vector Cont.Assoc. (Ed CD Crant), Anahein, California. 1980. - P.33-36.

158. Georghiou G.P. Malik J.I., Wirth M., Sainato K. Characterication of resistence of Culex quinquefasciatus to the insecticidal toxin of Bacillus sphaericus (strain 2362) // In Univer.Calif. Mosq. Control Res., Annu. Rep. -1992.-P. 25-27.

159. Gharib A.H., Hilsenhoff W.L. Efficacy of two formulation of Bacillus thuringiensis var. israelensis (H-14) against Aedes aegypti and safety to nontarget macroinvertebrates // J.Amer. Mosq.Cont. Assoc. -1988, 4. P. 252-255.

160. Gibson T., Gordon R.E. The Shorter Bergey's Manual of Determinative Bacteriology // J. Holt, ed. Baltimore: the Williamsans Wilkins Company. -1997.

161. Gill S.S., Cowles E.A., Pietrantonio P.V. The mode of action of Bacillus thuringiensis endotoxins // Annu. Rev. Entomol. 1992, 37. - P. 615-636.

162. Gill S.S., Homung J.M., Ibarra J.E., Singh G.J.P., Federici B.A. Cytolitic activity immunological similarity of Bacillus thuringiensis subsp. israelensisf and Bacillus thuringiensis morrisoni isolate PG-14 toxins // Appl. Enveron.

163. Microbiol. 1987, 53. - P. 1251-1256.

164. Goldberg L.J., Margalit J. A bacterial spore demonstrating rapid activity against Anopheles sergentii, Uranotenia unguiculata, Culex univittatus, Aedes aegypti and Culexpipiens II Mosq.News. 1977, 37. - P. 355-358.

165. Goldman I.F., Arnold J., Carlton B.C. Selection for resistance to Bacillus thuringiensis subsp. israelensis in field and laboratory populations of the mosquito Aedes aegypti II J. Invertebr. Pathol. -1986,47. P. 317-324.

166. Green M., Heumann. M., Sokolow R., Foster L.R., Bryant R., Skeels M. Public health implication of the microbial pesticide Bacillus thuringiensis: An epidimiological study, Oregon, 1985-1986 // Am. J. Publ. Health. 1990, 80. - P.848.852.

167. Griego V.M., Spence K.D. Inactivation of Bacillus thuringiensis spores by ultraviolet and visible light // Appl.Environ. Microbiol. 1978, 35. - P. 906-910.

168. Grochulski P., Masson L., Borisova S., Pusztai-Carey M., Schwartz J.L., Brousseau R., Cygle M. Bacillus thuringiensis CrylA(a) insecticidal toxin: crystal structure and channel formation // J. Mol. Biol. 1995,254. - P. 447-464.

169. Guerchicoff, A., Ugalde, R.A. and Rubinstein, C.P. Identification and characterization of a previously undescribed cyt gene in Bacillus thuringiensis subsp. israelensis. II Appl. Environ. Microbiol. 1997, 63 (7). - P. 2716-2721.

170. Guerineau V., Alexander B., Priest FG. Isolation and identificatin of Bacillus sphaericus strains pathogenic for mosquito larvae // J. Invertebr. Pathol. 1991, 57.-P. 325-533.

171. Hanney C. L. The parasporal body of Bacillus laterosporus var. Laubach // J. Biophys. Biochem. Cytol.- 1957, Vol. 3, No. 6. P. 1001-1010.

172. Hershey A.E., Shannon L., Axler R., Ernst C., Mickelson P. Effect of methoprene and Bti (Bacillus thuringiensis var israelensis) on non-target insects // Hydrobiologia. 1995, 308. - P. 219-227.

173. Hertlein B.C., Levy R., Miller T.W. Recycling Potencial and selective retrieval of Bacillus sphaericus from soil in a mosquito habitat // J. Invert. Pathol. 1979, 33.-217-221.

174. Hofte H., Whiteley H. Insecticidal crystal proteins of B.thuringiensis II Microbiol. Rev. 1989, 53 (2). - P. 242-255.

175. Horak P., Weiser J., Mikes L., Kolarova L. The effect of Bacillus thuringiensis M.exotoxin on Trematode cercariae II J. Invertebr.Pathol. 1996, 68.-P. 41-49.

176. Hornby J.A., Hertlein B.C., Levy R., Miller T.W., Jr. Persistent activity of mosquito larvicidal Bacillus sphaericus 1593 in fresh water and sewage // W.H.O. Mimeographed Document WHO/VBC/81.830. 1981.

177. Hwang S.H., Saitoh H., Mizuki E., Higuchi K. Ohba M. A novel class of mosquitocidal delta-endotoxin, Cryl9B, encoded by a Bacillus thuringiensis serovar higo gene. II Syst. Appl. Microbiol. 1998, 21 (2). - P. 179-184.

178. Ignoffo C.M., Garcia C., Kroha M.J. Laboratory tests to evaluate the potential efficacy of Bacillus thuringiensis var. israelensis for use against mosquitoes I I Mosquito News. 1981,41. - P. 85-93.

179. Ishii T, Ohba M. Investigation of mosquito-specific larvicidal activity of a soil isolate of Bacillus thuringiensis serovar canadensis II Curr. Microbiol. -1997, Jul; 35(1).-P. 40-43.

180. Iriarte J., Bel Y., Ferrandis M.D., Andrew R., Murillo J., Ferre J., Caballero P. Environmental distribution and diversity of Bacillus thuringiensis in Spain. Syst //Appl. Environ. Microbiol. 1998, 21. - P. 97-106.

181. Jaquet F., Hiitter R, Lüthy P. Specificity of Bacillus thuringiensis delta-endotoxin// Appl. Environ. Microbiol. 1987, 53. - P. 500-504.

182. Juarez-Perez, V., Guerchicoff, A., Rubinstein, C., Delecluse, A. Characterization of Cyt2Bc Toxin from Bacillus thuringiensis subsp. medellin II Appl. Environ. Microbiol. 2002, 68. - P. 1228-1231.

