Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Особенности формирования цианобактериального сообщества в техногенных экосистемах

ВАК РФ 03.00.18, Гидробиология

Автореферат диссертации по теме "Особенности формирования цианобактериального сообщества в техногенных экосистемах"

Московский Государственный Университет им. М.В. Ломоносова Биологический факультет^ ^^

I 9 ' О

На правах рукописи

Саинов Дамир Ильдарович

ОСОБЕННОСТИ ФОРМИРОВАНИЯ ЦИАНОБАКТЕРИАЛЪНОГО СООБЩЕСТВА В ТЕХНОГЕННЫХ ЭКОСИСТЕМАХ (НА ПРИМЕРЕ ЭРИШЬША Р1АТЕ№Ю)

Специальность: 03.00.18 - Гидробиология

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Москва 2000

Работа выполнена на кафедре "Инженерной экологии и природообустройства" в Астраханском государственном техническом университете

Научный руководитель: доктор биологических наук, профессор И.С. Дзержинская

Научный консультант: кандидат биологических наук, доцент А.Г. Дмитриева

Официальные оппоненты, доктор биологических наук, профессор Ю.Г. Симаков

доктор технических наук, профессор И.В. Скирдов

Ведущая организация:

Федеральное государственное унитарное предприятие "Каспийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства" (г. Астрахань)

Защита состоится 15 декабря 2000 г. в 15 ч. 30 мин. на заседании специализированного совета Д.053.05.71 по защите диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук в Московском государственном университете им. М.В. Ломоносова по адресу: 119899, Москва, Воробьевы Горы, МГУ, Биологический факультет, ауд. 557.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Биологического факультета МГУ.

Автореферат разослан 14 ноября 2000 г.

Ученый секретарь Совета, к.б.н. А.Г.Дмитриева

Н¥6/ . ZW.HH , о

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность исследования. Особенностью современного состояния охраны окружающей среды является неэффективность работы очистных сооружений, что привело к избыточной нагрузке на естественные процессы самоочищения водных экосистем и постепенному накоплению загрязняющих веществ в окружающей среде. В сложившейся ситуации основная роль в снижении уровня токсичности компонентов сточных вод отводится природным и искусственным микробиологическим комплексам.

Теоретические и практические исследования в этой области показали нерешенность таких задач как направленное изменение и управление видовым составом микроорганизмов экспериментальных техногенных экосистем, так и искусственным созданием новых сообществ с заданной видовой структурой, с учетом устойчивости сообществ к веществам антропогенного происхождения / Мишустин, 1975; Одум, 1975; Уильямсон, 1975; Дзержинская, 1993 /.

При деградации чужеродных соединений в водных экосистемах достаточно полное потребление компонентов субстрата достигается за счет мобилизации ферментативной способности микросообществ, заключающейся в сочетании процессов кометаболизма с комменсализмом. При этом естественно складывающиеся ассоциации - отнюдь не самые эффективные, поскольку некоторые микроводоросли могут выступать в роли "загрязнителей", вызывающих цветение водоемов при эвтрофикации /УеЫкатр, ,1аппазс11, 1972; Градова, Ковальский, 1975; Малашенко и др., 1975, Печуркин, 1981; Дзержинская, 1993/. В настоящее время в мировой практике для очистки сточных вод различного состава находят применение искусственно

создаваемые микросообщества, не имеющие в своем составе возбудителей цветения водоемов.

Целью настоящей работы явилось создание альгобактериального сообщества на основе 8ршл1та рк^егшз /ИогсМесИ/ ОеШсг, способного к деструкции органических соединений в водных.

В связи с этим были поставлены следующие задачи:

1) определить жизнеспособность ряда штаммов 5. рЫет!5 при вселении в модели систем, имитирующих сточные воды комплексного состава.

2) создать оптимальное альгобактериальное сообщество на основе & рШггшз и исследовать его таксономический состав.

3) изучить структурные и физиологические аспекты функционирования альгобактериального сообщества в моделях -отстойниках очистных сооружений.

4) выявить способность созданного альгобактериального сообщества

к деструкции органического вещества.

Научная новизна работы. Впервые получены новые альгобактериальные сообщества на основе устойчивых к сточным водам комплексного состава штаммов рЫетгз /САШ - 532 и САШ -603/, и определен их оптимальный таксономический состав. Исследованы изменения структуры сообщества при вселении его в воды различного химического состава и способность к деструкции органических веществ сточных вод.

Практическая значимость. Показана возможность применение полученных сообществ на основе рШет\$ для очистки сточных вод и разработан способ очистки буровых растворов от органических соединений. Результаты работы используются в курсах лекций по

технической микробиологии, инженерной экологии, читаемых студентам, стажерам и аспирантам Астраханского государственного технического университета.

Апробация работы. Основные положения и материалы диссертационной работы были представлены на Всероссийской конференции "Интродукция микроорганизмов в окружающую среду" /Москва, 1994/, Международной конференции "Каспий - настоящее и будущее" /Астрахань, 1995/, научно-практической конференции "Проблемы экологической безопасности Нижнего Поволжья в связи с разработкой и эксплуатацией нефтегазовых месторождений с высоким содержанием сероводорода" /Саратов, 1996; Астрахань, 2000/.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 117 страницах машинописного текста. Она состоит из введения, 3 глав, заключения, выводов, списка литературы, включающего 147 источников, втом числе 83 иностранных; приложений, иллюстрирована 10 рисунками и 12 таблицами.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ АНАЛИЗА

Материалом для написания работы послужили 10-летние /19901999/ исследования серусодержащих сточных вод техногенных экосистем Астраханского газоконденсатного завода /АГПЗ/, Астраханского рыбокомбината /АРК/, комплексного состава / включающего стоки целлюлозно-картонного комбината, гидролизно-дрожжевого завода, завода резиновой обуви, бетонных конструкций, силикатных изделий/, и их моделей в лабораторных условиях. Объектами исследований явились штаммы р/я/еши САШ-532, САШ-548, САЬи-бОЗ, полученные из коллекции Ленинградского государственного университета, и микросообщества, выделенные в

процессе работы. Для моделирования процесса деструкции трудноразлагаемых компонентов сточных вод в лабораторных условиях использовался метод естественных и гнотобиотических микроэкосистем /Одум, 1986/. Гидрохимический, гидробиологический и микробиологический анализы осуществлялись в соответствии с общепринятыми методами /Жадин, 1956; Родина, 1965; Марголина, 1968; Лурье, 1973; Романенко, Кузнецов, 1974; Кузнецов, 1976; Теппер, 1976; Новиков и др. 1981/.

Таксономический состав сообщества и его структуру определяли путем микроскопирования с использованием камеры Нажотга. Количество микроорганизмов определяли методом прямого счета по Разумову /1932/, численность морфологических и физиологических групп - с помощью предельных разведений и высева на плотные питательные среды: питательный агар /РПА/, голодные агары по Романенко /1973/, агар Чапика, крахмальный агар, нитрат агар по Теппер /1976/, сусло-агар, среда Таусона. Чистые культуры бактерий получали по принципам Минкевича, стрептомицеты и микромицеты - уколом на агаризованных средах /Родина, 1965; Романенко, Кузнецов, 1974; Антипчук, 1979/

Состав микросообществ, включающий цианобактерии, бактерии, микромицеты, микроводоросли, простейшие идентифицировали по общепринятым методам /Определитель пресноводных водорослей СССР, 1986; Комаренко и др., 1953; Родина, 1965; Пидопличко, 1972; Милько, 1974; Киселев, 1976; Федоров, 1979; Берги, i980; Ломова 1981; Гаузессоавт., 1983; Скворцова, 1984; Атласу Фауна аэротенков, 1984/. Измерения размеров клеток бактерий и микроводорослей, с последующим расчетом их биомассы, проводились

по следующим формулам /Родина, 1965; Федорова, 1979/. При выделении ассоциантов сообщества исследовались как части самого тяжа, так и окружающая его водная среда /Дзержинская, 1993/. Статистическая обработка результатов проведена с использованием программы "81а1^арЫсз".

ОСНОВНЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Глава I. Определение жизнеспособностн штаммов рШепхк при вселении в сточные воды комплексного состава

Как показали исследования последних лет, сообщества на основе цианобактерий обладают уникальными деструкционными способностями по отношению к целому ряду легко и трудноразлагаемых органических веществ - загрязнителей окружающей среды /Дзержинская, 1993/.

Принимая во внимание некоторые отрицательные стороны жизнедеятельности синезеленых водорослей, связанные с "цветением" водоёмов, нами для исследований были выбраны не обладающие токсическим действием штаммы САШ-532, САШ-548 и САШ-бОЗ цианобактерии - 5. рШетгэ ГЫогйяг/ ОеЫег из коллекции водорослей Ленинградского государственного университета. В качестве техногенных экосистем выбраны пруды - отстойники и нефтеловушки очистных сооружений, модели которых представлены микроэкосистемами на основе серусодержащих сточных вод. В виде контрольного варианта применялась питательная среда /Громова, Титова, 1983/, используемая при сохранении культур в коллекции водорослей Ленинградского государственного университета и обозначаемая далее как лабораторная или № 16.

Таблица 1

Основные химические показатели исследуемых сточных вод

Ингредиенты, мг/л Сточные воды

Комплексного состава Газоконденсатного завода Рыбокомбината

РН 7.0 — 8.9 5.6 — 7.2 6.8 — 7.7

Бихроматная окисляемость 960.0 — 1930.0 1000.0 — 2150.0 2000.0 — 2433.0

БПК3 240.0 — 480.0 100.0 — 305.0 1600.0 — 1780.0

Растворенный кислород 1.0 — 3.4 0 — 1.0 1.0

Хлориды не обнаружены 70.0 — 600.0 1742.0 — 1760.0

Азот общий 600.0 — 800.0 121.0 — 224.0

Сульфаты 90.5 — 81.8 100.0 — 800.0 22.5 — 23.2

Тиосульфат 67.2 —95.6 Следы не обнаружены

Фосфор (Р2О5) 10.0 — 15.0 Следы 2.0 — 2.4

Сульфатный лигнин 150.0-400.0 не обнаружены не обнаружены

Латекс 50.0-110.0 не обнаружены не обнаружены

ПАВ 0.1-1.0 Следы 0.1-0.7

Нефтепродукты 32.0-64.0 0.01-950.0 0.1-1.0

Фенолы 1.58-2.4 0.01-1500.0 0.04-0.74

Фурфурол 0.9-1.7 не обнаружены не обнаружены

Сульфиды 3.2-4.3 Следы Следы

Сероводород 20.0-30.0 40.0-3000.0 34.0-41.0

Меркаптаны 10.0-13.4 1.3-1.7 Следы

Инсектициды тиурам /следы/ не обнаружены не обнаружены

Другие соединения воска, смолы, полиакриламид, фталат, канифоль, креатин, креатинин, гуминовые вещества гликоли, гуминовые вещества

Особенностью сточной воды комплексного состава являетсяприсутствие таких трудноразлагаемых соединений как сульфатный лигнин, латекс, нефтепродукты, фурфурол, значительное количество серных соединений /меркаптан -10.0-13.4 мг/л, сероводород - 20.0-30.0 мг/л/, щелочная реакция среды (табл.1).

Микробиологический и гидробиологический анализ сточной воды выявил присутствие в ней микромицетов, единичных клеток фотосинтезирующих, пурпурных серных и зеленых серных бактерий. Среди гетеротрофных микроорганизмов преобладали бациллярные и кокковые формы, актиномицеты и стрептомицеты, псевдомонады. Из зоопланктона обнаружены ветвистоусые и веслоногие ракообразные, а так же коловратки. В присутствии гормогониевых цианобактерий ОзсШаШпа ¡р., АрИатготепоп ¡р., БсЫгоЛпх зр., Lyngbya ¡р., ЫозЮс яр., АпаЪаепа эр. отмечены пеннантные диатомовые, хлорококковые и хлорсарциновые зеленые и эвгленовые водоросли, а также жгутиковые формы.

В целях определения степени жизнеспособности исследуемых штаммов спирулины их инокулировали в микроэкосистемы на основе сточной воды комплексного состава в количестве, превышающем биомассу других СуапорИуШ /СуапоЬаМеИа/ в сточной воде более чем в два раза, для того, чтобы аборигенные микроорганизмы в процессе жизнедеятельности не вытесняли "вселенцев".

Физиологическую активность изучаемых штаммов оценивали по выходу переменной флуоресценции и выделению кислорода /рис. 1, рис. 2/.

Эксперименты показали, что при возмущающем воздействии среды, устойчивость опытных популяций к токсическим агентам была различной. За 30 суток инокуляции на лабораторной среде у штамма

САШ - 603 наблюдается наибольший выход переменной флуоресценции - 0.60 относительных единиц /рис. 1/, а у штаммов САШ - 548 и САШ -532 - ниже и равен 0.57 и 0.54 отн. ед. соответственно. При инокуляции штаммов в микроэкосистемы на сточной воде комплексного состава через 30 суток экспозиции выход переменной флуоресценции у штамма САШ - 532 определен в 0.52 отн. ед., у САШ - 603 - 0.51 отн.ед. и у САШ - 548 в 0.47 отн. ед /рис.1/. К концу эксперимента наблюдается значительный спад физиологической активности штамма САШ - 548, что, по нашему мнению, обусловлено его низкой устойчивостью к воздействию токсикантов.

Известно, что более устойчивыми к токсическим воздействиям среды являются не монокультуры, а ассоциации и консорциумы микроорганизмов. /Печуркин, 1981; Дзержинская, 1993/. Для создания такой ассоциации были использованы штаммы САШ - 603 и САШ -532 З.р/дгети, показавшие в эксперименте большую физиологическую активность в условиях внешнего возмущения среды.

Первоначально клетки штаммов САШ - 532 и САШ - 603 вселяли в лабораторную среду Громова № 16 с начальной плотностью 2.4x10® и 3.3x10® клеток/мл. /соответственно/ и выращивали совместно в течение 30 суток. Физиологическая активность микросообщества по истечению указанного срока была определена в 0.56 отн.ед. Далее данную ассоциацию в том же количестве и в таком же соотношении, как и в случаи с лабораторной средой, инокулировали в микроэкосистемы, созданные на основе сточной воды комплексного состава. К окончанию 30-ти суточной экспозиции физиологическая активность составила - 0.52 отн. ед. и была выше, чем у монокультур / рис. 1/.

,-Р„/Р„

0,75

ч

" 0,73 о 0,71

3 °.69 | 0,67

р. 0,65 о

& 0,63

5 0,59 |0,57 | 0,55

I 0.53

И

0,51 0,49 0,47 0,45

(■В-

•в-... •О-.. '

"•-О

Сточная вода комплексного состава А САШ-548 ■ САШ-532 —•—САШ-603

—•— ассоциация САШ-532 и САШ603

20 30

Суточная экспозиция

Лабораторная среда -Д-.- САШ-548 -Е>-- САШ-532 САШ-603 - О- - • ассоциация САШ-532 и САШ-603

Рис. 1. Выход переменной флуоресценции инокулнрованных штаммов 5. р1а1егт5 в микроэкосистемах на основе сточной воды комплексного состава.

