Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Состояние корпускулярного сектора крови при дегидратации организма

ВАК РФ 03.00.13, Физиология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Титовский, Александр Викторович

ВВЕДЕНИЕ.

2 Глава I. Обзор литературы.

3 Глава 11. Материалы и методы исследования.

4 Глава III. Результаты собственных исследований

3.1 Состояние реологических, деформационных и отдельных гематологических показателей крови контрольной группы животных

3.1.1 Реологические показатели.

3.1.2 Гематологические показатели.

3.1.2.1 Гематологические показатели цельной крови.

3.1.2.2 Гематологические показатели эритроцитов, разделенных соответственно возрасту.

3.1.3 Деформируемость молодых, зрелых и старых эритроцитов

3.1.3.1 Различия в пакуемости эритроцитов.

3.1.3.2 Деформируемость клеток в потоке при осаждении сильным гравитационным полем.

3.2 Состояние реологических, деформационных и отдельных гематологических показателей крови на 3 сутки безводного содержания

3.2.1 Реологические показатели.

3.2.2 Гематологические показатели.

3.2.2.1 Гематологические показатели цельной крови.

3.2.2.2 Гематологические показатели эритроцитов, разделенных соответственно возрасту.

3.2.3 Деформируемость молодых, зрелых и старых эритроцитов

3.2.3.1 Различия в пакуемости эритроцитов.

3.2.3.2 Деформируемость клеток в потоке при осаждении сильным гравитационным полем.

3.3 Состояние реологических, деформационных и отдельных гематологических показателей крови на 6 сутки безводного содержания

3.3.1 Реологические показатели.

3.3.2 Гематологические показатели.

3.3.2.1 Гематологические показатели цельной крови.

3.3.2.2 Гематологические показатели эритроцитов, разделенных соответственно возрасту

3.3.3 Деформируемость молодых, зрелых и старых эритроцитов

3.3.3.1 Различия в пакуемости эритроцитов.

3.3.3.2 Деформируемость клеток в потоке при осаждении сильным гравитационным полем.

3.4 Состояние реологических, деформационных и отдельных гематологических показателей крови на 10 сутки безводного содержания

3.4.1 Реологические показатели.

3.4.2 Гематологические показатели.

3.4.2.1 Гематологические показатели цельной крови.

3.4.2.2 Гематологические показатели эритроцитов, разделенных сооветственно возрасту.

3.4.3 Деформируемость молодых, зрелых и старых эритроцитов

3.4.3.1 Различия в пакуемости эритроцитов.

3.4.3.2 Деформируемость клеток в потоке при осаждении сильным гравитационным полем.

4. Глава IV. Обсуждение результатов.

5. Выводы.

6. Указатель литературы.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Состояние корпускулярного сектора крови при дегидратации организма"

Исследование состояний водного гомеостаза в норме и экстремальных условиях является одной из актуальных задач биологии и медицины.

Распространенной формой нарушения водного обмена является дегидратация (Магомедов М.А.Д979; Тихомиров А.Н.Д992). Синдром дегидратации связан с ограничением поступления воды в организм в условиях аридных зон, ряда заболеваний, изменении барометрического давления на больших и средних высотах, сгонке веса спортсменами (Черняков И.Н., Максимов И.В.,1967; Кирш К. и др.,1977; Левченко К.П. и др.,1978; Атаева Э.Г.,1989; Сарыева Т.Н. и др.,1990).

Поддержание жидкостного гомеостаза в организме осуществляет система микроциркуляции (Куприянов В.В., 1969,1975; Чернух A.M., 1975). В большинстве исследований по данной проблеме интерес ученых был направлен на изучение морфофункциональных закономерностей преобразований лимфатических и кровеносных микрососудов (Магомедов М.А., 1979; Тихомиров А.Н.,1992), изменений реологических свойств крови, водного баланса и перераспределения жидкости между водными секторами организма (Гудимов С.В.,1996; Крутова Л.В.,1997).

В то же время, практически отсутствуют комплексные исследования состояния деформируемости эритроцитов на различных этапах дегидратации организма.

Продолжительность жизни эритроцита в системе циркуляции ограничена примерно 120 днями (Berlin N.I., Berk P.D.,1975) за которые клетка совершает порядка 1,7?104 кругов по сосудам (Waugh R.,1992). Такие условия предъявляют высокие требования к стабильности и пластичности эритроцита (Chasis J. et. al.,1986). Физиологический возраст эритроцита является причиной изменений структуры мембраны (Jain J., Höchstem P., 1980), клеточной геометрии и цитоплазмы (Nash G., Meiselman Н.,1990; Stuart J., Nash G.,1990), что в итоге ведет к уменьшению объема клетки, содержания воды, росту ее плотности и проявляется в ухудшении деформируемости старых эритроцитов по сравнению с молодыми и зрелыми (Nash G., Meiselman Н.,1981,1983; Marvel J., 1990; Waugh R., 1992; Гудимов С.В.,1996). Исследование особенностей деформируемости на этапах дегидратации важно для понимания процессов адаптивных преобразований, идущих в разных возрастных группах клеток.

В настоящее время актуальна разработка вопросов, связанных с изучением качественной и количественной взаимосвязи структурных компонентов эритроцита в норме и при экстремальных условиях. Разработка новых конструкций приборов, позволяет осуществлять качественный анализ морфофункциональных свойств эритроцитов в норме, в возрастном аспекте, а также отслеживать изменения при экстремальных состояниях и патологии (Chien S.,1977; Corry W., Meiselman H.,1978; Stuart J., Nash G.,1990; Baskurt О., Meisejman H., 1996; Lindmarc К.,1996 ).

В специальной литературе недостаточно широко освещены вопросы, затрагивающие морфофункциональные преобразования происходящие с эритроцитами при нарушениях водного баланса, в том числе при дегидратации. Фрагментарны данные характеризующие деформируемость разных по возрасту эритроцитов в условиях водного дефицита.

Анализ состояния проблемы деформационных свойств эритроцитов при обезвоживании предопределил настоящее исследование.

Цель работы: комплексное исследование деформируемости эритроцитов при дегидратации. Задачи исследования:

1. Определить роль деформационных свойств корпускулярного звена в изменениях вязкости цельной крови при дегидратации.

2. Изучить особенности преобразований объема и СКГЭ молодых, зрелых и старых эритроцитов по мере нарастания водного дефицита.

3. Исследовать деформационные свойства молодых, зрелых и старых эритроцитов на различных стадиях адаптации организма к условиям безводного содержания. Установить характер и направленность адаптивных перестроек деформируемости в возрастных группах эритроцитов на этапах дегидратации.

4. Апробировать различные методы изучения деформируемости молодых, зрелых и старых эритроцитов на модели дегидратации.

Научная новизна исследования

Впервые на основе комплекса морфофункциональных, гематологических, биофизических и биохимических методов исследования выявлен характер изменений реологических свойств крови, внутриклеточных и деформационных свойств молодых, зрелых и старых эритроцитов в условиях нарастания водного дефицита.

Получены новые сведения об особенностях функциональных перестроек молодых, зрелых и старых эритроцитов на фоне обезвоживания. В работе впервые применены новые методики, позволившие проанализировать деформируемость возрастных групп эритроцитов на уровне клетки и ее структурных элементов. Определена зависимость деформируемости от морфофункциональных преобразований структуры эритроцитов вызванных обезвоживанием. Расшифрована роль каждого клеточного компонента в балансе факторов, определяющих деформируемость возрастных групп на стадиях дегидратации.

