Оценка фунгицидной активности некоторых тропических видов флоры Йемена

Мохамед Наджи Салех Аль-Саади

Бесплатный автореферат и диссертация по сельскому хозяйству на тему
Оценка фунгицидной активности некоторых тропических видов флоры Йемена
ВАК РФ 06.01.11, Защита растений

Автореферат диссертации по теме "Оценка фунгицидной активности некоторых тропических видов флоры Йемена"

На правах рукописи

Мохамед Наджи Салех Аль-Саади

ОЦЕНКА ФУНГИЦИДНОЙ АКТИВНОСТИ НЕКОТОРЫХ ТРОПИЧЕСКИХ ВИДОВ ФЛОРЫ ЙЕМЕНА

Специальность 06.01.11 - защита растений

АВТОРЕФЕРАТ 003473Э5Э

диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

1 8 ЦП';! 2003

Москва - 2009

003473959

Диссертационная работа выполнена на кафедре ботаники, физиологии, патологии растений и агробиотехнологии аграрного факультета Российского университета дружбы народов

Научный руководитель: Заслуженный деятель науки РФ,

доктор сельскохозяйственных наук, профессор Ю.И. Помазков

Официальные оппоненты: доктор сельскохозяйственных наук,

профессор Алексеева Ксения Леонидовна

Кандидат биологических наук Козловский Борис Евгеньевич

Ведущая организация: Главный ботанический сад им. Цицина Н.В. РАН

Защита диссертации состоится « »_2009 г.

в «_» часов на заседании диссертационного совета Д 220.043.04 при

Российском государственном аграрном университете - МСХА имени К.А. Тимирязева по адресу: 127550, г. Москва, Тимирязевская ул., 49, Ученый совет РГАУ - МСХА имени К.А. Тимирязева.

С диссертацией можно ознакомиться в ЦНБ РГАУ - МСХА имени К.А.Тимирязева.

Автореферат разослан 2009 г. и размещен на сайте

университета www.timacad.ru

Ученый секретарь диссертационного совета кандидат биологических наук

А.Н. Смирнов

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. Широкое и повсеместное распространение возбудителей вредоносных грибных заболеваний (Fusarium nivale, Sphacelotheca cruenta, Ustilago nuda, Sphaerotheca pannosa, Phragmidium disciflorum, Phytophthora infestans и других создает немалые трудности по организации защитных мероприятий. Использование химических фунгицидов для их уничтожения в целях сохранения урожая - мероприятие в ряде случаев достаточно дорогостоящее. Более того, для использования химических препаратов имеются ограничения, как по срокам применения и экологическим параметрам, так и их ассортименту. Поэтому поиск альтернативных методов подавления популяций вредных видов, например, путем использования растительных препаратов (экстракты, дусты), обладающих пестицидными свойствами и безвредных для теплокровных, весьма актуально. Это позволяет избегать проблемы загрязнения окружающей среды, а также токсического воздействия синтетических химических веществ на нецелевые организмы. Оценка их действия показывает, что около 30% испытанных препаратов ингибирует рост мицелия, прорастание спор, предотвращая тем самым инфицирование растений и развитие заболеваний (Daayf et al., 2003, Dorn et al., 2007, El-sheik et al., 2002, Latten et al., 1994, Neuhoffet al., 2002, Rohmer et al., 2004). Так, из семян 8 видов растений (Jacobson et al., 1989), различных надземных органов (листья, побеги, плоды) 35 видов (Berenbaum et al., 1989) уже получают в промышленных масштабах препараты для борьбы с вредителями и болезнями. Особенно широко используется ним - Azadirachta indica. В России также проведен мониторинг около 50 видов растений, ингибирующих развитие различных патогенных организмов (Семаков, 1989). Показано, что хотя по эффективности препараты, получаемые из них, и уступают химическим средствам, тем не менее, они обладают способностью снижать численность популяций на 60-80%. Это позволяет в ряде случаев сокращать число применяемых обработок химическими средствами и снижать их концентрацию за счет комбинирования с растительными препаратами.