183. Jurat-Fuentes J.L., Adang M.J. Importance of Cry 1-endotoxin domain II loops for binding specificity in Heliothis virescens (L) // J.Appl. Microbiol. -2001,67.-P. 323-329.

184. Karch S., Coz. Histopathologic de Culexpipiens Linne (Diptera:Culicidae) soumis a ly activite larvicide de Bacillus sphaericus 1593-4 // Cah ORSTOM Ser. Entomol. Med. Parasitol. 1983, 21. - P. 225-230.

185. Kawalek MD, Benjamin S, Lee HL, Gill SS Isolation and Identification of novel toxins from a new mosquitocidal isolate from Malaysia, Bacillus thuringiensis subsp.jegathesan II Appl. Environ. Microbiol. 1995, Aug; 61(8).- P. 2965-2969.

186. Kellen W., Clark T., Lindergren J., Ho B., Rogoff M. et al. Bacillus sphaericus Neide as a pathogen of mosquitoes // J. Invertebr. Pathol. 1965, 7.- P. 442-448.

187. Khasdan V, Ben-Dov E, Manasherob R, Boussiba S, ZaritskyA. Toxicity and synergism in transgenic Escherichia coli expressing four genes from Bacillus thuringiensis subsp. israelensis //Appl. Environ. Microbiol. 2001, Dec; 3 (12).-P. 798-806.

188. Khawaled K., Barak Z., Zaritsky A. Feeding behavior of Aedes aegypti larvae and toxicity of dispersed and of naturally encapsulated Bacillus thuringiensis var. israelensis II J. Invertebr. Pathol. 1988, 52. - P. 419-426.

189. Khawaled K., Ben-Dov E., Zaritsky A., Barak Z. The fate of Bacillus thuringiensis var. israelensis in B. thuringiensis var. israelensis-kiUed pupae // J. Invertebr. Pathol. 1990, 56. - P. 312-336.

190. Kiy T., Tiedtke A. Continuous high-cell density fermention of the ciliated Protozoon Tetrahymena in a perfused bioreactor // Appl. Microbiol. Biotechnol.- 1992, 38.-P.141-146.

191. Kondo S, Fujiwara M, Ohba M, Ishii T. Comparative larvicidal activities of the four Bacillus thuringiensis serovars against a chironomid midge, Paratanytarsus grimmii (Diptera: Chironomidae) // Microbiol. Res. 1995, Nov; 150 (4). - P.425-428.

192. Koni P.A., Ellar D.J. Cloning and characterization of a novel Bacillus thuringiensis cytolytic delta-endotoxin // J. Mol. Biol. 1993, 229 (2). - P. 319327.

193. Kovacs E., Busc B. Propagation of mammalian viruces in protista. I. Isolation of complete virus from yeast and Tetrahymena experimentally infected with picorna viral particles or their infectious RNA // Life Sciences. 1967, V.6. - P. 347-358.

194. Krieg A., Hugar A.V., Langenbruch G.A., Schnetter W. Bacillus thuringiensis vzr.tenebrionis: a new pathotype effective against of Coleoptera // Z.Angew. Entomol. 1983, 96. - 500-508.

195. Lacey L.A., Lacey C.M., Padua L.E. Host range and selected factors influencing the mosquito larvicidal activity of PG-14 isolate Bacillus thuringiensis var. morrisoni II J. Amer.Mosq. Con. Assoc. 1988,4. - P. 39-43.

196. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4 // Nature (London), 1970, 227. P. 680-685.

197. Larget I. Study of the persistence of Bacillus thuringiensis var.israelensis // Rev.Gen.Bot. 1981, 88. - P. 33-42.

198. Lecadet M.M., Frachon E., Dumanoir V.C., Ripouteau H., Hamon S., Laurent P., Thiery I. Updating the H-antigen classification of Bacillus thuringiensis II J. Appl. Microbiol. 1999, 86. - P. 660-672.

199. Lee H.L., Seleena P. Bacillus thuringiensis spp. malaysiaensis: a new subspecies isolated from Malaysia // Trop. Biomed. 1990a. - 7. - P. 117-118.

200. Lee L.N., Saxena D., Stotzky G. Activity of Free and Clay-Bound * Insecticidal Proteins from Bacillus thuringiensis subsp. israelensis against the

201. Mosquito Culex pipiens II Appl. Environ. Microbiol. 2003, Vol. 69, No. 7. -P. 4111-4115.

202. Lee M.K., You T.H. Gould F. L., Dean D.H. Identification of residues in Domain III of Bacillus thuringiensis Cry lAc Toxin that affect Binding and Toxicity II J. Appl. Microbiol. 1999, 65. - P. 4513- 4520

203. Lee M.K., Frederick S.W., Hope H., Narenda P., Chen J-S. The mode of action of the Bacillus thuringiensis vegetative insecticidal protein Vip3A differs from that of Cryl Ab-endotoxin // J. Appl. Microbiol. 2003, 69. - P. 448- 4657.

204. Li J., Carrol J., Ellar D.J. Crystal structure of insecticidal 5-tndotoxin from Bacillus thuringiensis at 2.5 A resolution II Nature (Lond). 1991, 353. - P. 815-821.

205. Li R.S., Ellar D.J. Importance of spores, crystals, and delta-endotoxins in the pathogenecity of different B.thuringiensis varieties in Galleria mellonela and Pieries brassicae II J. Invert. Pathology. 1987, 50. - P. 277-284.

206. Liu J.-W., Hindley J., Porter A.G., Priest F.G. New high toxicity mosquitocidal strains of Bacillus sphaericus laking a 100- kilodalton-toxin gene //Appl.Environ. Microbiol. 1993, 59. - P. 3470-3473.

207. Liu J.-W., Porter A.G., Wee B.Y., Thanabalu T. New gene from nine Bacillus sphaericus strains encoding highly conserved 35,8- Kilodalton mosquitocidal toxins // Appl. Environ. Microbiol. 1996, June. - P. 2174-2176.

