Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Оценка экологического риска фенольного загрязнения водных экосистем

ВАК РФ 03.00.16, Экология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Каретникова, Елена Анатольевна

Введение.

Глава I

Литературный обзор.

1.1 Пути поступления фенолов в водоемы.

1.2 Токсичность фенолов.

1.3 Нормирование содержания фенольных соединений в водоемах.

1.4 Индикация фенолов в водных экосистемах физико-химическими и биологическими методами.

1.5 Методы очистки сточных вод от фенолов.

1.6 Микробиологическая деструкция фенола.

1.7 Подходы к оценке экологического риска при загрязнении водных экосистем.

ГлаваП

Объекты и методы.

2.1. Микробиологические исследования.

2.2 Физико - химические методы исследования.

Глава III фенолрезистентные бактерии в структуре микробиоценозов.

3.1 Фенолрезистентные бактерии в микробоценозах поверхностных вод р. Амур.

3.2 Численность фенолрезистентных бактерий в присутствии ди- и трифенолов.

3.3 Устойчивость гетеротрофных бактерий к фенолу.

Выводы к главе.

Глава IV

Микробиологическая деструкция монофенола.

4.1 Фенолразрушающая активность микробоценозов.

4.2 Деструкция монофенола чистыми культурами бактерий.

4.3 Комплексная фотохимическая и микробиологическая деструкция монофенола.

4.4 Особенности микробиологической утилизации органических веществ в присутствии фенола.

Выводы к главе.

Глава V

Микробиологическая деструкция фенольных соединений различного строения.

5.1 Микробиологическая деструкция дифенолов.

5.2 Деструкция природных и техногенных фенолов.

5.3 Методические аспекты оценки фенольного загрязнения водных экосистем.

Выводы.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Оценка экологического риска фенольного загрязнения водных экосистем"

Фенольные соединения (ФС) наряду с нефтепродуктами, пестицидами, полихлорированными бифенилами (Straskraba, Tundisi, 1999) относятся к числу наиболее распространенных поллютантов водных экосистем. В водоемы поступают фенолы различного происхождения: компоненты промышленных сточных вод; соединения, образующиеся в ходе процессов вторичного загрязнения; биогенные фенолы, образуемые гидробионтами (Кондратьева, 2000). В токсикологическом и органолептическом отношении фенольные соединения значительно отличаются друг от друга. Некоторые из них (пирокатехин, гидрохинон и др.) являются предшественниками еще более токсичных хинонов. Токсический эффект фенолов проявляется на клеточном (нарушение дыхания, пигментогенеза, биосинтеза белков; барьерных функций мембран) и на организменном (подавление роста и размножения у водорослей, нарушение рефлекса равновесия, дыхания, потеря двигательной активности у рыб и т. д.) уровнях (Камшилов, Флеров, 1978; Сиренко, Козицкая, 1988; Стом и др., 1993).

При мониторинге фенольного загрязнения поверхностных вод основное внимание уделяется группе летучих с паром фенолов (как более токсичных). Широко применяемые фотометрические методики, не дают сведений о качественном составе токсикантов (Фомин, 1995) и, следовательно, не позволяют определить их истинную токсичность. Хроматографи-ческие методы анализа, позволяющие устранить эти недостатки, требуют дорогостоящего приборного оснащения, что экономически неоправдано при проведении постоянного мониторинга качества поверхностных вод. Среди перспективных методов биоиндикации фенольного загрязнения можно назвать микробиологический. Численность фенолрезистентных бактерий используется при изучении загрязнения водных экосистем с середины 70-х г.г. (Столбунов, 1976; Дрюккер, Петрова, 1988; Дзюбан, 1998;

Димитриева, 1995) для выявления зон с повышенным содержанием фенолов.

Однако определение только количественного содержания суммы фенолов и численности фенолрезистентных микроорганизмов не позволяет дать объективную оценку степени экологического риска загрязнения поверхностных вод ароматическими соединениями. Для адекватной оценки последствий воздействия фенолов на водные экосистемы необходимы дополнительные сведения о качественном составе фенолов, механизмах их преобразования в ходе внутриводоемных процессов (Кондратьева, 1998, 2000).

ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ РАБОТЫ

Цель работы состояла в выявлении закономерностей формированиия структуры микробных комплексов в присутствии фенолов, изучении особенностей микробиологической деструкции фенольных соединений различного строения и участия микроорганизмов в комбинированных процессах разрушения фенолов.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Провести анализ материалов микробиологического мониторинга качества воды в р. Амур и определить вклад фенолрезистентных бактерий в структуру микробных сообществ поверхностных вод.

2. Выявить особенности влияния ди- и трифенолов на численность фенолрезистентных бактерий и сравнить скорость микробиологической деструкции фенольных соединений различного строения.

3. Исследовать ферментативную активность микробных комплексов и отдельных штаммов бактерий из различных местообитаний по отношению к монофенолу.

4. Определить характер влияния абиотических факторов (температурный режим, градиент солености, наличие дополнительных источников углерода) на скорость микробиологического разрушения фенола.

