Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на синтетические процессы клеток

ВАК РФ 03.00.02, Биофизика

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Полтанов, Евгений Алексеевич

Список сокращений Введение

1. Обзор литературы

1.1.Применение лазеров в медицине, низкоинтенсивная лазерная 13 терапия

1.2.Источники излучения, а также методы и способы воздействия, 21 используемые в низкоинтенсивной лазерной терапии

1.3.Клинико-физиологические эффекты низкоинтенсивной 26 лазерной терапии

1.4.Гипотезы о механизмах биологического действия 31 низкоинтенсивного лазерного излучения

1.4.1. Гипотеза о взаимодействии лазерного излучения с 34 компонентами цепей переноса электронов

1.4.2. Светокислородный эффект и фотодинамическая гипотеза

1.4.3. Реактивация металл содержащих ферментов с 54 антиоксидантными свойствами

1.4.4. Фотолиз нитрозильных комплексов гемоглобина

1.4.5. Гипотеза о фотоакцепторной роли гуанилатциклазы и 58 NO-синтазы

1.4.6. Гипотезы о неспецифическом действии НИЛИ 59 2. Материалы и методы

2.1.Материалы

2.2.Препаративные методы

2.3.Лазерное облучение

2.4.Аналитические методы

2.5.Статистическая обработка экспериментальных данных

3. Результаты исследований

3.1.Влияние лазерного облучения на активацию синтетических 74 процессов клеток

3.1.1. Определение оптимальных условий для измерения 74 продукции NO2" макрофагами

3.1.2. Влияние излучения гелий-неонового лазера на индукцию 85 синтеза оксида азота макрофагами

3.1.3. Влияние излучения гелий-неонового лазера на индукцию 91 синтеза цитокинов моноцитами крови доноров

3.1.4. Влияние излучения гелий-неонового лазера на 94 активность супероксиддисмутазы макрофагов

3.2.Влияние экзогенного фотосенсибилизатора и предварительной 99 инкубации макрофагов с аминолевуленовой кислотой на лазер-индуцированный синтез оксида азота

3.2.1. Влияние экзогенного фотосенсибилизатора на лазер- 99 индуцированный синтез оксида азота макрофагами

3.2.2. Влияние предварительной инкубации макрофагов с 104 аминолевуленовой кислотой на лазер-индуцированный синтез оксида азота

3.3.Исследование участия свободных радикалов в активации 111 синтетических процессов клетки под действием лазерного облучения

3.3.1. Влияние антиоксидантов на лазер-индуцированное 111 увеличение активности супероксиддисмутазы и продукции клетками оксида азота

3.3.2. Влияние излучения гелий-неонового лазера на 118 внутриклеточное образование активных форм кислорода

Введение Диссертация по биологии, на тему "Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на синтетические процессы клеток"

Актуальность исследования

К настоящему времени лазерное излучение прочно вошло в медицинскую практику. Прежде всего, это высокоинтенсивное лазерное излучение, используемое в хирургии для нанесения поверхностных и глубоких разрезов, испарения поверхностных дефектов кожи, коагуляции и карбонизации тканей, их стерилизации и т.д. [61, 74]. В сочетании с фотосенсибилизатором низкоинтенсивное лазерное излучение (НИЛИ) применяется для избирательного разрушения опухолей (фотодинамическая терапия) [68, 101, 154, 198]. И, наконец, все большее внимание врачей и исследователей привлекает низкоинтенсивная лазерная терапия (HJIT), основанная на эффекте взаимодействия света с естественными компонентами клеток и тканей [218]. С одной стороны это обусловлено все возрастающей лекарственной аллергизацией населения, а также привыканием к медикаментозным препаратам, что требует поиска новых способов патогенетического воздействия на организм пациента [83]. С другой стороны, достаточно высокая терапевтическая эффективность НИЛИ, наблюдаемая при лечении самого широкого круга заболеваний, служит веским аргументом в пользу перспективности развития НЛТ [5, 55, 59, 80, 105].

Несмотря на большое количество свидетельств успешного применения, достаточное количество врачей встречают НЛТ с осторожностью и некоторой долей скептицизма [105, 182, 218]. Эти осторожность и скептицизм вполне понятны и в их основе лежит отсутствие убедительного научного объяснения наблюдаемых положительных эффектов лазерного облучения. Действительно, ни одна из существующих на сегодняшний день теорий, описывающих механизмы лазерной биостимуляции, не дает полного представления о механизме терапевтического действия НИЛИ, начиная с поглощения кванта света и заканчивая физиологическим ответом организма. В результате подбор доз, режимов и способов облучения, клинических показаний к проведению HJ1T преимущественно идет эмпирическим путем, что малоэффективно, часто сопровождается отсутствием ожидаемого положительного результата вплоть до развития побочных эффектов и обострения основного заболевания [7, 36, 105, 182, 218].

Согласно сформулированной на кафедре биофизики РГМУ концепции свободнорадикального механизма стимулирующего действия НИЛИ, хромофорами лазерного излучения в красной области спектра могут быть эндогенные порфирины, которые, поглощая энергию лазерного излучения, индуцируют фотосенсибилизированные свободнорадикальные реакции, приводящие к инициации перекисного окисления липидов в мембранах клеток и увеличению их проницаемости для ионов Са2+. В рамках данной концепции было показано, что лазер-индуцированное увеличение содержания ионов Са2+ в цитозоле лейкоцитов запускает Са2+-зависимые процессы, результатом которых является сборка активных комплексов NADPH-оксидазы и повышение бактерицидных свойств клеток [47, 48, 91].

Тем не менее, наряду с увеличением бактерицидности, одними из наиболее часто встречаемых и хорошо доказанных как в клинике, так и в эксперименте терапевтическими эффектами НИЛИ являются вазодилятация, улучшение микроциркуляции, формирование и рост новых микрососудов, ускорение заживление ран, снятие болевого синдрома [1, 76, 204, 205, 218]. Анализ данных литературы показывает, что большинство этих эффектов могут быть связаны с активацией синтетических процессов клеток, а именно, с наработкой ферментов индуцибельной NO-синтазы (iNOS) и супероксиддисмутазы (СОД), а также с активацией синтеза цитокинов и клеточной пролиферацией.

Согласно исследованиям последних лет активация синтетических процессов на начальном этапе сопровождается появлением в цитоплазме клеток активных форм кислорода (АФК), которые, выступая в качестве вторичных мессенджеров, активируют и/или потенцируют активацию различных сигнальных путей (MAP киназный каскад) и факторов транскрипции (NF-kB, API и др.) [98, 130, 214]. Учитывая это можно предположить, что, при инициации фотосенсибилизированных свободнорадикальных реакций под действием лазерного облучения, в цитоплазме клеток образуется некоторое количество АФК, которые, воздействуя на транскрипционные факторы и сигнальные пути, запускают синтез белков, включая iNOS, СОД, различные цитокины. Отсюда возникла необходимость исследования влияния НИЛИ на активацию синтетических процессов клеток и возможного участие АФК в этой активации.

