Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Накопление элементов (B, Mo, Se, Zn) клетками цианобактерий

ВАК РФ 03.00.25, Гистология, цитология, клеточная биология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Лябушева, Ольга Александровна

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Общая характеристика цианобактерий родов 8р1ги1ша и

N08100.

1.1.1. Таксономическое положение и экология.

1.1.2. Культивирование.

1.1.3. Биохимический состав и ценность биомассы.

1.2. Влияние КВЧ-излучения на фотосинтезирующие организмы.

1.3. Физиолого-биохимическая роль отдельных микроэлементов.

1.3.1. Классификация элементов минерального питания.

1.3.2. Биологическая роль В, Мо, 8е и Zn.

1.3.2.1. Бор.

1.3.2.2. Селен.

1.3.2.3. Молибден.

1.3.2.4. Цинк.

1.3.3. Накопление элементов микроорганизмами.

1.3.4. Взаимодействие элементов.:.

1.3.5. Методы определения элементов в биологических образцах.

ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Культивирование.

2.2. Микроскопирование.

2.3. Определение биомассы.

2.4. КВЧ-облучение.

2.5. Условия введения исследуемых элементов.

2.6. Фракционирование биомассы.

2.7. Аналитические методы определения элементов.

2.8. Статистическая обработка.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ.

3.1. Определение оптимальных концентраций Мо, В, Se, Zn и времени их введения в среду культивирования.

3.2. Действие КВЧ-облучения на аккумуляцию исследуемых элементов клетками S. platensis и N. commune.

3.3. Изменение элементного состава под действием различных факторов.

3.3.1.Изменение элементного состава цианобактерий S. platensis и

N. commune при КВЧ-облучении.

3.3.2.Изменение элементного состава клеток цианобактерий при действии химического фактора.

3.3.2.1. Бор.

3.3.2.2. Молибден.

3.3.2.3 Селен.

3.3.2.4. Цинк.

3.4. Распределение Мо, Эе, Ъх\ по клеточным фракциям.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Накопление элементов (B, Mo, Se, Zn) клетками цианобактерий"

Цианобактерии являются широко распространенными объектами научных исследований, по вопросам их физиологии существует обширная литература [Гусев, Никитина, 1979; Гусев, Минеева, 2003]. Отдельные представители цианобактерий также являются перспективными объектами фотобиотехнологии благодаря значительному содержанию белка, полиненасыщенных жирных кислот, /?-каротина, витаминов и других биологически активных веществ [Vonshak et al., 1987; Henrikson, 1994; Borowitzka et al., 1999]. Пластичность метаболизма цианобактерий позволяет получать биомассу, обогащенную отдельными необходимыми элементами, путем направленного изменения условий культивирования, что используется при создании биологически активных добавок (БАД) [Минюк и др., 1999; Блинкова и др., 2001; Пронина и др., 2002]. Наряду с хорошо изученной культурой Spirulina platensis в последние годы появляется значительный интерес к другому представителю цианобактерий - Nostoc commune, который интенсивно изучают и используют в пищу в ряде стран [Воронихин, 1953; Martinez, 1998; Kajiyama et al., 1998; Qiu et al., 2002].

Mo, Se и Zn относятся к эссенциальным (жизненно необходимым) микроэлементам, недостаточное поступление которых может приводить у человека к возникновению ряда заболеваний, что особенно важно для регионов, являющихся биогеохимическими провинциями с недостаточным содержанием этих элементов [Авцын и др., 1991; Скальный и др., 2000]. Бор относится к элементам, роль которых в организме человека пока не установлена, однако интерес к данному элементу значительно возрос в последние годы, в связи с появлением новых данных о гиполипидемических, противовоспалительных и противоопухолевых свойствах его соединений, таких, например, как аминокарбоксибораны [Hall et al., 1994].

Изучение влияния В, Мо, Бе и Хп, вводимых в питательную среду в повышенном количестве, на рост и выход биомассы цианобактерий позволяет определить концентрации, оптимальные для получения весьма ценной биомассы, обогащенной исследуемыми элементами в органической форме.

КВЧ-излучение (электромагнитное излучение миллиметрового диапазона низкой нетепловой интенсивности), широко применяемое в медицине [Бецкий, Кислов, 1990; Бецкий 1993; Девятков и др., 1994], способно стимулировать ряд физиологических процессов у цианобактерий [Тамбиев, Кирикова, 1992; ТатЫеу, Кткоуа, 1994; 2000; Тамбиев и др., 2003], в связи с чем было интересно рассмотреть его влияние на накопление клетками отдельных элементов при их внесении в культуральную среду в оптимальных концентрациях.

Элементный состав клетки - важная физиологическая характеристика организма [Чернавина, 1970; Скальный и др., 2000]. Вопрос о роли различных элементов, характере их взаимодействия, о механизмах их влияния на различные стороны метаболизма и распределения включенных элементов по клеточным фракциям, представляет значительный интерес. В связи с этим особое внимание уделялось изучению влияния факторов физической и химической природы, к которым условно можно отнести действие КВЧ-излучения и присутствие некоторых элементов в питательной среде в повышенных концентрациях. В частности, нас интересовало влияние этих факторов на общий элементный состав клеток. Для определения элементного состава биологических объектов необходимо правильно подобрать комплекс аналитических методов, позволяющих определить как макро-, так и микроэлементный состав клеток цианобактерий, его изменения при действии различных факторов и распределение исследуемых элементов в клеточных фракциях. Выяснение этих вопросов может развить существующие представления об участии указанных элементов в метаболизме цианобактерий.

Таким образом, изучение накопления отдельных элементов клетками цианобактерий и влияние их на элементный состав, а также выяснение действия КВЧ-облучения на данные процессы представляет значительный интерес как в фундаментальном, так и в прикладном аспекте.

Заключение Диссертация по теме "Гистология, цитология, клеточная биология", Лябушева, Ольга Александровна

ВЫВОДЫ

1. Определены оптимальные концентрации В, Mo, Sе и Zn, при которых наблюдали значительное включение этих элементов в клетки цианобактерий S. platensis и N. commune, сопровождавшееся небольшим понижением скорости роста и выхода биомассы. В качестве критерия оптимальной концентрации предлагается рассматривать максимальное значение произведения внутриклеточного содержания элемента на выход биомассы культуры.

2. Впервые выявлено действие КВЧ-облучения на элементный состав клеток цианобактерий.

3. Показана возможность применения КВЧ-облучения для стимуляции накопления Мо в клетках S. platensis и снижения токсического действия Zn на культуру.

4. Впервые показаны количественные изменения элементного состава клеток S. platensis и N. commune при введении в среду отдельных элементов — В, Mo, Se, Zn в повышенных концентрациях.

5. Показано, что во фракциях клеточных компонентов цианобактерий большая часть Zn и Se связывается белками и полисахаридами, в то время как значительная часть Мо обнаружена в липофильной фракции.

6. Показано, что комплекс аналитических методов (АЭС-ИСП, ААС) с введенными модификациями позволяет достоверно определить элементный состав клеток цианобактерий и содержание Mo, Se, Zn во фракциях клеточных компонентов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Цианобактерии, подобно другим прокариотам, отличаются чрезвычайно гибким метаболизмом и высокими адаптационными способностями [Минюк, 1999; Гусев, Никитина, 1979]. Так, они способны накапливать значительное количество элементов по сравнению с их содержанием в среде культивирования [Ковальский, 1974; Летунова и др., 1978, Abdel-Hamid et. al., 1995]. Эта особенность их метаболизма используется в фотобиотехнологии для получения биомассы, обогащенной эссенциальными элементами, что важно при создании Б АД [Vonshak et al., 1987; Henrikson, 1994; Borowitzka et al, 1999]. Однако условия, способствующие максимально эффективному включению ряда микроэлементов в клетки цианобактерий, до сих пор не изучены либо определены весьма приблизительно. В нашей работе были определены концентрации для четырех элементов, которые являлись оптимальными для получения обогащенной ими биомассы. Мы посчитали, что объективными критериями при выборе оптимальной концентрации, являются внутриклеточное содержание элемента и выход биомассы. Максимальное значение произведения этих параметров соответствует концентрации, которую можно считать оптимальной для включения исследуемого элемента в клетки цианобактерий и не подавляющей заметно в то же время их жизнедеятельность.