Теоретическая и практическая значимость работы определяется новизной методического подхода с использованием комплекса современных оригинальных методов в исследовании реологии системы крови. Материалы диссертации являются оригинальными и помогают расшифровке микрососудистых и реологических механизмов патогенеза дегидратации. Полученные данные раскрывают неизвестные ранее морфофункцинальные признаки и механизмы адаптивной перестройки эритроцитов разного возраста в условиях водного дефицита. Мобилизация защитных ресурсов при дегидратации осуществляется в закономерной последовательности в соответствие с градиентами лабильности системы крови и ее корпускулярного сектора. Выявленные в процессе исследования закономерности важны для разработки новых подходов к коррекции изменений, развивающихся на этапах обезвоживания.

Апробированные в работе методики можно рекомендовать использовать в практике для оценки деформационных свойств эритроцитов, а полученную с их помощью информацию для преподавания соответствующих разделов биологии, физиологии, гематологии и в качестве основы для более глубоких исследований в данном направлении. 8

Положения работы, выносимые на защиту:

1. Развитие водного дефицита на протяжение 3, 6 и 10 дней опыта сопряжено с ростом вязкости цельной крови, преимущественно за счет изменений в корпускулярном секторе. Величина сдвигов вязкости цельной крови увеличивается при пролонгировании обезвоживания.

2. В условиях дегидратации наблюдается прогрессирующее снижение клеточных объемов и увеличение СКГЭ. При одинаковой направленности, глубина клеточных изменений на этапах обезвоживания проявляется по-разному в группах молодых, зрелых и старых эритроцитов.

3. Изменение деформируемости молодых, зрелых и старых эритроцитов на этапах дегидратции инициировано функциональными перестройками протекающими в клеточных структурах. Увеличенная деформируемость молодых, зрелых и старых эритроцитов на раннем и промежуточном этапах направлена на компенсацию сниженной текучести цельной крови. Ухудшение деформируемости эритроцитов этих же возрастных групп на 10 сутки обезвоживания отражает срыв данного компенсаторного механизма.

Заключение Диссертация по теме "Физиология", Титовский, Александр Викторович

Результаты исследования подтвердили высокую чувствительность предложенного нами метода, позволившего проследить не только изменение деформационных свойств эритроцитов, но и получить качественную оценку факторов, определяющих деформируемость молодых, зрелых и старых эритроцитов.

В норме эритроциты животных обеспечены 30-50% излишками мембранной поверхности в сравнении с площадью поверхности, необходимой для заключения их объема (Левтов В.А.,1982; Stuart J., Nash G.,1990). Такая морфология позволяет клетке испытывать значительные вытягивающие и изгибные деформации.

Применение нами метода высокоскоростного осаждения эритроцита в потоке позволяет получать уникальные вытянутые формы фиксированных эритроцитов всех возрастов. Микроскопия этих форм дает прямую информацию о величинах деформируемости клеток разных возрастов на этапах дегидратации. Состояние механических свойств эритроцитов на этапах дегидратации мы отслеживали по коэффициенту деформируемости (к).

Деформируемость клеток всех возрастных групп на этапах дегидратации (как и в контроле) сохраняет выраженную возрастную зависимость. Динамику к эритроцитов разных возрастов на этапах дегидратации можно охарактеризовать как волнообразную (Диагр.28).

Тенденцию к увеличению деформируемости для эритроцитов всех возрастных групп на начальном этапе дегидратации мы связываем с улучшением вязкоэластических свойств мембран клеток, поскольку влияния факторов объема и формы на данном этапе незначительны.

Промежуточный этап дегидратации выявил разнонаправленные изменения к. Тенденция к увеличению деформируемости молодых эритроцитов свидетельствует о более успешной адаптации этой группы клеток к дегидратации. Тенденции к снижению к зрелых и старых клеток мы связываем с увеличением концентрации гемоглобина.

Мы склонны интерпретировать снижение к молодых эритроцитов на 10 сутки дегидратации, как срыв адаптивных механизмов отмеченных на предыдущих этапах дегидратации. Отмечена тенденция к росту к зрелых. Увеличение к старых эритроцитов на 4% (Р<0.05) и на 3% (Р<0.05) по отношению к 6 суткам, связано с положительными адаптивными преобразованиями клеток к действию дегидратации (Диагр.28).

Сравнение отдельных м орфометрических показателей (длины и ширины эритроцитов) позволяет получить информацию о целлюлярных изменениях молодых, зрелых и старых эритроцитов на этапах дегидратации.

Определение деформируемости клеток по изменениям показателя длины позволяет отметить увеличение длины старых эритроцитов на начальном этапе дегидратации на 6% (Р<0.05). Величины молодых и старых эритроцитов обозначит!и тенденцию к увеличению.

Промежуточный этап дегидратации вызывает адаптивные целлюлярные изменения в результате которых длины зрелых и старых эритроцитов увеличились на 5% (Р<0.05) и 9% (Р<0.01), что позволило этим группам клеток по своим свойствам вплотную приблизиться к молодым.

Продление дегидратации (10 сутки) вызывает срыв адаптационных механизмов во всех возрастных группах. Длины молодых и зрелых уменьшены на 6% и 6% (Р<0.05), длина зрелых на 9% (Р<0.001) (Диагр.28).

В работе Nash G., Meiselman Н. (1991), дегидратированные ионофорой К+ эритроциты человека с высокой СКГЭ, обладали неизменной мембранной ригидностью, но сниженной скоростью восстановления формы. Применение осмотического набухания не привело скорость восстановления формы к нормальным величинам, что свидетельствует о гемоглобин - независимом увеличении вязкоэластичности мембраны старых клеток. На этом основании авторы сделали предположение о концентрационной

Диаграмма 28. Изменения морфометрических показателей и деформируемости молодых, зрелых и старых эритроцитов на этапах дегидратации

ДЛИНА ЭРИТРОЦИТОВ

10,9 10,7 |Ю,5 з

X |10.1 9,9

9,7

9,5

И 1 \ т * - к - \ \л4- В \ X— V -1

1--Г с/ <о ч* молодые —зрелые - -А - старые

6.7

6,6 6,5 г 6,4 < 6,3 ¡6,2 ¡6,1 6 5,9

5.8

ШИРИНА ЭРИТРОЦИТОВ

1 .

Т, :Л

К щ Т 1 * ■ + 1 1 \ \ ' х V 1 4 т

1 >

Г

1— 1 1 1 ^ Л ч* молодые —зрелые - -к - старые х КОЭФФИЦИЕНТ К- ДЕФОРМИРУЕМОСТИ

О 175 молодые —зрелые - -А - старые зависимости между гемоглобином и клеточной мембраной вызывающей увеличение вязкости мембраны при МСНС свыше физиологической нормы.

Анализ результатов на раннем и промежуточном этапах дегидратции свидетельствует о независимом от концентрации гемоглобина увеличении мембранной вязкоэластичности в группах молодых, зрелых и старых эритроцитов. Вязкоэластичность мембраны увеличивается независимо от постоянного снижения объема и роста СКГЭ.

Снижение длин эритроцитов на 10 сутки дегидратации вызвано увеличением СКГЭ в эритроцитах до концентраций, при которых возможно образование сшивок белков мембраны с гемоглобином. Nash G., Meiselman Н. (1991), показали, что до СКГЭ равной 43 г/дл., мембрана эритроцитов проявляет независимость своих вязкоэластических свойств от концентрации гемоглобина, превышение этого уровня вызывает взаимодействие гемоглобина с клеточной мембраной вплоть до сшивок мембраны с гемоглобином при СКГЭ равной 52 г/дл.