Цель и задачи исследования

Целью настоящей работы было изучить влияние НИЛИ в красном диапазоне спектра на индукцию синтетических процессов клеток (синтез iNOS, супероксиддисмутазы, цитокинов ФНОа и ИЛ-1(3), а так же исследовать возможное участие активных форм кислорода в этой индукции.

Для достижения поставленной цели были определены следующие задачи исследования:

1. Изучить влияние лазерного облучения на индукцию синтеза ферментов супероксиддисмутазы и индуцибельной NO-синтазы в макрофагах, а также изучить влияние лазерного облучения на индукцию синтеза цитокинов (ФНОа и ИЛ-1(3) мононуклеарными фагоцитами.

2. Изучить влияние экзогенного фотосенсибилизатора «Фотосенса» и индуктора синтеза эндогенных порфиринов аминолевуленовой кислоты на лазер-индуцированный синтез NO-синтазы макрофагов.

3. Изучить влияние антиоксидантов на лазер-индуцированный синтез ферментов NO-синтазы и супероксиддисмутазы макрофагов.

4. С помощью флуоресцентного зонда DCFH-DA изучить возможность образования активных форм кислорода в цитоплазме макрофагов под действием лазерного излучения.

Научная новизна

1. В работе показано, что низкоинтенсивное лазерное излучение (А<=632.8 нм) способно активировать синтез клетками (перитонеальными макрофагами крыс и моноцитами периферической крови человека) цитокинов ИЛ-1|3 и ФНОа, а так же ферментов индуцибельной N0-синтазы и супероксиддисмутазы.

2. Проведено сопоставление действия лазерного излучения красного и инфракрасного диапазонов спектра, а так же изучено влияние предварительной инкубации макрофагов с индуктором синтеза эндогенных порфиринов — аминолевуленовой кислотой на лазер-индуцированную активацию синтеза клетками оксида азота.

3. С помощью внутриклеточного индикатора АФК — дихлорфлуоресцин-диацетата (DCFH-DA), в работе исследовано образование активных форм кислорода в суспензии макрофагов под действием лазерного облучения без и в присутствии экзогенного фотосенсибилизатора, а так же в суспензии макрофагов, предварительно проинкубированных с индуктором синтеза эндогенных порфиринов аминолевуленовой кислотой. Показано, что облучение клеток в присутствии антиоксидантов (мексидола, аскорбата и рутина) приводит к отмене лазер-индуцированной активации синтеза клетками оксида азота и увеличения активности супероксиддисмутазы.

4. На основе полученных данных предложена свободнорадикальная концепция механизма активации синтетических процессов под действием низкоинтенсивного лазерного излучения (Аг=632.8 нм), которая включает в себя все звенья биостимулирующего эффекта, начиная от поглощения кванта света эндогенным хромофором и заканчивая изменением синтетической активности клетки.

Практическая значимость

Полученные в работе данные представляют интерес для понимания механизмов терапевтического действия низкоинтенсивного лазерного излучения и могут способствовать научно-обоснованному подбору доз, режимов и способов облучения, а также клинических показаний к проведению низкоинтенсивной лазерной терапии. Кроме этого, полученные данные могут служить основой для дальнейших исследований в области изучения механизмов терапевтической эффективности низкоинтенсивных лазерных излучений.

Положения, выносимые на защиту

1. Низкоинтенсивное лазерное излучение в красном диапазоне спектра (632.8 нм) активирует синтетические процессы клеток: индуцирует синтез индуцибельной NO-синтазы и супероксиддисмутазы в макрофагах, а так же выработку цитокинов (ИЛ-ip, ФНОа) моноцитами крови. Данное явление может лежать в основе таких хорошо доказанных терапевтических эффектов низкоинтенсивной лазерной терапии как улучшение микроциркуляции, формирование и рост новых микрососудов, ускорение заживление ран, снятие болевого синдрома и др.

2. Увеличение синтетической активности клеток под действием низкоинтенсивного лазерного излучения в красном диапазоне спектра связано с фотосенсибилизированными свободнорадикальными реакциями. При этом в качестве эндогенных фотосенсибилизаторов, ответственных за эффекты лазерного облучения, могут выступать порфирины.

3. Индукция синтетических процессов клеток под действием низкоинтенсивного лазерного излучения в красном диапазоне спектра обусловлена образованием активных форм кислорода в их цитоплазме, что доказано в опытах по изучению влияния антиоксидантов на увеличение синтетической активности клеток и в опытах по изучению изменения флуоресценции чувствительного к внутриклеточным активным формам кислорода зонда дихлорфлуоресцин-диацетата.

Апробация диссертации

Материалы диссертации были представлены на научно-практической конференции «N0 терапия: теоретические аспекты, клинический опыт и проблемы применения экзогенного оксида азота в медицине» (Москва, 4-5 декабря 2001 г.), а так же на первом интернациональном симпозиуме «Quantum medicine and new medical technologies» (Блед, Словения, 17-22 ноября 2001 г.), на III-ем съезде фотобиологов России (Воронеж, 28 июня - 4 июля 2001 г.), на II Конференции молодых ученых России с международным участием «Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины» (Москва, 24-28 апреля 2001 г.), на Пироговской межвузовской научной конференции студентов и молодых ученых (Москва, 21-24 марта 2000 г.).

Публикации

По теме диссертации опубликовано 10 печатных работ.

Структура диссертации

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов, результатов исследования и их обсуждения, выводов и списка цитируемой литературы, включающего 230 источников, из них 133 иностранных. Работа изложена на 177 страницах машинописного текста. Иллюстрированный материал представлен 39 рисунками и 3 таблицами.

Заключение Диссертация по теме "Биофизика", Полтанов, Евгений Алексеевич

148 ВЫВОДЫ

1. Показано, что облучение излучением гелий-неонового лазера (А,=632.8 нм) в диапазоне доз от 0.24 до 0.48 Дж/см2 увеличивало выработку оксида азота макрофагами. При этом инкубация клеток с транскрипционным ингибитором циклогексимидом (0.5 мкМ) или специфическим ингибитором NO-синтазы — Ы-монометил-Ь-аргинином (L-NMMA, 100 мкМ) отменяла увеличение продукции оксида азота, что указывает на связь стимулирующего эффекта лазерного воздействия с индукцией синтеза фермента индуцибельной NO-синтазы de novo.

2. Показано, что облучение излучением гелий-неонового лазера в о диапазоне доз от 2.1 до 12.48 Дж/см увеличивало выработку провоспалительных цитокинов ИЛ-1(3 и ФНОа моноцитами периферической крови человека.

3. Показано, что облучение излучением гелий-неонового лазера в диапазоне доз от 0.36 до 10 Дж/см увеличивало активность супероксиддисмутазы в суспензии макрофагов. При этом максимальная активность фермента наблюдалась при дозе облучения 1.2 Дж/см . Установлено, что увеличение активности супероксиддисмутазы было связано с индукцией ее синтеза de novo — инкубация клеток с транскрипционным ингибитором циклогексимидом (0.5 мкМ) отменяла лазер-индуцированное увеличение активности СОД.