Фотосинтетическую активность ассоциации штаммов 5. р/аГе/м« изучали в микроэкосистемах на серусодержащих сточных водах комплексного состава, рыбокомбината и газоконденсатного завода, основные химические показатели, трудноразлагаемые органические вещества и токсиканты которых приведены в таблице №1. Гидрохимический анализ показывает, что сточные воды

рыбокомбината характеризуются высокой трофностью и нейтральной реакцией среды, а также присутствием сероводорода /34 - 41 мг/л/. Значительным содержанием сероводорода /до 1500.0 мг/л/ отличаются сточные воды газоконденсатного завода, которые имеют кислую реакцию среды и значительное количество нефтепродуктов /2.2 - 50.0 мг/л/. Как известно, оптимальные питательные среды /гаггоик, 1966; Громов, Титова, 1983/ для выращивания культуры Б. рЫег^э лимитированы карбонатным источником углерода /при рН 10.0/ и содержит в своем составе соли №НС(Э3, К2НР04, Ыа2Ы03, К2Б04, ЫаС1, М^БО,, СаС12, Ре2304 и микроэлементы.

14,0 13,0 12,0 11,0 10,0 9,0 8,0 7,0 6,0 5,0 4,0 3,0 2,0 1,0 0,0

гг ¿1

_ШГ

—

1

г-

1 , Ш

П итательная среда

Сточные воды комплексного состава

Сточные воды рыбокомбината

Сточные воды газоконденсатного

0 вода без инокулянта оСАЬи 532 аСАЬи 603 и САШ 548 и ассоциация

САШ .532 , ¡САШ. -603

Рис. 2. Содержание кислорода в микроэкосистемах на питательной среде и в различных стоках с инокулированными штаммами и ассоциацией S.platensis.

и

Исследования показали, что содержание кислорода в микроэкосистемах через 14 суток инокуляции на среде выращивания было выше, чем в микроэкосистемах на сточных водах /рис.2 /.

Наибольшее содержание кислорода по сравнению с контролем отмечена при инокулировании штамма CALU - 603 на питательной среде /12.8 мг/л/, несколько ниже /11.4 мг/л/ эта степень у ассоциации, а в микроэкосистемах со штаммами CALU - 548 и CALU - 532 количество растворенного кислорода составляет 9.3 и 8.7 мг/л соответственно / рис.2/.

Среди микроэкосистем, имитирующих отстойники очистных сооружений, наибольшая окислительная способность обнаружена на сточных водах рыбокомбината. По сравнению с количеством кислорода /1.2 мг/л/ в контрольных /без инокуляции/ микроэкосистемах, в присутствии всех трех штаммов и ассоциации при вселении ассоциации в этих микроэкосистемах содержание кислорода увеличивается /рис.2/ . Необходимо отметить, что в микроэкосистемах на основе сточных вод рыбокомбината с включением штаммов CALU - 532 и CALU - 603 содержание кислорода выше, чем в присутствии штамма CALU - 548. При вселении ассоциации / CALU - 532 и CALU - 603/ этот показатель еще более возрастает до 4.6 мг/л /рис.2/. Такая же тенденция просматривается и при сравнении фотосинтетической активности штаммов и ассоциации S. platensis в микроэкосистемах на сточных водах комплексного состава и газоконденсатного завода. Исследования показали, что на питательной среде показатели фотосинтетической активности и содержание кислорода всех изученных штаммов S.platensis и ассоциации были в 3-4 раза выше, чем в микроэкосистемах на

серусодержащих сточных водах.

Поэтому можно считать, что серусодержащие сточные воды оказывают токсическое воздействие на жизнедеятельность вселяемых штаммов. В тоже время летального эффекта у исследуемых популяций не обнаружено. Таким образом, ассоциация, включающая штаммы САЬи - 532 и САЬи - 603 Я.р/аГеи.я'.з, имела наиболее высокую фотосинтетическую активность согласно выхода переменной флуоресценции и показала наибольшую устойчивость к действию токсических веществ, содержащихся в сточных водах комплексного состава, рыбокомбината и газоконденсатного завода.

Глава П. Исследование структуры сообщества сформировавшегося на основе Д. рШешк

Наблюдения за микроэкосистемами на основе серусодержащей сточной воды комплексного состава с вселенными штаммами 51. рЫегмй показали, что на поверхностном слое воды, граничащим с воздушным пространством, образуются синезеленыетяжи. При этом стенки сосудов покрываются сплошными зелеными обрастаниями, часть которых оседают на дно в виде отделившихся хлопьев.

Исследование структурной организации образовавшегося сообщества выявило в нем наличие фотосинтезирующих организмов, гетеротрофов, а также коловраток и нематод. Доминантной формой, определяющей основное функциональное звено в полученном гидробиоценозе /как в морфологическом, так и в физиологическом аспектах/ являются штаммы цианобактерии 5. рЫет1з. Экскретируемые ею экзогенные слизи образуют желеобразные матриксы, то есть тяжи в виде слабых гелей со скоплениями трихом, переплетенных в разноструктурные пучки, дерновинки. На поверхности гелеобразного

скопления и внутри него беспорядочно располагаются нити цианобактерий, слизистые колонии бактерий, отдельные экземпляры микроводорослей из числа зеленых и диатомовых, ресничные инфузории, коловратки, нематоды, жгутиковые.

Пространственно ориентированные микроорганизмы в исследуемом тяже определяют его стратификацию, причем принадлежность преобладающих и сопутствующих форм к тому или иному вертикальному слою лимитировано плотностью слизистой массы. Верхний слой многоярусного субстрата представлен в виде мицелия следующих родов микромицетов - Pénicillium, Acladium, Aspergillus и стрептомицетов. Фототрофные бактерии, скрепленные слизистыми образованиями, формируют второй слой. Третий слой включает различных представителей следующих отделов: Cyanobacteria, Bacteria, Chlorophyta и Bacillariophyta, которые прикрепляются своими экзогенными выделениями ко второму слою. Обнаруженные у выделенного сообщества структурные особенности аналогичны данным полученным Дзержинской И.С. /1993/ при исследовании сообщества на основе Oscillatoria formosa Bory.

Среди физиологических групп микроорганизмов сформировавшегося сообщества были выделены крахмалолитические, углеводородокисляющие, целлюлозоразрушающие, азотфиксаторы, нитрификаторы, углеводолитические, олигокарбофилы, аммонификаторы, фенолокисляющие. Бактериальные ассоцианты и микромицеты сообщества представлены следующими основными ponaMW.Acinetobacter, Acladium, Actinobacillus, Actinomyces, Arthrobactor, Aspergillus, Azomonas, Azotobacter, Bacillus, Beijerirtckia, Cellulomonas, Chlorobium, Cladosporium, Cytophaga, Flavobacterium, Micrococcus, Mucor,

Mycobacterium, Nitrozomonas, Nocardia, Pénicillium, Pseudomonas,

Rhodococcus, Rhodopseudomonas, Streptococcus, Streptomyces, Thiocapsa,

Trichoderma. Однако основная биомасса сообщества принадлежит

вселенцам -S. platensis, причем биомасса штамма CALU - 532 составляет

410 мг/г, штамма CALU - 603 - 190 мг/г. Кроме того, значительная часть

биомассы принадлежит аборигенным формам: Chlorophyta - 370 мг/г и

Bacillariophyta - 32 мг/г. Биомасса микрофауны составляет 0.1 мг/г, и

только 0.003 мг/г приходится на бактерии и микромицеты /табл.2/.

Таким образом, в микроэкосистемах на серу содержащей

сточной воде комплексного состава в процессе сукцессии на основе S.

platensis и микроорганизмов, содержащихся в самой сточной воде,

образовалось цианобактериальное сообщество. Состав сообщества дает

возможность предположить его деструкционные способности по

отношению к некоторым трудноразлагаемым и токсическим

компонентам сточных вод, оценить которые можно в моделях

имитирующих отстойники очистных сооружений.

Глава Ш. Структурные и физиологические аспекты функционирования альгобактериального сообщества на основе S. platensis

Для изучения деструкционной способности цианобактериального сообщества на основе S. platensis были роведены исследования по вселению полученного биоценоза в микроэкосистемы с включением сточных вод рыбокомбината, газоперерабатывающего завода и воды комплексного состава. Всего было исследовано 40 микроэкосистем.

При инокуляции микросообщества в сточные воды различного химического состава визуально было отмечено образование синезеленых скоплений в виде слизистых, желеобразных тяжей, что

Таблица 2

Основные группы, количество клеток и биомасса микроорганизмов цнанобактсрпального сообщества на основе S platensis

Цианобактерии Кол-во Биомасса, Микрофауна Кол-во Биомасса,

Микроводоросли киетоиЛг. мг/г бактерии, микромицеты особей/л г. мг/г

Cyanobacteria 24x10?

Spirillum platensis, С ALU 532 409.9 Chaenea /Quennerstedt/ 10 00008

Spirulina platensis, CALU 603 3.3x10s 189.1 Chilodoiiella /Stratid/ 10 0.0002

Aphamzomenon flos-aquae/R/Ralfs ед ich Cyclidiwn / Müller/ 40 0.00008

Microcystis /Kutz/ ед кл Tetrachymaia /Furgason/ едкп

Schizothrix caldcóla/Ag./Gom ед кл. Aspidisca /Ehrenberg/ 70 ft00158

Nostoc /Rippka/ ед ich Tachysoma/ Stokes/ 90 0013

OsciUatoria fonmsa /Богу/ ед кт. Rotaría elongata /Weber/ 340 0.0892

Lyngbya bipwictata lemm. ед. кл. Nematoda /Ttiidolphi7 едьл.

Anabaena /Богу/ ед пл. A caíUhocyclops /Kiefer/ едка

Phonttydiimi /Kutz/ ед. ка 0,10486

Gloecapsa /Kutz/ Hollerb. emend ед. кл.

Chlorophyta Автотрофные и гетеротрофные бактерии, З.ЗхЮ7

Oocystis Novae-Semlae utile ед кл. в том числе:

Chlamydomonas /Ehrmberg/ 9.45x10* 316.39

Schroederia spiralis ед кл. Акпшомицеты и

Tetrast rum glabnun ед кт родственные

Scenedesmus álxltí5 39.13 организмы L29xl06

acuminatus/Ragerh /Chad 23x10s

Scenedesmus quadricauda/Turp./B 13.2

BaciUariophyta Микромицеты L 11x10е

Pimudaria /Ehrenberg/ ед кт 0.00263

Navícula /Вогу/ 3.6x10? 3115

Nitzschia /Hass/ ед кл.

999.83

соответствует данным полученным Дзержинской /1978, 1993/ при исследовании сформированного сообщества на основе Oscillatoria Voucher 1803 / УРРА SB- 430/.

Следует отметить, что при вселении цианобактериальных сообществ в сточные воды в результате сукцессии образуются новые по составу сообщества, причем часть микроорганизмов, содержавшихся изначально в сточной воде, в процессах антогонизма и конкуренции погибает, а другая после периода адаптации включается в состав ассоциантов.

Исследование структуры сообщества показало, что часть ассоциантов прикрепляются к тяжу структурообразователя штамма CALU - 532 и CALU - 603 S.platensis, другие располагаются в среде в непосредственной близости к тяжу. На рис.3 показана численность изученных групп ассоциантов в обеих частях сообщества, названных нами "в тяже" и "вне тяжа".

К примеру, в сообществе, сформированном на сточной воде комплексного состава, по сравнению с сообществом на среде выращивания, увеличивается численность S.platensis штамм CALU- 532; S.acuminatus\ Chlamydomonas sp.\ автотрофных и гетеротрофных бактерии в целом. В то же время снижается количество клеток S.platensis штамм CALU-603; S.quadricauda; Navicula sp., а так же актиномицетов и родственных им микроорганизмов и микромицетов. Из автотрофных и гетеротрофных бактерий выпадают из сообщества: Rhodopseudomonas sp., Escherichia coli, Basilius lichemiformis, B. cereus, B. megaterium, Beijerinckia sp., Flavohacterium sp., из актиномицет и родственных микроорганизмов: Cellulomonas sp., Actinomyces sp., а из микромицет: Penicillum sp., Aspergillus sp., Mucor sp., Acladium sp. Из сточной воды

комплексного состава в ассоциацию включаются: Actinobasillus sp., Acinetobacter sp., Basilius sp., Azomonas sp., Rodococcus luteus, Mycobacterium sp., Aspergillus niger.

Отличием сообщества, сформировавшегося на сточной воде газоконденсатного завода от сообщества на среде выращивания, является увеличение численности S.platensis штамм CALU - 532; Chlamydomonas sp.; S.acuminatus, а так же актиномицет и родственных микроорганизмов и микромицет, при снижении: S.platensis штамм CALU -603; S.quadricauda\Navicula sp., а также автотрофных и гетеротрофных бактерий в целом. Из них при формировании нового сообщества выпадают: Escherichia coli, Basilius subtillis, B.lichemiformis, В. cereus, В. megaterium, Cytofaga sp., Pseudomonas sp., Azotobacter sp., Azomonas sp., Flavobacterium sp., из актиномицет и родственных микроорганизмов: Artrobacter sp., Cellulomonas sp., Rhodococcus luteus, Streptomyces sp., а из микромицет: Aspergillus clavatus, Mucor sp., а включаются из сточной воды: Streptococcus sp., Bacillus sp., Cladosporium sp., Desulfotomaculum sp., Aspergillus sp., A. niger.

Ассоциация, развившаяся на сточной воде рыбокомбината, отличается возрастанием численности: S.platensis штамм CALU - 532; S.acuminatus, актиномицет и родственных микроорганизмов, при снижении количества клеток: S.platensis штамм CALU - 603, Chlamydomonas sp., S.quadricauda, Navicula sp., автотрофных, гетеротрофных бактерий и микромицет. Из автотрофных и гетеротрофных бактерий - ассоциантов в среде выращивания, в новом сообществе не встречаются: Rhodopseudomonas sp., Acinetobacter sp., Cytofaga sp., из актиномицет и родственных микроорганизмов: Cellulomonas sp., Streptomyces sp., Nocardia sp. штамм №2, из микромицет:

Penicillum lilacinum. При этом в состав ценоза включаются из сточной воды следующие автотрофные и гетеротрофные бактерии: Thiocapsa roseoparsicina, Streptococcus sp., Сhrortiobacterium /Bergonzium/, Proteus vulgaris, Azomonas sp., Clostridium sp., актиномицеты и родственные микроорганизмы: Rhodococcus luteus, Mycobacterium sp., и микромицеты: Aspergillus sp., A. Candida /рис.3/.

на лабораторной среде на сточных водах

комплексного газоконденсатного рыбокомбината состава завода

в тяже вне тяжа в тяже ене тяжа в тяже вне тяжа в тяже вне тяжа

В Автотрофные и гетеротрофные бактерии О Акгиномицегы и родственные микроорганизмы □ Микромицеты

Рис. 3 Численность основных групп микроорганизмов ассоцнантов.

Таким образом в мнкросообществах сформировавшихся на среде выращивания, доминировали автотрофные и гетеротрофные бактерии /4760 тыс.кл./, почти на порядок уступают им по численности актиномицеты /654 тыс.кл./ /рис.3/

Подобная тенденция в доминировании тех же групп бактерий, актиномицет и микромицет наблюдалась в экспериментах и в остальных микроэкосистемах, за исключением альгобактериального ценоза, сформированного на сточной воде рыбокомбината, где количество автотрофных и гетеротрофных бактерий было наименьшим как в окружающей среде - вне тяжа, так и самих тяжах.