Уровень СКГЭ клеток (40 г/дл.), полученный в нашем исследовании на 10 сутки дегидратации близок к уровню (43 г/дл.) отмеченному Nash G., Meiselman Н. (1991), что свидетельствует о влиянии вязкого содержимого на снижение длин клеток всех возрастов. Увеличение осмоляльности способствовало дополнительным изменениям структуры мембраны.

Дегидратация не вызывала значительных изменений ширины молодых клеток. Для зрелых и старых эритроцитов тенденция к увеличению на раннем этапе дегидратации сменилась увеличением на промежуточном этапе на 6% и 8% (Р<0.01) (Диагр.28). При продлении сроков обезвоживания (10 сутки) наблюдается уменьшение величин клеточной ширины для зрелых и старых эритроцитов на 7% и 12% (Р0.001).

151

Анализ приведенных фактов позволяет констатировать, что дегидратация вызывает адаптивные внутриклеточные изменения в группах зрелых и старых эритроцитов на раннем и промежуточном этапах обезвоживания. Увеличение длины связано с увеличением вязкоэластичности мембран зрелых и старых клеток, а рост ширины на этих этапах свидетельствует о значительном увеличении концентрации гемоглобина.

Использование высокоскоростного осаждения эритроцитов, позволило отслеживать изменения деформируемости эритроцитов разных фракций на этапах дегидратации, что свидетельствует о высокой степени чувствительности этого метода.

1. Алиментарная дегидратация животных на протяжение 3, 6 и 10 дней опыта вызывает рост вязкости цельной крови преимущественно за счет изменений в корпускулярном секторе.

2. Нарастание водного дефицита сопровождается прогрессирующим снижением клеточных объемов и увеличением СКГЭ. При одинаковой направленности глубина к леточных изменений на разных этапах обезвоживания проявляется по-разному группах молодых, зрелых и старых эритроцитов.

На 3 сутки обезвоживания на фоне незначительного уменьшения клеточных объемов эритроцитов всех возрастов выявлено значительное увеличение в них ССГЭ и СКГЭ.

На 6 сутки дегидратации уменьшение клеточных объемов протекает наиболее выраженно в группах зрелых и старых клеток. Эти изменения создают условия для роста ССГЭ и СКГЭ.

На обезвоживание организма в течение 10 суток, эритроциты отвечают дальнейшим снижением клеточных объемов, при этом более глубокие изменения отмечены в группе молодых клеток. СКГЭ, продолжая увеличиваться, достигла наивысших значений для всех возрастных групп.

3. Изменения объема молодых, зрелых и старых эритроцитов при дегидратации оказывают влияние на их деформируемость.

4. Применение слабых гравитационных воздействий (350g) к нативным и фиксированным эритроцитам позволяет вскрывать их тонкие возрастные различия на этапах дегидратации. Установлено доминирующее влияние на деформируемость объема нативных эритроцитов во взве -сях с низкой концентрацией клеток и СКГЭ во взвесях со средней

153 концентрацией клеток.

5. Установлена однонаправленность изменений деформационных свойств во всех возрастных группах эритроцитов на этапах дегидратации (повышение на 3 и 6 сутки и снижение на 10 сутки) под влиянием сильных гравитационных воздействий (26000g).

6. На раннем и промежуточном этапах дегидратации деформируе -мость молодых, зрелых и старых эритроцитов улучшается, что является компенсаторным механизмом в ответ на увеличение гематокритного числа и вязкости цельной крови.

7. Снижение объема эритроцитов во всех возрастных группах до 10% от исходных величин сопровождается улучшением их деформируемости. Дальнейшее уменьшение объемов клеток всех возрастов приводит к резкому снижению деформ ируемости.

8. На 10 сутки обезвоживания значительное увеличение СКГЭ, снижение объема и вязкоэластичности мембран молодых, зрелых и старых эритроцитов существенно снижает их деформационные свойства, что отражает срыв компенсаторных механизмов.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Титовский, Александр Викторович, Ярославль

1. Атаева Э.Г., Бондарев В.Н, Ханамова К.Ч. и др. Оценка ОЦК при различных видах дегидратации у детей раннего возраста // Здравоохр. Туркменистана.-1989.-Ш.-СС.15-17.

2. Атуллаханов Ф.И., Витвицкий В.М., Кипяткин А.Б. и др. Регуляция объема эритроцитов человека. Роль калиевых каналов, активируемых кальцием. //Биофизика,- 1993,- Т.38,- Вып.5.- СС.809-821.

3. Балуда В.П., Балуда М.В., Деянов И.И. и др. Физиология системы гемостаза. М.:.-1995.-243с.

4. Гембицкий Е.В., Новожилов Г.И., Положенцев С.Д. Тепловое истощение вследствие обезвоживания организма. // Военно-медицинский жур-Han.-1986.-N7.-CC.25-30.

5. Грищенко В.И., Межидов С.Х., Моисеев В.А. и др. Влияние температуры и концентраций различных веществ на микровязкость цитозоля эритроцитов. //Биофизика.-1995.-Т.40.-Вып.1.-СС. 106-109.

6. Гудимов C.B. Состояние реологических свойств крови в процессе обезвоживания организма. Автореф. дисс. канд. биол. наук.-Ярославль, 1996.

7. Доссон Р., Эллиот Д., Эллиот У. и др. Справочник Биохимика. М.: Мир.-1991.-544с.

8. Джонсон П. Периферическое кровообращение. М.: Медицина, 1982.-440с.

9. Ивенс И., Скейлак Р. Механика и термодинамика биологических мембран. М.: Мир.-1982 -304с.

10. Ю.Каро К., Педли Т., Шротер Р., Сид У. Механика кровообращения. М.: Мир.-1981.-624с.

11. П.Козловская Л.В., Мартынова М.А. Учебное пособие по клиническим лабораторным методам исследования (с элементами программирования).-М. :Медицина. -1975.-3 52с.

12. Крутова JI.В. Изменение водного гомеостаза и гематологических показателей при дегидратации организма. Автореф. дисс. канд. биол. наук. -Ярославль, 1997.

13. Куприянов В.В., Магомедов М.А., Тихомиров А.Н. Состояние микроциркуляторного русла брыжейки при экспериментальной дегидратации. //Арх. анатом.-1979.-Т.77.-Вып.8.-СС.5-13.

14. Лапшина Е.А., Заводник И.Б. Термостабильность белков эритроцитар-ных мембран при варьировании ионной силы и состава среды. // Биофи-зика.-1994.-Т.39.-Вып.6.-СС. 1015-1020.

15. Левтов В.А., Ригирер С.А., Шадрина Н.Х. Реология Крови. М.: Медицина, 1982.-270С.

16. Магомедов М.А. Динамика микроциркуляторного русла при экспериментальной дегидратации организма. / Автореф. дисс. канд. мед. наук,-Москва,1979.

17. Муравьев A.A. Гемореологические профили при физической активности и повышенном артериальном давлении. Автореф. дисс. канд. мед. наук.-Ярославль, 1999.

18. Орлов С.Н., Прокудин Н.И., Ряжский Г.Г. и др. // Биологические мембраны." 1988.-Т.5,- N10,- С. 1030.

19. Савицкий H.H. Биохимические основы кровообращения и клинические методы изучения гемодинамики.-Ленинград.-1963.

20. Сарыева Т.Н., Бондарев В.Н., Ханамова К.Ч. и др. Оценка динамики ОЦК при обезвоживании у новорожденных // Здраввохр. Туркмениста-на.-1990,- N3.-С.22-24.