Известно, что изменение соотношения содержания в среде различных химических элементов, являющихся компонентами минерального питания микроорганизмов, оказывает влияние на различные стороны их метаболизма [Чернавина, 1970]. В частности, при этом может повышаться или снижаться поглощение отдельных элементов [Дедюхина, 1992]. Анализ элементного состава клеток цианобактерий позволил нам установить характер влияния на него высоких концентраций в среде микроэлементов В, Mo, Se, Zn. Накопление клетками бора вызывало увеличение внутриклеточного содержания Zn и Ca (для S. platensis и N. commune), Mo — Fe, Mn, Zn; Se — Ca, Mg, Fe, Zn; Zn — Na, Mg, Ca, Fe, Mn, Си (табл. 6).

К сожалению, в настоящее время нет достаточно обоснованной гипотезы, объясняющей природу взаимного влияния отдельных элементов. Тем не менее в наших опытах можно отметить общую тенденцию к увеличению масштаба изменений элементного состава клеток цианобактерий с ростом токсичности элементов, которая возрастает в ряду: B<Mo<Se<Zn. Возможно, более токсичные элементы затрагивают больший круг процессов метаболизма, что и является причиной более масштабных изменений элементного состава.

В нашей лаборатории было достаточно подробно изучено действие КВЧ-излучения на фотосинтезирующие организмы и было показано, что оно ускоряет рост и стимулирует выход биомассы [Тамбиев и др., 1990; 2003], изменяет реакционную способность экзометаболитов [Тамбиев и др., 1987] и транспорт ионов [Маркарова и др., 1992; 1995]. При КВЧ-облучении культуры S. platensis наблюдали стимуляцию роста и, как следствие, увеличение выхода биомассы последней (на 30 %). Отсутствие стимулирующего эффекта у N. commune, возможно, объясняется наличием полисахаридного чехла, который поглощает миллиметровое излучение. Не исключено также, что для данного вида еще не подобраны оптимальные условия облучения. Тем не менее анализ элементного состава обеих облученных культур показал следующие изменения: увеличение содержания Na, К, Mg в клетках S. platensis и Na, К, В в клетках N. commune (рис. 15).

Изучение сочетания КВЧ-облучения культуры и введения элементов в оптимальных концентрациях в среду культивирования показало, что действие КВЧ-облучения на накопление исследуемых микроэлементов в клетках не является однозначным. КВЧ-облучение не влияет на поглощение В; стимулирует поглощение Мо; снижает токсическое действие, вызываемое введением в среду Ъп в повышенных концентрациях; а Бе в свою очередь сам снимает стимулирующий эффект КВЧ-облучения на выход биомассы.

Основываясь на полученных данных, можно сделать вывод, что элементный состав клеток, подобно другим физиологическим параметрам [Тамбиев и др., 2003], изменяется при действии КВЧ-облучения.

В результате изучения распределения Мо, Бе и Ъх\ в клеточных фракциях 5". рЫет'к было показано, что большая часть поглощенного Ъа (80 %) и Бе (70 %) обнаруживаются в осадке, который включает фрагменты клеточных стенок и полисахаридного чехла, связаны с белками и полисахаридами. Значительное количество Мо обнаружено в липофильной фракции клеток.

Помимо фундаментального, результаты нашей работы важны и в прикладном аспекте. Так, они смогут найти применение в биотехнологии и экологии.

Одним из итогов данной работы была модификация комплекса аналитических методик для анализа общего элементного состав клеток и распределения элементов в клеточных фракциях. Мы считаем, что для анализа общего элементного состава клеток целесообразно использовать метод атомно-эмиссионной спектрометрии (АЭС), который позволяет одновременно определять несколько элементов. В отличие от АЭС, атомно-абсорбционная спектрометрия (ААС) позволяет анализировать пробы, полученные путем экстракции органическими растворителями (метанол, хлороформ). Таким образом, примененная методика позволяет решать широкий диапазон задач, требующих определения содержания различных макро- и микроэлементов в клетках цианобактерий и других микроорганизмов.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Лябушева, Ольга Александровна, Москва

1. Авцын А.П., Жаворонков A.A., Риш М.А., Строчкова Л.С.

2. Микроэлементозы человека: этиология, классификация, оргнаопатология. М.: Медицина. 1991. 496 с.

3. Алексеева-Попова В.В. Устойчивость к тяжелым металлам дикорастущих видов. Л.: Наука. 1991. 212 с.

4. Бецкий О.В., Путвинский A.B. Биологические эффекты миллиметрового излучения низкой интенсивности. Изв. Вузов. Сер. Радиоэлектроника. 1986. т. 29. № 10. С. 4-10.

5. Бецкий О.В., Кислов В.В. Волны и клетки. М.: Знание. Сер. Физика. 1990. 62 с.

6. Бецкий О.В. Миллиметровые волны в биологии и медицине. //Радиотехника и электроника. 1993. Т. 38. №10. С. 1760- 1782.

7. Бецкий О.В., Голант Н.Б., Девятков Н.Д, Миллиметровые волны в биологии. М.: Знание. 1988. 63 с.

8. Битюцкий Н.П. Микроэлементы и растений. Изд-во С.-П. Университета. 1999. 230 с.

9. Блинкова Л.П., Горбец О.Б., Батуро А.П. Биологическая активность спирулины. //Журн. микробиол. 2001. № 2. С. 114-118.

10. Бурдин К.С., Золотухина Е.Ю. Тяжелые металлы в водных растениях (аккумуляция и токсичность) // М.:Диалог МГУ, 1998. 202 с.

11. Бычек И.А., Бычек Е.А. Изменение липидного и жирнокислотного состава цианобактерии Nostoc commune при высыхании.//Физиол. раст. 1997. Т. 44. №3. С. 347-351.

12. Виноградов А.П. Среднее содержание химических элементов в главных типах изверженных пород земной коры. //Геохимия. 1962. № 7. С. 555-571.

13. Воронихин H.H. Растительный мир континентальных водоемов. Изд.: АН М.-Л. 1953. с. 408.

14. Гапочка Л.Д., Гапочка М.Г., Королев А.Ф. Костиенко А.И., Сухоруков А.П., Тимошин И.В. Воздействие электромагнитного излучения КВЧ и СВЧ диапазона на жидкую воду. //Вестник Моск. ун-та. Сер.З. Физика. 1994. Т. 35. №4. С. 71.

15. Гмошинский И.В., Мазо В.К., Тутельян В.А., Хотимченко С.А.

16. Микроэлемент селен: роль в процессах жизнедеятельности. //Экология моря 2000. Вып. 54. С. 5-18.

17. Голлербах М.М. Водоросли, их строение, жизнь и значение. М., Изд-во МОИП. 1951. 175 с.

18. Голубкина H.A., Пирагова Е.О., Жукова Е.О. Специфика накопления селена грибами центрального региона России. //Экология моря. 2000. Вып. 54. с.75 82.

19. Гусев М.В., Минеева Л.Н. Микробиология. М.: Изд. Центр «Академия». 2003. 464 с.