Флора Йемена (западная и восточная горная часть,- а также восточные, северные пустынные и прибрежные равнины) весьма богата эндемичными видами растений. Около 15% их не произрастают в других регионах. В настоящем время описано около 2810 видов, относящихся к 1006 родам и 173 семействам. Среди них 2559 натурализовавшихся видов, 121 культивируемых и 111 интродуцентов (Al Khulaidi, 2000).

Известно, что в системах защитных мероприятий от различных патогенов основным рычагом управления фитосанитарной обстановкой продолжает, на сегодняшний день, оставаться химический метод.

Привлекательность его связана с высокой эффективностью пестицидов и быстротой получаемого результата. Однако экологическая опасность химических средств диктует необходимость поиска возможностей их замены альтернативными препаратами (Захаренко и др., 2004). В этой связи, поиск новых средств защиты растений на основе биологически активных веществ, продуцируемых представителями растительного мира, весьма актуален.

Цели и задачи исследования. Основной целью работы является скрининг растений флоры Йемена с целью выделения потенциальных семиохемиков и сравнительная оценка их пестицидного действия против патогенов различной таксономической принадлежности. Для ее выполнения поставлены следующие задачи:

- изучить in vitro действия водных, хлороформных, этаноловых и ацетоновых экстрактов и дустов из различных видов растений на рост и развитие модельных объектов, различной таксономической принадлежности,

- оценить фитотоксичность препаратов по реакции обрабатываемых культур, на основе их биометрических показателей (высота растений, биологическая продуктивность и др.),

- дать экономическую оценку эффективности их применения по сравнению с химическими препаратами на основании полевых испытаний.

Научная новизна. Впервые проведена сравнительная оценка фунгицидных свойств 16 видов растений, произрастающих в республике Йемен, в отношении патогенных грибов, различающихся по биологическим особенностям и степени специализации.

Практическая ценность работы. Показано, что экстракты из некоторых видов растений могут использоваться в защите растений для подавления развития возбудителей псевдогрибных заболеваний при производстве экологически чистых продуктов, удешевляя и обеспечивая возможность сохранения урожая.

Апробация работы. Результаты работы докладывались на Международной научно- практической конференции аграрных вузов РФ «Аграрная реформа: противоречия и пути их решения», 20-23 апреля 2006 г., Москва, Международной научно-практической конференции «Биологическая защита растений, перспективы и роль в фитосанитарном оздоровлении агроценозов и получении экологически безопасной сельскохозяйственной продукции», 23-25 сентября 2008 г., Краснодар.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 9 научных работ, в том числе 2 в журналах, рекомендованных ВАК.

Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, 3 глав, выводов и списка литературы. Общий объем рукописи 132 стр.

содержит 29 таблиц, 2 рисунка и 14 приложений. Список литературы состоит из 360 источников, в том числе 300 - на иностранных языках.

Условия, объекты и методика исследований. Экспериментальная работа по оценке пестицидных свойств различных видов растений проводилась в 2006-2009 гг. в лабораторных условиях на кафедре защиты растений РУДН, кафедре фитопатологии РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева, питомнике «Розовая поляна» (Московская обл.) и Аграрном научно-исследовательском центре (провинция Даммар, Йемен).

В качестве возможных источников семиохемиков исследовали 16 видов тропических растений, произрастающих в Республике Йемен.

Образцы растений собирали в сентябре 2006-2007 гг. в их природных местообитаниях (провинции Даммар и Абб). Их таксономическая принадлежность подтверждена в ГБС РАН и профессором Alkhulaidi (Йемен).

Для приготовления исходных водных экстрактов порошок, полученный из высушенных при температуре 45°С указанных растений (или отдельных их частей) и размельченных в гомогенезаторе, кипятили при 100° в течение 5 мин. (соотношение порошка и диет, воды 1:10). После остывания и настаивания суспензий при комнатной температуре в течение 24 час. их фильтровали через двойной слой марли. Затем проводили осветление с помощью низкоскоростного центрифугирования при 3000 об./мин. в течение 5 мин. Полученный экстракт использовали для экспериментов в разбавлениях 1:1, 1:2, 1:4 и 1:8. Эффективность их действия оценивали по интенсивности прорастания спор, линейному росту мицелия и уровню пестицидного действия в отношении модельных объектов.