208. Lone E, Kucinska J, Rydzanicz K. Comparative delta-endotoxins of Bacillus thuringiensis against mosquito vectors (Aedes aegypti and Culex pipiens) //Acta Microbiol Pol. 2003; 52(3). - P.293-300.

209. Mahmood S. Laboratore bioassay to compare susceptibilities of Aedes aegypti and Anopheles albimanus to Bacillus thuringiensis var. israelensis as affected by their feeding rates // J. Amer. Mosq. Con. Assoc. 1988, 14. - P. 6971.

210. Manasherob R., Ben-Dov E., Zaritsky A., Barak Z. Protozoanenhanced toxicity of Bacillus thuringiensis var. israelensis d-endotoxin against Aedes aegypti larvae II J. Invertebr. Pathol. 1994, 63. - P. 244-248.

211. Margalith Y, Bobroglo H. The effect of organic meterials and solids in water on the persistence of Bacillus thuringiensis var. israelensis H-14 // Z.Angew. Entomol.- 1984, 97. P. 516-520.

212. Margalith Y., Dean D. The story of Bacillus thuringiensis var. israelensis II J. Am. Mosq. Control Assoc. 1985, 1. - P. 1-7.

213. Margalith Y., Zomer E., Erel Z., Barak Z. Development and amplication of Bacillus thuringiensis var. israelensis serotype HI4 as an effective biological control agent against mosquitoes in Israel // Biotechnology. 1983, Vol. 1. - P. 74-76.

214. Martin P.F.W., Travers R.S. Worldwide abundance and distribution of Bacillus thuringiensis isolates // Appl. Environ. Microbiol. 1989, 55. - P. 2437-2442.

215. Mc Clintock J.T., Schaffer C.R., Sjoblad R.D. A comparative review oh the mammalian toxity of Bacillus thuringiensis-bassd pesticides // Pestic. Sci. -1995,45. -P. 95-105.

216. McCracken I.R., Matthews S.L. Effect of Bacillus thuringiensis subsp. israelensis (B.t.i.) application on invertabrates from two streem on Prince Edward Island // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1977, 58. - P. 291-298.

217. McCray, A. H. Spore-forming bacteria in the apiary // J. Agric. Res. 1917, Vol. 8. - P. 399-420.

218. McGaughey W.H., Beeman R.W. Resistance to Bacillus thuringiensis in colonies of Indian meal moth and almond moth (Lepidoptera: Pyralidae) // J. Econ. Entomol. 1988, 81. - P.28-33.

219. McGaughey W.H., Insecticidal resistance to the biological insecticide Bacillus thuringiensis //Science.-1985,229.-P. 193-195.

220. Meadows M.P. Bacillus thuringiensis in the environment ecology and risk assesment // Bacillus thuringiensis, an enviromental biopesticide. Theory and Practice (eds. P.F. Entwistle, J.S. Cory, M.J. Bailey,S. Higgs). 1993. - P. 193220.

221. Merca F.E., de los Reyes A.M. Isolation and characterisation of a lectin from Bacillus thuringiensis subsp. morrisoni (serotype H8a: 8b) PG-14 // Philipp. J. Sci. 1997, 126.-P. 1-9.

222. Mercer D.R., Nicolas L., Thiery I., Evaluation of entomopathogenic bacteria against Aedes polynesiensis, the vector of limphatic filariasis in French Polynesia // J. Amer.Mosq. Con. Assoc. 1995, 11. - P. 485-488.

223. Molloy D., Jamnback H. Field evalution of Bacillus thuringiensis var. israelensis as a black fly biocontrol agent and its effect on nontarget stream insects //J. Econ. Entomol. 1981, 74. - P. 314-318.

224. Montaldi F.A., Roth I.L. Parasporal bodies of Bacillus laterosporus sporangia //J.Appl.Bacteriol.- 1990, Vol.172, No.4.- P.2168-2171.

225. Morgan P.J., Andrew P.W., Mitchell T.J. Thiol-activated cytolysins //Rev. Med. Microbiol. 1996, Vol. 7. - P. 221-229.

226. Mulla M.S. Activity, field efficacy and use of Bacillus thuringiensis (H-14) against mosquitoes // In: de Baijac H., Suterland D.J.ed. Bacterial control of mosquitoes and blackflies. New Brunswick, New Jersey, Rutgers University Press. 1998.

227. Mulla M.S., Darwazeh H.A., Davidson E.W., Dulmage H.T. Efficacy and * persistence of the microbial agent Bacillus sphaericus against mosquito larvaein organically enriched habitats // Mosq. News. 1984, 44. - P. 166-173.

228. Mulla M.S., Darwazeh H.A., Ede L., Kennedy B., Dulmage H.T. Efficacy and Field evalution of Bacillus thuringiensis (H-14) and Bacillus sphaericus against floodwater mosquitoes in California // J. Amer. Mosq. Assoc. 1985, 1. - P. 310-315.

229. Mulla M.S., Darwazeh H.A., Zgomba M, Effect of some environmental factors on the efficacy of Bacillus sphaericus 2362 and Bacillus thuringiensis (H-14) against mosquitoes // Bull. Soc. Vector Ecol. 1990, 15. - P. 166-175.

230. Mulla M.S., Federici B.A., Darwazeh H.A. Larvicidal effecacy of Bacillus thuringiensis serotype H-14 against stagnant-water mosquitoes and its effects on nontarget organisms// Environ. Entomol. 1982a, 11. - P. 788-795.

231. Mulla M.S., Federici B.A., Darwazeh H.A., Ede L. Field evalution of the microbial insecticide Bacillus thuringiensis serotype H-14 against floodwater mosquitoes // Appl. Environ. Microbiol. 1982b, 43. - P. 1288-1293.