20. Гусев М.В., Никитина К.А. Цианобактерии. М.: Наука. 1979. 228 с.

21. Девятков Н.Д., Гельвич Э.А., Голант М.Б., Реброва Т.Б., Севастьянова Л.А. Радиофизические аспекты использования в медицине энергимических и информационных воздействий электромагнитных колебаний. //Электроника СВЧ. 1981. В .9. С. 43 50.

22. Девятков Н.Д., Голант М.В., Бецкий О.В. Миллиметровые волны и их роль в процессах жизнедеятельности. М.: Радио и связь. 1991. 168 с.

23. Девятков Н.Д., Бецкий O.B. Особенности взаимодействия миллиметрового излучения низкой интенсивоности с биологическими объектами //Применение миллиметрового излучения низкой интенсивности в биологии и медицине. М.: ИРЭ АН СССР. 1985. С. 6 20.

24. Дедюхина Э.Г., Ерошин В.К. Незаменимые химические элементы в регуляции метаболизма микроэлементов. //Успехи микробиологии. 1992. Вып. 25. С. 126-142.

25. Ермаков В.В. Геохимическая экология как следствие изучения биосферы //Проблемы биогеохимии и геохимической экологии. М.: Наука. 1999. С. 152182.

26. Ермаков В.В., Ковальский В.В. Биологическое значение селена. М.: «Наука», 1974. 297 с.

27. Ермолаев В.И. Экологические особенности и значение Nostoc commune F. Ulvaceum. Elenk. //Экология. 1979. №2. C.97-96.

28. Жуковский А.П., Резункова О.П., Сорвин C.B. О биохимическом механизме воздействия миллиметровых излучений на биологические процессы. //Миллиметровые волны в биологии и медицине. 1993. № 2. С. 152-153.

29. Исаева B.C. Влияние КВЧ-облучения жезнедеятельность микроорганизмов. //Сб. докл. межд. симп. «Миллиметровые волны нетепловой интенсивности в медицине» М.; ИРЭ АН СССР. 1991. С. 478-482.

30. Искин В.Д., Завгородний Ю.В., Яценко Н.М., Силина JI.K., Степула Е.В., Медведовский A.B., Райе Б.Г., Руденко C.B. Биологические эффекты миллиметровых волн. Биофизика. 1987, Препринт № 7591-В87

31. Кабата-Пендиас А., Пендиас X. Микроэлементы в почвах и растениях. М.: Мир. 1989. 439 с.

32. Калачева Г.С., Сущик H.H. Состав жирных кислот Spirulina plstensis в зависимости от возраста и минерального питания культуры. //Физиология растений. 1994. Т. 41. №2. С. 275-282.

33. Ковальский В.В. Геохимическая экология. 1974. М.: Наука. 297 с.

34. Кондратьева E.H., Максимова И.В., Самуилов В.Д. 1989. Фототрофные организмы. Изд-во Моск.ун-та, 1989. 375 с.

35. Костяев В.Я. Биология и экология азотофиксирующих сине-зеленых водорослей пресных вод. Л.: «Наука». 1986. С. 135.

36. Кудрин A.B., Скальный A.B., Жаворонков A.A., Скальная М.Г., Громова O.A. Иммунофармакология микроэлементов. М.: Изд-во КМК. 2000. 537 с.

37. Лакин Г.Ф. Биометрия. Изд.: Высшая школа. 1968. 285 с.

38. Лебедева А.Ф., Саванина Я.В., Савельев И.Б. Распределение ванадия в клетках цианобактерий Anacystis nidulans и Nostoc muscorum: взаимосвязь с SH-содержащими низкомолекулярными белками. //Вестн. Моск. ун-та. 1993. Сер. 16. Биология. №4. С. 58-61.

39. Левицкий Д.О. Биохимия мембран. Кальций и биологические мембраны. М.: Высш. шк., 1990. 124 с.

40. Летунова C.B., Ковальский В.В. Геохимическая экология микроорганизмов. М.: «Наука». 1978. С. 45.

41. Львов Б.В. Атомно-абсорбционный спектрометрический анализ. М.: Наука. 1966. 392 с.

42. Маркарова E.H., Кирикова H.H., Саари Л.А., Тамбиев А.Х.

43. Поглощение минеральных веществ у Spirulina platensis при действии КВЧ-излучения. //Вестник Моск. Ун-та. Сер. 16. Биология. 1992. В.2. С. 22 27

44. Маркарова E.H., Кирикова H.H., Тамбиев А.Х. Действие КВЧ-излучения на кинетику транспорта натрия у Spirulina platensis. //Вестник Моск. ун-та. Сер. 16. Биология. 1995. Вып.2. С. 16 23.

45. Мейчик Н.Р., Лейкин Ю.А., Галицкая Н.Б., Косаева А.Е., Кинетические закономерности бора анионитами. //Журнал физической химии. 1989. №7. С. 1871-1874.

46. Мииюк Г.С. Характеристика биологически активных соединений Spirulina platensis. //Прикл. альгология. 1999. № 1-3. С. 17-24.

47. Мииюк Г.С., Дробецкая И.В. Влияние селена на жизнедеятельность морских и пресноводных микроводорослей (обзор). //Экология моря. 2000. Вып. 54. С. 26-35.

48. Мур Д., Рамамурти С. Тяжелые металлы в природных водах. М., 1987. 288 с.

49. Нокс П.П., Пащенко В.З., Логунов С.Л., Чаморовский С.К., Чурии A.A.

50. Орлова В.А., Шерстнякова A.A., Карпов Ю.А. Современные возможности автоклавной химической подготовки аналитических проб //Зав. лаб. 1993. Т. 59. №9. С. 1-7.

51. Патова E.H., Сивков М.Д., Гецен М.В. Аккумуляция металлов почвенной азотофиксирующей водорослью Nostoc commune Vauch. //Альгология. 2000. Т. 10. № 2. С. 10 15.

52. Прайс В. Аналитическая атомно-абсорбционная спектрометрия. М.: Мир. 1976. 355с.

53. Пронина H.A., Ковшова Ю.И., Попова В.В., Лапшин А.Б., Алексеева С.Г., Баум Р.Ф., Мишина И.М., Цоглин Л.Н. Влияние саеленит-ионов на рост и накопление селена у Spirulina platensisU Физиология растений. 2002. №2. С. 264-271.

54. Реброва Т.Б. Влияние электромагнитного диапазона на жизнедеятельность микроорганизмов. //Миллиметровые волны в биологии и медицине. 1992. №1. С. 104- 124.

55. Рудик В., Бульмага В. Способ получения фикоцианина из Spirulina platensis (Nordst.) Geitl. //Альгология. 2000. Т. 10. №2. С. 350.

56. Савельев И.Б. Селях И.О. Влияние ионов цинка на морфологию и цльтраструктуру клеток цианобактерии Anacystis nidulans. Вестн. Моск. ун — та. Сер. 16. Биология. № 3.

57. Сенцова О.В., Максимова В.Н. Действие тяжелых металлов на микроорганизмы. //Успехи микробиологии. 1985. 20. С. 227-252.

58. Скальный A.B., Кудрин A.B. Радиация, микроэлементы, антиоксиданты и иммунитет. М.: Изд-во КМК, 2000. 422 с.

59. Смолин А.Н., Филиппович Ю.Б., Васильева Н.В., Егорова Т.А.

60. Практикум по общей химии. М. 1969. С. 160.

61. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H., Лапшин О.М. Изменение фотосинтетической активности микроводорослей под влияние электромагнитного излучения. //Физиология растений. 1992. Т. 39. Вып. 5. С. 1004-1010.

62. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H. Перспективы применения электромагнитного излучения миллиметрового диапазона в фотобиотехнологии. //Миллиметровые волны в биологии и медицине. 1992. №1. С. 48 -54.

63. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H., Маркарова E.H. Влияние КВЧ-излучения на транспортные свойства мембран у фотосинтезирующих организмов. //Математические методы и информационные технологии в биологии и медицине. Радиотехника. 1997. № 4. С. 67 76.

64. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H. Действие КВЧ-излучения на метаболизм клеток цианобактерий Spirulina platensis и других фотосинтезирующих организмов//Биомедицинская радиоэлектроника. 1998. №3. С. 17-25.

65. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H., Маркарова E.H. Изменение фотосинтетической активности и транспорта ионов при взаимодействии цианобактрии S. platensis с КВЧ-излучением в присуствии селена. //Биомедицинская рабиоэлектроника. 2000. № 4. С. 47-53.

66. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H. О перспективности использования солетолерантных цианобактерий в фотобиотехнологии. //Труды VIII Междунардоной конф. «Новые информационные технологии в медицине и экологии» Украина, Крым, Ялта-Гурзуф. 2000. С. 83.

67. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H. Аккумуляция селена микроводорослями и цианобактериями// Экология моря. 2000. Вып. 54. С. 38-41.

68. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H. Некоторые новые представления о причинах формирования стимулирующих эффектов КВЧ-излучения//Биомедицинская радиоэлектроника. 2000. № 1. С. 23 33.

69. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H., Лукьянов A.A. Применение активных частот электромагнитного излучения миллиметрового и сантиметрового дапазона в микробиологии. //Наукоемкие технологии. 2002. №1. Т.З.С. 34-53.

70. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H., Бецкий О.В., Гуляев Ю.В.

71. Миллиметровые волны и фотосинтезирующие организмы. М.: Радиотехника, 2003. С. 175.

72. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H., Лапшин О.М., Смирнов H.A., Гусев М.В. Стимулирующее действие электромагнитного излучения миллиметрового диапазона низкой интенсивности на рост микроводорослей. //Вестн. Моск. ун-та. Сер. 16. Биология. 1990. № 1. С. 32 36.

73. Тамбиев А.Х., Кирикова H.H., Лебедева А.Ф. Влияние КВЧ-излучения на физиологическую активность микроводорослей. //Вестн. Моск. ун-та. Сер. 16. Биология. 1993. №1. С. 58 64.

74. Томпсон М., Уолш Д.Н. Руководство по спектрометрическому анализу с индуктивно-связанной плазмой. М.: «Недра», 1988. 287 с.

75. Тренкеншу Р.П., Дробецкая И.В. Влияние антогонизма серы и селена на рост и биохимические показатели спирулины. //Экология моря. 2000. Вып. 54. С. 50-56.

76. Хайлов К.М. Экологический метаболизм в море. Киев.: Наукова Думка. 1971.252 с.

77. Христофорова Н.К., Синьков Н.А., Баденков Ю.П. Содержание микроэлементов Fe, Mn, Ni, Си, Zn в белках морских водорослей //Биология моря. 1976. № 2. С. 69.

78. Чернавина И.А. Физиология и биохимия микроэлементов. М., 1970. 310 с.

79. Шестопалова Н.Г., Баева Т.И., Баркова И.Н. Реакция растений на действие радиоволн миллиметрового диапазона. //Применение КВЧ излучения низкой интенсивности в биологии и медицине. М.: ИРЭ АН СССР. 1989.

80. Aaseth J. Optimum selenium levels in animal products for human consumption. //Norweg. J. Agr. Sci. 1993. Suppl. 11. P. 121 126.

81. Abdel-Hamid M.I., Skulberg O.M. Effect of selenium on the growth of some selected green and blue-green algae. //Lakes Reservoirs: Res. Manage. 1995. №.3. P. 205-211.

82. Abdulqader G., Barsanti L., Tredici M.R. Harvest of Arthrospira platensis from Lake Kossorum (Chad) and its household usage among the Kanembu. //J. Appl. Phycology. 2000. V. 12. P. 293 298.

83. Admi V., Afek U., Carmeli S., Raocyclamides A and B, novel cyclic hexapeptides isolated from the cyanobacterium Oscillatoria raoi. III. Nat. Prod. 1996. 59. P. 396-399.

84. Allen M.B., Arnon P.J. Studies on nitrigen-fixing blue-green algae. 2. The codium is reguirement of Anabaena cylindrical //Physiol. Plant. 1955. 8. P. 653 660.

85. Anagnostidis K., Golube S. Uber die Okologie einiger Spirulina-Arten. Nova Hedwigia Z. Kryptogamenkd. 1966. 11. P. 309 335.

86. Anderson O., Nielson J.B. 1994. Effect of simultaneous low-level dietary supplemention with inprganoc and organic selenium on whole-body, blood, andorgan levels of toxic metals in mice. //Environ. Health Perspect. V. 102. Suppl. 3. P. 321 -324.

87. Annapurna V.V., Doesthale Y.G., Bamji M.S. Spirulina as a sourse of vitamine A. //Plant Foods for Human Nutrition. 1991. V. 41. №2. P. 125 134.

88. Bai N.Y. Mass culture of Spirulina and its morphological variability leading to reflections on species concept in Cyanophyta //Arch. Hydrobiol. Suppl. 1985. 71. №1-2. P. 219.

89. Banker R., Carmeli S., Tenuecyclamides A-D, cyclic hexapeptides from the cyanobacterium Nostoc spongiaefome var. tenue. //J. Nat. Prod. 1998. 61. 1248- 1251.

90. Baosheng Q., Jiyong L., Zhili L., Shengxiang L. Distribution and ecology of the edible cyanobacterium Ge-Xian-Mi (Nostoc) in rice fields of Hefeng Country in China. //J. of Applied Phycology . 2002. 14. P. 423 429.

91. Bassler B.L., Wright M., Showalker R.E., Silverman M.R. Intercellular signaling in Vibrio harveyi-sequence and function of genes regulation expression of luminescence. //Mol Microbiol. 1993. 9. P. 773 786.

92. Bassler B.L., Wright M., Silverman M.R. Multiple signaling systems controlling expression of luminescence in Vibrio harveyi-sequence and function of genes enconding a 2nd sensory pathway. //Mol. Microbiol. 1994. 13. P. 273-286.

93. Bender J., Lee R.F., Phillips P. Uptake and transformation of metals and metalloids by microbial mats and their use in bioremediation //J. Ind. Microbiol. 1995. 14. №2. P. 113-118.

94. Berger M., Mulzer J. Total synthesis of tartrolon //J. Am. Chem. Soc. 1999. 121. P. 8393-8394.

95. Berry M.J., Kieffer J.D., Harney J.W., e.a. Selenocysteine confers the biochemical properties characteristic of the type I iodothyronine deiodinase. //J. Biol.Chem. 1991. V. 266. P.14155-14158.

96. Bertrand D., Wolf A. La bore est un oligo-element essential pour Azotobacter chroococcum. //C. r. Acad. sci. 1974. №16. P. 278.

97. Besser J.M., Ganfield T.J., La-Point T.W. Bioaccumulation of organic and inorganic selenium in a laboratory food chain. //Environ. Toxicol. Chem. 1993. 12. № 1. P. 57-72.

98. Betskii O.V. Electromagnetic millimeter waves and living organisms. //Biological aspects of low intensity millimeter waves. M.: Seven plus. 1994. P. 8-39.

99. Bienvenu P., Herodin F., Fatome M., Kergnou J.F.P. Selenium in Medicine and Biology. Berlin. 1988.

100. Blevins D.G., Lukaszewski K.M. Boron in plant structure and function. //Ann. Rev. Plant Physiol. 1998. 49. P. 481-500.