Исследования показали, что во всех микроэкосистемах на протяжении первых 14 суток экспозиции наблюдается увеличение биомассы каждого из штаммов S.platensis в 5 раз, однако штамм CALU - 603 преобладал над CALU - 532.

Например, в ценозе, сформировавшимся на сточной воде газоконденсатного завода, биомасса зеленых микроводорослей S.acuminatus и S.quadricauda увеличивается в 18 и 10 раз / соответственно/, однако их содержание к общей биомассе сообщества остается незначительным - 1,5 и 3,5%%. Биомасса Chlamydomonas sp. увеличилась в 8 раз и составляет 39% от общей биомассы. Биомасса диатомовой микроводоросли Navícula sp. к 14-ым суткам экспозиции возросла в 4,5 раза.

К концу наблюдения через 30 суток происходит смена доминирующего в первые две недели штамма S. platensis CALU - 603 на CALU - 532, при этом биомасса последнего превышала биомассу штамма-ассоцианта почти в 3 раза. Из двух видов Scenedesmus к концу эксперимента преобладает S. accuminatus. Биомасса Chlamydomonas sp. к этому времени по прежнему составляла 39%, а биомасса Navícula sp. снизилась к 30-м суткам более чем в 2 раза. Однако это не оказало влияния на изменение суммарной биомассы мнкросообщества в целом.

В инокулированном альгобактериальном сообществе на среде выращивания к концу 30-ти суточной экспозиции в тяже доминировали зеленые серные бактерии /33%/, цитофаги /29%/ и энтеробактерии /21%/ , а вне его - кокковые формы бактерий /72%/. К этому времени в тяже среди бактериальных ассоциантов микросообщества на сточной воде комплексного состава преобладали цитофаги /91%/, а в окружающей водной среде актиномицеты и актиномицетоподобные микроорганизмы /75%/. В сообществе на сточной воде АГК на 30-ый день инокуляции вне тяжа преобладали кокковые формы /43%/ и микромицеты /41%/, а в тяже - актиномицеты и актиномицетоподобные микроорганизмы / 37%/. А также бациллярные формы /32%/. В сообществе, сформированном на стоке рыбокомбината к концу эксперимента /к 30-м суткам/ в тяже доминировали кокковые формы /56%/ и актиномицеты и родственные им микроорганизмы /33%/, в окружающей водной среде более представительны актиномицеты и актиномицетоподобные микроорганизмы /26%/, азотофиксаторы /22%/, псевдомонады и зеленые серные бактерии /по 18% каждые/.

Таким образом, к концу 30-ти суточной экспозиции в каждой микроэкосистеме сформировалось сообщество, жизнедеятельность которого связана с химическим составом сточных вод. Это подтверждается связью между органическими веществами сточных вод и доминантами в видовом составе ассоциантов, способных к их деструкции.

Например, в присутствии фрагментов процесса деструкции древесины преобладают цитофаги, при наличии нефтепродуктов, фенольных соединений и также легкоразлагаемых органических веществ - кокковые формы бактерий и микромицеты. Исследование деструктирующих способностей сообществ показало, что за период

наблюдений во всех микроэкосистемах происходит снижение БПК5 и ХПК: в сточных водах газоперерабатывающего комплекса /на 65% и 90%/, рыбокомбината - на 90% и 94%, комплексного стока - на 56% и 78% соответственно. При этом полностью разлагаются нефтепродукты, ПАВ, сероводород, меркоптаны, сульфиды /табл.3/.

Таблица 3

Основные химические показатели исследуемых сточных вод до и после инокуляции смешанного штамма 5. рШеюгв

Ингредиенты, мг/л Сточные воды

Комплексного состава Газокон ден сатног о завода Рыбокомбината

до после ДО после до после

Бихроматная окисляемость 960,01930,0 142,0-178,0 1000,02150,0 210,0-205,0 2000,02433,0 62,0-138,0

БПК} 240,0480,0 80,0-130,0 100,0-305,0 43,0-107,0 1600,01780.0 161,0-178,0

Растворенный кислород 1.0-3,4 5.0-7.0 0-1,0 2,7-3,3 1.0 3,8-4,5

Сульфатный лигнин 150.0400,0 следы не обнаруж. не обнаруж. не обнаруж. не обнаруж

Нефтепродук ты 32,0-64,0 следы 0,01-950,0 не обнаруж. 0.1-1,0 не обнаруж.

ПАВ 0,1-1,0 не обнаруж. следы не обнаруж. 0,1-0,7 не обнаруж

Сероводород 20,0-30,0 следы 40,0-3000,0 следы 34,0-41,0 следы

Меркаптаны 10,0-13,4 не обнаруж. 1,3-1,7 не обнаруж. следы следы

Фенол 1,58-2,4 следы 0,01-1500,0 0.007-0.01 не обнаруж. не обнаруж

Сульфиды 3,2-4,3 не обнаруж. следы не обнаруж. следы следы

Латекс 50,0110,0 не обнаруж. не обнаруж. не обнаруж. не обнаруж. не обнаруж.

Фурфурол 0,9-1,1 не обнаруж. не обнаруж. не обнаруж. не обнаруж. не обнаруж.

Хлориды не обнаруж. не обнаруж. 70,0-600,0 55,0-587,4 1742,01760,0 1668,01749,0

Фосфор 10,0-15,0 следы следы следы 2,0-2,4 11,0-16,0

Эти данные указывают на то, что в присутствии созданного на основе рШет1з альгобактериального сообщества наблюдается деструкция целого ряда органических веществ, содержащихся в сточных водах различного химического состава /табл.3/.

Заключение

Одной из основных задач по улучшению работы очистных сооружений является создание новых сообществ с заданными свойствами и их устойчивость к токсическим веществам. Этим задачам отвечает созданное нами сообщество на основе 5. рЫет1з, которое характеризуется многообразием ассоциантов: автотрофов и гетеротрофов разного уровня. В связи с этим оно проявляет высокую лабильность и устойчивость при вселении в сточные воды различного состава и способно к деструкции трудноразлагаемых веществ. При сбалансированном наборе слагающих видов сообщества нарастание биомассы происходит в течение двух недель, после чего наступает сукцессионная перестройка, то есть смена доминирующих видов, что является условием существования устойчивого микросообщества. Вследствие многообразия в приспособлении ассоциантов микросообщества к одновременному потреблению оргнических веществ субстрата возрастает степень утилизации последнего и как следствие его - деградация. Наличие кислорода, постоянно возобновляемого в результате фотосинтетической активности цианобактерий и микроводорослей, снимает эффекты ингибирования той или иной группы ассоциантов и создает реальные предпосылки для нормального функционирования микросообщества и условиях антропогенной нагрузки.

Проведенные нами исследования показали эффективность

использования альгобактериального сообщества для деструкции органических веществ и перспективность его дальнейшего применения.

Выводы

1. На основе цианобактерии S. platensis /штаммы CALU - 532 и CALU - 603/ получено альгобактериальное сообщество, структуру которого определяют пространственно ориентированные и стратифицированные автотрофные и гетеротрофные организмы: бактерии, микроводоросли, простейшие. Доминирующим звеном являются фотосинтезирующие цианобактерии -штаммы S. platensis.

2. Наиболее высокие показатели жизнеспособности и фотосинтетической активности /по выходу переменной флуоресценции/выявлены при инокуляции ассоциации, состоящей из штаммов S. platensis CALU - 532 и CALU - 603, в комплексные сточные воды.

3. При вселении альгобактериального сообщества в серусодержащие сточные воды происходит структурная перестройка сообщества с последующим включением в состав ассоциантов микроорганизмов, изначально присутствовавших в производственных стоках.

4. Альгобактериальный циноз, сформировавшийся на основе S. platensis, способствует деструкции как легко, так и трудноразлагаемых химических веществ, содержащихся в сточных водах, таких как: лигнин, латекс, нефтепродукты, фенолы, ПАВ.

Список работ, опубликованных по теме диссертации

1. Дзержинская И.С., Амину Рафид Адисса, Саинов Д.И. Структура и свойства техногенных микробных ассоциаций при интродукции в сточные воды.- Тез. Докл. Конф. "Интродукция микроорганизмов в окружающую среду",-М. 1994г.

2. Дзержинская И.С., Андрианов В.А., Сопрунова О.Б.,Саинов Д.И.

Биологическая рекультивация техногенных территорий с использованием альгобактериальных сообществ. - Сб. научн. Тр. АстраханьНИПИгаза "Экологические аспекты разработки Астраханского газокондеясатнош месторождения". Астрахань -1996. - с. 52.

3. Дзержинская И.С., Сопрунова А.Б., Саинов Д.И. Экологические основы рекультивации техногенных территорий с высоким содержанием сероводорода. -Тез. Докл. Научно-техн. Конф. - Саратов, изд. СГУ, 1996. - с. 115.

4. Дзержинская И.С., Саинов Д.И., Сопрунова О.Б., Амину Рафид Адисса. Состав и свойства техногенных альгобактериальных сообществ. - Вестник АГТУ, Сб. науч. Тр., вып. 2. - Астрахань, изд. АГТУ, 1996.-с. 84-86.

5. Саинов Д.И., Андрианов В.А., Дзержинская И.С., Саинова В.Н. Разработка методов рекультивации техногенных территорий. - Сб. науч. Тр. АстраханьНИПИгаз "Проблемы освоения Астраханского Газоконденсатного месторождения" - Астрахань: НТЦ "Факел", 1999. -с. 261.

6. Саинов Д.И., Саинова В.Н. О роли альгобактериальных биоценозов в репродукции гидроэкосистем. - Проблемы экологической безопасности Нижнего Поволжья в связи с разработкой и эксплуатацией нефтегазовых месторождений с высоким содержанием сероводорода: Материалы науч.-техн. семинара /Астрахан.гос.техн.ун-т./ - Астрахань: Изд-во АГТУ, 2000. -162

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Саинов, Дамир Ильдарович

Введение.

Глава I. Обзор литературы.

Глава II. Материалы и методы анализа.

Глава III. Определение жизнеспособности штаммов Spirulina platensis при вселении в сточные воды комплексного состава.

Глава IV. Исследование структуры сообщества сформировавшегося на основе Spirulina platensis.

Глава V. Структурные физиологические аспекты функционирования альгобактериального сообщества на основе Spirulina platensis.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Особенности формирования цианобактериального сообщества в техногенных экосистемах"

Актуальность исследования. Особенностью современного состояния охраны окружающей среды является неэффективность работы очистных сооружений, что привело к избыточной нагрузке на естественные процессы самоочищения водных экосистем и постепенному накоплению загрязняющих веществ в окружающей среде. В сложившейся ситуации основная роль в снижении уровня токсичности компонентов сточных вод отводится природным и искусственным микробиологическим комплексам.

Теоретические и практические исследования в этой области показали нерешенность таких задач как направленное изменение и управление видовым составом микроорганизмов экспериментальных техногенных экосистем, так и искусственным созданием новых сообществ с заданной видовой структурой, с учетом устойчивости сообществ к веществам антропогенного происхождения / Мишустин,1975; Одум, 1975; Уильямсон, 1975; Дзержинская, 1993 /.

При деградации чужеродных соединений в водных экосистемах достаточно полное потребление компонентов субстрата достигается за счет мобилизации ферментативной способности микросообществ, заключающейся в сочетании процессов кометаболизма с комменсализмом. При этом естественно складывающиеся ассоциации - отнюдь не самые эффективные, поскольку некоторые микроводоросли могут выступать в роли «загрязнителей», вызывающих цветение водоемов при эвтрофикации /Veldkamp, Jannasch, 1972; Градова, Ковальский, 1975; Малашенко и др., 1975, Печуркин, 1981; Дзержинская, 1993/. В настоящее время в мировой практике для очистки сточных вод различного состава находят применение искусственно создаваемые микросообщества, не имеющие в своем составе возбудителей цветения водоемов.

На защиту выносится - обоснование созданного альгобактериального сообщества, способного к деструкции трудноразлагаемых соединений.

Цель и задачи исследования - основной целью работы явилось создание альгобактериального сообщества на основе Spirulina platensis /Nordstedt/ Geitler, способного к деструкции органических соединений в водных экосистемах.

В связи с этим были поставлены следующие задачи:

1) определить жизнеспособность ряда штаммов S. platensis при вселении в модели систем, имитирующих сточные воды комплексного состава.

2) создать оптимальное альгобактериальное сообщество на основе S. platensis и исследовать его таксономический состав.

3) изучить структурные и физиологические аспекты функционирования альгобактериального сообщества в моделях - отстойниках очистных сооружений.

4) выявить способность созданного альгобактериального сообщества к деструкции органического вещества.

Научная новизна работы. Впервые получены новые альгобактериальные сообщества на основе устойчивых к сточным водам комплексного состава штаммов S. platensis /CALU - 532 и CALU - 603/, и определен их оптимальный таксономический состав. Исследованы изменения структуры сообщества при вселении его в воды различного химического состава и способность к деструкции органических веществ сточных вод.

Практическая значимость. Показана возможность применение полученных сообществ на основе S. platensis для очистки сточных вод и разработан способ очистки буровых растворов от органических соединений. Результаты работы используются в курсах лекций по технической микробиологии, инженерной экологии, читаемых студентам, стажерам и аспирантам Астраханского государственного технического университета.

Апробация работы. Основные положения и материалы диссертационной работы были представлены на Всероссийской конференции «Интродукция микроорганизмов в окружающую среду» /Москва, 1994/, Международной конференции «Каспий - настоящее и будущее» /Астрахань, 1995/, научно-практической конференции «Проблемы экологической безопасности Нижнего 5

Поволжья в связи с разработкой и эксплуатацией нефтегазовых месторождений с высоким содержанием сероводорода» /Саратов, 1996; Астрахань, 2000/.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 117 страницах машинописного текста. Она состоит из введения, 3 глав, заключения, выводов, списка литературы, включающего 147 источников, в том числе 83 иностранных; приложений, иллюстрирована 10 рисунками и 12 таблицами.

Заключение Диссертация по теме "Гидробиология", Саинов, Дамир Ильдарович

выводы

1. На основе цианобактерий S. platensis /штаммы CALU-532 и CALU-603/ получено альгобактериальное сообщество, структуру которого определяют пространственно ориентированные и стратифицированные автотроф-ные и гетеротрофные организмы: бактерии, микроводоросли, простейшие. Доминирующим звеном являются фотосинтезирующие цианобактерий - штаммы S. platensis.

2. Наиболее высокие показатели жизнеспособности и фотосинтетической активности /по выходу переменной флуоресценции/ выявлены при инокуляции ассоциации, состоящей из штаммов S. platensis CALU-532 и CALU-603, в комплексные сточные воды.

3. При вселении альгобактериального сообщества в серусодержащие сточные воды происходит структурная перестройка сообщества с последующим включением в состав ассоциантов микроорганизмов, изначально присутствовавших в производственных стоках.