21. Смирнов И.Ю., Титовский A.B., Сулоев Е.П. Изменения показателя ге-матокрита по электропроводности крови. // Современные проблемы естествознания. Ярославль. - 1997.-СС. 147-150.

22. Титовский A.B. Хроно-гравитационный метод изучения деформируемости эритроцитов. // Современные проблемы естествознания. Ярославль. - 1997.-СС.165-168.

23. Титовский A.B. Хроно-гравитационный метод изучения деформируемости эритроцитов. / Тез. конф. "Актуальн. вопр. физиол. и теории физич. культуры." Ярославль. -1997.-СС.48-50.

24. Титовский A.B. Измерение деформируемости эритроцитов в потоке под влиянием гравитационных сил. / Мат. Междунар. Конфер. по Микро-циркуляции.-Москва-Ярославль.-1997.-СС.205-206.

25. Титовский A.B., Проскурина И.К. Фракционный состав гемоглобинов крыс при дегидратации. / Тезисы докладов 6-й концеренции молодых ученых,- Ярославль.-1998.-СС.349-353.

26. Титовский A.B. Микрореологические показатели деформируемости эритроцитов крыс на этапах дегидратации. / Сборн. мат. межвуз. научн. конф. посвящ. 10-летию каф. мед.-биол. основ спорта.-Ярославль,-1999.-СС.50-51.

27. Титовский A.B., Левин В.Н. Влияние возраста эритроцитов на деформируемость при дегидратации. / Мат. II Междунар. Конфер. по Микро-циркуляции.-Москва-Ярославль.-1999.-СС.229-230.

28. Титовский A.B., Крутова Л.В. Деформируемость молодых, зрелых и старых эритроцитов в потоке при дегидратации. / Тез. межвуз. научн. конф. "Биология, медицина, спорт",-Ярославль. -2000.-СС.34-36.

29. Титовский A.B., Крутова Л.В. Факторы, определяющие деформируемость молодых, зрелых и старых эритроцитов при дегидратации. / Тез. межвуз. научн. конф. "Биология, медицина, спорт",- Ярославль. -2000,-СС.36-38.

30. Тихомиров А.Н. Структурная реорганизация системы микроциркуляции при обезвоживании организма. / Дисс. докт. мед. наук.-Москва, 1992.

31. Швабауэр Т.С. Морфологическая картина крови в условиях дегидратации. / В кн.: Патология обезвоживания организма.-М.,1981.-С.87-94.

32. Чернух A.M., Александров П.Н., Алексеев О.В. Микроциркуляция.-М,-Медицина.-1975.-456с.

33. Черняков И.Н., Максимов И.В. Дегидратация организма человека на больших высртах. // Военно-мед. журнал.-1967,- N3.-С.62-64.

34. Уайт А., Хендлер Ф., Смит Э. и др. Основы биохимии. М.: Мир, 1981,-541с.

35. Уилкинсон У. Неньютоноские жидкости. Гидромеханика, перемешивание и теплообмен. М.: Мир.-1964.-216с.

36. Allard С., Mohandas N. and Bessis М. Red cell deformability changes in gemolytic anemias estimated by diffractometric metod for the measurement of cellular deformability. // Spinger-Verlag.-1978.-PP.209-221.

37. Arai K., lino M., Shio H et al. Further investigations of red cell deformability with nicel mesh. // Biorheology.-V27.-1990.-PP.47-65.

38. Baldwin J.M., O'Reily R., Whitney M. et al. // Biochemica Biophysica Acta.-1990,- Vol.-1028.-Nl.-P.14.

39. Baskurt O. Deformability of Red Blood Cells from Different Spesies Studied by Resistive Pulse Shape Analisis Technique. // Biorheology.-l 996.-Vol.33.

40. Baskurt O., Fisher T. and Meiselman H. Sensitivity of The Cell Transit Analyzer (СТА) To Alterations of Red Blood Cell Deformability: Role of Cell Size-Pore Size Ratio and Sample Preparation. // Biorheology.-1996.-Vol.33,-N6.-PP.489-503.

41. Baskurt O. and Meiselman H. Determination of Red Blood Cell Shape Recovery Time Constant In A Couette System by The Analysis of Light Reflectance and Ectacytometry. // Biorheology.-1996.-Vol.33.

42. Beauge L., Lew V.L. // Membrane Transport in Red Cells, J.C.Ellory, V.L.Lew (eds). Academic Press.-1977.-PP.39-50.

43. Bennett V. The Membrane Skeleton of Human Erythrocytes and Its Implications for More Complex Cell. // Annu. Rev. Biochemica.-1985.-Vol.54.-PP.273-304.

44. Berlin N. Lifespan of The Red Cell. /In The Red Blood Cell (1st Edition), Edited by Bishop C. and Surgenor D.- Academic Press, New York.-1964,-PP.423-430.

45. Berlin N. and Berk P. The Biological Life of The Red Cell. /In The Red Blood Cell (2nd Edition), Edited by Surgenor D.- New York.-Academic Press.-1975.-PP.957-963.

46. Bessis M. and Mohandas N. A deffractometric Method for the Measurement of Cellular Deformabllity.-Blood Cells.-1975.-Vol.l.-PP.307-313.

47. Bessis M., Mohandas N. and Feo C. Automated Ektacytometer: A New Method of Measuring Red Cell Deformability and Red Cell Indices.-Blood Cells.-1980.-Vol.6.-PP.315-327.

48. Bockxmeer V. F., Morgan E. Transferrin Receptors During Rabbit Reticulocyte Maturation. // Biochimica Biophisyca Acta.-1979.-Vol.584,-PP.76-81.

49. Bowdler A. The Spleen and Haemolytic Disorders. // Clinics In Haematology.-1975.-Vol.4.-P.231.

50. Braasch D., Rogausch H. Deformabilit and migration speed of red cells cen-trifuged at low g-values. // Arch. Ges. Physiol.-1971.-Vol.232.-P.34.

51. Braasch D. Deformability and traversing time of shape-transformed single red cells passing through a 4 glass-capillary. // Pflugers Arch.-1971.-Vol.329.-PP.167-171.

52. Bronkhorst P., Berends G., Hardeman M. et al. Measurement of Red Cell Deformability In Plasma Compared with Buffer As Suspending Medium. // Clinical Hemorheology. -1996. Vol. 16. -N2. -PP. 151-163.

53. Brugnara C., Tosteson D. Cell volume, K transport, and cell density in human erythrocytes. // American Journ. of Physiology.-1987.-Vol.252.-PP.269-276.

54. Bran A., Gaudernack G., Sandberg S. // A New Method for Isolation of Reticulocytes: Positive Selection of Human Reticulocytes by Immunomagnetic Separation. //Blood.-1990.-Vol.76.-Nll,- (December l).-P.2397-2403.

55. Bull B., Brailsford J. A New Method of Measuring The Deformability of Red Cell Membrane. //Blood.-1975.-Vol.45.-PP.581-586.

56. Bunn H., Haney D., Kamin S. et al. The Biosynthesis of Human Hemoglobin Aic. Slow Glycosylation of Hemoglobin In Vivo. // Journal Clinicaly Investigation. -1976. Vol .57.-P.1652-1661.

57. Canessa M., Fabry M.E., Blumenfeld M. et al. // Journal Membr. Biology.-1987,-Vol.97.-PP. 97-103.

58. Canham P. and Burton A. Distribution of Size and Shape In Populations of Normal Human Red Cells. // Circ. Res.-1968.-Vol.22.-PP.405-409.