4. Показано, что предварительная инкубация макрофагов с предшественником синтеза эндогенных порфиринов аминолевуленовой кислотой (0.01-1 мМ), а так же облучение макрофагов в присутствии экзогенного фотосенсибилизатора «Фотосенса» (10 нМ), приводили к снижению интенсивности лазер-индуцированной выработки клетками оксида азота (со 150-250% до 100-120% по отношению к контролю). В случае использования в эксперименте макрофагов исходно слабо отвечающих на лазерное облучение, указанные воздействия наоборот увеличивали интенсивность индукции синтеза оксида азота (со 100140% до 160-180% по отношению к контролю). Полученные результаты свидетельствуют о важной роли фотосенсибилизаторов в активации синтетических процессов клеток под действием излучения гелий-неонового лазера.

5. Показано, что облучение клеток в присутствии антиоксидантов мексидола (0.5-1 мМ), аскорбата (0.1-0.5 мМ) или рутина (0.1-0.5 мМ) отменяло лазер-индуцированное увеличение активности супероксиддисмутазы и продукции оксида азота, что указывает на участие свободных радикалов в механизме развития ответа клеток на облучение.

6. Показано, что облучение макрофагов, предварительно проинкубированных с предшественником синтеза эндогенных порфиринов аминолевуленовой кислотой (1 мМ), а также облучение макрофагов в присутствии экзогенного фотосенсибилизатора «Фотосенса» (1 мкМ), сопровождались дозозависимым увеличением интенсивности флуоресценции специфического зонда (DCFH-DA), чувствительного к образованию активных форм кислорода внутри клетки.

7. Показано, что облучение излучением инфракрасного лазера (890 нм) в

•л диапазоне доз от 0.012-0.072 Дж/см увеличивало выработку оксида азота макрофагами. При дальнейшем возрастании дозы увеличение продукции оксида азота сменялось ее подавлением.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Полтанов, Евгений Алексеевич, Москва

1. Александрова О.Ю. Гольдина Е.М., Использование красного лазера в комплексном лечении больных бронхиальной астмой // Лазерная медицина. 2002. - Т.4, №1. - С. 37.

2. Александрова О.Ю. Инфракрасное лазерное излучение в комплексном лечении больных ревматоидным артритом // Лазерная медицина. -2000. Т.4, №1.-С. 36.

3. Александрова О.Ю., Пономаренко Г.Н., Лукина И.М. Низкоинтенсивное лазерное излучение в лечении больных ревматоидным артритом // Вопр. Курортол. 2000. - №3. - С. 28-30.

4. Барбараш О.Л., Марцияш А.А., Шейбак Т.В., Чукаева И.И., Корочкин И.М., Сырнев В.В. Стресс-модулирующие эффекты лазеротерапии у больных ишемической болезнью сердца // Тер. Архив. 1996. - №12. -С.50-53.

5. Бейум А. Выделение лимфоцитов, гранулоцитов и макрофагов // В кн. «Лимфоциты: выделение, фракционирование и характеристика». Под редакцией Натвича Дж. Б., Перлманна П., Вигзелля X. М.: Медицина, 1980.-С. 9-19.

6. Борисенко Г.Г. Механизмы фотохимических реакций нитрозильных комплексов гем-содержащих белков индуцированных низкоинтенсивным лазерным излучением: Автореф. дисс. . канд. биол. наук. М., 2000.-20 с.

7. Борисенко Г.Г., Осипов А.Н., Казаринов К.Д., Владимиров Ю.А. Фотохимические реакции нитрозильных комплексов гемоглобина под действием низко-интенсивного лазерного излучения в видимом диапазоне // Биохимия. 1997. - Т.62, №6. - С. 774-780.

8. Борисенко Г.Г., Постнов С.С., Казаринов К.Д., Осипов А.Н., Владимиров Ю.А. Нирозильные комплексы цитохромов митохондриальной цепи — первичные хромофоры в механизме фотоактивации дыхания // Биол. Мем. 2002. - Т. 19, №5. - С. 378-390.

9. Брилль А.Г., Брилль Г.Е., Киричук В.Ф., Шенкман Б., Тамарин И., Дар дик Р., Варон Д., Савион Н. Влияние излучения He-Ne лазера на активацию и аггрегацию тромоцитов // Бюл. Эксп. Биол. Мед. 1999. -Т.128, №7. - С. 48-50.

10. Брилль Г.Е., Брилль А.Г. Гуанилатциклаза и NO-синтетаза — возможные первичные акцепторы энергии низкоинтенсивного лазерного излучения // Лазерная медицина. 1997. - Т.1, №2. - С. 3942.

11. Буйлин В.А. Язвенная болезнь // В кн. «Низкоинтенсивная лазерная терапия». Под общей редакцией С.В. Москвина, В.А. Буйлина М.: ТОО «Техника», 2000. - С. 321-350.

12. Васильев А.П., Стрельцов Н.Н. О возможном механизме гипотензивоного эффекта лазерного излучения у больных ишемической болезнью сердца с артериальной гипертензией // Вопр. Курортол. 2001. - №5. - С. 17-20.

13. Васильев А.П., Стрельцов Н.Н., Сенаторов Ю.Н. Лазерное облучение в лечении ишемической болезни сердца // Вопр. Курортол. 2001. - №6. -С. 10-13.

14. Васильева О.В. Определение анитоксидантной активности фармакологических препаратов методом хемилюминесценции: Автореф. дисс. . канд. мед. наук. М., 2000. 24 с.

15. Векшин Н.А. Светозависимое фосфорилирование в митохондриях // Мол. Биол. -1991. №25. - С.54-59.

16. Векшин Н.А., Миронов Г.П. Флавинзависимое потребление кислорода в митохондриях при освещении // Биофизика. 1982. - №27. - С. 537539.

17. Владимиров Ю.А. Лазеротерапия: настоящее и будущее // Сорос. Обр. Журнал. 1999.-№12.-С. 2-8.

18. Владимиров Ю.А. Нарушение барьерных свойств внутренней и наружной мембран митохондрий, некроз и апоптоз // Биол. Мем. -2002. Т. 19, №5. - С. 356-377.

19. Владимиров Ю.А. Три гипотезы о механизме действия лазерного облучения на клетки и организм человека // Эфферентная медицина: Сб. статей. М: ИБМХ РАМН, 1994. - С. 51-67.

20. Владимиров Ю.А., Азизова О.А., Деев А.И., Козлов А.В., Осипов А.Н., Рощупкин Д.И. Свободные радикалы в живых системах // Итоги наукии техники ВИНИТИ АН СССР: сер. Биофизика. М., 1991, - Т. 29. -225 с.

21. Владимиров Ю.А., Потапенко А.Я. Физико-химические основы фотобиологических процессов. М.: Высшая школа, 1989. - 200 с.

22. Гамалея Н.Ф. Световое облучение крови — фундаментальная сторона проблемы // Действие низкоэнергетического лазерного излучения на кровь. Тезисы всесоюзной конференции 27-29 сент. 1989 г. Киев, 1989.-С. 180-182.