4. Альгобактериальный ценоз, сформировавшийся на основе S. platensis, способствует деструкции как легко, так и трудноразлагаемых химических веществ, содержащихся в сточных водах, таких как: лигнин, латекс, нефтепродукты, фенолы, ПАВ.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Одной из основных задач по улучшению работы очистных сооружений является создание новых сообществ с заданными свойствами и их устойчивость к токсическим веществам. Этим задачам отвечает созданное нами сообщество на основе S. platensis, которое характеризуется многообразием ассоциантов: ав-тотрофов и гетеротрофов разного уровня. В связи с этим оно проявляет высокую лабильность и устойчивость при вселении в сточные воды различного состава и способно к деструкции трудноразлагаемых веществ. При сбалансированном наборе слагающих видов сообщества нарастание биомассы происходит в течение двух недель, после чего наступает сукцессионная перестройка, то есть смена доминирующих видов, что является условием существования устойчивого микросообщества. Вследствие многообразия в приспособлении ассоциантов микросообщества к одновременному потреблению оргнических веществ субстрата возрастает степень утилизации последнего и как следствие его - деградация. Наличие кислорода, постоянно возобновляемого в результате фотосинтетической активности цианобактерий и микроводорослей, снимает эффекты ингибирования той или иной группы ассоциантов и создает реальные предпосылки для нормального функционирования микросообщества в условиях антропогенной нагрузки.

Проведенные нами исследования показали эффективность использования альгобактериального сообщества для деструкции органических веществ и перспективность его дальнейшего применения.

63

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Саинов, Дамир Ильдарович, Москва

1. Абакумов В.А. О наблюдениях и сравнительных оценках состояния экологических систем. В кн.: Проблемы экологического мониторинга и моделирований экосистем.- Л.: Гидрометеоиздат, т. 1, 1978.- с. 64-70.

2. Абакумов В.А. Основные направления изменения водных биоценозов в условиях загрязнения окружающей среды.- В кн.: Проблемы экологического мониторинга и моделирования экосистем.- Л.: Гидрометеоиздат, т. П, 1979.-с. 37-48.

3. Абакумов В.А. Закономерности изменения водных биоценозов под воздействием антропогенных факторов.- В кн.: Комплексный глобальный мониторинг мирового океана. Труды 1 Международного симпозиума. Л.: Гидрометеоиздат, т. П, 1985.- с. 273-283.

4. Александрова Д.Н. Об использовании гумусовых веществ микроорганизмов.

5. Почвоведение, 1953.- с. 23.

6. Алесина И.Г. Изучение закономерностей процесса обесцвечивания сточныхвод сульфатно-целлюлозного производства.- Диссертация на соискание ученой степени канд. техн. наук,- Л.: 1976.- 161с.

7. Алиева P.M., Илялетдинов А.Н. Реализация экологического принципа в микробиологической очистке промышленных сточных вод. /Изв. АН СССР. Сер. биол.- 1986.- № 4, с. 517-527.

8. Алиева P.M., Илялетдинов А.Н., Тарабаева Ж.Б., Бановска О.В., Уразаева

9. С.М., Жумабеков М.К. Способ очистки сточных вод от кротонового альдегида.- А.с. СССР № 1189816, 1984.

10. Андреева В.М. Род Chlorella /Морфология, систематика, принципы классификации. JL: Из-во Наука, Лен. отд, 1975.- 110 с.

11. Андреюк Е.И. Коптева Ж. П., Занина В. В. Цианобактерии.- Киев: Наукова думка, 1990.- 198 с.

12. Антипчук А.Ф. Микробиологический контроль в прудовых хозяйствам- М.: Пищевая пром-ть, 1979.- 145 с.

13. Артюхова В.И. Автореферат дис.на соискание уч. степени к.б.н. «Изучение адаптации синезеленых водорослей к некоторым токсикантам», МГУ., 1980

14. Бабаков Ф.П., Долобовская А. С., Кирилова Р. И., Клименко Д. А., Назарова Н.С., Клементов С.М. Способ биологической: очистки сточных вод от органических соединений. А. с. СССР № 524777. Бюл. № 30, 1976.- с. 58-59.

15. Бажина Е.В., Штина Э.А. Взаимосвязи некоторых почвенных водорослей и грибов. //Тр. Киров, с/х ин-та. 1967 20 № 40.-е. 233-240.

16. Белозерский. А.Н., Проскуряков Н.И. Практическое руководство по биохи-миии растений. М.: Сов.наука, 1951.

17. Билай В. И., Курбацкая З.А. Определитель токсинобразущих мик-ромицетов. Киев: Наук, думка, 1990.- 236 с.

18. Бильдушкинов С.С., Некрасова В.К., Герасименко Л.М. Роль фототрофных микроорганизмов в газовом обмене термофильного цианобактериального сообщества//Микробиология 1986.- 54, № 4.-е. 517-522.

19. Благовещенский Ю.Н., Самсонова В. П., Дмитриев Е.А. Непараметрические методы в почвенных исследованиях. М.: Наука, 1987.-95 с.

20. Болыпова Д.Н., Смирнов Н.В. Таблицы математической статистики. М.: Наука, 1983.-416 с.

21. Болышова Н.И. Разрушение древесины осины возбудителем бурой гнили грибов Fomitopsis pinicola (FR) Karst В. В Сб.: Микроорганизмы и низшие растения - разрушители материалов и изделий. Сер. Биол. Повреждения. -М.: Наука, 1979.- 174-178 с.

22. Бондарцева М.А., Трутовые грибы. В кн.: Жизнь растений. Т. 2. Грибы. -М.: Просвещение, 1976.- 479 с.

23. Бонч Осмоловская Е.А. Восстановление молекулярной серы в термофильных альгобактериальных сообществах Кальдеры Узо н /Камчатка/. -В кн.: Биология термофильных микроорганизмов.- М.: Наука. 1986,- с. 112113.

24. Бонч Осмоловская Е.А., Горленко В.А. Карпов Г.А., Старынин Д.А. Анаэробная деструкция органического вещества микробных матов источника термофильного /Кальдера Узон, Камчатка/.-Ж-л Микроб., т. 56. 1987, вып. 6.- с. 1022-1032.

25. Воронин A.M., Порица A.JL, Скрябин Г.К. Штамм Pseudomonas aeruginosa 123, несущий ОСТ+, САМ+, N аИ+ плазмиды, используемый при биологической очистке воды от нефти и нефтепродуктов. А.с. СССР № 612958. Бюл. № 24,1978.- с. 73-74.

26. Воронихин Н.Н. Ботанические материалы отд. споровых растений. Бот. Инта АН СССР, 6, вып. 7-12, 1950, с. 129-134.

27. Воронихинн Н.Н. «Советская ботаника», 14, 1946 №4 с. 239-246.

28. Венскович И. В. Бактериальный состав активного ила Гродненского ПО "Азот". Экология, геохимическая деятельность микроорганизмов и охрана окружающей среды. /Тез. докл. YII съезда ВМО Алма-Ата: Наука, т. 6, 1985.- 30 с.

29. Виноградский С.Н. Микробиология почвы. Проблемы и методы. М.: Из-во АН СССР, 1952,- 792 с.

30. Волкова Д. П. Микроорганизмы, разрушающие гуминовую кислоту почвы.-Автореферат, М.: 1955.- 15 с.

31. Гасанов М.В., Кирилова J1.M., Забирова P.M., Рукавишникова JI.A. Способ очистки нефтесодержащих сточных вод. А. с. СССР № 925875. Бюл. № 17. № 1982.- 108 с.

32. Гаузе Г.Ф., Преображенская Т.П., Свешникова М.А., Терехова А.П., Максимова Т. С. Определитель актиномицетов,- М.: Из-во Наука, 1983.- 247 с.

33. Гвоздяк П. И. Основные тенденции в микробиологии очистки воды. /Тез. докл. YII съезда ВМО Экология, геохимическая деятельность микроорганизмов и охрана окружающей среды, Алма-Ата: Наука, т. 6. 1985.- 38 с.

34. Гвоздяк П.И., Удод В.М., Несынова Л.И., Беляев В.Л., Мануляк ИИ, Пет-ришин Я.Б., Медведева И.П. Способ биологической очистки сточных вод.-А. с. СССР № 1465426, 1987.

35. Гвоздяк П.И., Удод В.М., Беляев B.JL, Мануляк И.И., Сидлярчук О. И, Подорван Н.И. Способ биологической очистки сточных вод от неионогенных поверхностно-активных веществ. А. с. СССР № 1460045, 1984.

36. Гвоздяк П.И., Чеховская Г .П., Никоненко В.У., Рыбникова В.И., Закиева М.Н., Адамова К. С. Биологическая очистка от фенола попутных вод газо-конденсатных скважин Дмитровского месторождения. /Химия и техника, воды, т. 2, № Ю, 1990.- с. 952-953.

37. Герасименко JI. А. Термофильные альгобактериальные сообщества гидротерм Кальдеры У зон /Камчатка/ и их газовый обмен. В кн: Биология термофильных микроорганизмов. - М.: Наука. 1986.- с. 117-118.

38. Герасименко Л.М., Заварзин Г.А. Микробные сообщества газогидротерм. -В кн.: Биология термофильных микроорганизмов. М.: Наука, 1986.- с. 2225.

39. Глушкова Г.Г., Минеев Г.Г. Способ биохимической очистки сточных вод от аминов. А.С. СССР № 1112005. Бюл. № 20, 1982.- 56с.

40. Голлербах М.М., Косинская Е.К., Полянский В.И. Определитель пресноводных водорослей СССР. Синезеленые водоросли, вып. 2. М.: Сов. наука, 1953.- 651 с.

41. Головлева Д. А., Ганбаров Х.Г. Микробная деградация лигнина. В сб.: Успехи микробиологии. - М.: Наука, 1982.- с. 136-158.

42. Головлева Д. А., Илялетдинов А.Н., Джусупова Д. Б., Алиева P.M. Штамм Pseudomonas aeruginosa 8, разлагающий L-метилстирол. - А.с. СССР № 1117316. 1985.

43. Гольфель М.Г., Карапетян Н.В. Физиео-химические основы действия гербицидов //Итоги науки и техники. ВИНИТИ, Сер. Биологическая химия. М.: 1989., Т.30, с.164.

44. Горленко В.М., Дубинина Г.А., Кузнецов С.И. Экология водных микроорганизмов. М.: Из-во Наука, 1977.- 289 с.

45. Горленко В.М., Компанцева Е.И., Пучкова Н.Н. Фототрофные бактерии в термальных источниках. В кн.: Биология термофильных микроорганизмов.- М.: Наука, 1986.- с. 96-101.

46. Горленко В.М., Старынин Д.А., Бонч-Осмоловская Е.А., Качалкин В. И. Продукционные процессы в микробных сообществах горючего источника Термофильного //Микробиология, № 5, 1987-56, с. 872-878.

47. Горшин С. И. Грибные поражения древесины и способы борьбы с ними. В сб.: Микроорганизмы и низшие растения - разрушители материалов и изделий. Сер. Биол. повреждения.- М.: 1979.- с. 154-163.

48. Горюнова С. В. Прижизненные выделение растительных кислот в окружающую водную среду синезеленой. водорослью Osciiiatoria. ДАН СССР, 1948, 60, №8. с. 1409-1411.

49. Горюнова С. В. Прижизненное выделение летучих веществ в окружающую среду синезеленой водорослью Oscilaboria.- Докл. АН СССР, 1949, т. XIY, № 2, 257 с.

50. Горюнова С.В. Химический состав и прижизненные выделения синезеленой, водоросли Oscillatoria splendide Grew, M-JL: Из-во АН СССР, 1950.- 156 с.

51. Горюнова С. В. Микробиология, XXIY. № 3, 1955.- с. 271-275.

52. Горюнова С.В., Демина Н.С. Водоросли продуценты токсических веществ. -М.: Наука, 1974.- 253 с.

53. Горюнова С. В. Ржанова Г.Н. Прижизненные выделения азотсодержащих веществ Lyngbya aestuarii и их физиологическая роль. В кн.: Биология си-незеленых водорослей,- М.: 1964.- с. 111-118.

54. Горюнова С.В., Ржанова Г.Н., Орлеманский. В.К. Синезеленые водоросли. -М.: Наука, 1969.- 229 с.

55. Гринберг И.В., Дацюк Н.М., Штейнберг В. И., Фильц Д. И. Способ биохимической очистки сточных вод от органических соединений. А.с. СССР Ж 975588. Вол. Ж 3. в. 52. 1983.- 10 с.

56. Гуревич Ф.А., Христенко Н.Г. О взаимоотношениях между синезелеными водорослями и другими гидробионтами //Изв. Сиб. отд. АН СССР. Сер. биод.мед. наук.- 1965 12, № 3 - с. 14-20.

57. Гусев М.В., Никитина К.А., Горская Н.Б. и др. "Цветение" и деструкция цианобактерий в бассейне сероводородного источника Старой Мацесты //Микробиология.- 1979.- 48, № 6.- с. 1093 1106.

58. Гусев М.В., Телитченко Й.М., Федоров В. Д. Принципы выделения, очистки и культивирования синезеленых водорослей.- В сб.: Биология синезеленых водорослей.- Из-во Моск. универ., 1964.-е. 55-65.

59. Дарвин Ч. Просхождение видов. M.-JL: 1939.

60. Дегерменджи А.Г., Печуркин Н.С., Шкидченко А.Н. Аутостабилизация факторов, контролирующих рост в биологических системах. -Новосибирск: Наука, 1979. 141 с.

61. Дзержинская И. С. Интенсификация процессов редукции в специфических экосистемах. Автореферат диссертации М.: 1987 /ДСП/.

62. Дзержинская И.О. Микробиологическая редукция лигнинов.- Библиографический указатель ВИНИТИ "Депонированные научные работы", 1989, № 5.- 118 с. НПО "Медбиоэкономика.

63. Дзержинская И. С. Особенности деструкции некоторых фора лигнина в условиях повышенной микробиологической активности. Ж-л Биологические науки. 1991, № 10.- с. 37-43.

64. Дзержинская И.С. Особенности формирования цианобактериального мата в сточной воде. Ж-л Биологические науки, 1992, № 10, с. 138-143.

65. Дзержинская И. С., Горбунов К. В. Способ биологической очистки сточных вод цедлюлозно-бумажной промышленности А. с. СССР № 1471492, 1988 /ДСП/.

66. Дзержинская И.С., Долганова Н.В., Сопрунова О.Б., Воробьева В. А. Получение азотных удобрений на основе использования промышленных сточных вод. Сб.: Краткие результаты научной деятельности института. - Астрахань: 1990.- с. 158-159.

67. Дмитренко Г.Н. Ассимиляция морфолина грамположительными бактериями //Экология. Геохимическая деятельность микроорганизмов и охрана окружающей среды. Тез .докл. YII съезда ВМО Алма-Ата: Наука, т. 6, 1985.- 55 с.

68. Дмитриева А.Г. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук «Изучение действия полиметаллических руд и концентратов на жизнедеятельность синезеленой водоросли Microcystis aeruginosa KUTZ. EMENDELENK., 1976. МГУ.

69. Долобовская А.С., Назарова H.G. Способ биохимической очистка сточных вод от органических соединений. А. С. СССР № 5139. Бил. № 18, 1976.- с. 66-67

70. Евилевич И.А., Кучинский М.Х., Матусков Ю.Е., Логинова В.А., Головац-кая А.Н., Хотеенко В.Л. Способ очистки сточных вод от органических соединений. А. с. СССР № 468897. Бюл. № 16, 1975.- 62 с.