59. Canham P. Difference In Geometry of Young and Old Cells Explained by a Filtering Mechanism. // Circ. Res.-1969.-Vol.39.-PP.39-43.

60. Carstensen E., Aldrige W., Child S. Stability of Cells Fixed with Glutaraldehyde and Acrolein. // Journal Cell Biology.-1971.-Vol.50.-PP.529-532.

61. Cavieres J.D J I Membrane Transport in Red Cell, J.C.Ellory, V.L.Lew (eds).-AcademicPress.-1977.-PP.l-9.

62. Chabanel A., Sung J., Rapiejko J. Et all. Viscoelastic properties of red cell membrane in hereditary elliptocytosis.// Blood.- 1989.-Vol.73.-PP.92-95.

63. Chasis J. A. and Mohandas N. Erythrocyte Membrane Deformability: Two Distinct Membrane Properties That Are Indepently Regulated by Skeletal Protein Associations. // Journal Cell Biology.-1986.-Vol. 103.-PP.343-350.

64. Chen L. Intrasplenic microcirculation in rats with acute hemolytic ane-mia.Blood.-1980.-V.56.-N4.

65. Chien S., Usami S., Bertles J.F. Abnormal rheology of oxigenated blood in sikle cell anemia. // Journal Clin. Invest.-1970.-Vol.49.-PP.623-634.

66. Chien S. Biophysical Behavior of Red Cell In Suspensions. // Red Blood Cell.-1975.-Vol.2.-PP.1031-1133.

67. Chien S. Summary Rheologycal Metods. // Blood Cells.-1977.-Vol.42.-N3,-PP.427-430.

68. Chien S. Principles and Techniques for Assessing Erythrocyte Deformability. // Blood Cells.-1977 .-Vol.3 .-PP.71 -99.

69. Chien S., Sung K.-L., SkalakR. et al. Teoretical and experimental Studies on Viscoelastic Properties of Red Cell Membrane. // Biophysical Journal.-1978-Vol.24.-P.463.

70. Chien S. Determinants of blod Viscosity and red cell deformability //Scand J.ClinandLab. Invest.-1981.-Vol.41.-PP.7-12.

71. Cokelet G. The Rheology of Human Blood. / In Biomechanics, Its Foundation and Objectives.- 1972.-New Jersey.-Prentice Hall.-P.63.

72. Cokelet G. Dinamics of Red Blood Cell Deformation and Aggregation, and In Vivo Flow. / In Erythrocyte Mechanics and Blood Flow.-New York Alan R.Liss.-1980.-P.141.

73. Cooper R. and Shattil S. Mechanisms of Hemolysis The Minimal Red Cell Defect. //NewEng. Journal Medicine.-1971.-Vol.285.-PP.1514-1517.

74. Copley A.L., Scott B.G. In: 8th Congress of the international Society of Blood Transfusion Proceedings.-Tokyo.-1960.-PP.6-23.

75. Corry W.D. arid Meiselman H.J. Modification of Erythrocyte Phisicochemical Properties by Millimolar Consentrations of Glutaraldehyde. // Blood Cells. -1978.-Vol.4.- PP.465-480.

76. Corry W.D. and Meiselman H J. Deformation of Human Erythrosytes In A Centrifugal Field. // Biophysical Journal.-1978.-Vol.21.-PP.19-34.

77. Corry W.D., Bresnahan P.A., Seaman G.V.F. Evaluation of Density Gradient Separation Methods. // Journal Biochem. Biophys. Methods.-1982.-Vol.7.-PP.71-89.

78. Dalen A. The Effect of Glutaraldehyde On The Stability of Erythrocytes and On Virus reseptor Substances. // Acta Pathol. Microbiol. Scandinavica (B).-1976.-Vol.84.-PP. 196-200.

79. Danon D. and Marikovsky Y. Difference de Charge Electrique de Surface Entre Erythrocytes Jeunes et Ages. // Cr Acad. Sei. (D).-Paris.-1961.-Vol.253.-PP. 1271-1279.

80. Danon D. and Marikovsky Y. Determination of Density Distribution of Red Blood Cell. // Journal Laboratory Clinical Medicine.-1964.-Vol.64.-PP.-668-674.

81. Deloach J., Peters S., Pinkard 0. et al. Effect of Glutaraldehyde Treatment On Enzyme-Loaged Erythrocytes. // Biochemica Biophysica Acta.-1977.-Vol.496.-PP.507-515.

82. Dodge J.T. et al. The Preparation and Chemical Characeristics of Hemoglobin Free Gosts of Human Erythrocytes. // Archives Biochemistry Biophysics.-1963.-Vol.100.-PP119-130.

83. Eglaster A., Mikkelsen A. // Biochimica Biophysica Acta-1991.-Vol. 1071.-P.273.

84. Evans E. A New Material Concept for The Red Cell Membrane. // Biophysical Journal.-1973.-Vol. 13 .-PP.926-940.

85. Evans E. and Hochmuth R. Membrane Viscoelasticity. // Biophysical Journal.-1976.-Vol.16.-PP.l-12.

86. Evans E. and LaSelle P. Intrinsic Material Properties of The Membrane Indicated by Mechanical Analysis of Deformation. // Blood.-1975.-Vol.45,-P.29.

87. Evans E. Structure and Deformation Properties of Red Blood Cells: Consepts and Quantitative Metods. // Metods in Enzymology.- 1989,- Vol.173.-PP.3-35.

88. Evans E., Skalak R. Mechanics and Thermodynamics of Biomembranes. CRC Press Inc.- 1980,-Boca Ration.FL-304p.

89. Fehr J., Knob M. Comparison of Red Cell Creatin Level and Reticulocyte Count In Appraising The Severity of Hemolytic Processes. // Blood.-1979.-Vol.53.-PP.966-1001.

90. Fischer T.M. and Schmid-Schonbein H. Tank Tread Motion of Red Cell Membranes in Viscometric Flow. // Blood Cells.-1977.-Vol.3.-PP.351-362.

91. Fischer T.M. et al. Selective Alteration of Erythrocyte Deformability By SH-Rreagents. Evidence for An Involvement of Spectrin In Membrane Shear Elasticity. // Biochimica Biophysica Acta.-1978.-Vol.510.-PP.270-282.

92. Franco R. and Barker R. Modification of The Oxigen Affinity An Intracellular Hemoglobin Concentration of Normal and Sickle Cells by Means of An Osmotic Pulse. // Journal Laboratory Clinical Medicine.-1989.-january.-PP.58-66.

93. Frazier J., Caskey J., Yoffe M. et al. Studies of The Transferrin Receptor On Both Human Reticulocytes and Nucleated Human Cell In Culture. // Journal Clinical Investigation.-1982.-Vol.69.-PP.853-859.

94. Fung L., Kalaw B., Hatfield R. et al. Erythrocyte Spectrin Maintains Its Segmental Motion on Oxidaion: A Spin-Label EPR Study. // Biophysical Journal.-1996.-Vol.70.-PP.841-851.

95. Gamble J.L. Chemical Anatomy, Physiology and Patology of Extracellular Fluids (7th ed.).- Cambridge/Mass.,Harvard University Press.-1958.

96. Garay R., Nazaret C., Diez J. et al. // Biomedica Biochimica Acta.-1983.-Vol.42.-Nll-12.-P.553.

97. Garcia de la Torre J. Hydrodynamics of Segmentally Flexible Macromolecules. //Eur. Bioprys. Joumal.-1994.-Vol.23 .-PP.307-322.