232. Mulligan F.S. Ill, Schaefer C.M., Wilder W.N. Efficacy and persistence of Bacillus sphaericus and B. thuringiensis H-14 against mosquitoes under laboratory and field conditions // J. Econ. Entomol. 1980, 73. - P. 684-688.

233. Mulligan F.S.III, Schaefer C.H. Integration of a selective mosquito control agent Bacillus thuringiensis serotype H-14, with natural predator population in pesticidesensitive habitats // Proc. Calif. Mosq. Control Assoc. 1982, 49. - P. 19-22.

234. Myers P., Yousten A.A. Toxic activity of Bacillus sphaericus for mosquito larvae // Dev. Ind. Microbiol. 1981, 22. - P. 41-52.

235. Myers P., Yousten A.A. Toxic activity of Bacillus sphaericus SSII-1 for mosquito larvae // Infect. Immun. 1978, 19. - P. 1047-1053.

236. Myers P., Yousten A.A., Davidson E.W. Comparative studies of the mosquito-larval toxin of Bacillus sphaericus SSII-1 and 1593 // Can. J. Microbiol. 1979, 25. - P. 1227-1231.

237. Neide E. Botanishe Beschreibung einigersporebildenden BacterienII Zentrabl. Bacteriol. Parasitenkd. Infektionskr. Hyg. Abt. (pt.l). 1904. -12. - P. 1-11.

238. Nepstad K, Orduz S, Sinegre G. International indoor and outdoor evaluation of Bacillus sphaericus products: complexity of standardizing outdoor protocols // J. Am. Mosq. Control Assoc. 1997, 13 (3). - P. 218-226.

239. Nickerson K.W., Bulla L.A. Physiology of spore forming bacteria associated with insects: minimal nutritional requirements for growth, sporulation and parasporal crystal formation of Bacillus thuringiensis II Appl.Microbiol. 1974, 28.-P. 124-128.

240. Nicolas L., Hamon S., Frachon E. Sebald M., de Baijac H. Partial inactivation of the mosqutocidal activity of Clostridium difermentas serovar malaysia by extracellular proreinases I I App. Microbiol. Biotechnol. 1990, 34. - P. 36-41.

241. Nicolas L., Lecroisey A., Charles J-F. Role of the gut proteinases from mosquito larvae in the mechanism of action and the specificity of the Bacillus sphaericus toxin I I Can. J. Microbol. 1990. - 36. - P. 804-807.

242. Nicolas L., Charles J-F., de Baijac H. Clostridium difermentas serovar malaysia: characterization of pupative mosquito larvicidal proteins // FEMS Microbiol. Lett. 1993, 113. - P. 23-28.

243. Nielsen-LeRoux C., Charles J-F. Binding of Bacillus sphaericus binary toxin to a specific receptor on midgut bruch-border membranes from mosquito larvae // Eur. J. Biochem. 1992, 210. - P.585-590.

244. Nielsen-Leroux C, Pasquier F, Charles JF, Sinegre G, Gaven B, Pasteur N. 1997. Resistance to Bacillus sphaericus involves different mechanisms in Culex pipiens (Diptera: Culicidae) //J. Med. Entomol. 1997, 34. - P. 321-327.

245. Nielsen-LeRoux C. Perspectives for a long term use of Bacillus sphaericus in mosquito vector control // Xllth European Meeting, Society for Vector Ecology, Wageningen. 1999. - P. 73.

246. Nilsson J.R. Further studies on vacuole formation in Tetrahymena pyriformis // C.R. Trav. Lab. Carlsberg.- 1972, 39.- P. 83-110.

247. Obeta J.A. Effect of inactivation by sunlight on the larvicidal activities of mosquitocidal Bacillus thuringiensis H-14 isolates from Nigerian soils // J. Commun. Dis. 1996 Jun; 28(2). - P. 94-100.

248. Oei C., Hindley J., Berry C. Binding of purified Bacillus sphaericus binary toxin and its deletion derivatives to Culex quinquefasciatus gut: elucidation of functional binding domains // J. Gen.Microbiol. 1992, 138. - P. 1515-1526.

249. Ohba M, Saitoh H, Miyamoto K, Higuchi K, Mizuki E. Bacillus thuringiensis serovar higo (flagellar serotype 44), a new serogroup with a larvicidal activity preferential for the anopheline mosquito // Lett Appl. Microbiol. 1995 Nov; 21(5).-P. 316-318.

250. Ohba M., Aizawa K., Distribution of Bacillus thuringiensis in soils of Japan

251. J. Invertebr. Pathol. 1986, 47. - P. 277-282.

252. Ohba M., Aizawa R., Occurrence of two pathotypes in Bacillus thuringiensis subsp. fukuokaensis (flagellar serotype 3a:3d:3e) // J. Invertebr. Pathol. 1990, 55. - P. 293-294.

253. Olejnicek J., Maryskova B. The influence of Bacillus thuringiensis on the mosquito predator Notonecta glauca // Folia Parasitol. (Prague). 1986, 37. - P. 279.

254. Orduz S, Rojas W, Correa MM, Montoya AE, de Baijac H. A new serotype of Bacillus thuringiensis from Colombia toxic to mosquito larvae // J.Invertebr. Pathol.-1992 Jan; 59 (1).-P.99-103.

255. Orduz S., Realpe M., Arango R., Murillo L.A., Delecluse A. Sequence of the cryllBbll gene from Bacillus thuringiensis subsp. medellin and toxicity analysis of its encoded protein // Biochim. Biophys. Acta. 1988, 1388,1. - P. 267-272.

256. Padua LE, Federici BA Development of mutants of the mosquitocidal bacterium Bacillus thuringiensis subspecies morrisoni (PG-14) toxic to lepidopterous or dipterous insects // FEMS Microbial Lett.- 1990, 1, 54 (1-3).-P.257-262.

257. Park H.W., Delecluse A, Federici B.A. Construction and Characterization of a Recombinant Bacillus thuringiensis subsp. israelensis Strain That Produces Cryl IB // J. Invertebr. Pathol. 2001, 78 (1). - P. 37-44.