23. Генкин В.М., Новиков В.Ф., Парамонов JI.B. Элькина Б.И. Влияние низкоинтенсивного лазерного облучения на состояние белков крови // Бюл. Эксп. Биол. Мед. 1989. - Т.108, №8. - С. 188-190.

24. Горбатенкова Е.А., Владимиров Ю.А., Парамонов Н.В., Азизова О.А. Красный свет гелий-неонового лазера реактивирует супероксиддисмутазу // Бюл. Эксп. Биол. Мед. 1989. - Т. 107, №3. - С. 302-305.

25. Девятков Н.Д., Зубкова С.М., Лапрун И.Б., Макеева Н.С. Физикохимические механизмы биологического действия лазерного излучения // Усп. Совр. Биол. 1987. - Т. 103, №1. - С. 31-43.

26. Жаров В.П., Кару Т.Й., Литвинов Ю.О. Фотобиологический эффект излучения полупроводникового лазера в ближней ИК-области // Квантовая электроника. 1987. - Т. 14, №11. - С. 2135-2136.

27. Жибурт Е.Б., Серебряная Н.Б., Рождественская Е.Н., Ващенко В.И., Каткова И.В., Дьякова В.В., Бойцова М.Ю. Некоторые механизмыдействия лазерного облучения крови // Пат. Физ. Эксп. Тер. 1998. -№3. - С. 6-7.

28. Жуков Б.Н., Лысов Н.А., Мусиенко С.М. Ангиология // В кн. «Низкоинтенсивная лазерная терапия». Под общей редакцией С.В. Москвина, В .А. Буйлина М.: ТОО «Техника», 2000. - С. 303-320.

29. Захаров С.Д. Светокислородный эффект в клетках и преспективы его применения в терапии опухолей // Квантовая электроника. 1999. -Т.29, №3. - С. 192-214.

30. Зверева К.В., Грунина Е.А. Отрицательные эффекты низкоинтенсивной лазерной терапии при ревматиодном артрите // Тер. Арх. 1996. - Т.68, №5. -С. 24-27.

31. Зубкова С.М. О механизме биологического действия He-Ne лазера // Науч. доклады высшей школы. 1978. - №17. - С. 30-37.

32. Зубкова С.М., Лапрун И.Б., Соколова З.А., Попов В.И. Окислительные и синтетические процессы в тканях печени и мозга при действии излучения гелий-неонового лазера // Биол. Науки. 1981. - № 4. - С. 24-31.

33. Зубкова С.Н., Крылов О.А. Действие лазера на окислительные процессы в митохондриях // Труды ЦНИИ курортол. физиотер. 1976. -№32.-С. 18-22.

34. Карандашов В.И. Петухов В.Б. Изменение реологических свойств крови при ее облучении гелий-неоновым лазером // Бюл. Эксп. Биол. Мед. 1996. -Т.121, №1. -С. 17-19.

35. Карандашов В.И., Петухов Е.Б., Финько И.А., Попов Ю.В., Сличенко С.И. Экстракорпоральное облучение полного объема циркулирующей крови низкоэнергетическим гелий-неоновым лазером // Вестн. Росс. Акад. Наук. 1994. - №4. - С. 51-54.

36. Кару Т.Й. Первичные и вторичные механизмы лазерной терапии // В кн. «Низкоинтенсивная лазерная терапия». Под общей редакцией С.В. Москвина, В.А. Буйлина М.: ТОО «Техника», 2000. - С. 71-94.

37. Кару Т.Й., Афанасьева Н.И. Цитохром-с-оксидаза как первичный фотоакцептор при лазерном воздействии света видимого и ближнего ИК-диапазона на культуру клеток // Докл. АН. 1995. - Т.342, №5. - С. 693-695.

38. Кару Т.Й., Пятибрат JI.B., Есеналиев P.O. Влияние излучения Ne-Ne лазера на адгезивные свойства клеточной мембраны // Бюл. Эксп. Биол. Мед. 1993. - Т.115, №6. - С. 622-623.

39. Кипшидзе Н.Н., Чапидзе Г.Э., Бохуа М.Р., Марсагишвили Л.А., Салуквадзе Н.С., Долидзе Н.К., Ревишвили Т.С. Эффективность гемооблучения гелий-неоновым лазером в остром периоде инфаркта миокарда// Сов. Мед. 1990. -№3. - С. 9-12.

40. Клебанов Г.И. Мембранные механизмы фотобиологического действия низкоинтенсивного лазерного излучения // Мембраны: Сер. Критические технологии. 2000. - .№6. - С.26-45.

41. Клебанов Г.И., Владимиров Ю.А. Клеточные механизмы прайминга и активации фагоцитов // Усп. Совр. Биол. 1999. - Т.119, №5. - С. 462475.

42. Клебанов Г.И., Страшкевич И.В., Чичук Т.В., Модестова Т.М., Владимиров Ю.А Влияние эндогенных фотосенсибилизаторов на лазер-индуцированный прайминг лейкоцитов крови // Биол. мембраны. 1998 Т.15, №3.- С.273-285.

43. Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Рубакова Э.И. Система цитокинов. -М.-.РГМУ, 1999.-78 с.

44. Кожемякин Л.А., Коростовцев Д.С., Королева Т.Р. Циклические нуклеотиды в клинической и экспериментальной медицине // В кн. Циклические нуклеотиды. -М.: Наука, 1979. С. 92-135.

45. Козлов В.И., Терман О.А., Лихачева Л.М. Микроциркуляторное русло печени при лазерном воздействии // Морфология. 1992. - Т. 102, №2. -С. 78-85.

46. Корочкин И.М. Применение низкоэнергетических лазеров в клинике внутренних болезней // Рос. Мед. Журн. 1997. - №5. - С. 4-10.

47. Корочкин И.М., Бабенко Е.В. Механизмы терапевтической эффективности излучения гелий-неонового лазера // Сов. Мед. 1990. -№3. - С. 3-8.

48. Корочкин И.М., Капустина Г.М., Фандеев А.В., Романова Г.Р., Лешаков С.Ю., Беркинбаев С.Ф. Применение излучения гелий-неонового лазера для лечения ишемической болезни сердца. (Методические рекомендации) // М.: МЗ СССР, 1987. 21 С.

49. Кузнецова Н.П., Панков Б.С., Чубарова А.С., Кривошеев Б.А., Капралов И.К. Порфирии // М.: Медицина, 1981. С. 3-23.

50. Кульчавеня Е.В. Низкоинтенсивная лазеротерапия в урологии // Урология и нефрология. 1996. -№1. -С.41-44.

51. Курбанова С.С., Курбанова Г.К. Использование низкоинтенсивного лазерного излучения при травмах конечностей // Вопр. Курортол. -2000.-№5.-С. 47.

52. Лазеры в клинической медицине. Руководство для врачей. // Под ред. С.Д. Плетнева. М.: Медицина, 1996. - 432 с.

53. Леонтьева Н.В., Евдокимова Т.А., Седлецкая Э.Ю., Дмитриева Я.В., Золотницкая В.П. Применение надсосудистого лазерного облучения в комплексном лечении больных нижних конечностей // Вопр. Курортол. -2001. -№3.- С. 5-7.