98. Goldsmith H. The Microrheology of Human Blood. // Microvascular Re-search.-1986.-Vol.31.-PP. 121-142.

99. Grasso J., Bruno M., Yates A. et al. Calmodulin Dependence of Transferrin Receptor Recycling In Rat Reticulocytes. // Biochem. Journal.-1990.-Vol.266.-PP.261-272.

100. Gregersen M., Bryant C., Hammerle W. Et all., Flow characteristics of human erythrocytes through polycarbonate sieves.-1967.-Science.-Vol.157,-PP.825-834.

101. Greenwalt T., Steane E., Lau F. et al. Aging of The Human Erythrocyte. / In Immunobiology of The Erythrocyte.-New York.-Alan R.Liss.-1980.-PP.195-203.

102. Griffiths W., Fitzparick M. The Effect of Age On The Creatine In Red Cells. // British Journal Haematology.-1967.-Vol.l3.-PP.175-182.

103. Gross J., Rapoport S., Rosenthal S. et al. Criteria of Maturity and Age of Red Blood Cells. //Acta Biol. Med. Ger.-1981.-Vol.40.-P.665.

104. Habeeb A., Hiramoto R. Reaction of Proteins with Glutaraldehyde. // Archives of Biochemistry Biophysics.-1968.-Vol. 126,- PP. 16-26.

105. Haest C., Driessen G., Kamp D. et al. Is "Deformability" A Parameter for The Rate of Elimination of Erythrocytes from The Circulation? // Pfluger's Arch.-1980.-Vol.388.-P.69.

106. Harley J.D., Mauer A.M. // Blood.-1961.-Vol.l7.-N4.-PP.418-427.

107. Hebbel R., Leung A. and Mohandas N. Oxidation-Induced Changes In Microrheologic Properties of The Red Cell Membrane. // Blood.-1990.-Vol.76.-PP. 1015-1020.

108. Henseleit U. Plasa G., Haest C.C. // Biochemica Biophysica Acta.-1990.-Vol.1029.-P.127.

109. A) Heusinkveld R., Goldstein D., Weed R. et al. Effect of Protein Modification On Erythrocyte Membrane Mechanical Properties. // Blood Cells.-1977.-Vol.3.-PP. 175-182.

110. E) Heusinkveld R., Goldstein D., Weed R. et al. Effect of Protein Modification On Erythrocyte Membrane Mechanical Properties. A Commentary. // Blood Cells.-1977.-Vol.3.-PP.183-184.

111. Höchstem P. and Jain S. Association of Lipid Peroxidation and Polymerization of Membrane Proteins with Erythrocyte Aging. // Federation Proceeding.-1981.-Vol.40.-PP. 183-188.

112. Jackson W., Kosyla J., Nordin J. et al. // Biochemistry.-1973.-Vol.12.-PP.3662-3664.

113. Jain S. and Hochstein P. Polymerization of Membrane Components in Aging Red Blood Cells. // Biochemical and Biophysical Research Communications. -1980.-Vol.92.-N1 .-PP.247-254.

114. Jandl J., Katz J. The Plasma-to-Cell Cycle of Transferrin. // Journal Clinical Investigation. -1963 .-Vol.42. -PP.314-319.

115. Jennings M.L., Schulz R.K. // Journal Gen. Physiology.-l991.-Vol.97.-PP.799-804.

116. Jilgio J.M. et al. Mechanism of the decreased erythropoesis in the water deprived rats // Brit.J.Haematol.-1979.-Vol.42.-Nl.PP.93-99.

117. Johnson G., Allen D., Flynn T. et al. Deacrise Laefspan in vivo Diamid-Incubated Erythrocyes of Dog. // Journal Clinical Investigation.-1980.-Vol.66.-PP.955-961.

118. Johnstone R., Adam M., Pan B. The Fate of The Transferrin Receptor During Mauration of Sheep Reticulocytes In Vitro. // Can. Journal Biochem Cell Biology.-1984.-Vol.62.-P. 1246.

119. Kageyama K., Y. Onoyama Y., Kogawa H. et al. The maximum and minimum water content and cell volume of human erythrocyes in vitro. // Biophysical Chemistry.-1989.-Vol.34.-PP.79-82.

120. Kon K., Maeda N., Shiga T. Erythrocyte deformation in shear flow: influences of internal viscosity, membrane stiffness and hematocrit. // Blood.-1987,- N.3.-PP.727-734.

121. LaCelle P. Alteration of membrane deformability in haemolytic anaemias. // Semin. Haematol.-1970.-Vol.7(4).-PP.355-371.

122. LaCelle P., Weed R. The contributions of normal and pathologic erythrocytes to blood. // Progr. Haematol-1971.-Vol.7.-PP. 1-37.

123. LaCelle P., Kirkpatrick F., Udkow M. Membrane Fragmentation and Ca-Membrane Interaction: Potential Mechanisms of Shape Change In The Senescent Red Cell. / In Red Cell Shape.-New York.-Springer Verlag.-1973,-P.69.

124. LaCelle P. and Kirkpatrick F. Determinants of Erythrocyte Membrane Elasticity. / In Erythrocyte Structure and Function, Edited by Brewer G.-New York.-Alan R.Liss.-1975.-P.535.

125. Lakomek M., Schroter W., De Maeyer G. et al. On The Diagnosis of Erythrocytes Enzyme Defects In The Presence of High Reticulocyte Counts. // British Journal Haematology.-1989.-Vol.72.-PP.445-451.

126. Lauf P.K., Perkins C.M., Adragua N.C. // Am. Journal Physiology.-1985.-Vol.249.- PP. 124-128.

127. Lauf P.K., Bauer J. et al. // Am. Journal Physiology.-1992.-Vol.263.-PP.917-923.

128. Leeuwenhoek A. / The Collected Letters of Antoni Van Leeuwenhoek.-1673-1676.-Vol.l.

129. Lew V., Beauge L., Membrane Transport in Biology. // Blood Cells.-1979,-V2.-PP.81-85.

130. Lew V. and Bookchin R. Volume, pH and ion-content Regulation In Human Red Cells: Analysis of Transient Behavior with An Integrated Model. //Journal Membrane Biology.-1986.-Vol.92.-PP.57-74.

131. Liu S.C. et al. Spectrin Tetramer-Demer Equilibrium and The Sability of Erythrocyte Membrane Skeletons. //Nature.-1980.-Vol.285.-PP.586-588.

132. Liu S.C. et al. Altered Spectrin Dimer-Dimer Association and Instability of Erythrocyte Membrane Skeletons In Hereditary Pyropoikilocytosis. // Journal Clinical Investigation.-1981.- Vol.68.-PP.597-605.

133. Luthra M., Friedman J., Sears D. et al. Studies of Density Fraction of Normal Human Erythrocytes Labeled with Iron-59 In Vivo. // Journal Laboratory ClinicalyMedicyne.-1979.-Vol.94.-P.879.

134. Maeda N., Kon K., Imasuumi K. et al. Alteration of Rheological Properties of Human Erythrocytes by Cross-Linking of Membrane Proteins. // Biochemica Biophysica Acta.-1983.-Vol.735.-PP.104-112.

135. Marvel J., Sutera. S., Krogstad D. Accurate Determination of Mean Cell Volume by Isotop Dilution In Erythrocyte. Populations with Variable Deformability. // Blood Cells.-1991.-Vol.l7.-PP.497-512.