5. Исследовать механизм комбинированного фотохимического и микробиологического разложения монофенола в водной среде.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА

Впервые проведен анализ структуры микробных комплексов, функционирующих в системе «река-пойменные озера-лиман». Показана роль речного стока в формировании структуры и ферментативной активности мик-робоценозов поверхностных вод Амурского лимана.

Экспериментально доказано, что численность фенолрезистентных бактерий не отражает интенсивности самоочищения водных экосистем при фе-нольном загрязнении. Установлено, что природные изоляты бактерий, способные разрушать ароматическое кольцо природных низкомолекулярных фенольных соединений, обладают ограниченными ферментативными возможностями по отношению к антропогенным фенолам.

Впервые проведен сравнительный анализ фотохимического и микробиологического разрушения фенола, установлено, что в отличие от микробиологического, физико - химический процесс трансформации поллю-танта не сопровождается раскрытием ароматического кольца. Показана эффективность комбинированной фотохимической и микробиологической деструкции токсиканта по сравнению с фотолизом.

Экспериментально доказано, что ориентация только на монофенол при проведении токсикологических исследований и оценке качества воды не отражает характера внутриводоемных процессов, что приводит к неверной интерпретации данных о фенольном загрязнении природных вод.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ

С помощью микробиологического метода выявлены зоны с повышенным содержанием фенольных соединений в экосистеме р. Амур, что подтверждено данными физико-химического анализа.

Выявлены факторы, лимитирующие разрушение фенольных соедине-ий в природных водах экосистемы р. Амур.

Установлено, что в присутствии фенола в природных водах изменяется качественный и количественный состав летучих соединений, образующихся при утилизации углеводов. Экологический риск увеличивается при поступлении монофенола, засчет эффектов синергизма этого токсиканта и продуктов метаболизма.

Обоснована необходимость применения комбинированного метода очистки поверхностных вод от фенолов и соединений различной токсичности, образующихся при УФ - облучении.

На основе выполненных исследований разработана схема поэтапной оценки последствий фенольного загрязнения водных экосистем, включающая применение микробиологических и физико-химических методов.

ЗАЩИЩАЕМЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ

1. Численность фенолрезистентных бактерий является надежным индикатором загрязнения водных экосистем фенольными соединениями различного происхождения, однако не может служить критерием самоочищающей способности водных экосистем.

2. Присутствие фенольных соединений в водных экосистемах влияет не только на гидробионтов, но и приводит к изменению характера внутриво-доемных процессов, за счет образования летучих соединений, обладающих эффектами синергизма. В природных условиях скорость детоксикации фенолов зависит от совокупности абиотических факторов и набора дополнительных источников углерода.

3. Для объективной оценки экологического риска загрязнения водных экосистем фенольными соединениями необходимо выявление зон с повышенным содержанием фенолов, изучение компонентного состава токсикантов и выявление факторов, лимитирующих самоочищение экосистем.

АПРОБАЦИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ РАБОТЫ

Результаты исследований были представлены на Всероссийской конференции «Экологический риск: анализ, оценка, прогноз» (Иркутск, 1998), Региональной конференции геологов Сибири, Дальнего Востока и Северо-Востока России и II совещании «Экология пойм сибирских рек и Арктики» (Томск, 2000), Международной конференции «Экологические проблемы бассейнов крупных рек-2» (Тольятти, 1998), Международной экологической конференции «Амур на рубеже веков» (Хабаровск, 1999), 4th USA|CIS Joint Conference on Environmental Hydrology and Hydrogeology. Hydrologic Issues for the 21st century: Ecology, Environment and Human Health (San Francisco, California, 1999), и 6th International Conference on Solar Energy and Applied Photochemistry (SOLAR'Ol) and 3th International Training Workshop on Environmental Photochemistry (ENPH'01) (Cairo, Egypt, 2001). Материалы диссертационной работы были доложены на конкурсах молодых ученых и аспирантов Хабаровского края (1999, 2000, 2001, 2002) и конкурсе молодых ученых Сибири и Дальнего Востока (Томск, 2000).

Материалы диссертации изложены в 19 печатных работах.

Автор выражает глубокую признательность своему руководителю д.б.н. JI. М. Кондратьевой. Автор благодарит сотрудника отдела физико-химических исследований ИТИГ ДВО РАН В. JI. Рапопорта, сотрудников отдела фотоники молекул СФТИ (г. Томск) О. Н. Чайковскую и И. В. Соколову за помощь в проведении исследований, а также своих коллег за поддержку, Н. В. Каретникову за помощь в оформлении работы.

Заключение Диссертация по теме "Экология", Каретникова, Елена Анатольевна

выводы

1. Ответная реакция микробных сообществ на поступление природных и антропогенных фенолов проявляется в увеличении численности фе-нолрезистентных бактерий, являющихся индикаторами фенольного загрязнения водных экосистем. Численность бактерий, выделяемых на среде с монофенолом, зависит от качественного состава фенольных соединений в поверхностных водах.

2. В группу фенолрезистентных бактерий, растущих на агаризован-ной среде с фенолом, входят не только микроорганизмы, способные утилизировать это соединение, но и бактерии сохраняющие фенолрезистент-ность только при первых пассажах на среде с токсикантом. Поэтому высокая численность ФРБ не отражает интенсивности самоочищения водоемов от фенола.