71. Егоров Н.С., Кост А.Н., Воробьева Л.И., Коростелева Л.А., Модянова Л.В., Теретъев П.Б. Штамм Nocardia sp. , КМ-2, используемый для очистки промышленных сточных вод от пиридина. А. с СССР № 26. 1982.- 124 с.

72. Егорова Л.Н. Почвенные грибы Дальнего Востока. Гифомицеты. Л.: Из-во Наука, Ленингр. отд., 1986.- 192 с.

73. Еленкин А. А. Синезеленые водоросли СССР.- Общая часть. М.: - Л.: Из-во АН СССР, 1936.- 680 с.

74. Жадин В. И. Моллюски пресных и солоноватых вод СССР. Определитель по фауне СССР № 46.- М-Л.: Из-во АН СССР, 1952. 376 с.

75. Жадин В.И. /редактор/. Жизнь пресных вод СССР. Т. 4, ч. 1.- М-Л.: Из-во АН СССР. 1956.-470 с.

76. Жарова Т.В., Ломова М.А., Станюкович И .Я., Касьяник И.М. Способ биологической очистки сточных вод. А.с. СССР № 1022951. Бюл. № 22, 1983.55 с.

77. Жарова Т.В., Рябкова P.M., Куликова Т.Г., Орлов В.И., Коровкин Л. К. Способ двухступенчатой биологической очистки высококонцентрированных сточных вод. А. с. СССР № 1198023.84.3аварзин Г.А. Бактерии и состав атмосферы.- М.: Наука, 1984.

78. Иванов Ю.Г., Дмитриева Г.В., Рудакова Е.В., Бородина Н.В., Логинова В. А., Чамаев В.Н. Способ биохимической очистки сточных вод от диметил-ацетамида. А. с. СССР № 1346589, 1986.

79. Ильичев В.Д., Бочарова Б.В., Анисимов А.А. и др. Биоповреждения: Учебное пособие для биол. спец. вузов. Под ред. В.Д. Ильичева.- М.: Внеш.кл., 1987.- 352 с.

80. Ильичев С.Н., Малицкая Я.Л., Салькова А.А., Иванова В.Н., Ленова Д. И., Ступина В.В., Борисова Е.В. Способ биохимической очистки сточных вод от этилендиамина, А.с. СССР № 1275008, 1985.

81. Илялетдинов А.Н. Микробиологические превращения металлов. Алма-Ата: Наука, 1984.- 268 с.

82. Илялетдинов А.Н., Абдрашитова С.А., Мынбаева Б.Н., Абдуллина Г.Г. Способ очистки сточных вод от мышьяка А.с. СССР № 916441. Бюл. № 12.1982.- 104 с.

83. Илялетдинов А.Н., Алиева P.M., Манасоаева А. Б. Способ биохимической очистки сточных вод. А.с. СССР №> 1172887, 1983.

84. Калабина М.М., Роговская Ц. И. Распад фенола под воздействием микроорганизмов /под ред. П.С. Белова. М-Л: Госстройиздат, 1934.

85. Калабина М.М., Роговская Ц.И. Распад фенола под влиянием микроорганизмов. ОНТИ, Госстройиздат, М-Л.: 1957.

86. Калакуцкий Д.В. Развитие актиномицетов. М.: Из-во Наука, 1977.- 286 с.

87. Камаренко Л.Е., Васильева И. И. Пресноводные диатомовые и синезеленые водоросли водоемов Якутии. М.: Из-во Наука, 1975.-248 с.

88. Каплин В. Т. Превращение органических веществ в природных водоемах. -Автореферат, Иркутск, 1973.- 46 с.

89. Карапетян Н.В., Бухов Н.Г. Переменная флуоресценция хлорофилла как показатель физиологического состояния растений // Физиол. растений. 1986. Т.ЗЗ. №5. с.1012-1026

90. Каржавина JI.A., Овчинников Ю.Б., Гордеева Е.Г., Дзержинская И.О. Способ очистки сточных вод. А. с. № 953800 /ДСП/. 1976.

91. Каржавина Л.А., Толкачева Н.М., Дзержинская И.С. Роль высших водных растений, в самоочищении водоемов.- В сб.: Депонированные рукописи, №6 /104/, ВНИИПИ, 1980.

92. Каценович Е.П., Коган А.Л., Рубин Д.А., Швецов В.Н., Бут Л.И., Авдеева Н.И., Коммунар Г.М., Алексеев B.C., Кочеровский Ю.Э., Абдумаликова З.А., Нечмирева Т.С. Способ биохимической очистки воды от сернистых соединений. А.С. СССР № 1288166, 1985.

93. Келлер Б. А. Основы эволюции растений- М.: Из-во АН СССР, 1948.- 207 с.

94. Киселев И. А. Планктон морей и континентальных водоемов. В 2-х т. Л.: Наука, 1969.- 658 с.

95. Киселев И. А. Методы исследования планктона. Жизнь пресных вод СССР.- М-Л.: АН СССР. 1976.- с. 204-205.

96. Коваленко И.Н. О математической теории надежности. В.сб.: «Системы надежности клеток». Киев, Наук думка, 1977, с.21.

97. Коваль Э.З., Сидоренко Л. П. Микодеструкторы промышленных материалов Киев: Наук, думка, 1989.- 192 с.

98. Комаренко Л.Е., Васильева И.И. Пресноводные диатомовые и синезеленые водоросли водоемов Якутии. М.: 1975.

99. Компанцева Е.И., Горленко В.М. Фототрофные сообщества в некоторых термальных источниках озера Байкал. //Микробиология, 1988, 65, № 57,- с. 841-846.

100. Компанцева Е.И., Пучкова Н.Н., Горленко В.М., Саввичев А.С. Фототрофные микроорганизмы в холодных высокосульфидных солевых источни-ках.//Микробиология, в. 1, т. 58,1989.- с. 127-131.

101. Ю.Компьютерная биометрика. Из-во МГУ, 1990.- 232 с.

102. Кондратьева E.H. Хемолитотрофы и метилотрофы. Из-во Моск. унив., 1983.- 172 с.

103. Корецкий В.М. Значение избыточности в эволюционном процессе. С.сб.: «Филосовские проблемы эволюционной теории». Материалы к симпозиуму, Ч.З.-М.: Наука, 1971. с.170-178.

104. Корш П.Е., Артемова Т.З. Ускоренные методы санитарно-бакте-риологического исследования воды. М.: Медицина, 1978.- 272с.

105. Коршиков А. Визначник пресноводных водорослей Украинской РСФ. У пидклас протоккови / Protococinaeae /, Киев. 1953.

106. Косова А.Н. Инструкция по наблюдениям на нерестилищах дельты Волги. Астрахань: Астраханский гос. зап., 1979.- с. 14-16.

107. Костяев В. JI. Биология и экология азотфиксирующих синезеленых водорослей пресных вод. JL: Из-во Наука, лен. отд., 1986.

108. Красильников Н.А. Микрофлора высокогорных скальных пород и азот-фиксирующая ее деятельность //Успехи совр. биол. 1956-41, № 2. с. 177192.

109. Краткий определитель бактерий Берги /Под редакцией Дж. Хоулта. М.: Мир, 1980,- 495 с.

110. Криульков В.А. Изучение процессов самоочищения природных вод от некоторых форм лигнинов. Автореферат. - Новочеркасск, 1970,- 26 с.

111. Криульков В.А., Каплин В.Т. Лигнин в природных водоемах: Сб: Гидрохимические материалы. Загрязнение и самоочищение природных водоемов, распад органических веществ и методы анализа. Л.: Гидролитиздат, 1968. -Т. XYI. - с. 226-234.

112. Криульков В. А., Каплин В.Т. Некоторые вопросы методики определения воднорастворимого сульфатного лигнина. В Сб.: Материалы XXIУ гидрохимического совещания. Тез. докл.- Новочеркасск, 1970.- 69 с.

113. Криульков В.А., Каплин В.Т., Рабинович А.А., Веселовский Н.В. Исследование превращений серы при распаде сульфатного лигнина. Сб.: Материалы

114. ХХ1У гидрохимического совещания. Тез.| докл. Новочеркасск, 1970а.- 67 с.

115. Кудрина Е.С. Влияние гуминовой кислоты на некоторые группы почвенных микроорганизмов и ее значение для этих организмов как источника питательных веществ. Тр. Почв, ин-та АН СССР,| т. 38, М.: Тех лаборатория МПИ, 1949.- 9 с.

116. Кузнецов С.И., Дзюбан И.Н. Использование гуминовых веществ при развитии микобактерий. Бюл. ин-та биол. водохранилищ. I960. № 7.- с. 3-5.

117. Кузьменко М.И. Миксотрофизм синезеленых водорослей и его экологическое значение.- Киев: Наук, думка, 198L- 212 с.

118. Курсанов Л.И., Забелин М.М., Мейер К.И., Ролл Л.В., Цешинская Н.И. Определитель низших растений. Водоросли. М.: Советская наука, т. 1,1953.396 с.

119. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1990.- 351 с.

120. Легина Н.И., Запевалов Н.В., Селинов В.П., Жукова И.В., Сердюк А.Н., Гремороев А.И., Пивоварова В.Г. Способ очистки сточных вод сульфат-целлюлозного производства. А.с. № 937437. Бюл. № 23, 1982.- 106 с.

121. Лигнины /структура, свойства и реакция/ под ред. Саарканен К.В., Людвиг К.Х.- М.: Лесная промышленность, 1975.- 473 с.

122. Ломова М.А. Микробиология активных илов для очистки сточных вод целлюлозного производства. М.: 1968.- 53 с.

123. Лугаускас А.Ю., Микульскене А.И., Шляужене Д.Ю. Каталог микромице-тов-биодеструкторов полимерных материалов. Сер. Биологические повреждения. М.: Наука, 1987.- 342 с.

124. Макаров И.А., Стром А.Д., Василенко Г.Д., Кучеренко Л.А., Данилевская И.П. Способ биологической очистки сточных вод от органических примесей. А.с. СССР № 431121. Бюл. № 21,1974, с. 76-77.

125. Максимов В.Н. Комплекс гетеротрофных микроорганизмов главное звено биологической очистки сточных вод Байкальского ЦБК.- В Сб.: Проблемыэкологии Прибайкалья./ Тез. докл., Иркутск, ч. II, 1979.- с. 94-96.

126. Максимов В.Н. Биологическая очистка сточных вод сульфат-целлюлозного производства в условиях Восточной Сибири." Диссертация на соискание ученой степени канд. биол. наук. 03.00.07; Утв. 10.05.85. Большие Коты на Байкале, 1983.-224 с.

127. Максимов В.Н., Федоров В.Д. Применение методов математического планирования эксперимента при отыскании оптимальных условий культивирования микроорганизмов. Из-во МГУ, 1969.

128. Марголина Г.Л. Временные методические указания по учету специализированных групп бактерий при контроле качества поверхностных вод суши. -М.: 1978.-6 с.

129. Методические указания по санитарно-микробиологическому анализу воды поверхностных водоемов. М.: 1981.- 36 с.

130. Методы общей бактериологии /под ред. Ф. Герхарда и др.- М.: Мир:, т. I, 1983.- 536 с.

131. Методы почвенной микробиологии и биохимии. Под ред. проф. Д. Г. Звягинцева. - Из-во Моек- ун-та, 1991.-304 с.

132. Микробиология и биотехнология очистки воды. //Тез. докл. конф. 18 сентября 1989./Ред. Кривей И.А. Киев: О-во "Знание" УССР (Гвоздяк; Глоба и др.; Могилевич и др.; Павленко и др.; Слизень и др.; Чеховская и др.), 1989.- с. 1-2; 4; 7-8; 10-11; 33-34.

133. Микробиологические методы борьбы с загрязнением окружающей среды //Тез. докл. конф. 22-24 декабря 1975, Пущино (Гарбара; Мген и др.; Рой; Ротмистров; Соропулова), 1975.- с.6-7 ; 30-32 ; 38-40; 60-62 ; 65-67.

134. Милько А.А. Определитель мукоральных грибов.- Киев: Наук, нумка, 1974.- 303 с.

135. Мирчинк Г.Г. Почвенная микология. М.: Из-во Московского университета, 1976.- с. 145-561.

136. Морехин М.Г. Способ очистки сточных вод сульфат-целлюлозного производства. А.с. № 245672. Бюл. № 13. 1977.- 233 с.

137. Мрыша Т.Н. Микроорганизмы рода Pseudomonas, развивающиеся на гуми-новых соединениях. Микробиология, т. 38, № 3, 1969.- 492 с.

138. Михайлова Е.К. О взаимоотношении эпифитных бактерий и водорослей рисовых полей /Почвенная и с/х микробиология. Ташкент: Из-во АН Узб. ССР. 1963.- с. 177-184.

139. Михайлова Е.К. Эпифитная микрофлора водорослей и роль сообществ водорослей и бактерий в обогащении азотом рисовых полей. Автореферат дис. канд.биол. наук.- Ташкент: 1966.- 20 с.

140. Мишустин Е.Н., Никитин Д.И. Атакуемость гуминовых кислот почвенной микрофлорой. Микробиология, 1961, 30. 5 - с.

141. Мишустин Е.Н., Никитин Д.И., Очилова M.J1. Микроорганизмы, разлагающие почвенный перегной. Сб. докл. к YII Межд. конгрессу почвоведов. - М.: Из-во АН СССР, I960.- 161 с.

142. Наумова Р.П., Зарипова O.K., Усманова Л.П. Очистка сточных вод производства арилдикарбоновых кислот Mycobacterium lacticolum М-3 (Rhodo-coccus rubropertinctus ). Микробиология. Т. 55, в. 6, 1986.- с. 918-922.

143. Нестеренко О.А., Квасников Е.И., Ногина Т.М. Нокардиоподобные и ко-ринеподобные бактерии. Киев: Наук.думка, 1985.-336 с.

144. Никитинский Я.Я. О разложении гуминовой кислоты в связи с усвоением ее элементов высшими растениями. Известия Московского сельскохоз.ин-та, 1902, 8,1,1.

145. Никонорова Г.К., Брусенцева С.А., Шубин В.Н., Долин П.И. Способ очистки сточных вод, содержащих органические примеси,- А.с. № 469416. Бюд. № 19,1976.- 189 с.

146. Новиков Ю.В., Ласточкина К.О., Болдина З.Н. Методы определения вредных веществ в воде водоемов. М.: Медицина, 1981.- 376 с.

147. Оболенская А.В., Щеголев В.Л., Аким Г.Л., Аким Э.Л., Коссович Н.Л., Емельянова И.З. Практические работы по химии древесины /под ред. Никитина В.М./ М.: Лесная промышленность, 1965.- 318 с.

148. Одум Н.Д. Экология (под ред. акад. Соколова В.Л.).- М.: Мир: т. 1-2. 1986.

149. Определитель пресноводных беспозвоночных Европейской части СССР (планктон, бентос), отв. ред. доктор биол. наук А.А. Кутикова, Л.И. Старо-богатов. Л.: Гидрометиоиздат, 1977.- 510 с.

150. Оршанская Ф.Б., Егоров Н.С., Аркадьева З.А., Луганский М.А., Семенова Е.В., Шацкая Т.Я. Способ биохимической очистки сточных вод от сернистых и органических соединений. А.с. СССР 1289830,1984.