136. Mohandas N., Clark M., Jacobs M.Analysis of Factors Regulating Erythrocyte Deformability. // The Journal of Clinical Investigation-1980.-Vol.66.-PP.563-573.

137. Mohandas N. et al. A Techique To Detect Reduced Mechanical Stabiliy of Red Cell Membranes: Relevance To Elliptocyic Disorders. // Blood.- 1982,-Vol.-59.-PP.768-774.

138. Mohandas N., Chasis J. and Shohet S. The Influence of Membrane Skeleton on Red Cell Deformability, Membrane Material Properties and Shape. // Semin. Hematol.-1983.-Vol.20.-PP.225-242.

139. Mohandas N., Kim Y., Tycko D. et al. Accurate and independent Measurement of Volume and Hemoglobin Concentration of Individual Red Cells by Laser Light Scattering. // Blood.-1986.-Vol.68.-PP.506-511.

140. Mohandas N., Winardi R., Knowles D. et al. Molecular Basis for Membrane Rigidity of Hereditary ovalocytosis. // Journal Clinical Investigation.-1992.-Vol.89.-PP.686-692.

141. Mohandas N. and Evans E. Mechanical Properties of The Red Cell Membrane In Relation To Molecular Structure and Genetic Defects. // Annu.Rev. Biophys. Biomolec. Struct.-1994.-Vol.23.-PP.787-818.

142. Monsan P., Puzo G., Mazarguil H. On The Mechanism of The Formation of Glutaraldehyde-Protein Bonds. // Biochimie.-1975.-Vol.57.-PP.1281-1292.

143. Morel F., Baker R. and Wayland H. Quantitation of Human Red Blood Cell Fixation by Glutaraldehyde. // Journal Cell. Biology.-1971.-Vol.48.-PP.91-100.

144. Mosior M., Bobrowska M., Gomulkiewicz J. // Biohimica Biophysica Acta.-1990.-Vol.1022.-N3.-P.355.

145. Muller G.H. Effect of Selective Alteration of Membranous Or Cytoplasmic Properties On Erythrocyte Elongation In Shear Flow. // Biorheology.-1997.-Vol.34.-N2.-PP 85-98.

146. Nagasava T., Sarashi A., Kojima S. A capillary tube centrifygal metod for the measurement of cellular deformability. // Osaka City Med. Journ.-1980.-Vol.26.-PP. 1-6.

147. Nash G.B. and Meiselman H.J. // Microcirculation.-Vl.-N3.-1981.-PP.255-284.

148. Nash G.B. and Meiselman H.J. Red Cell and Ghost Viscoelasticity. Effect of Hemoglobin Concentration and In Vivo Aging. // Biophysical Journal.-1983.-Vol.43.-PP.63-73

149. Nash G.B. and Meiselman H.J. Alteration of Red Cell Membrane Viscoelasticity by Heat Tritment: Effect On Cell Deformability and Suspension Viscosity. // Biorheology.-1985.-Vol.22.-PP.73-84.

150. Nash G.B., Johnson C., Meiselman H. Rheologic Impairment of Sickle RBCs Induced by Repetitive Cycles of Deoxygenation-Reoxygenation // Blood.-1988.-Vol.72.-N2.P.539-545.

151. Nash G.B. and Meiselman H.J. Effect of Dehydration on The Viscoelastic Bihavior of Red Cell. // Blood Cells.-1991.-Vol.l7.-PP.517-522.

152. Nash G.B. and Gratzer W.B. Struktural Determinants of The Rigidity of The Red Cell Membrane. //Biorheology.-1993.-Vol.30.-PP.391-401.

153. O'Neill W.Ch., Mikkelsen R.B. // Biochimica Biophysica Acta.-1987.-Vol.896.-PP. 196-201.

154. O'Neill W.Ch. // Am. Journal Physiology.-1991.-Vol.260.-N2.-PP.308-312.

155. Pan B., Biostein R., Johnstone R. Loss of The Transferrin Receptor During The Maturation of Sheep Reticulicytes In Vitro. // Biochem. Journal.-1983.-Vol.210.-PP.37-47.

156. Panzer S., Kronik G., Lechner K. et al. Glycosylated Hemoglobin (Ghb): An Index of Red Cell Survival. // Blood.- Vol.59.-PP. 1348-1354.

157. Peters K., Richards F. Chemical Cross-Linking: Reagets and Problems In Studies of Membrane Structure. // Annu. Rev. Biochem.-1977.-Vol.46,-PP.523-551.

158. Pettit K., Hunt W., George S. Et al. The Use of Nicel and Polycarbonate Filters to Assess Erhytrocyte Filterability in Control Subjects and Diabetic Patients. // Clin. Hemorheology.- 1993,- V.13.-PP.661-670.

159. Pewitt E.B., Hegde R.S., Haas M. et al. // Journal Biology Chem.-1990.-Vol.265.- P.20747.

160. Pitts R.F. Physiology of the Kidney and Body Fluids (3 rd. ed.).-Chicago.-Year Book.- 1974.-PP.39-47.

161. Pfafferott C., Meiselman H. and Hochstein P. Effect of Malonyldialdehyde On Erythrocyte Deformability. // Blood.-1982.-Vol.59.-N1.

162. Pfafferott C., Nash G. and Meiselman H. Red Blood Cell Deformation In Shear Flow: effects of internal and external phase viscosity and of in vivo agening. //Biophysical Journal.-1985.-Vol.47.-PP.695-704.

163. Piomelli S., Lupinsky G. and Wasserman L. The Mechanism of Red Cell Ageing. // Journal Laboratory Clinicaly Medicine.-1967.-Vol.69.-P.659.

164. Prankred T. The Ageing of Red Cells. // Journal Physiology.-1958,-Vol. 143,-PP.325-331.

165. Rakow A. and Hochmuth. Effect of Heat Treatment on The Elasticity of The Human Erythrocyte Membrane. // Biophysical Journal.-1975.-Vol.15,-PP.1095-1100.

166. Rampling M., Sirs J. A Survey of the Variation of Erythrocyte Flexibility Within a Healthy Population. / Biorheology.-1976.-Vol.-PP. 101-105.

167. Rapoport S. Highlights In Erythrocyte Research. // Biomed. Biochim. Acta.-1983.-Vol.42.-N11-12.-PP.5-10.

168. Rega A., Carrahan P. The Ca2+ pamp of plasma Membranes. CRC Press Inc., Boca Ration.-1986.

169. Reinhart W., Sung L.-P.A., Sang K.-L.P. et al. Impaired Echinocytic Transformation of Ankyrin and Spectrin - Deficient Erythrocytes in Mice. / American Journal of Haematology.-1988.-Vol.29.-N3.-PP.195-200.

170. Riha P., Stoltz J.-F. Flow Oscilations As A Natural Factor of Reduction of The Effect of RBC Agregation On Blood Flow. // Clinical Hemorheology.-1996.-Vol. 1.-N1.-PP.43-48.

171. Ross P., A.Minton, 1977. Hard Quasisphrical model for the viscosity of hemoglobin solutions // Biohem and Biophys. Res.-1977.-Vol.76.-N4.-PP.971-976.

172. Rous P. Destruction of Red Blood Corpuscles In Health and Disease. // Physiol. Rev.-1923.-Vol.3.-PP.75-83.

173. Sabatini D., Bensch K., Barrnett R. // Journ. Cell Biol.-1963.-Vol.17.-PP.19-28.

174. Sachs J.R., Knauf P.A., Dunham P.B. Trasport through red cell membranes. / The Red Blood Cell.- 1975,- Vol.2.-PP.613-703.