3. Наряду с потенциальной активностью микроорганизмов интенсивность микробиологического разрушения фенолов определяется комплексом абиотических факторов (температура, кислородный режим, градиент солености и наличие дополнительных источников углерода). Низкие температуры, высокий градиент солености ингибируют микробиологическое разрушение фенолов. Характер влияния дополнительных источников углерода зависит от их природы.

4. Установлено, что деятельность микроорганизмов в поверхностных водах обеспечивает разрушение фенола и соединений, образующихся в ходе его фотохимической трансформации, в том числе и п-бензохи-нона высокотоксичного для гидробионтов.

5. Присутствие фенола в природных водах приводит к изменению качественного и количественного состава продуктов метаболизма углеводов (глюкозы). Экологический риск при поступлении монофенола увеличивается за счет эффектов синергизма между токсикантом и образующимися соединениями.

6. Показано, что возможность микробиологической деструкции, а также характер трансформации фенольных соединений определяется их строением. Низкомолекулярные производные лигнина, пирокатехин, а-нафтол утилизируются выделенными штаммами бактерий. Резорцин трансформируется с образованием соединений недоступных для бактерий в качестве источника углерода; 2,4-диоксибензойная кислота, 2,4-диоксибензальдегид и п-метиловый эфир гидрохинона не подвергаются микробиологоческому разрушению.

7. Для объективной оценки экологического риска загрязнения водных экосистем фенольными соединениями необходимо выявление зон с повышенным содержанием фенолов, изучение компонентного состава токсикантов и выявление факторов, лимитирующих самоочищение экосистем.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Каретникова, Елена Анатольевна, Хабаровск

1. Балашова Н. В., Кошелева И. А., Филонов А. Е., Гаязов Р. Р., Воронин А. М. Штамм Pseudomonas putida BS 3701- деструктор фенантре-на и нафталина // Микробиология. 1997. Т. 66. № 4. С. 488-493.

2. Безопасность России. Правовые, социально-экономические и начно-технические аспекты. Экологическая диагностика / Под ред. Клюева

3. B. В. М.: Машиностроение, 2000. 496 с.

4. Брызгало В. А., Коршун А. М., Никаноров А. М., Соколова JI. П. Реки Дальнего Востока в условиях современного антропогенного воздействия // Вод. ресурсы. 2000. Т. 27. № 2. С. 245-253.

5. Ваганов П. А., Маляренко И. С. Количественное оценивание экологического риска в условиях неопределенности // Экологический риск: Материалы Второй всерос. конф. Иркутск: Изд во Ин - та географии СО РАН, 2001. С. 6-9.

6. Винберг Г. Г. Успехи лимнологии и гидробиологические методы контроля качества внутренних вод // Научные основы контроля качества вод по гидробиологическим показателям: Тр. Всесоюз. конф. J1.: Гид-рометеоиздат, 1981. С. 16-45.

7. Головлева JI. А., Головлев Е. J1. Микробиологическая деградация пестицидов // Успехи микробиологии. М.: Наука, 1980. Вып. 15.1. C. 137 179.

8. Головлева Л. А., Финкельштейн 3. И., Баскунов Б. П., Алиева Р. М., Шустова Л. Г. Микробиологическая детоксикация сточных вод коксохимического производства // Микробиология. 1995. Т. 64. № 2.1. С.197-200.

9. Готтшалк Г. Метаболизм бактерий. М.: Мир, 1982. 310 с.

10. Гуревич Ю. Л., Ладыгина В. П., Теремова М. И. Деградация техногенных потоков вещества сообществом микроорганизмов и простейших // Изв. РАН. Сер. биол. 1995. № 2. С. 226-230

11. Дзюбан А. Н., Кослапов Д. В., Кузнецова И. А. Микробиологические процессы в Горьковском водохранилище // Вод. ресурсы. 2001.1. Т. № 1. С. 47-57.

12. Димитриева Г. Ю. Микроорганизмы-биоиндикаторы фенольного загрязнения прибрежной морской среды // Биология моря. 1995. Т. 21. № 6. С. 407-411.

13. Димитриева Г. Ю., Христофорова Н. К., Дроздовская О. А., Тювеле-ва Е. Е., Димитриев С. М., Шевченко Л. С. Детоксикация фенола микроорганизмами прибрежной зоны моря // Микробиология. 1999.1. Т. 68. № 1. С. 107-113.

14. Димитриева Г. Ю. Планктонные и эпифитные микроорганизмы: индикация и стабилизация состояния прибрежных морских экосистем: Автореф. дис. докт. биол. наук. Владивосток, 1999. 47 с.

15. Дроздовская О. А. Поиск микроорганизмов- индикаторов и деструкторов фенолов в прибрежных водах дальневосточных морей: Автореф. дис. канд. биол. наук. Владивосток, 2000. 24 с.

16. Дрюккер В. В., Петрова В. И. Бактериопланктон реки Енисей. Новосибирск: Наука, 1988. 25 с.