54. Лимфоциты: методы // Пер. с англ. под редакцией Клауса Дж. М.: Мир, 1990.-395 с.

55. Лутай А.В., Егорова Л.А., Шутемова Е.А. Лазеротерапия при пневмонии у пожилых больных // Вопр. Курортол. 2001. - №3. - С. 15-18.

56. Матюшичев В.Б., Солдатов А.И. Эффективность применения лазера на парах меди в терапии пептических язв // Сов. Мед. 1990. - №3. - С. 60-62.

57. Миронов А.Ф. Биосинтез тетрапиррольных пигментов // Сорос. Обр. Журнал. 1998. - №7. - С. 35-42.

58. Миронов А.Ф. Фотодинамическая терапия рака — новый эффективный метод диагностики и лечения злокачественных опухолей // Сорос. Обр. Журнал. 1996. - №8. - С. 32-40.

59. Мирютова Н.Ф. Лазеротерапия в лечении дискогенных неврологических проявлений остеохондроза позвоночника // Вопр. Курортол. 2000. - №3. - С. 30-33.

60. Москвин С.В. Физические основы лазерной терапии // В кн. «Низкоинтенсивная лазерная терапия». Под общей редакцией С.В. Москвина, В.А. Буйлина. -М.: ТОО «Техника», 2000. С. 20-57.

61. Москвин С.В. Эффективность лазерной терапии // М.: НПЛЦ «Техника», 2003. 256 с.

62. Москвин С.В., Буйлин В.А. Оптимизация лазерного воздействия // В кн. «Низкоинтенсивная лазерная терапия». Под общей редакцией С.В. Москвина, В.А. Буйлина М.: ТОО «Техника», 2000. - С. 141-209.

63. Мюллер Г.Й. Прикладная лазерная медицина // Пер. с нем. М.: Интерэксперт, 1997. - 356 с.

64. Немцев И.З., Лапшин В.П. Механизмы действия лазеров при лечении острых состояний в клинике (15-летний опыт) // Мед. Рад. 1993. -№3. - С. 4-7.

65. Осипов А.Н., Азизова О.А., Владимиров Ю.А. Активные формы кислорода и их роль в организме // Усп. Биол. Химии. 1990. - Т.31. -С.180-208.

66. Осипов А.Н., Борисенко Г.Г., Казаринов К.Д., Владимиров Ю.А. Окись азота, гемоглобин и лазерное излучение // Вестн. Росс. Акад. Наук. -2000.-№4.-С. 48-52.

67. Острахович Е.А., Илич-Стоянович О., Афанасьев И.Б. Активные формы кислорода и азота в клетках крови у больных ревматоидным артритом: эффект лазерной терапии // Вестн. Росс. Акад. Наук. 2002. -№5. - С. 23-27.

68. Плужников М.С., Лопотко А.И. Низкоэнергетическое лазерное излучение в оториноларингологии // Вестник оториноларингологии. -1996. №2. - С.5-14.

69. Пославский М.В. Лазерная терапия язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки // Сов. Мед. 1990. - №3. - С. 58-60.

70. Приезжев А.В., Тучин В.В., Шубочкин Л.Т. Лазерная диагностика в биологии и медицине. М.: Наука, 1989. - 240 с.

71. Разумов А.Н., Князева Т.А., Бадтиева В.А. Лазеротерапия как метод устранения толерантности к нитратам и потенцирования их действия // Вопр. Курортол. 2000. - №5. - С. 3-5.

72. Рубин А.Б. Биофизика. М.: Книжный дом «Университет», 2000. - Т.2 -468 с.

73. Рубцов Б.В., Клебанов Г.И., Ружицкий А.О., Владимиров Ю.А. Сравнение действия УФ-облучения и Fe-индуцированного перекисного окисления липидов на мембраны саркоплазматического ретикулума // Изв. АН СССР: сер. Биология. 1984. - №2. - С. 299-302.

74. Скрибунов И.В., Тарасов П.А., Семьянов К.А., Тихонова М.А. Кинетика накопления препарата «Фотосенс» лейкоцитами и эритроцитами крови // Лазерная медицина. 1999. - Т.З, №3-4. - С. 6263.

75. Терман О.А., Козлов В.И. Патофизиологическое обоснование применения различных доз и режимов НИЛИ для фотостимуляции микроциркуляции // Лазерная медицина. 1998. - Т.2, №2-3. - С. 43-46.

76. Тучин В.В. Лазеры и волоконная оптика в биомедицинских исследованиях. Саратов: Изд-во Сарат. Ун-та, 1998. - 384 с.

77. Утц И.А., Лагутина Л.Е., Кротков В.Л., Вдовухина И.В., Абаева Т.П. Метод чрезкожного лазерного облучения крови в лечении хронического пиелонефрита у детей // Педиатрия. 1994. - №2. - С. 52-55.

78. Фримель Г. Иммунологические методы // Пер. с нем. М.: Медицина, 1987.-427 с.

79. Чичук Т.В. Свободнорадикальный механизм действия низкоинтенсивного лазерного излучения на лейкоциты: Дисс. . канд. мед. наук. -М., 1997. 144 с.

80. Швальб П.Г., Захарченко А.Я., Сигаев А.А., Катаев М.И. Внутривенное лазерное облучение крови при облитерирующих заболеваниях нижних конечностей // Сов. Мед. 1990. - №3. - С. 21-23.

81. Шебзухов Ю.Б., Вайсбурд М.Ю., Артюшкин К.В., Мысякин Е.Б. Синтез оксида азота перитонеальными макрофагами мыши поддействием С-реактивного протеина // Бюл. Эксп. Биол. Мед. 1988. -Т.125, №1. - С. 48-50.

82. Элькина Б.И., Генкин В.М., Прахова Н.В., Новиков В.Ф., Филоненко Г.С. Структурные перестройки белков под действием НИЛИ // Действие низкоэнергетического лазерного излучения на кровь. Тезисы всесоюзной конференции 27-29 сент. Киев, 1989 г. - С. 49-50.

83. Adar F., Erecinska М. Photoreductive titration of the resonance Raman spectra of cytochrome oxidase in whole mitochondria // Biochemistry. -1981. V.18, №9. -Pp. 1825-1829.

84. Allen R.G., Tresini M. Oxidative stress and gene regulation // Free Radic Biol Med. 2000. - V.28, №3. - Pp. 463-499.

85. Archer S. Measurement of nitric oxide in biological models // Faseb J. -1993. V.7, №2. - Pp. 349-360.

86. Aw T.Y. Molecular and cellular responses to oxidative stress and changes in oxidation-reduction imbalance in the intestine // Am J Clin Nutr. 1999. - V.70, №4. - Pp. 557-565.

87. Baas P. Laser therapy in pulmonary medicine // Lasers Med Sci. -1998. V.13, №2. - Pp. 86-97.

88. Babcock G.T., Wikstrom M. Oxygen activation and the conservation of energy in cell respiration // Nature. 1992. - V.356, №6367. - Pp. 301309.

89. Baldwin A.S. The NF-kB and IkB proteins: new discoveries and insights // Annu Rev Immunol. 1996. - V.14. - Pp. 649-681.