101. Blevins D.G., Lukaszewski K.M., Proposed physiological functions of boron in plants pertinent to animal and human metabolism, Environ. Health Persp. 1994.102. Suppl. 7. P. 31-33.

102. Boisson F., Gnassia-Barelli M., Romeo M. Toxicity and accumulation of selenite and selenate in the uncellular marine alga Cricoshaera elongata //Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1995. 28. №4. P. 483-493.

103. Bonilla I., Garcia-Gonzales M., Mateo P. Boron requirement in cyanobacteria. //Plant Physiol. 1990. 94. P. 1554-1560.

104. Borowitzka M.A. Microalgae as sources of pharmaceuticals and other biologically active compounds. //J. Mar. Biotechnol. 1995. V. 4. P. 185-191.

105. Borowitzka M.A. Commercial production of microalgae: ponds, tanks, tubes and fermeters. //J. Biotechnology. 70. 1999. P. 313-321.

106. Borowitzka M.A., Algal media and sources of algal cultures in: Micro-algal biotechnology. Ed.by Borowitzka M.A., Borowitzka M.A., Cambridge University press, Cambridge, New York, New Rochelle, Melbourne, Sydney, 1988. P. 457-458.

107. Bottino N.R., Banks C.H., Irgolic K.J. Selenium-Containong Amino Acid and Protein in Marine Algae. //Phytochemistry. 1984. V. 23. P. 2445 2452.

108. Boussiba S., Richmond A. C-phycocyanin as a storage protein in the blue-green alga Spirulina platens is. //Arch. Microbiol. 1980. V. 125. P. 124.

109. Break G.S., Jensen A. Heavy metal tolerance of marine phytoplancton combined effects of corper and zinc ions on cultures of four species. //J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1976. V.25. №1. P. 37.

110. Brigelius-Flohe R., Lotzer K., Maurer S., Utilization of selenium from different chemical entities for selenoprotain biosynthesis by mammalian cell lines //Biofactors. 1995. V.5. №3. P. 125-131.

111. Brown J.C. Interaction involving nutrient elements. //Ann. Rev. Plant Physiol. 1963. 14. P. 155- 164.

112. Brown P.H., Bellaloui N., Wimmer M.A., Bassil E.S., Ruiz H. Hu, Pfeffer H., Dannel F., Romheld V. Boron in plant biology. //Plant Biol. 2002. 4. P. 205-223.

113. Carpita N., McCann M. The cell wall, in: B.Buchanan, W.Gruissem., Jones R., (Eds.) Biochemistry and Molecular Biology of Plants (Chapter 2) American Society of Plant Physiology, Rockville, MD, 2000. P. 52-109.

114. Chen T.S.S., Chang C.J., Floss H.G., Biosynthesis of the boron-containing antibiotic aplasmomycin. NMR analysis of aplasmomycin and desboro-aplasmomycin. //J. Antibiot. 1980. 33. P. 1316-1322.

115. Chen X., Schauder S., Potier N., Dorsselaer Van A., Pelezer I., Bassler B.L., Hughson F.M., Structural identification of a bacterial quorum-sensing signal containing boron. //Nature. 2002. 415. P. 545-549.

116. Chuda Y., Ohnishi-Kameyama M., Nagata T., Identification of the forms of boron in seaweed by nB-NMR. //Phytochemistry. 1997. 46. P. 209-213.

117. Ciferri O. Spirulina, The edible microorganism. //Microbiol. Rev. 1983. V. 47. №4. P. 551 -578.

118. Ciferri O., Tiboni O. The biochemistry and industrial potential of Spirulina. //Ann. Rev. Microbiol. 1985. V. 39. P. 503 526.

119. Clement G. Production and characteristic constituents of the alge Spirulina platensis and Spirulina maxima. //Annales de la Nutrition et de 1'Alomentation. 1975. V. 29. №6. P. 477-488.

120. Cohen Z., Vonshak., Richmond A. Fatty acid composition of Spirulina strains grown under various environmental conditions. //Phytochemistry. V. 26. №8. P. 82-89.

121. Crist R.H., Martin R.J., Guptill, Eslinger J.M. Interaction of metals and protons with algae. //Environ. Sci. Technol. 1990. 24 (3). P. 337-342.

122. Dannel F., Rfeffer H., Romheld V. Update on boron in higher plant-uptake, primary translocation and compartmentation. //Plant Biol. 2002. 4. P. 193-204.

123. Dardanoni L., Torregrossa M.V., Zanforlin L. Millimeter wave effects on Candida albicans cells. //J. Bioelectricity. 1985. V.4. P. 35 41.

124. Davis, E.A., Maier, K.J., Knight, A.W. The biological consequences of selenium in aquatic ecosystems. //Calif. Agric. 1988. 42. № 1. P. 18-20.

125. De Philippis R., Vincenzini M. Exocellular polysaccharides from cyanobacteria and their possible application. //Microbiol. Rev. 1998. V. 22. P. 151-172.

126. Dedina J., Freeh W., Lindberg J., Cedergen A. Determination of Selenium by Graphite furnace Atomic Absorption Spectrometry. Part 1 Interaction between Selenium and Carbon. //J. Analitical atomic Spectrometry. 1987. V. 2. P. 287-291.

127. Dodds W.K., Gudder D.A., Mollenhauer D. The ecology of Nostoc. //Phycol. 1995. 31. P. 2-18.

128. Dobbs M.G., Cherry D.S., Cairns J.Jr. Toxicity and bioaccumulation of selenium to a three-trophic level food chain. //Environ. Toxicol. Chem. 1996. 15. № 3. P. 340-347.

129. Dragos N., Hodisan V., Peterfi L. Spirulina. Characterizarea biologica, obtinerea si valorificarea biomasei. //Contributii botanice. 1987. P. 235 247.

130. Dubacq J.-P., Pham-Quoc K. Biotechnology of Spirulina lipids: a sours of gamma-linolenic acid. //Bulletine de l'Institut oceanolographigue, Monaco, 1993, № 12. P. 59-65.

131. Dunitz J.D., Hawley D.M., Miklos D., White D.N.J., Berlin Yu., Morusic R., Prelog V. Structure of boromycin. //Helv. Chim. Acte. 1971. 54. P. 1709-1713.

132. Ehling-Schulz M., Bilger W. UV-B-induced synthesis of photoprotective pigments and extracellular polysaccharide in the terrestrial cyanobacterium Nostoc commune. №. Bacteriol. 1997. 179. P. 1940-1945.

133. Eyster C. Necessity of boron for Nostoc muscorum. //Nature. 1952. 170. P. 4331.

134. Failla M.L. Microorganisns and minerals. 1977. P. 151 -214.

135. Favier A. 1998. Is zinc a cellular mediator in the regulation of apoptosis. //Metal Ions in Biology and Medicine. P. 164-167.

136. Floss H.G. Natural products derived from unusuak of the shikimate pathway. //Natural Product Reports. 1997. 14. P. 433-452.

137. Floss H.G., Antibiotic biosynthesis: from natural to unnatural compounds. //J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2001. 27. P. 183-194.

138. Floss H.G Keller P.J., Beale J.M., Studies on marine microorganisms. A new antibiotic SS-228 Y produced Chainina isolated from shallow sea mud. //J. Antibiot. 1975. 28. P. 176-184.

139. Folch J., Lees M., Sloane-Stanly M. A sample method for isolation and purification of total lipids from animal tissue. //J. Biol. Chem. 1957. V. 226. P. 479-509.

140. Gao K. Chinese studies on the edible blue-green alga, Nostoc flagelliformz: a review. //J. Appl. Phycol. 1998. 10. P. 37-49.