151. Оршанская Ф.Б., Зеленская Т.Д., Аркадьева З.А., Луганский М.А. Способ биохимической очистки концентрированных сточных вод от анилина. А.с. № 1097566, 1982.

152. Павленко В.В., Харламов В.М., Чемерилова В.И., Тимофеева С.С. Штамм черных дрожжей Exophiala Nigrum R-11, используемый для очистки сточных вод от фенолов и лигнина. А.с. СССР № IU7I637, 1982.

153. Панькова И.М. Исследование микрофлоры альгобактериального ценоза как биорегенерационного звена искусственных экосистем, включающих человека. Автореферат, Красноярск: 1974.-24 с.

154. Пароменская JI.H., Кузнецова И.А. Трансформация гербецида 2,4-Д в культуре азотобактера. Микробиология, т. X УШ,вып.6, 1979.- с. 1122-1124.

155. Пахомова М.В. Биохимия синезеленых водорослей. В кн.: Биология сине-зеленых водорослей. Т. 2.- Из-во Моск. универ., 1969.- с. 66-87.

156. Перминова Т.Н. Влияние синезеленых водорослей на развитие микроорганизмов в почве.//Микробиология. 1964-33, № З.-с. 427-476.

157. Перцова Р.Н. Деградация ДДТ и его аналогов Pseudomonas aeruoginosa 640х.- Пущино, Автореферат, 1981.- 24 с.

158. Перцова Р.Н., Головлева Л.А. Деградация 2,4,5-трихдорфенок-сиуксусной кислоты Arthrobacter sp. //5 th Symp. Microb. Ecol. (ISME 5) Kyoto, Aug.27-Sepb.l 1989: Abstr+SX (1990).- 218 c.

159. Пидопличко H.M. Грибная флора грубых кормов. Киев: АН СССР, 1953.487 с.

160. Пидопличко Н.М., Милько А.А. Атлас мукоральных грибов. Киев: Наук, думка, 1971.- 116 с.

161. Пошон Ж. и г.д. Баржак. Почвенная микробиология.- И.: Из-во иностранной литературы, I960.- 300 с.

162. Пузырев С.А., Евилевич М.А., Черноусов Ю.И., Асимна И.Г. Способ очистки сточных вод сульфат-целлюлозного производства.- А.с. СССР № 445623. Бюл. № 37, 1974.- 57 с.

163. Разумов А.С. Прямой метод учета бактерий в воде. Микробиология.- T.I, в. 2, 1932.- с. I3I-I34.

164. Роговская Ц.И. Биохимический метод очистки промышленных сточных вод. М.: Стройиздат, 1967.- 140 с.

165. Роговская Ц.И., Лазарева М.Ф. Микробиологическая характеристика биопленки, очищающей сточные воды производства пластмасс. Микробиология, т. 33, в. 1,1964.- с. I48-I5I.

166. Родина А.Г. Методы водной микробиологии (практическое руководство).-М-Л.: Наука, 1965.- 364 с.

167. Розанова В.П., Штурм Л.Д. Видовой состав микроорганизмов, выделенных из Бориславского озоперитового месторождения и их отношение к компонентам нефти и озоперита. Микробиология. I. 33. вып. 1,1964.- с. 126-133.

168. Романенко В.И., Кузнецов С.И. Экология микроорганизмов пресных водоемов. Лабораторное руководство.- Л.: Наука, 1974.-196 с.

169. Романенко В.И., Никифорова В.П. Среда для культивирования олигокар-бофильных водных бактерий. Биологическое самоочищение и формирование качества воды. МОИП, 1971.- с. 75-77.

170. Романенко В.И., Никифорова Е.П. Развитие бактерий на растворенных органических веществах пресных водоемов. Микробиология.- Т. 43, № I, 1974.- с. 133-137.

171. Ротмистров М.Н. Микробиологические основы биологической очистки промышленных сточных вод //Вод. ресурсы.- № 3, 1975.-е. 160-163.

172. Ротмистров М.Н., Рой А.А., Гвоздяк П.И. Штамм Bacillus subtilis 6/1 для очистки вод от капролактама, А.с. СССР 531843. Бюл. № 38, 1976.- 81 с.

173. Ротмистров П.И., Гвоздяк П.И., Ставская С.С. Микробиология очистки воды. Киев: Наук, думка, 1978.- 268 с.

174. Рубин А.Б., Кананенко А.А., Пащенко В.З., Чаморовский С.С., Винидиктов П.С. Принципы регуляции и модельные системы первичных процессов фотосинтеза // Итоги науки и техники. ВИНИТИ. Биофизика. 1987. Т.22., с.210.

175. Рудзорга А.И. Некоторые группировки водорослей сернистых источников заповедника Кемери. Сб. Гидробиология и ихтиология внутренних водоемов Прибалтики, т. 7.- Рыбное хоз-во внутрен. водоемов Лат. ССр.- Иэ-во АН Латв. ССР.

176. Руководство к практическим занятиям по микробиологии под ред. проф. Н.С. Егорова.- Из-во Моск. унив., 1983.- 215 с.

177. Руководство по методам биологического анализа морской воды донных отложений под ред.А.В.Цыбань.- Л.: Гидрометеоиздат, ,1980.- 192 с.

178. Рустемов С.А., Головлева Л.А., Алиева P.M., Джусупова Д.Б. Штамм бактерий Pseudomonas aeruginosa, разлагающий а -метилстирол и толуол. -А.с. СССР № 1375647, 1986.

179. Рыбина В.К. К вопросу о характере взаимоотношений простейших с физиологическими группами почвенных бактерий. -/Материалы конференции, Ташкент; октябрь 1961, Ташкент, 1963.-е. II4-II8.

180. Сакевич А.И. Экзометаболиты пресноводных водорослей. К.: Наук. Думка, 1985.-197 с.

181. Северцов С.А. Динамика населения и приспособительная эволюция животных. М.: Изд-во АН СССР, 1941. с. 1-316.

182. Сиренко Л.А. Физиологические основы размножения синезеленых водорослей в водохранилищах. Из-во Наук.думка, Киев: 1972. - 203 с.

183. Сиренко Л.А., Гавриленко М.Л. "Цветение" воды и евтрофирование (Метода его ограничения и использование сестона).- Киев: Наук.думка, 1978.231 с.

184. Скворцова И.Н. Методы идентификации и выделения почвенных бактерий рода pseudomonaa.- М.: Моск. университет, 1981.-78 с.

185. Скворцова И.Н. Идентификация почвенных бактерий рода Bacillus .- М.: Московский университет, ч. I, 64, 1984.

186. Скворцова И.Н. Идентификация почвенных бактерий Bacillus. М.: Московский университет, ч. П, 1984.- 25 с.

187. Скрининг микроорганизмов, утилизирующих эфиры о-фталевой кислоты (Слизень З.М., Семочкина Н.Ф, Самсонова А. С. /Докл. АН БССР.- № 12. 1990-34.- с. 1128-1130.

188. Смирнов В.В., Киприанова Е.А. Бактерии рода Pseudomonas.-Киев: Наук, думка, 1990.- 264 с.

189. Смирнов Н.Н., Феоктистова О.И. Влияние синезеленых водорослей на водных животных и растения. / Экология и физиология синезеленых водорослей. М-Л.: Наука, 1965.- с. 212-223.

190. Ставская С.С., Удод В.М., Таранова Л.А., Кривей И.А. Микробиологическая очистка воды от поверхностно-активных веществ. Киев: Наук, думка, 1988.- 184 с.

191. Старынин Д.А., Горленко В.М., Компанцева Е.И., Качалкин В.И., Чеботарев Е.Н. Особенности круговорота углерода и серы в высокосульфатном источнике Талги-W Дагестанской АССР.- Известия АН СССР, сер. Биологическая, № 5, 1990.- с. 749-758.

192. Строганов Н.С. Взаимоотношение сине-зеленых водорослей с другими водными организмами. В сб. Биология синезеленых водорослей. - Из-во Моск. универ. 1964.- с. 80-98.

193. Стройкина В.Г. Материалы к флоре водорослей малых стоячих водоемов Армении. 11., 1958, №5, с.78-80.

194. Струнников В.Н. Исследование химической природы воднорастворимого сульфатного лигнина. Автореферат. - Л.: 1967.- 17 с.

195. Судьина Е.Г., Шнюкова Е.И., Костлан Н.В., Мушак П.О., Тупик Н.Д. Биохимия синезеленых водорослей. Киев: Наук, думка,- 264 с.

196. Телитченко Л.А. Биологическая регенерация вода из урины и ее качество.-Автореферат на соискание учен.степ. канд.биол. М.: 1972.- 19 с.

197. Телитченко М.М., Гусев М.В. Взаимоотношения некоторых синезеленых водорослей с бактериями, ракообразными и рыбами. В сб.: Биология синезеленых водорослей. - Из-во Моск. универ., 1964.- с. 99-110.

198. Телитченко М.М., Телитченко Л.А. Опыт использования синезеленых водорослей для интенсификации процессов минерализации органических веществ урины. В кн.: Биология синезеленых водорослей. М.: т. 2 (МОИР), 1969.- с. I25-I3I.

199. Теппер Е.З. Разложение лигнина и микроорганизмы, участвующие в этом процессе. Рефераты докладов научной конференции. - М.: XIX 1954.- с. 158-165.

200. Теппер Е.З. Микроорганизмы рода Nocardia и разложение гумуса.- М.: Наука, 1976.- 198 с.

201. Теппер Е.З. Микроорганизмы рода Nocardia и разложение гумуса.- М.: Наука, 1976.- 176.

202. Тзинберг Т.В., Сургина Т.А. Способ биологической очистки сточных вод, содержащих диэтаноламин. Заявка Франции 26I29I5. Bulletin officiel de la propriete industrielle, 1988.09.30, № 39.

203. Тимофеев-Рессовский H.B., Воронов H.H., Яблоков A.B. Краткий очерк теории эволюции. -М.: Наука, 1977, с. 163-166.

204. Троян О.С., Корнеева Е.А., Куликова И.В. Влияние ультразвука на микроорганизмы активного ила. /Тез. докл. YII съезда ВМО Экология, геохим. деятельность микроорганизмов и охрана окружающей среды. - Алма-Ата, Наука, 1985.-т. 6. 182 с.

205. Тульчинская В.П., Кожанова Г.А., Беляева ТА., Калмазан JI.A., Петрик Т.К., Думбай И.Н., Васильева Г.В., Литвиенко Л.М. А.с. № 998391. Бюл. № 7, 1983.- 146 с.

206. Тухмалаев Н.Р. Очистка термоминеральных вод от фенолов с использованием альго и бактериальных культур. Химия и техника воды, т. 8, № 4, 1986.- с. 81-82.

207. Улезло Г.В. Микробиологическое разрушение лигнина грибами. В сб.: Микроорганизмы и низшие растения - разрушители материалов и изделий. -Сер. Биологические повреждения. - М.: Наука, 1979.- с. 202-207.

208. Унифицированные методы анализа воды. Под общ. ред. Ю.Ю. Лурье. М.: 1973.- 375 с.

209. Фауна аэротенков. Атлас; Отв. ред. Л.А.Кутикова.- Л.: Наука, 1984. - 264 с.

210. Федоров В.Д. Концепция устойчивости экологических систем. В сб.: Всме-сторонний анализ окружающей среды. Тр. Сов. Америк. Симпозиума. Тбилиси, 25-29 марта 1974. Гидрометеоиздат. Л.: 1975, с.207-217.

211. Федоров В.Д. О методах изучения фитопланктона и его активности. М.: МГУ, 1979.-167 с.

212. Фениксова Р.В., Улезло И.В., Пукит Н.Ю. О лигнолитической активности некоторых дереворазрушающих грибов. Прикладная химия и микробиология. - 1972, 3, 8.- с.

213. Харитонова Н.Д., Евлева O.JI., Прядкина В.М., Грабоской А.Э., Евсеева JI.A. Способ биологической очистки сточных вод от фенолов, роданидов и аммонийного азота, А.с. СССР №1673533.

214. Химия древесины. (Ред. Браунинг Б.Л.).- Л.: Лесная промыш-сть, 1976.415 с.

215. Цинберг М.В., Ненашева М.Н., Гвоздяк П.И., Лисиков К.И. Способ биологической очистки сточной воды, содержащей этиленгликоль. Заявка ФРГ № 3700503. Wila Auszuge aus den Offenlegungsschrif. 1987.07.16, № 29.

216. Частухин В.Л., Николаевская M.A. Биологический распад и ресинтез органических веществ в природе. Эколого-систематические и физиологические исследования. - Л.: Наука, 1969.-325 с.

217. Черновский А.Л. Определитель личинок комаров семейства Tendipedidae.-М-Л.; АН СССР, 1949.- 187 с.

218. Черноусов Ю.И. Изучение фенолов сточных вод сульфатно-целлюлозного производства. A.s 1971.- 18 с.

219. Черноусов Ю.И., Ковалева А.А., Ломова М.А., Мазинг Л.А. Способ очистки сточных вод сульфат-целлюлозного производства. А.с. СССР № 245671. Бюл. №13, 1977.-243 с.

220. Шинкаренко А.Л., Мамайчук М.И., Сунцова Л.Д. Ученые записки Пятигорского фармацевтического ин-та, 1959.

221. Шорыгина Н.Н. Современное состояние химии лигнина. В сб.: Химия древесины, /по материалам Всесоюзного совещания, октябрь, 1966.- Рига: Зинатне, 1968.- с. 7-30.

222. Штина Э.А. Некоторые закономерности распространения сине-зеленых водорослей в почвах. Биология синезеленых водорослей. В.: т. 2 (МОИП). Из-во Московск. университета, вып. 2, 1969. с. 21-45.

223. Штина Э.А. Почвенные водоросли как пионеры зарастания техногенных субстратов и индикаторы состояния нарушения земель. //Ж-л Общ.биология. 1985.- 46, № 4.- с. 435-444.

224. Штиина Э.А., Болышев Н.Н. Водоросли солонцов. /Ботан. ж-л.-1960.- 45, № il- с. 1119, т. 1973. т. 58, № 3.- с. 360-368.

225. Штина Э.А., Панкратова Е.М. Взаимодействия азотфиксирующих синезеленых водорослей с микроорганизмами-спутниками. //Актуальные проблемы биологии синезеленых водорослей.- М.: 1974.- с. 67-78.

226. Шуберт В. Биохимия лигнина. М.: Лесная промышленность, 1968.- 134 с.

227. Шувалов В.А. Первичное преобразование световой энергии при фотосинтезе. М.: Наука. 1990 207 с.

228. Энкер П.Б., Илялетдинов А.Н., Чумичкина Т.Н., Власова З.Г., Золотарева Л.Г. Способ очистки сточных вод от цианидов. А.с. СССР № 916439. Бюл. №7. 1982.- 16 с.

229. Эшби У.Р. Конструкция мозга. Происхождение адаптивного поведения. М.: «Мир», 1964. с.186.

230. Юнг Л.А. Влияние синезеленых водорослей на почвенную микрофлору. /Современное состояние и перспективы изучения почвенных водорослей в СССР./Тр. Кировск. с-х ин-та, 20, вып. 40.- с. 254-261.

231. Юровская Е.М. Штамм бактерий Pseudomonas aeruginosa № 228, окисляющий фенолы в промышленных сточных водах. А.с. СССР № 499227. Бюл. № 2, 1976.-65 с.