17. Дударев О. В. , Боцул А. И., Аникеев В. В., Якунин JI. П., Колесов Г.М. Современное осадконакопление в эстуарии р. Амур // Тихооке-ан. геология. 2000. Т. 19, № 3. С. 30-43.

18. Дулов JI. Е. Превращение органических соединений в осадках эвт-рофного озера // Микробиология. 1996. Т. 65. № 1. С. 130-136.

19. Жуков Б. Д. Экологическое домостроение. Устройства и технологии децентрализованной очистки бытовых сточных вод: Аналит. обзор. -Новосибирск: СО РАН. ГПНТБ, 1999. 113 с.

20. Загоскина Н. В., Усик Т. В., Запрометов М. Н. Влияние длительности освещенности на фенольный метаболизм фотомиксотрофных каллус-ных культур чайного растения // Физиология растений. 1990. Т. 37. Вып. 6. С. 1089-1095.

21. Загоскина Н. В., Дубравина П. А., Запрометов М. Н. Особенности формирования хлоропластов и накопления фенольных соединений в фотомиксотрофных каллусных культурах чайного растения // Физиология растений. 2000. Т. 47. № 4. С. 537-543.

22. Запрометов М.Н. Основы биохимии фенольных соединений. М.: Высш. шк. 1974. 214 с.

23. Запрометов М. Н., Загоскина Н. В. Еще б одном доказательстве участия хлоропластов в биосинтезе фенольных соединений // Физиология растений. 1987. Т. 34. Вып. 1. С. 165-172.

24. Запрометов М. Н. Фенольные соединения: Распространение, метаболизм и функции в растениях. М.: Наука, 1993. 272 с.

25. Зефиров Н. С., Агапова С. Р., Булахова И. М., Терентьев П. Б., Васю-кова Н. И., Модянова JI. В. Микробиологические превращения азотсодержащих гетероциклических соединений // Изв. РАН. Сер. биол. 1995. № 3. С. 367-371.

26. Израэль Ю. А., Цыбань А. В. Антропогенная экология океана. JL: Гидрометеоиздат, 1989. 527 с.

27. Илялетдинов А. Н., Алиева Р. М. Микробиология и биотехнология очистки промышленных сточных вод. Алма-Ата: Гылым, 1990. 224 с.

28. Как организовать общественный экологический мониторинг / Васильева Е. А. и др.; Под ред. Хотулевой М. В. М.: Социально-Экологический Союз, 1997. 256 с.

29. Камшилов М. М.Некоторые результаты исследования круговота веществ и биологического самоочищения водоемов // Гидробиол. журн. 1977. T.XIII. № 1. С. 5 13.

30. Камшилов М. М., Флеров Б. А. Экспериментальное исследование фе-нольного отравления гидробионтов и деструкция фенола в модельных биоценозах // Влияние загрязняющих веществ на гидробионтов и экосистемы водоемов. Л.: Наука, 1979. С. 168-177.

31. Каретникова Е. А. Микробиологическая оценка детоксикации фенольных соединений в природных водах // Наука-Хабаровскому краю: Материалы II краев, конкурса работ молодых ученых и аспирантов. Владивосток-Хабаровск: ДВО РАН, 2000. С. 68-79.

32. Каретникова Е.А. Микроорганизмы индикаторы фенольного загрязнения пресноводных и морских прибрежных экосистем // Наука -Хабаровскому краю: Материалы III краев, конкурса работ молодых ученых и аспирантов. Владивосток-Хабаровск: ДВО РАН, 2001.С. 102112.

33. Каретникова Е. А., Волынец Е. И. Деструкция фенолов микробнымисообществами экосистемы реки Амур // Геохимические и эколого- биогеохимические исследования в Приамурье. Владивосток: Дальнаука, 2000. Вып. 10. С. 159-164.

34. Квасников Е. И., Клюшникова Т. М. Микроорганизмы-деструкторы нефти в водных бассейнах. Киев: Наук, думка, 1981. 132 с.

35. Кондратьева JI. М. Экологический риск от вторичного загрязнения водных экосистем // Экологический риск: анализ, оценка, прогноз: Материалы Всерос. конф. Иркутск, 1998. С. 50 -52.

36. Кондратьева JI.M. Вторичное загрязнение водных экосистем // Вод. ресурсы. 2000. Т. 27. № 2. С. 221-231.

37. Кондратьева JI. М. Микробиологические исследования экологического состояния реки Амур // Вестн. ДВО РАН. 2001. № 1. С. 57-71.

38. Кондратьева JI. М., Каретникова Е. А., Гладун Е. И., Чухлебова JI. М. Микробиологическая оценка экологического состояния р. Амур // Экологические проблемы бассейнов крупных рек-2: Междунар. конф. Тольятти, 1998. С. 207.

39. Кондратьева JI. М., Каретникова Е. А. Микробиологическая оценка минерализации органических веществ в присутствии экотоксикантов // Экологический риск: Материалы Второй всерос. конф. Иркутск: Изд-во Ин-та Географии СО РАН, 2001. С. 98-100.