90. Basford J.R. Low intensity laser therapy: still not an established clinical tool // Lasers Surg Med. 1995. - V. 16, №4. - Pp. 331-342.

91. Bass D.A., Parce J. W., Dechatelet L. R., Szejda P., Seeds M. C., Thomas M. Flow cytometric studies of oxidative product formation by neutrophils: a graded response to membrane stimulation // J Immunol. -1983. V.130, №4. - Pp. 1910-1917.

92. Ben-Her E., Dubbelman T.M. Cytoplasmic free calcium changes as a trigger mechanism in the response of cells to photosensitization II Photochem Photobiol. 1993. - V.58, №6. - Pp. 890-894.

93. Boyum A. Separation of blood leukocytes, granulocytes and lymphocytes // Tissue Antigens. 1974. - V.4, №4. - Pp. 269-274.

94. Brown G.C. Nitric oxide and mitochondrial respiration // Biochim Biophys Acta. 1999.-V.l411, №2-3.-Pp. 351-369.

95. Burow S., Valet G. Flow-cytometric characterization of stimulation, free radical formation, peroxidase activity and phagocytosis of human granulocytes with 2,7-dichlorofluorescein (DCF) // Eur J Cell Biol. 1987. - V.43, №1. - Pp. 128-133.

96. Chance В., Sies H., Boveris A. Hydroperoxide metabolism in mammalian organs // Physiol Rev. 1979. - V.59, №3. - Pp. 527-605.

97. Chandel N.S., Maltepe E., Goldwasser E., Mathieu C.E., Simon M.C., Schumacker P.T. Mitochondrial reactive oxygen species trigger hypoxia-induced transcription // Proc Natl Acad Sci USA.- 1998. V.95, №20. -Pp. 11715-11720.

98. Chang K.C., Chong W.S., Park B.W., Seung B.W., Chun G.W., Lee I .J., Park P.S. NO- and N02*carrying molecules potentiate photorelaxation in rat trachea and aorta // Biochem Biophys Res Commun. 1993. - V. 191, №2.-Pp. 509-514.

99. Chaudhry H., Lynch M., Schomacker K., Birngruber R., Gregory K., Kochevar I. Relaxation of vascular smooth muscle induced by low-power laser radiation // Photochem Photobiol. 1993. - V. 58, №5. - Pp. 661-669.

100. Chen Y.L., Wolin M.S., Messina E.J. Evidence for cGMP mediation of skeletal muscle arteriolar dilation to lactate // J Appl Physiol. 1996. -V.81, №1. - Pp. 349-354.

101. Cook H.T., Cattell V. Role of nitric oxide in immune-mediated diseases // Clin Sci (Lond). 1996. - V.91, №4. - Pp. 375-384.

102. Davies K.J. Protein damage and degradation by oxygen radicals. I. General aspects // J Biol Chem. 1987. - V.262, №20. - Pp. 9895-901.

103. Davies K.J., Delsignore M.E. Protein damage degradation by oxygen radicals III. Modification of secondary and tertiary structure // J Biol Chem. 1987. - V.262, №20. - Pp. 9908-9913.

104. Davies К.J., Goldberg A.L. Oxygen radicals stimulate intracellular proteolysis and lipid peroxidation by independent mechanisms in erythrocytes // J Biol Chem. 1987. - V.262, №17. - Pp. 8220-8226.

105. Davies K.J., Goldberg A.L. Proteins damaged by oxygen radicals are rapidly degraded in extracts of the blood cells // J Biol Chem. 1987. -V.262, № 17.-P. 8227-8234.

106. Ding A.H., Nathan C.F., Stuehr D.J. Release of reactive nitrogen intermediates and reactive oxygen intermediates from mouse peritoneal macrophages// J Immunol. 1988. - V.141, №7. - Pp. 2707-2412.

107. Droge W. Free radicals in the physiological control of cell function // Physiol Rev. 2002. - V.82, №1. - Pp. 47-95.

108. Dube A., Gupta P.K., Bharti S. Redox absorbance changes of the respiratory chain components of E.coli following He-Ne-laser irradiation // Lasers Life Sci. 1997.-V.7, №3. - Pp. 173-180.

109. Duranteau J., Chandel N.S., Kulisz A., Shao Z., Schumacker P.T. Intracellular signaling by reactive oxygen species during hypoxia in cardiomyocytes // J Biol Chem. 1998. - V.273, №19. - Pp. 11619-11624.

110. Farrell D.M., Bishop V.S. The roles of cGMP and cAMP in active thermoregulatory vasodilation // Am J Physiol. 1997. - V.272, №3, Pt 2. -Pp. R975-81.

111. Fink G.D., Paddock R.J., Rodgers G.M., Busuttil R.W., George WJ. Elevated cyclic GMP levels in rabbit atria following vagal stimulation and acetylcholine treatment // Proc Soc Exp Biol Med. 1976. - V.153, №1. -Pp. 78-82.

112. Freeman B.A., Crapo J.D. Biology of disease: free radicals and tissue injury // Lab Invest. 1982. - V.47, №5. - Pp. 412-426.

113. Fridovich I., Superoxide radical and superoxide dismutases // Annu Rev Biochem. 1995. - V.64. - Pp. 97-112.

114. Friedmann H., Lubart R., Laulicht I., Rochkind S. A possible explanation of laser-induced stimulation and damage of cell cultures // J PhotochemPhotobiol B. 1991. - V.ll, №1.-Pp. 87-91.

115. Frost J.A., Swantek J.L., Stippec S, Yin M.J., Gaynor R., Cobb M.H. Stimulation of NFkappa В activity by multiple signaling pathways requires PAK1 //J Biol Chem. 2000. - V.275, №26. - Pp. 19693-19699.

116. Fukuda H., Paredes S., Batlle A.M. Tumor-localizing properties of porphyrins. In vitro studies using the porphyrin precursor, aminolevulinic acid, in free and liposome encapsulated forms // Drug Des Deliv. 1989. -V. 5, №2.-Pp. 133-139.

117. Furchgott R.F. Vasodilatation, vascular smooth muscle, peptides and endothelium. // Ed. Vanhoutte P.M.; New York: Raven press, 1998. Pp. 408-411.

118. Gamaley I.A., Klyubin I.V. Roles of reactive oxygen species: signalling and regulation of cellular functions // Inter Rev Cytol. V.188. -1999.-Pp. 203-255.

119. Giulivi C. Functional implications of nitric oxide produced by mitochondria in mitochondrial metabolism // Biochem J. 1998. - V. 332, Pt3.-Pp. 673-679.

120. Gordon S.A., Surrey К. Red and far-red light action on oxidative phosphorylation // Radiant. Res. 1960. - V.12. - Pp. 325-339.

121. Green L.C., Wagner D.A., Glogowski J., Skipper P.L., Wishnok J.S., Tannenbaum S.R. Analysis of nitrate, nitrite, and 15N. nitrate in biological fluids // Anal Biochem. 1982.- V.126,№1.- Pp. 131-138.