258. Payne J., Davidson E. Insecticidal activity of crystalline parasporal inclusion and other componets oh the Bacillus sphaericus 1593 spore complex // J. Invertebr. Pathol.- 1984,43. P. 383-388.

259. Pei G, Oliveira CM, Yuan Z, Nielsen-LeRoux C, Silva-Filha MH, Yan J, Regis L. A Strain of Bacillus sphaericus Causes Slower Development of Resistance in Culex quinquefasciatus // Appl. Environ. Microbiol. 2002, 68(6). - P. 3003-3009.

260. Perez V.J, Guerchicoff A, Rubinstein C., Delecluse A. Characterization of Cyt2Bc toxin from Bacillus thuringiensis subsp. medellin // Appl. Environ Microbiol. 2002, March, Vol.68, No.3. - P. 1228-1231.

261. Petras S.F., Casida L.E.Jr. Survival of Bacillus thuringiensis spores in soil // Appl. Envoron. Microbiol. 1985, 50. - P. 1496-1501.

262. Porter A.G., Davidson E.W., Liu J.W. Mosquitocidal toxins of bacilli and their genetic manipulation for effective biological control of mosquitoes // Microbiol. Rev. 1993, 57. - P. 838-861.

263. Pous i Ripoll E., Marques i Mora E., Vila i Lleona N., Aranda Pallero C. Practical application of Arcview software in a mosquito control GIS• management data // Xllth European Meeting, Society for Vector Ecology, Wageningen, 6-11 September, 1999.

264. Prabakaran G, Padmanabhan V, Balaraman K. Development of a self floating slow release formulation of Bacillus thuringiensis var. israelensis and its larvicidal activity// Indian J. Exp. Biol. -2001, Jan; 39 (1). P. 82-84.

265. Prasertphon S., Areekul P., Tanada Y. Sporulation of Bacillus thuringiensis in host cadavers // J. Invertebr. Phatol. 1973, 21. - P. 205-207.

266. Priest F.G., Kaji D.A., Rosato Y.B., Canhos V.P. Characterisation of Bacillus thuringiensis and related bacteria by ribosomal RNA gene rectriction gragment length polymorphisms//Microbiology. 1994, 140. - P. 1015-1022.

267. Priest, F.G., Goodfellow, M., and Todd, C.A. Numerical classification of the genus Bacillus //J. Gen. Microbiol. 1988, Vol. 134. - P. 1847-1882.

268. Purcell B.H. Effects of Bacillus thuringiensis var. israelensis on Aedes taeniorhynchus and some nontarget organisms in the salt march // Mosq.News. -1981, 41,3.-P. 476-484.

269. Pursztai V., Fast P., Gringorten L., Kaplan H., Lessard T., Carey P.R. Themechanism of sunlight-mediated inactivation of Bacillus thuringiensis crystals // Biochem. J. 1991, 273. - P. 43-47.

270. Ragni A, Thiery I, Delecluse A. Characterization of six highly mosquitocidal Bacillus thuringiensis strains that do not belong to H-14 serotype // Curr. Microbiol. 1996 Jan; 32 (1). - P.48-54.

271. Rajamohan F., Lee M.K., Dean D.H. Bacillus thuringiensis insecticidal proteins: molecular mode of action // Prog.Nucleic Acid. Res. Mol. Biol. 1998, 60.-P. 1-27.

272. Rao D.R., Mani T.R., Rajendran R., Joseph A.S., Gajanana A. Development of high level resistance to Bacillus sphaericus in a field population of Culex quiquefasciatus from Kochi, India // J. Amer. Mosq. Control. Assoc. 1995, 11. -P. 1-5.

273. Regis L., Silva-Filha M., de Oliveiro C.M.F., Rios E.V., da Silva S.B. et al. Integrated control measure against Culex quinquefasciatus, The vector of filariasis in Resife // Mem. Inst. Jswaldo Cruz. 1995, 90. - P. 115-119.

274. Renard J., Mansouri A., Cooney C. Computer controlled feed batch fermentation of the methylotrophs Pseudomonas AMI // Biotechnol. Lett., 1984, 6. P. 577-580.

275. Rettich F. Effect of Bacillus thuringiensis serotype H-14 on moaquito larvae in the Elbe lowland // Acta Entomol. Bohemoslov. 1983, 80. - P. 21-28.

276. Rivers D.B., Vann C.N., Dean D.H. Mosquitocidal activity of Bacillus laterosporus.ll J.Invertebr.Pathol.-1991, 58.- P.444-447.

277. Rodcharoen J., Mulla M.S., Resistance development in Culex quinquefasciatus (Diptera: Culicidae) to the microbial agent Bacillus sphaericus II J. Econ. Entomol. 1994, 87. - P. 1133-1140.

278. Romero M, Gill F.M, Orduz S. Expression of mosquito active toxin genes by a Colombian native strain of the gram-negative bacterium Asticcacaulis excentricus // Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2001, 96 (2). - P. 257-263.

279. Rosso M.L. Delecluse A. Contribution of the 65-kilodalton protein encoded by the cloned gene cryl9A to the mosquitocidal activity of Bacillus thuringiensis subsp. jegathesan //Appl. Environ. Microbiol. 1997, 63 (11). -P. 4449-4455.

280. Saitoh H., Higuchi K., Mizuki E., Ohba M. Larvicidal toxicity of Japanese Bacillus thuringiensis against the mosquito Anopheles stephensi // Med Vet Entomol. 1998 Jan; 12(1). - P. 98-102.

281. Saitoh H., Higuchi K., Mizuki E., Ohba M. Larvicidal activity of

282. Bacillus thuringiensis natural isolates, indigenos to Japan, against two nematoceran insect pests occurring in urban sewage environments // Microbiol. Res.- 1996, 151.- P.263-271.