40. Коновалова Т. И., Воробьева И. Б., Палкин О. Ю., Шеховцов А. И., Липатова Т. А. Основные подходы к определению понятия и классификации экологического риска // Экологический риск: анализ, оценка, прогноз: Материалы Всерос. конф. Иркутск, 1998. С. 16 19.

41. Кормилицын В. И., Цицкишвили М. С., Яламов Ю. И. Основы экологии. М.: Интерстиль, 1997. 365 с.

42. Костяев В.Я., Вайнштейн М.Б. Действие фенола на фотосинтез водорослей // Информ. бюл. Инст-та. биологии внутр. вод. АН СССР. 1970. N 6. С.5-8.

43. Кузнецов С. И., Дубинина Г. А. Методы изучения водных микроорганизмов. М.: Наука, 1989. 288 с.

44. Лисицын А. П. Маргинальный фильтр океанов // Океанология. 1994. Т. 34. № 5. С. 735-747.

45. Лукьяненко В. И. Экологические аспекты ихтиотоксикологии. М.: Аг-ропромиздат, 1987

46. Лурье Ю. Ю. Аналитическая химия промышленных сточных вод. М.: Химия, 1984. 448 с.

47. Майстренко В. Н., Хамитов Р. 3., Будников Г. К. Эколого-аналити-ческий мониторинг супетоксикантов. М.: Химия, 1996. 319 с.

48. Малый практикум по физиологии растений / Под ред. Мокроносова А. Т. М.: Изд-во МГУ, 1994. -184 с.

49. Макаренко А. А., Балашов С. В., Кувичкина Т. Н., Ильясов П. В., Решетилов А. Н. Штамм Comamonas testosteroni BS1310 (pBSlOlO) как основа биосенсорного анализатора сульфоароматических соединений // Прикл.биохимия и микробиология. 1999. № 3. С. 417-421.

50. Методы физиолого-биохимического исследования водорослей в гидробиологической практике. Киев: Наук, думка, 1975. 247 с.

51. Михайлов В. В., Кузнецова Т. А., Еляков Г. Б. Морские микроорганизмы и их вторичные биологически активные метаболиты. Владивосток: Дальнаука, 1999. 132 с.

52. Михеев В. С. Поблемы оценки и классификации экологического риска // Экологический риск: анализ, оценка, прогноз: Материалы Все-рос. конф. Иркутск, 1998. С. 3 5.

53. Недоросткова И. Г. Фенолы в заливе Петра Великого и их биологическое действие: Автореф. дис. канд. биол. наук. Владивосток, 2001. 24 с.

54. Перечень предельно допустимых концентраций и ориентировочно безопасных уровней воздействия вредных веществ для воды рыбохозяй-ственных водоемов. М.: ТОО «Мединор», 1995. 220 с.

55. Питьевая вода. Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения. Контроль качества. Санитарные правила и нормы СанПиН 2.1.4.559-96. М.: Информ.-изд. центр Госкомсанэпиднадзора России, 1996. 111 с.

56. Потенко Е. И. Химико экологическая оценка речных вод г. Уссурийска:органические вещества: Автореф. дис. канд. биол. наук. Владивосток, 2002. 26 с.

57. Практикум по микробиологии / Под. ред. Н. С. Егорова. М.: Изд-во Моск. Ун-та, 1976. 307 с.

58. Прозоровский В. Б. Озеро озеру рознь // Химия и жизнь. 1999. № 1. С. 33-35.

59. Пунтус И. Ф., Филонов А. Е., Кашелева И. А. Выделение и характеристика микроорганизмов- деструкторов полициклических ароматических углеводородов // Микробиология. 1997. Т. 66. № 2. С. 186-191.

60. Рапопорт В. J1. Идентификация нефтепродуктов при подготовке экспертного заключения по факту разлива нефти на р. Амур // Геолого-геохимические и биогеохимические исследования на Дальнем Востоке, Владивосток:Дальнаука, 1998. С. 115-123.

61. Родионов А. И., Клушин В. Н., Систер В. Г. Технологические процессы экологической безопасности / Основы энвайронменталистики. Калуга: Изд-во Н. Бочкаревой, 2000. 800 с.

62. Родина А. Г. Методы водной микробиологии: Практ. руководство. М.: Наука, 1965. 363 с.

63. Семенова В. Д. Экологический риск и экологический ущерб // Экологический риск: Материалы Второй всерос. конф. Иркутск: Изд-во Ин-та Географии СО РАН, 2001. С. 125 126.

64. Синельников В. Е., Голованова И. JI., Ягодка Н. Л., Лапирова Т. Б. Последействие продуктов превращения фенола на донные отложения // Гидробиол.журн,. 1979. Т. XV. № 1. С. 94-99.52.

65. Сиренко Л. А. Эвтрофирование континентальных водоемов и некоторые задачи по его контролю / Научные основы контроля качества вод по гидробиологическим показателям: Тр. Всесоюз. конф. Л.: Гид-рометеоиздат, 1981. С. 137-153.

66. Сиренко JI. А., Козицкая В. Н. Биологически активные вещества водорослей и качество воды. Киев: Наук, думка, 1988. 256 с.

67. Старовойтов И. И. Эволюция катаболитических путей у бактерий/ Сб. Вопросы эволюции бактерий. Пущино, 1984. С. 63-79.