В качестве тест-объектов служили головня проса {Sph. cruenta Kucn-отдел Basidiomycota, класс Ustilaginomycetes, сем. Ustilagonaceae) и ячменя (U. nuda f. sp. hordei Schaffnit. - отдел Basidiomycota, класс Ustilaginomycetes, сем. Ustilagonaceae), возбудитель снежной плесени (F. nivale (Fr.) S. - класс Hyphomycetes, порядок Tuberculariales семейство Tuberculariacea), мучнистая poca (S. pannosa) и ржавчина (Phr. disciflorum) на розе, a также штаммы (ОСВ 12, Прил 2 и 6.2) Ph. infestans (Mont.) de Вагу) (отдел'Oomycota, класс Oomycetes, порядок Peronosporales, семейство Phytophthoraeae).

Работа с головней проса и ячменя выполнялась в Йемене в лаборатории Аграрного научно-исследовательского центра (AREA, Yemen, Dhamar). Об эффективности действия судили по активности прорастания спор в капле экстрактов из испытуемых растений, интенсивности роста колоний грибов (в %) и длине образующихся ростковых трубочек (в ммк) через 8 и 24 час.

Возбудители снежной плесени (F. nivale) и фитофторы {Ph. infestons) любезно предоставлены нам профессором Стройковым Ю.М. и Смирновым

А.Н. (кафедра фитопатологии РГАУ- МСХА). Влияние на Ph. infestans оценивали по эффективности прорастания зооспорангиев, а также интенсивности образования некрозов на сегментах клубней картофеля (Смирнов, Рогожин, Аль-Саади, 2009). При оценке фунгицидности экстрактов in vitro их добавляли в 1% картофельно-декстрозный агар (перед разливом в чашки Петри) и после его застывания высевали мицелий грибов. Контроль - среда с грибом без добавления экстрактов. Повторность 4-х кратная.

Ацетоновые, этаноловые и хлороформные вытяжки готовили по Taylor (1991). В качестве растворителей использовали ацетон (чда, ГОСТ 2603-79), хлороформ (хм, фирмы Химмед) и этиловый спирт (мед. 96%). За исходную концентрацию брали неразбавленный экстракт. Испытывали 4 его разведения (1:1,1:2,1:4,1:8). Контроль - дистиллированная вода. Повторность учетов 4-X кратная.

Полевые эксперименты по испытанию растительных экстрактов проводились в 2008-2009 гг. на 2-х летних кустах розы против мучнистой росы (Sph. pannosa) и ржавчины (Phr. disciflorum) на плантациях частного питомника «Розовая поляна» (Рузский р-н, Московская область) и на картофеле против фитофторы (Ph. infestans) на участке лаборатории защиты растений РГАУ -МСХА (г. Москва). Повторность 3-х кратная. В испытаниях использововали 2 сорта картофеля (Ильинский и Удача). Применяли 2-х кратную обработку водными экстрактами из Psidia arabica, Dodonaea viscosa, Lawsonia inermis и Euryops arabicas. В качестве эталона на картофеле использовали Ридомил Голд МЦ, а розах - Фитоспорин (2 г/л), Циркон (0,1 г/л), Скор (2 мл/л) и Тиовит-джет (2-3 г/л). 4-х кратные учеты на картофеле проводили в динамике через каждые 3 дня после опрыскивания по степени поражения листьев и величине образующейся некротической зоны (в баллах), количеству зооспорангев (на 10 листьях), высоте растений (см), стандартности и массе клубней с 1 м2 (Malcolmson, 1976). На розах после опрыскивания 10% водными экстрактами из P. arabica и D. viscosa оценивали интенсивность развития мучнистой росы и ржавчины (в баллах), а также активность спороношения (Аль-Саади, и др., 2009).

Оценка биологической и хозяйственной эффективности проводилась по Abacus Concepts (1987) и Качаловой З.П. и др. (1976).

Для статистической обработки получаемых данных применяли программы Genstat 32 и Straz для уровня НСР05. При многофакторном анализе использовали такие показатели как вид растения (фактор А), сорт культуры (фактор В), штамм возбудителя (фактор С), разбавление экстрактов (фактор Д) и подвижность зооспор (фактор Е).