283. Sangthongpitag R. J. Penfold S. F. Delaney P. Rogers L. Cloning and expression of the Bacillus sphaericus 2362 mosquitocidal genes in a non-toxicunicellular cyanobacterium, Synechococcus PCC6301 // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1997,47. - P. 379-384.

284. Schadler P. Mosquito control in Germany economic and political aspects of the programme. 3th International Congress of Vector Ecology. Vector Ecology at the dawn of the 21st century // Barcelona, Spain. - 2001. - P. 15.

285. Schnepf E., Crickmore N., Van Rie J., DeLeclus A., Baum J., Feitelson J.,. Zeigler D.R, Dean D.H. Bacillus thuringiensis and its pesticidal crystal proteins // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1998, 62. -P. 775-806.

286. Secar V., Carlton B. Molecular cloning of the delta-endotoxin gene from B.thuringiensis ssp. israelensis //Gene. 1985, 33. - P. 151-158.

287. Seleena P., Lee H.L., Lecadet M.M. A novel insecticidal serotype of Clostridium bifermentas // J. Amer. Mosq. Control Assoc. 1997, 13. - P. 395397.

288. Sen K., Honda G., Koegama N., Nishida M., Nici A., Sacai H., Himeno M., Komano T. Cloning and nucleotide sequence of two 130 kDa insecticidal genes of B. thuringiensis var. israelensis // Agric. Biol. Chemestry. 1988, 52. - P. 873-878.

289. Sen K., Honda G., Koyama N., Nishida M., Neki A., Sakai H., Himeno M., KomanoT. Cloning and nucleotide sequences of the two 130 kDa insecticidal // Appl. Environ. Microbiol. 1997, 63 (8). - P. 3254-3260.

290. Shao, Z., Liu, Z., Yu, Z. Effects of the 20-Kilodalton Helper Protein on CrylAc Production and Spore Formation in Bacillus thuringiensis II Appl. Environ. Microbiol. 2001, 67. - P. 5362-5369.

291. Sheeran, W., Fisher, S.W. The effects of agitation, sediment, and competition on the persistence and efficacy of Bacillus thuringiensis var. israelensis (Bti) II Ecotoxicol. Environ. Safety. 1992, 24. - P. 338-346.

292. Shida O., Takagi H., Kadowaki K., Komagata K. Proposal for two genera, Brevibacillus gen. nov. and Aneurinibacillus gen. nov. Int // J. Syst. Bacterid // 1996. V. 46, No. 4. P. 939-946.

293. Siegel J.P., Novak R.J. Duration of activity of the microbial larvicide VectoLex CG (.Bacillus sphaericus) in illinois catch basins and waste tires // J. Am. Mosq. Control Assoc.- 1999, Sep., 15(3). P. 367-370.

294. Siegel J.P., Schadduck J.A. Clearance of Bacillus sphaericus and Bacillus thuringiensis ssp. israelensis from mammals // J. Econ. Entomol. 1990, 83. -P. 347-355.

295. Siegel J.P., Schadduck J.A., Szabo J. Safety of the entomopathogen Bacillus thuringiensis spp. israelensis from mammals // J. Econ. Entomol. 1987, 80. -P. 717-723.

296. Silva-Filha M-H, Regis L., Nielsen-LeRoux C., Charles J-F. Low-levelresistance to Bacillus sphaericus in a field-treated population in Culex quinquefasciatus (Diptera: Culicidae) // J. Econ. Entomol. 1995. - 88. - P. 525530.

297. Silva-Filha M.H., Nielsen LeRoux C., Charles J.F. Binding kinetics of Bacillus sphaericus binary toxin to midgut brush border membranes of Anopheles and Culex sp larvae // Eur. J.Biochem. - 1997, 247. - P. 754-761.

298. Sinegre G., Babinot M., Quermel J-M.,Gavon B. First field occurrence of Culex pipiens resistance to Bacillus sphaericus in southern France // Eur. Meet, soc. Vector Ecol. 8th, Barselona. 1994. - P. 17.

299. Sinegre G., Gaven B., Jullien J.I. Safety of application of Bacillus thuringiensis serotype H-14 for the non-target fauna of the mosquito breeding-sites on the Mediterranean coast of France // Parasitologia, 1980, 22,- P. 205211.

300. Singer S. Bacillus sphaericus for the control of mosquitoes // Biotechnol. Bioeng. 1980, 22. - P. 1335-1355.

301. Singer S. Entomogenous bacilli against mosquito larvae. Dev. Ind.Microbiol. 1974, 15.-P. 187-194.

302. Singer S. Insecticidal activity of resent bacterial isolates and their toxins against mosquito larvae // Nature 1973, 244. - P. 110-111.

303. Singer S. Isolation and development of bacterial pathogens in vectors // In Biological Regulation of Vectors. DHEW Publ. No. (NIH) 77-1180, Bethesda, MD: NIH.- 1977.-P. 3-18.

304. Singer, S. Potential of Bacillus sphaericus and related spore-forming bacteria for pest control // In "Microbial Control of Insects and Mites" (H.D. Burges and N.W. Hussey, eds.), Academic Press, London/New York. 1981. - P. 283-298.

305. Singh G.J.P, Gill S.S. An electron microscope study of the toxic action of Bacillus sphaericus in Culex quinquefasciatus larvae // J. Invertebr. Pathol. -1988, 52.-P. 237-247.

306. Skovmand O., Eriksen A.G. Field trials of a fizzy tablet with Bacillus thuringiensis subsp. israelensis in forest spring ponds in Denmark // Bull. Soc. Vector. Ecol. 1993, 18. - P. 160-163.

307. Skovmand O., Bauduin S. The fate of Bacillus sphaericus in different water enviroment a new theory for the effect and recycling/ // Abstracts of SIP 29 th Annual Meeting and III International Colloququim on Bacillus thuringiensis -Cordoba,1996.- P.76

308. Sleytr, U. B., Messner P. Ciystalline surface layers on bacteria // Annu. Rev. Microbiol. 1983, Vol. 37. - P. 311-339.