68. Столбунов А. К. О микробиальных процессах распада фенолов в р. Волге и ее водохранилищах// Гидробиол. журн. 1976. Т. 12. № 1,1. С. 33-39.

69. Столбунов А. К. Фенол- и роданразрушающая микрофлора как фактор естественного самоочищения Днепропетровских водохранилищ // Гидробиол. журн. 1971. Т. \/П. № 2. С. 11-19.

70. Стом Д. И., Бейм А. М. Действие фенолов на некоторые виды водорослей // Гидробиология. 1976. Т. 12. №. 6. С. 57-58.

71. Стом Д. И., Гиль Т. А., Балаян А. Э. Мехинизмы токсичности гидрохинона в присутствии фенолов // Гидробиол. журн., 1985. Т. 21.1. С. 88-90.

72. Стом Д. И., Гиль Т. А., Балаян А. Э. Бактериальная люминесценция и биотестирование. Иркутск: Изд-во Иркут. Ун-та, 1993. 152 с.

73. Стом Д. И. Нечаева В. И., Иванова Г. Г. О локализации дисульфид-ных связей в клетках нителлы и влияние на них полифенольных соединений // Цитология. 1978. Т. 20. № 9. С. 1097-1100.

74. Суворовцева Э. Г., Ивойлов В. С.,Беляев С. С. Физиолого биохимические свойства штамма Beijerinckiamobilis 1ф Phn+ - деструктора полициклических ароматических углеводородов // Микробиология. 1999. Т. 68. № 6. С. 845-850.

75. Суворовцева Э. Г., Ивойлов В. С., Беляев С. С. Разрушение ароматической фракции нефти ассоциацией грамположительных и грамотри-цательных микроорганизмов // Микробиология. 1997. Т. 66. № 1.1. С. 78-83.

76. Тиссо Б., Вельте Д. Образование и распространение нефти / Пер. с англ. М.: Мир, 1981. 501 с.

77. Трансформация продуктов фотосинтеза / Под ред. Бекера М.Е. Рига: Зинатне, 1984. 252 с.

78. Флеров Б. А. Физиологические механизмы действия токсических веществ и приспособления к ним водных животных // Гидробиол. журн. 1977. Т. XIII. №. 4. С. 80 85.

79. Фомин Г. С. Вода. Контроль химической, бактериальной и радиационной безопасности по международным стандартам. М.: Протектор, 1995. 624 с.

80. Христофорова Н. К. Основы экологии. Владивосток: Дальнаука, 1999. 516 с.

81. Цыбань А. В., Теплинская Н. Г., Пфейфере М. Ю., Баринова С. Б. Микробиологическая индикация качества морской среды // Научные основы контроля качества вод по гидробиологическим показателям. Тр. Всесоюз. конф. JI.: Гидрометеоиздат, 1981. С. 90-109.

82. Черникова Э. Н., Нарбут Н. А. Задачи и методы изучения загрязнения природных и сточных вод фенолами // Рациональное природопользование в условиях Дальнего Востока (задачи и направления). Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1981. С. 85 94.

83. Черникова Э. Н., Нарбут Н. А. Биологическое воздействие фенолов и методы их определения в речных и сточных водах // Формирование природных вод Дальнего Востока. Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1983. С. 145 -156.

84. Шапоренко С. И. Загрязнение прибрежных морских вод России // Вод. ресурсы. 1997. Т. 24. № 3. С. 320 327.

85. Шлегель Г. Общая микробиология / Пер. с нем. М.: Мир, 1987. 567 с.

86. Ampe F., Leonard D., Lindley N. D. Repression of Phenol Catabolism by Organic Acids in Ralstonia eutropha II J. Appl. Environ. Microbiol. 1998. V. 64. N. 1. P. 1-6.

87. Andreson Т., Forlin L. Biochemical and Physiolgical Disturbans in Fish Inhelting Coastal Waters Polluted with Bleached Kraft Mill Effluents // Mar. Environ. Res. 1988. V. 4. N. 1. P. 233 236.

88. Benner R., Ziegler S. Do photochemical transformations of dissolved organic matter produce biorefractory as well as bioreactive substrates // Proceedings of the 8th Inter. Symposium on Microbial Ecology, Halifax. Canada, 2000, P. 181-191.

89. Breinig S., Schiltz E., Fuchs G. Genes Involved in Anaerobic Metabolism of Phenol in the Bacterium Thauera aromatica II J. Bacterid. 2000. V. 182. N. 20. P. 5849-5863.

90. Canada K. A., Iwashita S., Shim H., Wood Т. K. Directed Evolution of Toluene ortho Monooxygenase for Enhanced 1- Naphthol Syntesis and Chlorinated Ethene Degradation // J. Bacterid. 2002. V. 184. N. 2. P. 334349.

91. Caselli L., Hanau S. Degradation of Aromatic Compounds by Trichosporon sp. II Boll. Soc. Biol. Sper. 1994. Y. 70. N.4. P. 83-88.