122. Grisham M.B., Jourd'Heuil D., Wink D.A. Nitric oxide. I. Physiological chemistry of nitric oxide and its metabolites: implications in inflammation // Am J Physiol. 1999. - V.276, №2, Pt 1. - Pp. G315-321.

123. Grune Т., Reinheckel Т., Davies K. J. Degradation of oxidized proteins in K562 human hematopoietic cells by proteasome // J Biol Chem. 1996. - V.271, №26. - Pp. 15504-15509.

124. Grune Т., Reinheckel Т., Joshi M., Davies K. J. Proteolysis in cultured liver epithelial cells during oxidative stress. Role of the multicatalytic proteinase complex, proteasome // J Biol Chem. 1995. - V.270, №5. - Pp. 2344-2351.

125. Hall D.M., Buettner G.R., Matthes R.D., Gisolfi C.V. Hyperthermia stimulates nitric oxide formation: electron paramagnetic resonance detection of NO-heme in blood // J Appl Physiol. 1994. - V.77, №2. - Pp. 548-553.

126. Hancock J.T., Desikan R., Neill S.J. Role of reactive oxygen species in cell signalling pathways // Biochem Soc Trans. 2001. - V.29, Pt 2. - Pp. 345-350.

127. Hillegersberg van R., Kost W.J., Wilson J.H.P. Current Status of Photodynamic Therapy in Oncology // Drugs. 1994. - V.48, №4. - Pp. 510-524.

128. Hunt D.W., Jiang H.J., Levy J.G., Chan A.H. Sensitivity of activated murine peritoneal macrophages to photodynamic killing with benzoporphyrin derivative // Photochem Photobiol. 1995. - V. 61, №4. -Pp. 417-421.

129. Iijima K., Shimoyama N., Shimoyama M., Mizuguchi T. Effect of low-power He-Ne laser on deformability of stored human erythrocytes // J Clin Laser Med Surg. 1993.-V. 11, №4.-Pp. 185-189.

130. Ishikawa S., Sasaki Y., Hirota M., Okumura N., Furihata K., Tozuka M., Katsuyama T. Determination of neutrophil function by measuring superoxide production with whole blood flow cytometry // Rinsho Byori. -1997.-V. 45, №11.-Pp. 1057-1061.

131. Jori G., Schindl L., Schindl A., Polo L. Novel approaches towards a detailed control of the mechanism and efficiency of photosensitized processes in vivo // J Photochem Photobiol A. 1996. - V.102, №1. - Pp. 101-107.

132. Jungi T.W., Adler H., Adler В., Thony M., Krampe M., Peterhans E. Inducible nitric oxide synthase of macrophages. Present knowledge and evidence for species-specific regulation // Vet Immunol Immunopathol. -1996. V.54, №1-4. - Pp. 323-330.

133. Каш T.I. Photobiology of low-power laser effects // Health Phys. -1989. V.56, №5. - Pp. 691-704.

134. Karu T.I. Photobiology of low-power laser therapy // Chur, London, Paris, New York: Harwood Academic Publishers, 1989. 185 p.

135. Karu T.I. Primary and secondary mechanisms of action of visible to near-IR radiation on cells // J Photochem Photobiol B. 1999. - V.49, №1. -Pp. 1-17.

136. Karu T.I., Kalendo G.S., Letokhov V.S., Lobko V.V. Biostimulation of HeLa cells by low intensity visible light. II. Stimulation of DNA and RNA synthesis in a wide spectral range // U Nuovo Climento D. 1984. -V.3.-Pp. 309-318.

137. Karu T.I., Kalendo G.S., Letokhov V.S., Lobko V.V. Biostimulation of HeLa cells by low intensity visible light. III. Stimulation of nucleic acid synthesis in plateau phase cells // II Nuovo Climento D. 1984. - V.3. - Pp. 319-325.

138. Kato M., Shinizawa K., Yoshikawa S. Cytochrome oxidase is a possible photoreceptor in mitochondria // Photobiochem Photobiophys. -1981. V.2. -Pp. 263-269.

139. Klebanov G.I., Teselkin Yu.O., Babenkova I.V., Bashkujeva T.Yu, Chichuk T.V., Vladimirov Yu.A. Low-power laser irradiation induces leukocytes priming // Gen Physiol Biophys. V.l7, №4. - 1998. - Pp. 365376.

140. Klotz L.O., Briviba K., Sies H. Singlet oxygen mediates the activation of JNK by UVA radiation in human skin fibroblasts // FEBS Lett. 1997. -V.408,№3.-Pp. 289-291.

141. Kolarova H., Ditrichova D., Wagner J. Penetration of the laser light into the skin in vitro // Lasers Surg Med. 1999. - V.24, №3. - Pp. 231-235.

142. Krammer В., Uberriegler K. In-vitro investigation of ALA-induced protoporphyrin IX // J Photochem Photobiol B. 1996. - V. 36, №2. - Pp. 121-126.

143. Kumura E., Yoshimine Т., Tanaka S., Hayakawa Т., Shiga Т., Kosaka H. Nitrosyl hemoglobin production during reperfusion after focal cerebral ischemia in rats // Neurosci Lett. 1994. - V. 177, №1-2. - Pp. 165-7.

144. Lam T.S., Abergel R.P., Castel J.C., Dwyer R.M., Uitto J. Biostimulation of collagen synthesis in human skin fibroblast cultures // Lasers Life Sci. 1986. - V.l, № 1. - Pp. 61 -77.

145. Legrand-Poels S., Schoonbroodt S., Matroule J.Y., Piette J. Nf-kappa B: an important transcription factor in photobiology // J Photochem Photobiol B. 1998. - V.45, №1. - Pp. 1-8.

146. Li N., Karin M. Is NF-kappaB the sensor of oxidative stress? // Faseb J. 1999. -V. 13, №10. - Pp. 1137-1143.

147. Lubart R., Friedmann H., Sinyakov M., Cohen N., Breibart H. Changes in calcium transport in mammalian sperm mitochondria and plasma membranes // Lasers Life Sci. 1997. - V.21, №5. - Pp. 493-499.

148. Lubart R., Malik S., Rochkind S., Fisher T. A possible mechanism of low level laser-living cell interaction // Laser Ther. 1990. - V.2, №1. - Pp. 65-68.

149. Lucas C. Efficacy of low level laser treatment in the management of chronic wounds. Amsterdam-Enschede: PrintPartners Ipskamp, 2001. -192 p.

150. MacMicking J., Xie Q.W., Nathan C. Nitric oxide and macrophage function // Annu Rev Immunol. 1997. - V. 15. - Pp. 323-350

151. Malik Z., Lugaci H. Destruction of erythroleukaemic cells by photoactivation of endogenous porphyrins // Br J Cancer. 1987. - V. 56, №5.-Pp. 589-595.

152. Marks R., Palma de F. Clinical efficacy of low power laser therapy in osteoarthritis // Physiother Res Int. 1999. - V.4, №2. - Pp. 141-57.

153. Matsuo H, Morimoto Y., Arai T, Wada M, Higo R, Tabata S, Nakai K, Kikuchi M. Heat and photolytic nitric oxide are essential factors for light-induced vascular tension changes // Lasers Med Sci. 2000 - V.l5, №3. - Pp. 181-187.