232. Юровская Е.М., Донина И.Л. Способ биохимической очистки сточных вод от бенз(А)пирена.- А.с. СССР № ИЗ7085. Бюл.№ 4, 1985.- 75 с.

233. Яшнов В.Л. Практикум по гидробиологии. М.: Высшая школа, 1969. 428 с.

234. Adams G.A. and Ledingnam G.A. Biological decomposition of chemical lignin-II-Studies on the decomposition of calcium lignosulphonate by wood destroyig and soil fungi. Can. J. Rev. 1942, 20 c.(l): 13-27.

235. Ander P., Eriksson K.E, Influence of carbohydrates on lignin degradation by the white-rot fungys Sporotaichum pulveruletum. Svensk paperstidn, 1975. 78, 18, 645-652.

236. Ander P. and Eriksson K.E. Lignin degradation and utilization by microorganisms. Progr. Ind. Microbiol. 1978, 14, 1-58.

237. Arndt E.A., Al-Saadi H.A. Some Rydrographical characteristics of the Shalt al-Arab and adjacent areas. Wiss Zeitshr. Univ. Rostock. Math/ nat.R/Jg 24, 1975, p.789-796.

238. Awramik S. M., Cohen Y., Castenholz Ко Wo, Halvorson H.O.N., Alan R. Mikrobiol, Mats: Stromatolits//Liss, 1984, 1.

239. Ban S, Glanser-Soljan M. Rapid Biodegradation of Calcium Lignosulfonate by Means of Mixed Culture of Microorganisms. Biotechnology and Bioengineering. 1979, XXI, 11,

240. Bartsch G, Ztilke H. J., Jaschhof H., Mach F. Vergleichen-de elektronmikro-skopische Untersuchungen der Belebtschlam-mflocken in Anlagen zur biologis-chen Reinigung industrieller Abwasser. // Z. allg. Microbiol., 1970,10,3, 157-164

241. Bauld S., Brock T. Algal excretion and bacterial assimilation in hot spring algae mate // S. Phycol. 1974, 10, 1, 101-106.

242. Bavendam W. New Untersuchungen in die Lebensbedingungen holzzersto-randern. Pilze Centralbl. Bakt II Abt. 1928, 172-227.

243. V.N. Belyanin, A.P. Trenkensky. Crowthaud photosynthetic characteristics of the alga Synechococcus elongatus upen different temperature and light conditions. //Arch. Hydrobiol "Algological satdies 18" Stuttgart, 1977, 46-66.

244. Bergey's manual of Systematic Bacteriology Copyright 1984 Williams Wilkins 428 East Preston Street Baltimore, MD 21202 USA vol. 1, 2, 3.

245. Berry W. Process for the decolorization of pulp mill process streams. Патент CIIIAN 4 695 386.0fficial gazette, 1987, 1082, 4 .

246. Биологический способ удаления марганца. Заявка Японии, № 60-15398. Токкё Кохо, 1985.04.19. № 2-385.

247. Bjalfe G. Nitrogen fixation in cultures of algae and other microorganisms // Physiol. Plant. 1962, 15,122-129.

248. Blair S.E, Davis L.T. Process for decolorizing pulp and paper mill wastewater . Патент США № 4199444, 1980, Р.ж. Биология, 1981, 1Л591П.

249. Blair S.E., Davis L.T. Микроорганизмы для обесцвечивания сточных вод с целлюлозных и бумажных заводов. Патент США № 4444800, № 1984, Изобретения за рубежом, 1964, 62, 1, 44.

250. Boruff C.S., Buswell A.M. The anaerobic Fermentation of lignin. J. Ann. Chem. Soc. 1954, 56, 886-888.

251. Brown C. and Ramon J. Seidler Potential Pathogens in the Environment Klebsiella pneumoniae, a Taxonomic and Ecolo-gocal Enigma. Applied Mocrobiology, 1975, 25, 900-904.

252. Brownll H.H. Isolation of milled wood lignin and Lignin Carbohydrate Complex (Part II of Study on the Lignin Carbohydrate Complex (Part II of Study on the Lignin -Carbohydrate Bend). Tappi. 1965, 48, 515-519.

253. Brune G., Schobert S. Sahm H. Анаэробный способ очистки фурфуролсо-держащих сточных вод, пригодные для него микроорганизмы и их культивирование. Заявка ФРГ.- N 05 5 210911, 1985. Wila Auszuge aus den Of-fenlegungsschriften, 1985, 59.

254. Bunt I.S. Blue-green algae. Growth. Isolation of bacteriafree cultures from hor-mogone producing bluegreen algae //Nature, 1961, 192, 4809, 1274-1276.

255. Bures Y., Marvan P., Marvakova L, Yamborova M. Устройство для биологической очистки воды. А.с. Чехословакия, № 259077, 1989. Р.ж. Технологические аспекты охраны окружающей среды. 1990, 4, 485. 183 .П.

256. Cartwright H.J., Smith A.R.W. Microorganisms and. degradation by lignin. Bio-chem. J. 1967, 828.

257. Cartwright HJ. and. Holdom K. S. Biodegradation of lignin. Microbios. 1983, 8, 7.

258. Сакинэ Итигоро. Способ обработки сточных вод.- Заявка Японии, № 446432. 1969.- Токкё Кохо, 2-385. 1974.

259. Cernakova Marta et al. Microbialna degradacia lignocellulozaveho materialu ad-padovych vod cellulozky. Yranov nad ТорГ on // Zivot. Prostred.- 1990.- 24, 5, 246-251.

260. Clayton N.Y. and Scrinivasan V.R. Biodegradation of lignin by Candida sp. // Naturwissenschafien.- 1981, 68, 97-98.

261. Clayton R.K. Characteristics of promt and de layed fluorescence from spinach chloroplasts //Biophys. J 1969. V.9 p. 60-77

262. Clement G. Annales de la nutrition et da limentation, 29, 1975. p. 477-488.

263. Cohen I., Padan E., Shilo M. Facultative anoxygenic photosynthesis in the cyanobacterium Oscillatoria limnetica.// J. Bacteriol. -1975. - 125, № 5, 855861.

264. Compere P. Algues de la region du lac Tchad. II. Cyanophycees Cahiens O.R.S.T.O.M., seria Hydrobiologia VII, 1974, №3-4, p 165-198.

265. Cooke W.B. Fungi associated with spend, suit uric liquor disposal in a natural sand beg. // Tappi, 1963. - 46, 573-578.

266. Cormark J.F. and Amberc H.R. The effect of biological treatment of sulphite-waste liquor on the growth of Sphairotilus natans. // Rurdue Univ. Eng. Bull. Ext. Ser. -1959. 44(5), 16-25.

267. Geitler L. Cyanophyceae. In Rabenhorst L. Kryptogamen Flora Von Deutschland, Osterreich und der Schweiz, Leipzid. 14.1932.

268. Grawford D.L. Growth of Termomonospora fiisca on lignocellulosic pulps of varying lignin content. // Canadien J. of Mocrobiology. 1974. - 20, 1069-1072.

269. Govindjee O.D., Amesz J., Rock D. Light emission by plants and bacter.// Orlando Acad Press. 1986, 650 p.

270. Grawford R.L. Mutualistic degradation of the lignin model compounds veratryl-glycerol- -to- methoxyphenyl other by bacberia. // Canadian J. of Microbiology,-1975.21, 10, 1654-1657.

271. Crawford R.L. Recent advances in studies of the mechanism of microbial degradation of lignins. // Enzyme and Microbial. Technology.- 1984, 6, 10, 454-442.

272. Crawford R.L., Kirk Т.К. Harkin J.M. and McCoy E. Bacterial cleavege of an Arylglycerol Ether. Bond. // Appl. Microbiol.- 1975, 25, 522-524.

273. Crawford R.L., McCoy E., Harkin J.M., Kirk Т.К. and Obst J.R. Microbiol degradation of lignins. // Appl. microbial 1975 a, 26, 176.

274. Crawford D.L., Snellen Floyd and Pometto A.L. Ill and Crawford R.L. Degradation of natural and Kraft lignins by the microflora of soil and water. // Ganad. J. Microbiol. -1974, 25, 454-440.

275. Crawford D.L., Crawford R.L. and Pometto A.L.III. Preparation of Specifically Labaled 14C-(lignin)- and 14C-(Cellulose)- Lignocelluloses and Their Decomposition by the Microflora of Soil. //Appl. and Environmental Microbiology. June, 1977, 1247-1251.

276. Crawford D.L. and Sutherland J.B. The role of Actinomycetes in the Decomposition of Lignocellulose.//Development Industry Microbiology.- 1979, 20, 145151.

277. Crawford D.L., Crawford R.L. Microbial degradation of lignin.//Enzyme Microbiology Technological.- 1980, 2, 11-22.

278. Curtis E.J.C., Curds C.R. Sewage fungus in rivers in the United Kingdom: the slime community and its constituent organisms.//"Water Res". 1971, 5, 2, 1147-1159.

279. Дадзай M. Тенденции практического использования биотехнологии. Современное состояние развития и проблемы биотехнологии в защите окружающей среды./ Очистка сточных вод. Когай то тайсаку, 1986, 22, № 2, с. 110-115.

280. Dagley S. Biodegradation of aromatic compounds.//Adv. Microbiol. Fhysiol.-1971,6, 1.

281. Dagley S. and Stopher D.A. A new mode of fission of the benzene nucleus by bacteria. //Biochem. J. 1959, 75, 16.

282. Dagley S., Evans W.G. and Pibbons D.W. New pathways in the oxidative matabolisms of aromatic compounds by microorganisms.// Nature,- I960, 188, 560-566.

283. Desschamps A.M., Mahoudeau Gand, Lebeault J.M. Fast Degradation of Kraft Lignin by bacteria. //Europe an J. Appl. Microbiol. Biotechnol. 1980, 9, 45-51.

284. Demming В., Bjorkkman O. Comparison of the effect of exessive light on chlorophyll fluorescence (77K) and photon yield of 02 evolution in leaves of higher plants // Planta. 1989. V. 171. N.2. p. 171 -184.

285. Drewes K. Uber die Assimilation des Luflstickstoff durch Blaualgen. //Zbl. Bakteriol, Parasitenk, Infektionskrankh und Hyg. Abt.II 1928, 76, 1, 88-98.

286. Enkvist Т., and Backlund C. Biochemical experiments with spend liq-uors.//Paperi Puu.- 1955, 57(5), 55-60.

287. Elster H.J. und Vollenweider R. Beifrage zur Limnologie Agyptens. Anch. Hydrobiol, 57, 1961, S 241-243.

288. Eslyn W.E. Outside storage of hardwood chips in the northeast II. Microbiological effects.//Tappi.- 1967, (50),297- 503.

289. Fahraens G., Nilson R. and Nilson G. Studies on the decomposition of wood by means of some white-rot fungi. //Svensk lotan Tid.- 1949, 45, 545.

290. Falkowski P.G., Kiefer A. Chlorophyll a fluorescence in phytoplankton: relafionship to photosynthesis and biomass // J. Plancton Res. 1985. V.7. №5. p.7145-731.

291. Ferm Rand Nilsson A.C. Microbiological degradation of commercial lignosul-fonate. //Svensk. Paper stid.- 1969, 72(17), 551-556.

292. Fischer G. Untersuchungen Uber den biologischen Abbaudes Lignins uurch. Mikroorganismen. Arch. Microbiol. 1953, 18, 597-42.

293. Fischer H. Uber Symbiose von Azotobacter mit Oscillatoria. //Zbl. Bacteriology 1904, Abt.II Bd.12 - S, 128-155.

294. Fogg G.E. The extracellular product of algae. //Oceanogr. Mar. Biol. Ann. Rev., 1966, 4, 195-215.

295. Fukuzumi T. Microbiol Metabolism of Lignin-Related Aroma-tics.//Agr. Biol. Chem. 1962, 26, 447.

296. Gaur A., Pipes W.O., Gotaas H.B. Gulture of Oscillatoria in chnute, kaus. // J.Amer.Water Works, Assoc.-1960,5o, 51-44.

297. Gold K. Harthn-On-Hadson N.Y. and Bruce W. Enzymatic process. Патент США № 4 756 852. Official Gazette,-1988,1052,70, 2.

298. Gottleb S., Pelezar M.J. Microbiological Acpects of lignin degradation. //Bacterial Rev.- 1951, 15, 55-76.

299. Grund E., Rnorr C., bichenlaub 12. Catabolism of benzoate and. monohy-droxylated benzoated by Amycolatopsis and Streptomyces spp. //Appl. and Envi-ron.Microbiol.-1990, 56,5, 1459-1464.

300. Guevin Dumartrait E. et Moyse A. Annales de la nutrition et de la limentation. 30, 1976. p. 486-496.

301. Gulyas F. On the role played by several soil fungi in the microbiological decomposition of Lignin Agrokem. Talasau-1967, 16, 137:50.

302. Gupapta J.K., Sharma Prince, Kern ILW., Sahm J.K. Degradation of synthetic lignins and some lignin monomers by the yeast Rhodotorula glutinis //World J.Microbiol and Biotechnol. //MIRGEN J.Appl.Microbiol and Biotechnol 1990, 6, 1,53-88.

303. Haider K. and Trojanowski J. A. Comparison of the Degradation of 14C-Labeled DH Pand Cornstalk Lignins by Micro-Macrofungi and by Bacteria. CRC Press Inc. Boca Baton Tia. 1980, 1, 6, 111-155.

304. Hall P., Glasser W. and Dew S. Enzymatic Transformation of Lignin. CRC Press Inc. Boca Baton Tla.-1980, 11,5, 55-51.

305. Hansgirg A. Prodromus der Algenflora von Bohmen 2. Teil. Prag. 1892.

306. Harker A.R., Kim J. Trichloroethylene dergadation by two independent aromatic-degrading pathways in Alcaligenes entrophus (MP 154) // Appl.and Envi-ron.Biotechnol. -1980,13, 5, 76-85.

307. Harsmen L. and Nissen T.V. Timber decay caused by bacteria. Nature. -1965, 206, 519.

308. Herbst V., Overbeek J. Metabolic coupling between the alga Oscillatoria re-dekei and accompaying bacberia.//Katurwissen-schaften.-1978, 65, 11, 598599.

309. Higson F.K., Focht D.D. Degradation of 2-brom-benzoic acid by a strain of Pseudomonas aeruginosa. //Appl. and Environ. Microbiol.-1990, 56, 6, 16151619.

310. Hindak F. etal. Kluc na urcovanie vytrusnych rastlin, 1, Bratislava, 1975.

311. Hiroi Т., Eriksson K. Microbiological degradation of lignin. 1. Influence og cellulose on the degradation of lignins by the white-rot fungus. P.ostreatus. // Svensk. paper-stidn.- 1976a, 5, 79, 177-181.

312. Hiroi Т., Eriksson K.E., Stenlund B. Microbiological degradation of lignin. 2. Influence of cellulose upon the degradation of calcium lignosulfonate of various molecular size.//Svensk.paper stidn.-1976, 5, 182-186.

313. Hohnl W. On the biology of wste-water fungi, special consideration of pulp and paper milleffluence. //U' ochbt. Paper fabrik, 1956, 84 (14), 564-565.