92. Chapman P. J., Ribbons D. W. Metabolism of resorcinolic coumpounds by bacteria: Alternative pathway for resorcinol catabolism in Pseudomonasputida // J. Bacteriol. 1976. V. 125. P. 974-984.

93. O'Connor К. E., Witholt В., Duetz W. p-Hydroxyphenyllacetic Acid Metabolism in Pseudomonas putida. F6 // J. Bacteriol. 2001. V. 183. N. 3. P. 928-933.

94. Ehrt S., Ornston L. N., Hillen W. RpoN (sigma 54) is Required for Conversion of Phenol to Catechol in Acinetobacter calcoaceticus // J. Bacteriol. 1994. Vol. 176. N. 12. P. 3493-3499.

95. Gaal A., Neujahr H. Y. Metabolism of phenol and resorcinol in Trichosporon cutaneum // J. Bacteriol. 1979. V. 137. P. 13-21.

96. Haggblom M. M. Microbial Breakdown of Halogenated Aromatic Pesticides and Related Compounds // FEMS Microbiol. Rev. 1992. V. 103. N. 1.1. P. 29-72.

97. Haggblom M. M., Nohyhek L. J., Salrinoja-Salomen. Degradation and o-Methylation of Chlorined Phenolic Compounds by Rhodoccoccus and Mycobacterium II J. Appl. and Environ. Microbiol. 1988 V. 54. N. 12.1. P. 3043-3052.

98. Harwood C. S. Anaerobic Metabolism of Aromatic Compounda via the Benzoyl-CoA Pathway // FEMS Microbiol. Rev. 1998. V. 22. N. 5. P. 439458.

99. Hatchinson D. H., Robinson C. W. Kinetics of the Simultaneous Batch Degradation of p-Cresol and Phenol by Pseudomonas putidall J. Appl. and Environ. Microbiol. 1988. V. 29. N. 6. P. 599-604.

100. Herndi G. J., Arrieta J. M., Kaiser E., Obernosterer I., Pausz C., Reitner B. Role of Ultraviolet Radiation in Aquatic Systems: Interaction Between

101. Mixing Processes, Photochemistry and Microbial Activity // Proceedings of the 8th Inter. Symposium on Microbial Ecology, Halifax. Canada, 2000, P. 209-216.

102. Hradzina G. Natural Phenols in Plant Resistance// Acta Horticult. 1994. V. 381. P. 86-93.

103. Jones К. H., Trudgiu P. W., Hopper D. J. Evidence of Two Pathways for the Metabolism of Phenol by Aspergilus fumigatus I/ J. Arch. Microbiol. 1995. V. 163. N. 3. P. 176-181.

104. Johnson B.T., E.E. Little & A. N. Butorin. Rapid toxicity assessment of photoactivated environmental pollutants with bioluminescent bacteria., ASM 95th General Meeting May 21-25 1995, Washington D.C., USA.

105. Kazumi J., Haggblom M. M., Young L. Y. Degradation of Monoclorinated and Nonchlorinated Aromatic Coumpounds under Iron-Reducing Conditions // J. Appl. and Environ. Microbiol. 1995. V. 61. N. 11. P. 40694073.

106. Kim I. C., Oriel P. J. Characterization of the Bacillus stearothermophilus BR219 Phenol Hydroxylase Gene // J. Appl. and Environ. Microbiol. 1995. V. 61. N. 4. P. 1252-1256.

107. Kochar Gurvinder Singh, Kahlon Rachhpal Singh Degradation of 2,4-dichlorophenoxy-acetic acid by Immobilized Cells of Pseudomonas putida II J. Gen. And Appl. Microbiol. 1995. V. 41. N. 4. P. 367-370.

108. Korhonen M., Oikari A. Bioconcentration of Chlorophenol Compounds by the Fresh Water Mussel Anodonta piscinalis II Raporttisar Joensuum. 1986. N. 8. P. 64 65.

109. Krooneman J., Moore E., Van Velzen J., Prins R., Forney L., Gottschal J. Competition for oxygen and 3-clorobenzoate between two aerobic bacteria using different degradation pathways// FEMS Microbiol.Ecol. 1998. V. 26. N. 3. P. 171-179.

110. Krug M., Straube G. Degradation of Phenolic Compounds by the yeast

111. Candida tropicalis HP15.II. Some Propeties of the First Two Enzymes of the Degradation Pathway // J. of Basic Microbiol. 1986. V. 26. N. 5. P.271-282.

112. Lack A., Fuchs G., Carboxilation of Phenylphosphate by Phenol Carboxylase, an Enzyme System of Anaerobic Phenol Metabolism // J. Bacteriol. 1992. V. 174. N. 11. P. 3629-3636.

113. Matern U. Natural Phenolics as Stress Metabolites // Acta Horticult. 1994. V. 381. P. 448-462.

114. Mesarch M. В., Nakatsu С. H., Nies L. Development of Catechol 2,3-Dioxygenase-Specific Primers for Monitoring Bioremediation by Competitive Quantitative PCR // J. Appl. and Environ. Microbiol. 2000. V. 66. N. 2. P. 678-683.

115. Molander S., Hishek H. Effects of 4, 5, 6 Trichlorog uacol of Periphyton Communities from Water Mesocosms // Water Sci. and Technol. 1988. V. 20. N. 2. P. 193 - 196.