141. Gebbay R. Cyanobacterial biomass production in saline media //Plant and Soil. 1985. 89. P. 107-116.

142. Gennity J.M., Bottino N.R., Zingaro R.A. The binding of selenium to the lipids of two unicellular marine alge. //Biochem. Biophys, Res. Commun. 1984. 118. №1. P. 176-182.

143. Gerloff G.C. The comparative Boron Nutrition of Several Green and Blue-Green Algae. //Physiol. Plan. 1968. V. 21. P. 369-377.

144. Gitelson A., Qiuang H., Richmond A. Photic volume in photobioreactors supporting ultra high population densities of the photoautotroph Spirulina platens is. //App. Environm. Microbiol. 1996. V. 62. №5. P. 1500 1573.

145. Goluble S. Halophily and Halotolerance in cyanophytes. //Origins Life. 1980. 10. P. 169-264.

146. Gos P., Eicher B., Kohli J., Heyer W.D. Extremely high frequency electromagnetic fields at low power density do not affect the division of exponential phase Saccharomycves cerevisiae cells. //Bioelectromagnetics. 1997. V. 18. P. 128.

147. Grill E., Winnacker E.L., Zenk M.H. Phytohelatins, a class of heavy metal-binbing peptides from plant, are functionally analogous to metallothioneins. //Prod. Natl. Acad. Sci. USA. 1987. 84. P. 439 443.

148. Hall I.H., Chen S.Y., Rajendran K.G., Sood A., Spielvolgel B.F., Shih J.

149. Hypolipidemic, anti-obesity, anti-inflammatory, anty-osteoporotic, and antineoplastic properties of amine carboxyboranes //Environ. Health Perspect. 1994. Vol. 102. Suppl. 3. P.21-30.

150. Hemscheidt T., Puglisi M.P., Larsen L.K., Patterson G.M.L., Moore R.E.

151. Structure and biosynthesis of borophycin, a new boeseken complex of boric acid from a marine at strain of the blue-green alge Nostoc linckia. //J. Org. Chem. 1994. 59. P. 3467-3471.

152. Henrikson R. Earth food Spirulina. Kenwood, California, USA. Ronore Enterprises. 1994. 180 p.

153. Hielsen F.H. Boron in human and animal nutrition. //Plant and Soil. 1997. 193. P. 199-208.

154. Hill D.R., Keenan T.W., Helm R.F., Potts M., Crowe L.M., Crowe J.H.

155. Extracellular polysaccharide of Nostoc commune (Cyanobacteria) inhibits fusion of membran vesicles during desiccation. //J. of Applied Phycology. 1997. 9. P. 237-248.

156. Hill K.E., Burk R.F. Selenoprotein P: recent studies in rats and in humans. //Biomed. Environ. Sci. 1997. V.10. № 2-3. P. 198-208.

157. Hill K.E., Chittum H.S., Lyons P.R. Effect of selenium on selenoprotein P expression in cultured liver cells. //Biochim. Biophys. Acta. 1996. V. 1313. № LP. 29-34.

158. Hopwood D.A., Malpartida F., Kieser H.M., Ikeda H., Duncan J., Fujii I., Rudd B.A., Floss H.G., Omura S. Production of «hibrid» antibiotics by genetic engineering. //Nature. 1985. 314. P. 642-644.

159. Hori K., Ueno-Mori T., Okita T. Chemical composition, in vitro protein digestibility and in vitro available iron of blue-green alga, Nostoc commune. //Plant Foods Hum Nutr. 1990. 40. P. 223-229.

160. Hori K.G., Ishibashi G. Hypocholesterolemic effect of blue-green alga, ishikurage (Nostoc commune) in rats fed atherogenic diet. //Plant Foods Hum. Nutr. 1994. V. 45. P. 63-70.

161. Hu H., Brown P.H. Absorbtion of boron by plant roots. //Plant and Soil. 1997. 193. P. 49-58.

162. Humm H.J., Wicks S.R. introduction and quide to the marine blue-green algae. John Wiley & Sons. Inc. New York. 1980. P. 121-123.

163. Hundson B.J., Karis I.G. The lipids of the alga Spirulina. //J. Science of Food & Agriculture. 1974. V. 25. P. 759.

164. Hutter R., Keller-Schierlein, Knusel F., Prelog VM Rodger G.C., Suter Jr. P., Vogel G., Voser W., Zahner H. Stoffwechselprodukte von Micriirganismen. Boromycin. //Helv. Chim. Acta. 1967. 50. P. 1533-1539.

165. Irschik H., Schummer D., Gerth K., Hofle G., Reichenbach H., Thetartrolons, new boron-containing antibiotics from a myxobacterium Sorangium cellulosum. //J. Antibiot. 1996. 48. P. 26-30.

166. Jaki B., Heilmann J., Sticher O. New Antibacterial Metabolites from the Cyanobacterium Nostoc commune (EAWAG 122 b). //J. Nat. Prod. 2000. 63. P. 1283-1285.

167. Johnson S.L., Smith K.W. The interaction of borate and sulfate with pyridine nucleotides. //Biochemistry. 1976. 15. P. 553-559.

168. Kajiyama S., Kanzaki H., Kawazu K., Kobayashi A. Nosctofungicidine, an Antifungal Lipopeptide from the field-grown terrestrial blue-green alga Nostoc commune. //Tetrahedron lett. 1998. 39. P. 3737-3740.

169. Kelner M.J., Montoya M.A. Structural organization of the human selenium-dependent phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase gene (GPX4). //Biochem. Biophys. Res. Commun. 1998. V. 249. №1. P. 53-55.

170. Kettner C.A., Mersinger L., Knabb R., Selective inhibition of thrombin by peptideboroarginine. //J. Biol. Chem. 1990. 265. P. 18289-18290.

171. Kitazawa H., Suzuki E., Kohuma T. Characterization of a zinc protein, carbon anhydrase of the cyanobacterium, Synechococcus sp. PCC7942. //J. Inorg. Biochem. 1997. V. 67. P. 222.

172. Kabajashi M., Matoh T., Azuma J., Structure and glucosyl composition of the boron-polysaccharide complex of radish in Plant Cell Phisiol. 1995. 36. P. 139.

173. Lee J.J., Chen T.S., Chang C.J., Fenselau C., Floss H.G. Isolation of the minor components of the boromycin ferentation: N-acetylboromycin and N-formylboromycin. //J. Antibiot. 1985. 38. P. 1444-1446.

174. Lengeler J. W., Drews G, Schlegel H.G. Heterocyst are cells in Cyanobacteria Specialized for Fixation of Dinitrogen. In "Biology of the Procariotes", Thieme Stuttgart New York, 1999. 581 p.

175. Lheto T., Kallio E., Aphalo P.J. Boron mobility in two coniferous species. //Ann. Bot. 2000. 86. P. 547-550.

176. Linsheng L. Inhibitive and Effective Mechanism of polysaccharide of Spirulina platensis on Transplanted Timor Cells in Mice. //Marine Scinces (Qindao China). 1991. 5. P. 33-38.

177. Longnecker M.P., Taylor P.R., Levander O.A. Selenium in diet, blood and toenails in relation to human health in seleniferous area. //Amer. J. Clin. Nutr. 1991. V. 53. P. 1288-1294.

178. Martinez M.R. Nostoc commune Vauch., a nitrogen fixing blue-green alga, as source of food on the Philippines. //The Phil. Agri. 1998. 71. P. 295-307.

179. Massie H.R. Effect of dietary boron on the aging process. //Environ. Health Perspect. 1994. Vol. 102. Suppl. 7. P.45 48.