175. Sass M., Versanger E., Srear P. Enzyme Activity As An Indicator of Cell Age. // Clin. Chim. Acta.-1964.-Vol.l0.-PP.21-27.

176. Schmid-Schonbein H.,Von Gosen J., Heimich L. Et all. A counter-rotating rheoscop chamber for the study of the microrheology of blood cell aggregation by microscopic observation and microphotometry.-1973.-Microvasc. Res.-Vol.6.-P.366.

177. Schmid-Schonbein H., Wells R. Fluid drop-like transition of erythrosytes under sher. // Science.-1969.-Vol. 165.-PP.288-291.,1977

178. Seaman G, Knox R., Nordt F. et al. Red Cell Aging. // Blood.-1977.-Vol.50.-PP.1001-1011.

179. A) Shiga T., Maeda N., Suda T. et al. A Kinetic Measurement of Red Cell Deformability; A Modified Pipette Technique. // Jap. Journal Physiology.-1979.-Vol.29.-P.705.

180. E) Shiga T., Maeda N., Suda T. et al. The Decreased Membrane Fluidity of In Vivo Ageing Human Erythrocytes. // Biochimica Biophysica Acta.-1979.-Vol.553.-PP.84-91.

181. Singer K. and Weisz L. The Life Cycle of The Erythrocyte After Splenectomy and The Problems of Splenic Hemolysis and Target Cell Formation. // Am. Journal Medicine Sciense.-1945.-Vol.210.-PP.301-315.

182. Sirs J. The Measurement of The Haematocrit and Flexibility of Erythrocytes with A Centrifuge. // Biorheology.-1968.-Vol.5.-PP.l-14.

183. Sirs J. Automatic recording of the rate of packing of erythrocytes blood by a centrifuge. // Phys. Med. Biol.-1970.-Vol.15.-PP.9-14.

184. Smith D., Palek J. Modulation of lateral mobility of band 3 in the red membrane by oxidative cross-linking of spectrin. // Nature.-1982.-Vol.297.-P.424.

185. Stark L., Jennings M.L., // Am. Journal Physiology.-1993.-Vol.264.-Nl,-PP. 118-124.

186. Steck T. Cross-Linking The Major Proteins of The Isolated Erythrocyte Membrane. // Journal Molecular Biology.-1972.-Vol.66.-PP.295-305.

187. Shnyrov V.L., Orlov S.N., Zhadan G.G. et al. // Biomedica Biochimica Acta.-1990.-Vol.49.-N6.-P.445.

188. Stoltz J.-F. Clinical Hemorheology: Past, Present and Perspectives. // Clinical Hemorheology .-1996.-Vol.16. -N2. -PP .87-104.

189. Stuart J., Ellory J. // Rheological Consequences of Erythrocyte Dehydratation.//British Journal Haematol.- 1988.-Vol.69.-PP.l-4.

190. Stuart J., Nash G. Red cell Deformability and Haematological Disorders. // Blood Revievs.-1990.-PP.141-147.

191. Stuart J., Kenny M. Blood rheology. // J. Clin. Pathol.-1980.-Vol.33.-N.5.-PP.417-429.

192. Sugihara M. Moion and Deformation of A Red Blood Cell In A Shear Flow: A Two-Dimensional Simulation of The Wall Effect. // Biorheology.-1985.-Vol.22.-PP.l-19.

193. Sutera S., Menrjardi M. and Mohandas N. Deformation of Erythrocytes under shear. //Blood.-1975.-Vol.1.-PP.369-374.

194. Sutera S., Tran-Son-Tay R., Boylan C. et al. A Study of Variance In Measurements of Tank-Treading Frequency In Populations of Normal Human Red Cells. // Blood Cells.-1983.-Vol.9.-PP.485-495.

195. Sutera S., Gardner R., Boylan C. et al. Age-Related Changes In Deformability of Human Erythrocytes. // Blood.-1985.-Vol.65.-PP.275-282.

196. Tatsumi J., Tatsumi Y., Tatsumi N. et al. Influences of Red Cell Deformability on Trapped Plasma Volume. // Clin. Hemorheol.-1984.-Vol.4.-P.545.

197. Tillman, Levin C., Pridull G. et al. Rheological Proporties of Young and Aged Human Erythrocytes. //Klin. Wochenschr.-1980.-Vol.58.-P.569.

198. Tosteson D.C., Hoffinan J.F. // Journal Gen. Physiology-1960.-Vol.44.-Nl,-PP.169-173.

199. Tran-Son-Tey R., Sutera S., Rao P. Determinatioon of red cell membrane viscosity from rheoscopic observation of tank-reading motion. // Biophys. Journ.-1984-Vol.46.-PP.65-72.

200. Usami S., Chien S., Gregersen M. Viscometric Behaviour of Young and Aged Erythrocytes. / In Theoretical and Clinical Hemorheology.-1971.-New York.-Springer Verlag.-PP.266-231.

201. Vassar P., Hards J., Brooks D. et al. Physicochemical Effects of Aldehydes On The Human Erythrocyte. // Journal Cell Biology.-1972,-Vol.53.-PP.809-818.

202. Vertessy B.G., Steck T.L. Elasticity of the human red cell membrane skeleton. // Biophysical Journal.-1989.-Vol.55.-N2.-PP.255-262.

203. Vettore L., De Matteis C., Zampini P. A New Density Gradient System for The Separation of Human Red Blood Cells. // Am. Journal Hematology.-1980.-Vol.8.-P.291.

204. Watanabe H. Kobayashi A., Hayashi H. // Biochimica Biophysica Acta.-1989,- Vol.980.-N3.-P.315.

205. Weed R., LaSelle P., Merrill E. Metabolic Dependence of Red Cell Deformabiliy. // Journal Clinical Investigation.-1969.-Vol.48.-P.795.

206. Weed R. The Importence of Erythrocyte Deformability. // Am. Journal Medicine.-l 970.-Vol.49.-P. 147.

207. Walter H., Krob E., Tamblyn C. et al. Surface Alterations of Erhytrocytes with Cell Age: Rat Red Cell Is Not a Model for Human Red Cell. // Biochem. Biophys. Res. Comm.-1980.-Vol.97.-PP.107-114.

208. Waugh R. and Evans E. Thermoelasticity of Red Blood Cell Membranes. // Biophysical Jouraal.-1979.-Vol.26.-PP. 115-132.

209. Waugh R. et al. Abnormalities In The Membrane Material Properties of Hereditary Spherocytosis. // Journal Biomech. Eng.-1980.-Vol.102.-PP.240-246.175

210. Waugh R. Red Cell Deformability In Different Vertebrate Animals. 11 Clinical Hemorheology.-1992.-Vol.l2.-PP.649-656.

211. Weed R., LaCelle P., Merril E. Metabolic Depeddence of Red Cell Deformability. // Journal Clin. Invest.- 1969.-Vol.48.-P.795.

212. Williamson J. et al. The influence of Temperature on Red Cell Deformability. // Blood.-1975.-Vol.46.-PP.611-624.

213. Wayland H. // Bibl. Anat.-Basel.-1965.-V.5.-P.2

214. Yaari A. Mobility of Human Blood Cells of Different Age Groups in An Electric Field. // Blood.-1969.-Vol.33.-PP. 159-164.

215. Zimran A., Torem S. and Beutler E. Tne in Vivo Ageing of Cell Enzymes: Direct Evidence of Biphasic Decay from Polycythaemic Rabbits with Reticulocytosis. // British Journal Haematol.- 1988.-Vol.69.-PP.67-70.