116. Nomani A. A., Ajmal M., Ahmad S. GAS chromatography-Mass spectrometric Analysis of Four Polluted River Waters for Phenolic and Organic Compounds // Environ. Monit. and Assess. 1996. V. 40. N 1. P. 1-9.

117. Philipp В., Sclink B. Evidence of Two Oxidative Reaction Steps Initiating Anaerobic Degradation of Resorcinol (1,3-Dihydroxybenzene) by the Denitrifying Bacterium Azoarcus anaerobicus /I J. Bacteriol. 1998. V. 180. N. 14. P. 3644-3649.

118. Reineke W. Construction of Bacterial Strains with Novel Degradative Capabilities for Chloroaromatics // J. of Basic Microbiol. 1986. V. 26. N. 9. P. 551-567.

119. Reshetilov A. N., Iliasov P. V., .Slepenkin A. V., Grechkina G. M., Starovoitov I.I. Pseudomonas-Based Amperometric Detection of Biphenyl and Chlorinated Benzoates // Anal. Letters. 1999. N. 32. P. 11-32.

120. Schie P. M., L. Y. Young Isolation and Characterization of Phenol-Degrading Denitrifying Bacteria // J. Appl. and Environ. Microbiol. 1998. V. 64. N 7. P. 2432-2438.

121. Schirmer F., Ehrt S., Hillen W. Expression, Inducer Spectrum, Domain Structure, and MopR, the Regulator of Phenol Degradation in Acinetobacter calcoaceticus NCIB8250//J. Bacteriol. 1997. V. 179. N 4. P. 1329-1336.

122. Selifonov S. A., Grifoll M. A., Eaton R. W., Chapman P. J. Oxidation of naphtenoaromatic and methyl-substituted aromatic compounds by naphthalene 1,2-dioxigenose // Appl. & Environ. Microbiol. 1996. 62. N. 2. P. 502-514.

123. Shen H., Wang Y. T. Simultaneous Chromium Reduction and Phenol Degradation in a Coculture of Escherichia coli ATCC 33456 and Pseudomonas putida DMP-1 // J. Appl. and Environ. Microbiol. 1995. V. 61. N. 7. P. 2754-2758.

124. Shields M. S., Reagin M. J., Gerger R. R., Campbell R., Somerville С. TOM, a New Aromatic Degradive Plasmid from Burkholderia (Pseudomonas) cepacia G4 // J. Appl. and Environ. Microbiol. 1995. V. 61, N. 4. P. 13521356.

125. Stiner L., Halverson L. J. Development and Characterization of a Green Fluorescent Protein Based Bacterial Biosensor foe Bioavailable Toluene and Related Compounds // J.Appl. and Environ. Microbiol. 2002. V. 68. N. 4. P. 1962-1971.

126. Straskraba M., Tundisi J. G. Reservoir Water Quality Management // Guidelines of Lake Managenent. 1999. V. 9.

127. Tchaikovskaya O., Sokolova I., Kuznetsova R., Swetlichnyi V., Kopylova Т., Mayer G. Fluorescence Investigations of Phototransformation of Phenol in Aqueous Solutions // J. of Fluorescence. 2000. V. 10. N 4. P. 403-408.

128. Tranvik L. J., Olofsson H., Bertilsson S. Photochemical Effects on Bacterial Degradation of Dissolved Organic Matter in Lake Water // Proceedings ofthe 8th Inter. Symposium on Microbial Ecology, Halifax. Canada, 2000, P. 193-200.

129. Villemur R. Coenzyme A Ligases Involved in Anaerobic Biodegradation of Aromatic Compounds // Can. J. Microbiol. 1995. V. 41. N.10. P. 855-861.

130. Watanabe Kazuya, Teramoto Maki, Harayama Shigeaki An Outbreak of Nonflocculating Catabolic Populations Caused the Breakdown of a Phenol-Digesting Activated-Sludge Process // J. Appl. and Environ. Microbiol. 1999. V. 65. N. 7. P. 2813-2819.

131. Wise A. A., Kuske C. R. Generation of Novel Bacterial Regulatory Proteins That Detect Priority Pollutant Phenols // J. Appl. and Environ. Microbiol. 2000. V. 66. N. 1. P. 163-169.

132. Whiteley A. S., Bailey M. J. Bacterial Community Structure and Physiological State within an Industrial Phenol Bioremediation System // J. Appl. and Environ. Microbiol. 2000. V. 66. N. 6. P. 2400-2407.

133. Wrenn B. A., Venosa A. D. Selective Enumeration of Aromatic and Aliphatic Hydrocarbon Degrading Bacteria by a Most Probable Number Procedure // Can. J. Microbiol.1996. 42.N. 3. P252-258.

134. Zhao J.-S., Singh A., Huang X.-D., Ward O. P. Biotransformation of Hydroxylaminobenzene and Aminophenol by Pseudomoncis putida 2NP8 Cells Grown in Presence of 3 Nitrophenol // J. Apll. and Environ. Microbiol. Vol. 66.N. 6. P. 2336 - 2342.