154. Michel T, Feron O. Nitric oxide synthases: which, where, how, and why? // J Clin Invest. 1997. - V.100, №9. - Pp. 2146-2152.

155. Misko T.P, Schilling R.J, Salvemini D, Moore W.M, Currie M.G. A fluorometric assay for the measurement of nitrite in biological samples // Anal Biochem. 1993. - V.214, № 1. - Pp. 11 -16.

156. Morimoto Y, Arai T, Kikuchi M, Nakajima S, Nakamura H. Effect of low-intensity argon laser irradiation on mitochondrial respiration // Lasers Surg Med. 1994. - V.l5, №2. - Pp. 191-199.

157. Morrone G., Guzzardella G.A., Tigani D., Torricelli P., Fini M., Giardino R., Biostimulation of human chondrocytes with Ga-Al-As diode laser: 'in vitro' research // Artif Cells Blood Substit Immobil Biotechnol. -2000. V.28, №2. - Pp. 193-201.

158. Nishikimi M., Appaji N., Yagi K. The occurrence of superoxide anion in the reaction of reduced phenazine methosulfate and molecular oxygen // Biochem Biophys Res Commun. 1972. - V. 46, №2. - Pp. 849-854.

159. Ogura Т., Yoshikawa S., Kitagawa T. Resonance Raman study on photoreduction of cytochrome с oxidase: distinction of cytochromes a and a3 in the intermediate oxidation states // Biochemistry. 1985. - V.24, №26. -Pp. 7746-7752.

160. Pass H.I. Photodynamic Therapy in Oncology. Mechanism and Clinical Use. // J Natl Cancer Inst. 1993. - V.85, №6. - Pp. 443-456.

161. Roebuck K.A. Regulation of interleukin-8 gene expression // J Interferon Cytokine Res. 1999. - V.19, №5. - Pp. 429-38.

162. Schindl A., Heinze G., Schindl M., Pernerstorfer-Schon H., Schindl L. Systemic effects of low-intensity laser irradiation on skin microcirculation in patients with diabetic microangiopathy // Microvasc Res. 2002. - V.64, №2. - Pp. 240-246.

163. Schindl A., Merwald H., Schindl L., Kaun C., Wojta J. Direct stimulatory effect of low-intensity 670 nm laser irradiation on human endothelial cell proliferation // Br J Dermatol. 2003. - 148, №2. - Pp. 334366.

164. Schulze-Osthoff K., Los M., Baluerle P. Redox signalling by transcription factors NF-kB and API in lymphocytes // Biochem Pharmacol. V.50, №6. - 1995. - Pp. 735-741.

165. Sekkat C., Dornand J., Gerber M. Oxidative phenomena are implicated in human T-cell stimulation // Immunology. 1988. - V. 63, №3. -Pp. 431-437.

166. Simon A.R., Rai U., Fanburg B.L., Cochran B.H. Activation of the JAK-STAT pathway by reactive oxygen species // Am J Physiol. 1998. -V. 275, №6 Pt 1. -Pp. C1640-1652.

167. Sundaresan M., Yu Z.X., Ferraris V.J., Irani K.,Finkel T. Requirement for generation of H202 for platelet-derived growth factor signal transduction // Science. 1995. - V. 270, №5234. - Pp. 296-299.

168. Symons M.C., Rowland I.J., Deighton N., Shorrock K., West K.P. Electron spin resonance studies of nitrosyl haemoglobin in human liver, colon and stomach tumour tissues // Free Radic Res. 1994. - V.21, №4. -Pp. 197-202.

169. Thannickal V.J., Fanburg B.L. Reactive oxygen species in cell signaling // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2000. - V.279, №6. -Pp. L1005-L1028.

170. Tibballs J., The role of nitric oxide (formerly endothelium-derived relaxing factor-EDRF) in vasodilatation and vasodilator therapy // Anaesth Intensive Care. 1993. - V.21, №6. - Pp. 759-773.

171. Tobi S.E., Paul N., McMillan T.J. Glutathione modulates the level of free radicals produced in UVA-irradiated cells // J Photochem Photobiol B. -2000. V.57, №2-3. - Pp. 102-112.

172. Torricelli P., Giavaresi G., Fini M., Guzzardella G.A., Morrone G., Carpi A., Giardino R. Laser biostimulation of cartilage: in vitro evaluation // Biomed Pharmacother. 2001. -V.55, №2. - Pp. 117-120.

173. Turner J., Hode L. Laser therapy in dentistry and medicine // Grangesberg: Prima Books AB, 1996. 237 p.

174. Venturini C.M., Palmer R.M., Moncada S. Vascular smooth muscle contains a depletable store of a vasodilator which is light-activated and restored by donors of nitric oxide // J Pharmacol Exp Ther. 1993. - V. 266, №3. - Pp. 1497-1500.

175. Verkhovsky M.I., Morgan J.E. Wikstrom M. Redox transitions between oxygen intermediates in cytochrome-c-oxydase // Proc Acad Sci USA. 1996. - V.93, №22. - Pp. 12235-12339.

176. Vint I.A., Foreman J.C., Chain B.M. The gold anti-rheumatic drug auranofin governs T cell activation by enhancing oxygen free radical production // Eur J Immunol. 1994. - V. 24, №9. - Pp. 1961-1965.

177. Viscor G., Palacios L., Palvoeque J. Effect of He-Ne laser irradiation of blood in vitro on erythrocye mecrorheological properties // Laser Life Sci.- 1989.-V.3,№1.-Pp. 31-36.

178. Wennmalm A., Benthin G., Petersson A.S. Dependence of the metabolism of nitric oxide (NO) in healthy human whole blood on the oxygenation of its red cell haemoglobin // Br J Pharmacol. 1992. - V. 106, №3. - Pp. 507-508. (237)

179. Wiegand-Steubing R., Louie A.Y., Yamamoto R.S., Berns M.W. Low power laser irradiation of HeLa cells and monocytes // Lasers Life Sci. -1990. V.3, №4. - Pp. 217-227.

180. Xia Y., Zweier J.L. Superoxide and peroxynitrite generation from inducible nitric oxide synthase in macrophages // Proc Natl Acad Sci USA.- 1997. V.94, №13. - Pp. 6954-6958.

181. Yu H.S., Chang K.L., Yu C.L., Chen J.W., Chen G.S. Low-energy helium-neon laser irradiation stimulates interleukin-1 alpha and interleukin8 release from cultured human keratinocytes // J Invest Dermatol. 1996. -V.107, №4.-Pp. 593-596.

182. Yu W., Nairn J.O., McGowan M., Ippolito K., Lanzafame J. Photomodulation of oxidative chain enzymes in rat liver mitochondria // J Photochem Photobiol. 1997. - V.66, №6. - Pp. 866-871.

183. Zeller J.M., Rothberg L., Landay A.L. Evaluation of human monocyte oxidative metabolism utilizing a flow cytometric assay // Clin Exp Immunol. 1989. - V. 78, №1. - Pp. 91-96.