180. Matoh T. Boron in plant cell walls. //Plant and Soil. 1997. 193. P. 59 70.

181. Mateo P., Bonilla I., Ferdinandez-Valiente E., Sanchez-Maeso E. Essentiality of boron for dinitrogen fixation in Anabaena sp. PCC 7119. //Plant Physiol. 1986. Vol. 81. P. 430-433.

182. Matsunga Y., Nagata T. In vivo MB-NMR observation of plant tissue. //Anal. Sci. 1995. 11. P. 889-892.

183. McMaheon R.J., Cousins R.J. Regulation of the zinc transporter ZnT-1 by dietary zinc. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. 95 (9). P. 4841-4846.

184. Mengel K., Kirkby E.A. Principles of Plant Nutrition. Internation Potash Institure, 1997. P. 256.

185. Mollenhauer D., Bengtsson R., Lindstrom E. Makroscopic cyanobacteria of the genus Nostoc: a neglected and endangered constituent of Europan inland aquatic biodiversity. //Eur. J. Phycol. 1999. 34. P. 249-360.

186. Nable R.O., Banuelos G.S., Paull J.G. Boron toxicity. //Plant and Soil. 1997. 193. P. 181-198.

187. Nakamura H., Iitaka Y., Kitahara T., Okazaki T., Okami Y. Structure of aplasmomycin. //J. Antibiot. 1977. 30. P. 714-719.

188. Newton W.E. Isolated iron-molybdenum cofactor of nitrorenase. In: Stacey G., Burris R.H., Evans H.J. Biological nitrogen fixation. Chapman and Hall, New York, 1992. P. 877-929.

189. Nielsen F.H. Dietary boron affects variables associated with copper metabolism in humans. //In 6th International Trace Element Symposium. 1989. Vol 4. Eds. M Anke, W.Baumann, H. Braunlich, C. Bruckner, B. Groppel, M. Grun P. 1106-1111.

190. Nielsen F.H. Biochemical and physilolgic consequences of boron deprivation in humans. //Environ. Health Perspect. 1994. 102. Suppl. 7. P. 59-63.

191. Nielsen F.H., Mullen L.M., Gallagher S.K. Effect of boron depletion and repletion on blood indicators of calcium status in hunan fed a magnesium-low diet. //J. Trace Elem. Exp. Med. 1990. 3. P. 45-54.

192. Nielsen F.H., Mullen L.M., Nielsen E.J. Dietary boron affects blood cell counts and haemoglobin concentration in humans. //J. Trace Elem. Exp. Med. 1991.4. P. 211-223.

193. Nosol B., Gusinski G. Oddzialywanie zewnetro pola electomagnetyznego niskiej czestotliwosci na membrane bioloczna w procesie transportu jonow. //Acta Univers. Lodziensis. Folia bioch. et bioph., 1986. Vol. 5. P. 68 78.

194. Ogino J., Moore R.E., Patterson G.M.L., Smith C.D. Dendroamides, new cyclic hexapeptides from a blue-green alga. Multidrug-resistance reversing activity of dendroamide A. //J. Nat. Prod. 1996. 59. P. 581-586.

195. Oliveira M., Monteiro M., Robbs., Leite S. Growth and chemical composition of Spirulina maxima and Spirulina platensis biomass at different temperatures. //Aquaculture International. 1999. 7. P. 261-275.

196. Petrov I.Yu. Specific effect of low intensity mm micriwave raritation on the functioning of membrane systems in the plant cell. // 23 General Assambly of URSI: Abstr. Prague Czechoslovakia. 1990. P. 35.

197. Patterson G.M.L., Larsen K.L., Moore. Bioactive natural products from blue-green-algae. //J.Appl. Phycol. 1994. № 6. P. 151 157.

198. Pelizer L.H., Danesi E.D.G., Rangel Carlota de O., Sassano C.E.N., Carvalho J.C.M., Sato S., Moraes I.O. Influence of inoculum age and concentration in Spirulina platensis cultivation. //J. Of Food Engineering. 2003. 56. P. 371-375.

199. Penland J.D. Dietary boron, brain function, and cognitive performance. //Environ.Health Perspect. 1994. 102. Suppl. 7. P. 65-72.

200. Piccardi R., Frosini A., Tredici M.R., Nargheri N.C. Bioactivity in free-kiving and symbiotic cyanobacteria of the genus Nostoc. //Journal of Applied Phycology. 2000. 12. P. 543-547.

201. Pinto J., Huang Y.P., McConnell R.J., Rivlin R.S. Increased urinary riflavin excretion resulting from boric acid ingestion. //J. Lab. Clin. Med. 1978. 92. P. 126-134.

202. Potts M. Nostoc. Ecology of Cyanobacteria. Kluwer Academic, Dordrecht, 2000. P. 265-504.

203. Power P.P., Woods W.G. The chemistry of boron and its speciation in plants.//Plant and Soil. 1997. 193. P. 1-13.

204. Prasad A.S. Zinc an overview. //Nutr. 1995. Vol. 11. P. 93-99.

205. Qiu B., Liu J., Liu Z., Liu S. Distribution and ecology of the edible cyanobacterium Ge-Xian-Mi (Nostoc) in rice fields of Hefeng County in China J. //Appl. Phycol. 2002. 14. P. 423-429.

206. Qui Zi-chuan, Zing Yuan-jie, Xie Shu-lian. Stadu of some physiological characteristics of Spirulina major Kuetz. Zhiwu yanjiu. //Bull. Bot. Res. 1998. №3. P. 1245- 1255.

207. Quillet M. Carbohydrates synthesized by the spirulines. //Annales de la Nutrition et de l'Alomentation. 1975. Vol. 29. №6. P. 112 115.

208. Rajagopalan K.V., Johson J.L. The pterin molybdenum cofactors. //J. Biol Chem 1992. 267. P. 10199-10202.

209. Rebrova T.B. The influence of MM-wave electromagnetic radiation on vital activity of microorganisms. Biological aspect of low intensity millimeter waves by N.D.Deviatkov, O.V.Betskii (eds.). M.: Seven plus, 1994. P. 104 124.

210. Reed R.H., Warr S.R.C., Richardson D.Z., Moor D.Y. Stewart W.D.P. Blue-green algae (Cyanobacteria): prospects and perspectives. //Plant and Soil. 1985. Vol. 89. № 1-3. P. 97 106.

211. Reichenbach H. The ecology of the myxobacteria. //Envaron. Microbiol. 1999. № LP. 15-21.

212. Reichenbach H., Hofle G., in: Grabley S., Thiericke R. (Eds.), Drug Discovery from Nature, Springer, Berlin, 1999. P. 149-179.

213. Sandstead H.H. Zinc deficiency. A public health problem. //J. Dis. Child. 1991. Vol.145. P. 853-859.

214. Sato K., Okazaki T., Maeda K., Okami Y. New antibiotics, aplasmomycin B and C. //J. Antibiot. 1978. 31. P. 632-635.

215. Sayato Y., Nakamuro K., Hasegawa T. Selenium methylation and toxicity mechanism of selenocystine //Yakugaku Zasshi. 1997. Vol. 117. № 10-11. P. 665-672.

216. Schummer D., Irschik H., Reichenbach H., Hofke G., Antibiotics from gliding bacteria 57. Tartrolons boron-containing macrodiolides from Sorangium cellulosum. //Liebengs Ann. Chem. 1994. 3. P. 283-289.

217. Schummer D., Schumburg D., Irschik H., Reichenbach H., Hofle G.,

218. Antibiotics from gliding bacteria. 75 Absolute configuration and biosynthesis of tartrolon B, a boron-containing macrodiolide from Sorangium cellulosum. //Liebengs Ann. 1996. P. 965-969.