314. Holsinger E.C. Hydrobiologia, 7,1955, p 8-24.

315. Huber-Pestalozzi G.Das Phyfoplankton des Subucassers. 1. Teil. In Theinemann A. Die Binnengewasser, 16, 1 Teil Stuttgart, 1938.

316. Iltes A. Cah. O.R.S.T.O.M., ser. Hydrobiologia, II. 1968 №3-4 S 119-125.

317. Iltes A. Cah. O.R.S.T.O.M., ser. Hydrobiologia, II. 1969 №2 S 29-43.

318. Insell J.P. Microbial treatment of wastewater to remove tertiary butyl alcohol. // Патент США № 4855051,1987 Р.Ж.85. Технол. аспекты охраны окружающей среды, 1991,5,260 П.

319. Ishikawa Н., Schubert W., Nord F. Investigation of lignins and lingnification. XXVII. The Enzymic degradation of softwood lignin by white-rot fungi. //Arch.Biochem.and Biophys.-1963, 100, 151-159.

320. Ishikawa H., Schubert W., Nord F. Investigation on lignin and lignification. XXX. Enzymic degradation of guaiacyl-glycerol and related compound by white-rot fungi. //Biochem. Leitschz. -1965, 558, 155-159.

321. Jaschhof II. Preliminary studies p of the decomposition of (lignin by bacteria isolated from lignite. //Gechiurn cosmohium Acta.- 1964, 28, 1623.

322. Jones I. An in vestigation into their bacterial associations of some Cyanophy-ceae with especial reference to their nitrogen supply.//Ann.bob.-1950, 44, 715721.

323. Кабаяси M. Использование фото синтезирующих бактерий при рециркуляционной очистке концентрированных сточных вод, содержащих органические соединения./ /Есуй то хайсуй, 1965.-т. 27, № II, с. II28-II33.

324. Kauffman J.W., Lauchlin W.G., Baldwin Е.А. Process for the removae of sul-faye and metals from agueous solutions. Патент US №4 519 912, 1985- Offical Gazette, 1985, 1054 ,4.

325. Kawakami H. Degradation of Ling in-Related Compounds by Several Pseu-domonas. // CRC Press Inc. Boca Raton Tla, 1980,11, 8, 103-127.

326. Kirk Т.К. Effects of microorganisms of lignin.//Ann. Rev.Phytopathol.-1971, 9, 185-210.

327. Kirk Т.К., Harkin J.M. and Cowling Б.В. Degradation of the lignin model compound syringylglicol-B-guiaocyl ether by Polyporus versicolor and Stereum frustulatum.//Biochium, biophys. Acta.- 1968, 165, 143-163.

328. Klein D.A., Rochhill R.C., Eldridge J.P. and Park J.E. Fungal and Bacterial Responses to Photooxidized Lignin Sulfonate Substrates.//Tappi.- 1970, 53, 14691472.

329. Kleinert T.M., Joyce G.S. Lignin sulphonic acid as mould nutrients. //Svensk.Papperstid.-1959, 62(2), p. 37-44.

330. Klimov V.V., Allakhverdiev S.J., Shievalov VA., Krasnovsky A.A. Effect of extraction and re-addition of manganese on light reaction of photosystem II preparations // FEBS Lett. 1982. V. 148. p.307-312

331. Klimowiez H. Orzeski jako bioindykatory przebiegu procesu trzeciego stopnia oczyszczania sciekow w stawach. // Gaz, Voda i Technika Sanitarna.-1983, 57, 3, p. 59-71.

332. Konishi Kouzou. Биоиндикатор- устройство для биологической обработки сточных .//Yap.I.Pap.Technol.-1989,32,9, р. 41-46.

333. Komarek J. Algologische Studien, Prag, 1958.

334. Kruiubein W.E., Bucholz H., Frank P. et al. //Naturwissen-schaften. -1979, p. 66-331.

335. Kulandaivelu G., Darnell H. Dichlorohenul dimetylurea (DCMU) induced increase of chlorofill a fluorescence intencity. An index of photosynthetic oxygen evolution in leaves, chloroplasts algae // Physiol Plant. 1980. V. 48. p. 385-388.

336. Kurare К. К. Способ обработки сточных вод, содержащих пектин. Заявка Японии № 59-32200, 1877 // Токкё Кохо, 2-805,1984.

337. Lavorel J., Etienne A.L. In vivo Chotosynthesis. North Holland: Едыумшук, 1977. p.203-268

338. Samuelson G., Oquist G.A. A method for studying photosynthetic capacities of unicellulav algae based on in vivo chlorophyll fluorescence // Physiol. Plant. 1977. V. 40. p. 315-319.

339. Larson U., Hagstrom A. Phytoplancton exudates release as an energy source for the growth of pelagic bacteria // Mar. boil. 1979/ - 52 №3. - p. 199-206.

340. Lawton L., Jamel A.-L.K., Bell S.G., Gadd G.A. Effects of cy cyanobacterial toxins on the bioba of freshwaters // 5-th Int.Symp.MicrobioI.Ecol. (ISME 5), Kyoto Aue,.27-Sept. 1,1989: Absbr.- S.I.(1990)- C. 224.

341. Leonard J. et Compere P. Bull Jard. Bot Nat Belg., 37, 1967, suppl. 1-23.

342. Leonowicz J. and Leonowicz A. and. Hampel B. Exoenzymes in fungi degrading lignin II. Demethoxylation of lignin and vanilic acid. // Acta microbiol.Pol.-1966, 15, 17-22.

343. Leonowicz A., Trojanowski P. Exoenzymes in fungi degrading Lignin I Fholiota mytabilis. //Acta microbiol.Pol.-1965. 14, 55-61.

344. Lewin K. Extracellular polysaccharides of green algae. // Cand.J.Microbiol.-1956, 2, 7, 665.

345. Lochhead A.G. and Chase F.E. Production of antibacterial substances from sulphite waste liquor by Penicillium notanum. //Can. J. Rev. -1945, 23F, 161-167.

346. Lundguist K., Kirk Т.К., Connora W.I. Microbial degradation 14C Labeled Lignin Sulfonabe Substrates by Phanerochaete chrysosporium. //Arch. Microbiol,-1977, 112, 291.

347. Maeda S., Okkiakira F.T., Ohmine M. Transformation of arsenic compounds in a freshwater food chain. //Appl.Orga-nometal.Chem.-1990, 4, 3, 251-254.

348. Malkin S., Siolerer Y. The Effect of Salt Concentration on the Fluorescence Parameters of Isolated Chloroplast // Biochim. Biophis. Acta. 1974. V. 368. №3. p.422-431.

349. Martin M.E., Wayman M. and Graf M. Fermantation of sulphite washer liquor to produce organic acid.//Can.J,Microbiol.- 1961, 7, 341.

350. Marty F. et Busson F.S.R. Acad. Sc., Paris, 270, Zer.D, 1970, p 786-789.

351. Способ биологического разложения растворов, содержащих фенолы. Заявка Франции, № 23II759, ИЗР 1977. 27, 2, II с.

352. Способ обработки содержащих циан сточных вод. Заявка Японии. № 5653432, ИЗР. 1982, 32, 6, 52 с.

353. Способ биологической обработки концентрированных сточных вод. Заявка Японии № 57-28319. Токкё Коху, 1362,06.16, № 2-708, 31 с.

354. Способ обработки сточных вод. Заявка Японии № 60-23878. Р.ж. Биология, 1985, 52, 12, 76 с.

355. Способ обработки сточных вод с применением смеси микроорганизмов. -Заявка Японии № 59-48678. Р.ж. Биология, 1985, 52, 7, 44 с.

356. Микробиологический способ извлечения металлов. Заявка Великобритании № 2U68927. ИЗР. 1982, 52, 7, 29 с.

357. Микробиологический способ (синергический) микробный состав для удаления маслянистых материалов из сточных вод. Патент США № 4350770. ИЗР. 1983, 62, 10, 33 с.

358. Микробиологический способ удаления маслянистого вещества из сточной воды и микробиологический состав для этой цели. Патент США № 4482632. ИЗР, 1985. 7, 53 с.

359. Микробиологический реагент для очистки пресной воды. Заявка Японии № 60-18480, Токкё Кохо, 1985,05.10, № 2-462.

360. Moore E.G., Fischer R.G. Biosynthesis of extracellular polysaccharides by the blue-green alga Anabaena flos-aquae.//Canad.J. Microbiol.- 1965, 11, 6, 877.

361. Odier E., Janin G. and Monties B. Poplar Lignin decomposition by Gram-Negative aerobic Bacteria. //Applied and Environmental Microbiology,- 1981, 41, 2, 337-341.

362. Pandila M.M. Micro-organisms Associated with Microbiological Degradation of lignosulphonates. //A. Review of Literature. Pupl and Paper Magazin Canada. -1973,74, 80-84.

363. Parker B.C., Bold H.C. Biotic relation-ship betwen soil algae and other microorganisms. //Amer.J. Bot.- 1961, 48, 2, 185-197.

364. Pearl I.A. and Applinc J.W. Penicillinium production. // Science.- 1944, 100, 51.

365. Pettigrew C.A., Breen A., Corcoran C., Sayler G.S. Chlorinated biphenyl mineralization by individual populations and consortia of freshwater bacteria. //Appl.and Environ. Microbiol.- 1990, 56, 7, 2036-2045.

366. Prosser G.L. General summary. The nature of Physiological adaptation. In: «Physiological adaptation», Washington, 1958. p. 167-180

367. Пуниева Ирина. Биологично пречистване на отпадните води от целулозно-хартиената промышленост //Природа (НРБ).- 1989.- 38, № 3.- с. 36-42.

368. Rajam Rajendram, Rajendran N., Orus nigama Y, Venugopalan V.K. Degradation of DDT, lindana and endasulfane by Pseudomonas sp., Isolated from, vellar estuary S. India. // 5th Symp.MicrobioI.Ecol. (ISME 5 ) Kyoto .Aug.27-Sept. 1.1989, SI (1990), 216.

369. Romano A.H. Fumaric and fermentation of spend sulphite liquor.//Tappi.- 1958, 41(11), 687-689.

370. Rich F. Rev. algologia 6,1931, p.75-79.

371. Schwabe G.H. Uber der thermobionten Kosmopoliten Mastigocladus laminosus Cohn.// Z.Gydrol.-1960, 22, 3, 115-119.

372. Selin J.F., Sundman V. and Raiha M. Utilization and Polymerization of Ligno-sulfonates by Wood-Rotting Fungi.//Arch. Microbiology.-1975, 105, 163-170.

373. Sim Tiow-Suan G.A. Ecology of microalgae in a high rate pond for piggery en-fluent purification in Singapore.//MIRCENI. Appl. Microbiol, and Biotechnol.-1988,4,5,285-297.

374. Sorensen H. Decomposition of lignin by soil bacteria and complex forination between suit oxidized lignin and organic nitrogen compound.//J.Gen.Microbiol.-1962, 27, 21-34.

375. Sorhkoh N.A., Ghannoum M.A., Ybrakim A.S., Stretton R,J., Radwan S.S. Crude oil and hydrocarbon-degrading strains of Rhodococous rhodochrous isolated from soil and marine environments in Kuwait.// Environ. Pollut.-1990,65,1, 1-17.

376. Starmach K. Cyanophyta, Flora Slodkovodna Polski 2, Warszawa, 1966.

377. Stewart W.D.P. Algae, Man and environment.//Ed.D.F Jackson Syracuse.-1968,53-72.

378. Still E.W. High altitude chambers and pressure suite and the their part in manned flights to the moon. J.Brit.Interpla-net.Soc.- 1960, 17, 8-10.

379. Stoecker R.R. Survival of blue-green algae under primitive atmospheric condi-tions.//Space Life Sci.-1971,3,1, 42-45.

380. Strughold И.О. Space medical research.//New Engl. Journ. Med.- 1959, 261, 10.

381. Sudo Ryuichi. Обзор новых микробиологических технологий очистки сточных вод // Сангё Когай.-1984, № 20, 324-331 с.

382. Топо Т., Tani V., Опо К. Microbial treatment of agricultural industrial waster I Agrosorption of lignins and clarification of lignin-liquor by moulds.//J. Ferment. Technol.-1968, 46, 569-576.

383. Tonomura К., Nahagami Т., Futei, Maeda К. Микробиологическая деструкция ртути почвенными бактериями. //J. Ferment.Technol.- 1968, 46, 505-509.

384. Trojanowski J. Biological degradation of lignin. //International Biodeterioration Bulletin.- 1969, 5, 119-125.

385. Trojanowski J. and Leonowicz A. Investigation on the degradation of lignin by Pholiota mutabilis. //Ann. Uhiv. M. Curie.- Skladowska, Lublin. Polonia.-1963, 18,441-452.

386. Trojanowski J., Leonowicz A., Hampel B. Exoenzymes in fungi degrading lignin II Demetoxylation of lignin and vanilic acid. //Ada Microbiol.Pol.- 1966, 15, 1,2-21.

387. Trojanowski J., Wijtas-Wasilewska M. and Junosza B. Microbial degradation of lignin.//Ada Microbiol.Pol.-1970,2,13.

388. Van Baalen. The breakdown of urec acid by blue-green algae. //Plant.Physiol.Meeting.- 1964, 39.

389. Waksman S.A. and Hytchings I.J. Decomposition of lignin by microorgan-isms.//Soil Science.-1936, 42, 119-130.

390. Westermark V., Eriksson K.E. Carbohydrate-dependent enzymic guinone reduction during lignin degradation.//Act a chem. scand.- 1974, 28, 204-208.

391. Westermark V., Eriksson K.E. Acidic cellulose degradation products from mood attacked by Spotrichum pulverulentum. // Svensk. papperstidn.- 1975, 18, 655-656.

392. White G.F., Russell N.J. Mechanisms of bacterial biodegradation of alkyl sulphate and alkylpolyethoxy sulphate surfactans. //Biodeteriorat.7 Select.Pap.7th Int. Biodeteriorat Symp. Cambridge 6-11 Sept.-1987-London, New-York.-1988, 325-332.

393. Whitton B.A., Donaldson A., Malcolm P. Nitrogen fixation by Nostoc colonies in terrestrial environments of Aldabra Atoll, Indian Ocean. //Fhycologia.-1979, 18,3,278-287.102

394. Wilsh H. Two new Cyanophyta from the Transvoal Nova Hedwigia. 3 1961, p 37-41.

395. Woodward F.E., Sproul O.S. and Atkens P.P. The biological degradation of lig-nin from pulp mill black liquor. //Purdue Univ.Eng.Bull.Est.Ser.- 1963, 115-350.

396. Zobbel C. and Salerx J. The oxidation of lignin by like Bacteria. //Arch. Hydro-biol.- 1940, 37, 163.

397. Tanahashi M., Nakatsubo Т., Higuchi To Structural Elucidation of Bambo Lignin by Dicidolysis and Ozonolysis.//J. Wood Research.- 1975, 58, 1-11.

398. Sundman V. and Selin J.F. Microbial utilization lignosulphonates of various molecular sizes. //Peper puu, -1970,8, 473-479.

399. Sundman V., Nase L. Microbial degradation lignin's model by associated micro-organisms.//Arch.Microbiol.-1972,86, 339.

400. Sudo Ryuichi. Новые технологии очистки сточных вод на небольших сооружениях. Тенденции разработок и стратегия выбора нужной техноло-гии.//РРМ.- 1986.- 17, № 8.- с. 62-70.