309. Smirnova T.A., Minenkova, I. B., Orlova M. V., Lecadet M.M., Azizbekyan R. R. The crystal-forming strains of Bacillus laterosporus. // Res. Microbiol. -1996, 147.-P. 343-350.

310. Smith, N. R., Gordon, R. E. In Bergey's manual of determinative bacteriology, 7th ed. Baltimore: The Williams and Wilkins Company. 1957.

311. Snarski V.M., Interaction between Bacillus thuringiensis subsp. israelensis and fatead minnows, Pimephales promelas rafinesque, under laboratory conditions// Appl. Environ. Microbiol. 1990, 56. - P. 2618-2622.

312. Stray J.E, Klowden M.J, Hurlbert R.E. Toxicity of Bacillus sphaericus cristal toxin to adult mosquitoes // Appl. Environ. Microbiol. 1988, 54. - P. 23202321.

313. Su T, Mulla M.S. Field evaluation of new water-dispersible granular formulations of Bacillus thuringiensis ssp. israelensis and Bacillus sphaericusagainst Culex mosquitoes in microcosms // J. Am. Mosq. Control Assoc. 1999 Sep, 15(3).-P. 356-365.

314. Sulaiman S., Jeffery J., Sohadi A.R, Abdul Rahim S. Residual effecacy of Altosid and Bactimos briquets for control of dengue|dengue haemorrhagic fever vector Aedes aegypti (L) // Mosq. Borne Dis. Bull. 1991, 8. - P. 123-126

315. Tabanulu T., Hindley J., Berry C. Proteolic proccessing of the mosqitocidal toxin from Bacillus sphaericus SSII-1 // J. Bacterid. 1992, 174. - P. 50515056.

316. Tabanulu T., Hindley J., Jackson-Yap J., Berry C. Cloning sequencing, and expression of a gene encoding a 100-kilodalton mosquicidal toxin from Bacillus sphaericus SSII-1. // J. Bacterid. -1991, 173. P. 2776-2785.

317. Tabanulu T., Porter G. Bacillus sphaericus gene encoding a novel class of mosquicidal toxin wiyh gomology to Clostridium and Pseudomonas toxins // Gene. 1996, 170.-P. 85-89

318. Tabashnik, B.E. Evaluation of synergism among Bacillus thuringiensis toxins // Appl. Environ. Microbiol. 1992, 58. - P. 3343-3346.

319. Tanada Y., Kaya H.K. Insect Pathology, Academic Press, Inc., London. -1993.

320. Tandeau de Marsac N., de la Torre F., Szulmajster J. Expression of the larvicidal gene of B. sphaericus 1593 M in the cyanobacterium Anacystis nidulans // Mol. Gen. Genet. 1987, 209. - P. 396-398.

321. The Bacillus thuringiensis Toxin Specificity Database //http://www.biols.susx.ac.uk./home/NeilCrickmore/Bt/

322. Thiery I, de Baijac H. Selection of the most potent Bacillus sphaericus strains, based on activity ratios determined on three mosquito species I I Appl. Microbiol. 1989, 31. - P. 577-581.

323. Thiery I., Hamon S., Cosmao D.V., de Baijac H. Vertebrare • safety of Clostridium bifermentans serovar malaysia, a new larvicidal agent for vector control // J. Econ. Entomol. 1992, 85. - P. 1618-1623.

324. Thomas W.E., Ellar D J. Bacillus thuringiensis var. israelensis crystal 8-endotoxin: effect on insect and mammalian cells in vitro and in vivo II J. Cell. Sci.- 1983,60. -P. 181-197.

325. Tungpradubkul S., Settasatien C., Panyim S. The complete nucleotide sequence of a 130 kDa mosquito-larvicidal delta-endotoxin gene of Bacillus thuringiensis var. israelensis //Nucleic Acids Res. 1988, 16 (4). - P. 16371638.

326. Yasquez M., Parr C., Hubert E., Espinoza P., Theoduloz C., Meza Basso L. Specificity and insecticidal activity of Chilean strains of Bacillus thuringiensis 115. Invertebr. Pathol. 1995, 66. - P. 143-148.

327. Waalwijk C., Dullemans A.M., van Workum M.E., Visser B. Molecular cloning and the nucleotide sequence of the Mr 28 000 crystal protein gene of Bacillus thuringiensis subsp. israelensis //Nucleic Acids Res. 1988, 13 (22).-P. 8207-8217.

328. Walfield A.M. Pollock, T.J. Structural similarity between the lepidoptera-and diptera-specific insecticidal endotoxin genes of Bacillus thuringiensis subsp. 'kurstaki' and 'israelensis'II J. Bacteriol. 1986, 166 (3). - P. 801-811.

329. Ward E.S. Ellar D.J. Nucleotide sequence of a Bacillus thuringiensis var. israelensis gene encoding a 130 kDa delta-endotoxin // Nucleic Acids Res. -1987, 15 (17).-P. 71-95.

330. Ward E.S., Ellar D.J. Bacillus thuringiensis var. israelensis delta-endotoxin. Nucleotide sequence and characterization of the transcripts in Bacillus thuringiensis and Escherichia colill J. Mol. Biol. 1986, 191 (1). P. 1-11.

331. Warren R.E., Rubenstein D., Ellar D.J., Kramer J.M., Gilbert R.J. Bacillus thuringiensis var. israelensis: protoxin activation and safety // Lancet. 1984, March 24. - P. 678-679.

332. Wegner E., Gliniewicz A., Kubica-Biernat B. Modern programme of mosquito control in Poland // Xllth European Meeting, Society for VectorEcology, Wageningen, 1999. P. 46.

333. Weiser J. A mosquito-virulent Bacillus sphaericus in adult Simulium damnosum from Nigeria. Zentralbl. Bakteriol. Parasitenkd. Infektionskr // Mosq. News. 1984, 44.- P. 28-31.