219. Shepherd C.J. The enzymes of carbohydrate metabolism in Neurospora. //J. Biochem. 1951. 48. P. 483-486.

220. Slavin W. Graphite furnace AAS a source book. Perkin Elmer. 1984. 230 p.

221. Shkolnik M.Y. Trace Elements in Plants. Elsevier, New York. 1984

222. Smith K. S., Ferry J.G. Prokaryotic Carbonic Anhydrases. //FEMS Nicrobiol. Rev. 2000. V. 24. P. 335 336.

223. Stanier R.V.,Mandell M., Cohen-Bazire G. Purification and properties of unicellular blue-green alge. //Bact. Rev. 1971. Vol. 35. № 2. P. 171-205.

224. Sunde R.A., Molecular biology of selenoproteins //Annu. Rev. Nutr. 1990. V. 10. P. 451-474.

225. Surette M.G., Miller M.B., Bassler B.L. Quorum sensing in Escherichia coli, Salmonella typhimurium, and Vibrio harveyi: A ew family of genes responsible for autoinducer production, Proc. Natl. Acad. Acad. Sci. USA 96. 1999. P. 1639-1644.

226. Tambiev A.H., Kirikova N.N. Effect of EHF-irradiation on the physiological activity of cyanobacteria. //Abstr. VIII Inter. Sypmosium on phototrophic procaiyotes, Urbino, 10-15 September. 1994. P. 119.

227. Tambiev A.H., Kirikova N.N. Effect of radiation on cyanobacteria Spirulinaplatensis. //Crit. Rev. Biomed. Engin. 2000. Vol. 28. №3 4. P. 589 - 602.

228. Tambiev A.H., Kirikova N.N. Novel concepts of the causes of EHF-radiation-induced Stimulating effects. //Crit. Rev. Biomed. Engin. 2000. 28. №5-6. P. 60-76.

229. Tambiev A.H., Kirikova N.N. The prospect of use of EHF rediation in photobiotechnology. M.: Seven plus, 1994. P. 125 165.

230. Tamura T., StadtmanT.C. A new selenoprotein from human lung adenocarcinoma cells: purification, properties, and thioredoxin reductase activity. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. Vol. 93. № 3. P.1006-1011.

231. Thiel T., Lyons E.M., Erker J.C., Ernst A. A second nitrogenase in vegetative cells of a heterocyst-forming cyanobacterium. //Proc Natl Acad Sci USA. 1995.92. P. 9358-9362.

232. Thiel T., Pratte B., Zahalak M. Transport of molybdate in the cyanobacterium Anabaena variabilis ATCC 29413. //Arch Microbiol. 179. P. 50-56.

233. Todorova A.K., Juttttner F., Nostocyclamide-a new macrocycling, thiazole-containing allelochemical from Nostoc sp.-31 (Cyanobacteria). //J. Org. Chem. 1995. 60. P. 7891-7895.

234. Tomaselli L., Torzillo G., Giovannetti L., Pushparaj B., Bocci., Tredici M., Papuzzo T., Balloni W., Materassi. Recent reserch on Spirulina in Italy. //Hydrobiologia. 1987. Vol.151. P. 79-82.

235. Tomsett A.B., Thurman D.A., Molecular biology of metal tolerances of plants. //Plant, Cell and Enviroment. 1988. 11. P. 383-394.

236. Torssell K., Chemistry by plant aryl boric acids. Effects of aiyl boric acids on wheat roots and the role boron in plants. //Physiol. Plant. 1956. 9. P. 652.

237. Torzillo G., Push pa raj F., Bocci W., Balloni R., Materassi G. Production of Spirulina biomass in closed photobioeractor. //Biomass. 1986. Vol.11. P. 110.

238. Torzillo G., Sacchi A., Materassi R. Temperature as an important factor affecting productivity and night biomass loss in Spirulina platensis grown outdoors in tubular photobioreactors. //Bioresource Technology. 1991. Vol. 38. P. 32 39.

239. Tridici M.r., Carlozzi P., Chini Zitteeli G., Materassi R. A vertical alveolar panel (VAP) for outdoor mass cultivation of microalge and cyanobactertia. //Bioresource Technology. 1991. Vol. 38. P. 35-42.

240. Turkina M.V., Pavlinova O.A., Kursanov, Advances in the stady of the nature of phloem transport: The activity of conducting elements. //Russ. J. Plant Physiol. 1999. 46. P. 709-720.

241. Valle D.L. Zinc enzymes. Ed. Spiro T.J.N.Y.: J. Willey and Sons, 1983.

242. Vargasa M.A., Morenoa J., Olivaresa H., Campoa J.A., Rivasa J., Guerreroa M.G. Biochemical composition and fatty acid content of filamenttous nitrogen-fixing Cyanobacteria. IIJ. Phycol. 1998. 34. P. 812-817.

243. Vatanable Y., Hall D. Photosynthetic production of the filamentous cyanobacterium Spirulina platensis in a cone-shaped helical tubular photobioreactor. //J. Appl. Microbiol, and Biotechnol. 1996. Vol. 44, №6. P. 25 -29.

244. Vonshak A. Mass production of Spirulina an overview. In: Biotechnologie per la produzione di Spirulina, ed L.Tomaselli, CNR IPRA, Rome, 1987. 17. № l.P. 9- 14.

245. Vonshak A., Abeliovich A., Boussiba S., Arad S., Richmond A. Mass production of Spirulina biomass: effects of environmental fectors and population density. //Biomass. 1982. Vol. 2. P. 175 182.

246. Vonshak A. Outdoor mass production of Spirulina: The basic conspect. In.: Vonshak, (Ed.) Spirulina platensis (Arthrospira): Physiology, cell-biology and biotechnology. Taylor and Francis. London. 1997. P. 79 99.

247. Wong D., Oliveira L. Effects of selenite and selenate on the growth and motility of seven species of marine microalgae //Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1991. 48. №7. P.l 193 1200.

248. Whanger P.D., Oh S.H., Deagan J.T. Ovine and bovine metallothions accumulation and depletion of zinc in varios tissues. //J. Nutr. 1981. Vol. 111. Suppl. 7. P. 1196- 1206.

249. Waschulewski I.H., Sunde R.A. Effect of dietary methionine on utilization of tissue selenium from dietary selenomethionine for glutathione peroxidase in the rat //J. Nutr. 1988. Vol. 118. №3. P. 367 374.

250. Weser U. Aktivitatshemmung der hefe-alcohol-degydrogenase in gegenwart von germanat und borat. //Physiol. Chem. 1968. 349. P. 1479 1482.

251. Whanger P.D., Butler J.A. Effect of verious levels of selenium as selenite or selenomethionine on tissue selenium and glutathione peroxidase activity in rats. //J. Nutr. 1988. Vol. 118. №7. P. 846 852.

252. Wheeller A.E., Zingaro R.A., Irgolic K. The effect of selenate, selenite, and sulfate on the growth of six unicellular marine algae //J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1982. 57. P. 181 194.

253. Wolk CP., ErnstA., Elhai J. Heterocyst metabolism and development/ In: Bryant DE, ed. The Molecular Biology of Cyanobacteria. Dordrecht, The Netherlands: Kluwer Academic. 1994. P. 769 823.

254. Wrench J.J. Selenium metabolism in the marine phytoplankters Tetraselims tetrathele and Dunaliella minuta. //Mar. Biol. 1978. 49. P. 231 236.

255. Yeh J.Y., Vendeland S.C., Gu Q. Dietary selenium increases selenoprotein W levels in rat tissues //J. Nutr. 1997. Vol. 127. № 11. P.2165 2172.

256. Zhou Z. Li P., Liu Z. Effects of selenium on growth and selenium contents of Spirulina maxima //Mar. Sci. Haiyng Kexue. 1997. № 5. P. 42 45.