334. Weiser J., Tonka T., Weiser J.Jr., Horak P. A water soluble molluscidal metabolite of Bacillus thuringiensis II Proc. 25th Ann. Meet. Soc. Invertebr. Patholog., Heidelberg, Germany. 1992. - P. 204.

335. West A.W., Burges H.D., White J.R., Wyborn C.H. Persistence of Bacillus thuringiensis parasporal crystal insecticidal activity in soil // J. Invertebr. Pathol. 1984b, 44. - P. 128-133.

336. Wickremesinghe R.S.B., Mendis C.L. Bacillus sphaericus spore from Sri1.nka demonstrating rapid larvicidal activity on Culex quiquefasciatus II Mosq. News. 1980, 40. - P. 387-389.

337. Widner W.R., Whiteley H.R. Two highly related insecticidal crystal proteins of Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki possess different host range specificities I I J. Bacteriol. 1989, 171 (2). - P. 965-974.

338. Wirth M. C., Federici B. A., Walton W. E. CytlA from Bacillus thuringiensis Synergizes Activity of Bacillus sphaericus against Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) // App. Environ. Microbiol. 2000, Vol. 66, No. 3. - P. 1093-1097.

339. Wirth M.C., Georghiou G.P., Federici B.A., Walton W.E. Cyt A enables

340. CrylV endotoxins of Bacillus thuringiensis to overcome high levels of CrylV resistance in the mosquito, Culex quinquefasciatus II Proc.Nat.Acad. Sei. USA. 1990, 94.-P. 10536-10540.

341. Wirth M.C., Georghiou G.P., Malik J.I., Abro G.H. Laboratory selection for resistance to Bacillus sphaericus in Culex quifasciatus (Diptera: Culicidae) from California, USA // J.Med.Entomol. 2000, 37. - P. 534-540.

342. Wirth, M. C., Georghiou G. P. Cross-resistance among CrylV toxins of Bacillus thuringiensis subsp. israelensis in Culex quinquefasciatus (Diptera:Culicidae) // J. Econ. Entomol. 1997, 90. - P.1471-1477.

343. Wirth MC, Delecluse A, Walton WE. Laboratory selection for resistance to Bacillus thuringiensis subsp. jegathesan or a component toxin, Cry IIB, in Culex quinquefasciatus (Diptera: Culicidae). //J. Med. Entomol.- 2004 May; 41(3). -P.435-41.

344. Wu S., Chang I. Sinergism in mosquitocidal activity of 26 and 65 kDaproteins from B.thuringiensis spp. israelensis crystals // FEBS Lett. 1985, 190. - P. 232-236.

345. Xu B.Z., Becker N., Xiangi X., Ludwig H.W. Microbial control of malaria vectors in Hubei province, People 's Republic of China // Bull. Soc. Vector Ecol.- 1992, 17.-P. 140-149.

346. Xu X., Yan G., Kong R., Liu X., Yu L. Analysis of expression of the Binary Toxin Genes from Bacillus sphaericus in Anabaena and the Potential in Mosquito Control // Curr. Microbiol. 2000,41. - P. 352-356.

347. Xu Y., Nagai M., Bagdasarian M., Smith T. W., Walker E. D. Expression of the p20 Gene from Bacillus thuringiensis H-14 Increases CryllA Toxini

348. Production and Enhances Mosquito-Larvicidal Activity in Recombinant GramNegative Bacteria.// Appl. Environ. Microbiol. 2001, Vol.67, No.7.- P.3010-3015.

349. Yamamoto T., Watkinson I.A., Kim L., Sage M.V., Stratton R., Akande N., Li Y., Ma D.P. Roe B.A. Nucleotide sequence of the gene coding for a 130-kDa mosquitocidal protein of Bacillus thuringiensis israelensis // Gene. 1988, 66 (l).-P. 107-111.

350. Yameogo L., Leveque C., Traore K., Fainhurst C.P. Ten years of monitoring the aquatic fauna of West Africa rivers treated against blackflies (Diptera: Simuliidae), vectors of onchocerciasis II Nat. Canad. 1988, 115. - P. 287-298.

351. Yongxia S., Zhining Y., Quanxin C., Yu J., Yan J., Yi P. Cloning and Expression of the Binary Toxin Gene from Bacillus sphaericus IAB872 in

352. Crystal-Minus Bacillus thuringiensis subsp. israelensis // Curr. Microbiol. -2001,43.-P. 21-25.

353. Yousten A.A, Davidson EW. Ultrastructural analysis of spores and parasporal crystals formed by Bacillus sphaericus 2297 // Appl. Environ. Microbiol. -1982. 44.-P. 1449-1455.

354. Yousten A.A, Genthner F.J., Benfield E.F. Fate of Bacillus sphaericus and Bacillus thuringiensis serovar. israelensis in the aquatic environment // J. Am. Mosq. Control Assoc. 1992, 8. - P. 143-148.

355. Yu C.G., Mullins M.A., Warren G.W., Koziel M.G., Estruch J.J. The Bacilus thuringiensis vegetative insecticidal protein Vip3A lyses midgut epitelium cells of susceptible insetcts // Appl. Environ. Microbiol. 1997b, 63. - P. 532-536.

356. Zaritsky A., Khawaled K. Toxicity in carcasses of Bacillus thuringiensis var. israelensis-kiWed Aedes aegypti larvae against scavenging larvae: implications to bioassay // J. Am. Mosq. Control Assos. 1986, 2. - P. 555-559.

357. Zaritsky A., Zalkinder V., Ben-Dov E., Barak Z. Bioencapsulation and delivery to mosquito larvae of Bacillus thuringiensis H-14 toxicity by Tetrahymenapyriformis //J.Invertebr.Pathol.- 1991,58.-P.455-457

358. Zgomba M., Pétrie D., Cupina A., Marcovic I. Economic and mosquito suppression impact of different strategies in control programs of the Danube floodplains // 3th International Congress of Vector Ecology.Barcelona, Spain -2001.-P. 15.