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

Имеющаяся информация свидетельствует о том, что практически все виды растений способны вырабатывать соединения, обладающие антибиотической активностью. Чувствительность патогенов к их действию дифференцируется в зависимости от целого ряда факторов (фазы развития и биологических особенностей самого растения-донора и его используемых частей, тканей, органов, концентрации экстрактивных веществ, видов и штаммов возбудителей, против которых направлено их действие и др.). Важно подчеркнуть, что выявляемые различия четко проявляются и на таксономическом уровне. Интерес к подобным веществам в последнее время объясняется тем, что многие из них проявляют токсическое или ингибирующее действие в отношении опасных вредителей и болезней сельскохозяйственных культур. В результате появляется возможность их использования в защите растений в качестве альтернативы синтетическим химическим пестицидам (Monnet, 1999, Hoiby, 2000, Moulari et al., 2007).

Практически все вытяжки из сухих порошков, полученных из листьев различных растений, испытанных нами, по сравнению с контролем, ингибировали прорастание спор возбудителей грибных заболеваний (табл. 1). При этом найдено, что токсическое действие экстрактов варьирует в зависимости от вида используемого растения и тест-возбудителя. В целом, наибольший эффект наблюдался в отношении облигатных паразитов - видов головни, особенно головни ячменя. Уровень ингибирования прорастания спор варьировал от 2,6 до 66,7%.

Эффективность действия исходных экстрактов из растений, показавших эффект абсолютного подавления процесса прорастания спор, дифференцируется при их последовательном разведении (табл. 2), снижаясь с уменьшением концентрации.

Следует отметить, что круг растений, проявивших пестицидные свойства, при использовании экстрактов из свежих листьев, побегов и цветков несколько шире (на 3 вида), чем из дустов, что свидетельствует о нестабильности ряда соединений, ответственных за их проявление.

Сравнительная оценка биологической эффективности водных, этаноловых, ацетоновых и хлороформных экстрактов (табл. 3) показывает, что при использовании разных растворителей для для их получения наблюдается дифференциация по их пестицидному действию.

Таблица 1. Действие экстрактов из дустов растений на прорастание спор _головни проса и ячменя и возбудителя снежной плесени_

Вид % ппосаст зния cnoD. чес 53 24 час.*

Sph. cruenta U. nuda F. nivale

Ar. mexicana 84 53 93

W. somnífera 86 47 93

С. procera 87 55 93

L. inermis 0 0 0

O. bacilicum 92 50 98

M. bengalensis 96 47 95

R. nervosus 0 0 91

Al. tomentosa 96 60 96

G. somalensis 89 61 97

K. odora 96 70 99

P. arabica 0 0 0

D. viscosa 0 0 0

A. orientalis 73 35 98

E. arabicus 92 17 99

Ch. ambrosoides 99 85 97

Az. indica 98 16 98

Вода (контроль) 91,6 82.75 92,5

HCPOÍ 5,45 7,76 3,69

* при комнатной температуре.

Так, из 16 испытанных ацетоновых вытяжек только для 4-х видов растений (L. inermis , R. nervosus, P. arabica, D. viscosa) отмечается полное подавление прорастания спор головни проса Sph. cruenta (от 92 до 100 %). Хлороформые экстракты этих растений также ингибировали прорастание от 90 до 100%. Подобная тенденция прослеживается и для этаноловых экстрактов. Прорастание спор головни проса в последнем случае не превышало 1,7%.

Более того, под воздействием экстрактов из 4 видов (L. inermis, R. nervosus, P. arabica и D. viscosa) жизнеспособность спор подавлялась полностью на 100%. Вместе с тем, известный в качестве эффективного растительного инсектицида вид Ch. ambrosoides, на споры тестируемых видов грибов не оказывал какого-либо влияния. Негативный результат отмечен также для препаратов из R. nervosus против спор F. nivale.

Однако наблюдения за динамикой формирования ростковых трубочек указанного гриба свидетельствуют об эффекте подавления этого процесса (табл. 9) при использовании экстрактов как из данного, так и еще 13 видов

растений. При этом показано, что увеличение температуры экстракции с 50°С до 100°С существенно не влияло на их фунгицидную активность.

Таблица 2. Действие разных концентраций экстрактов из сухих растений на прорастание спор головни проса (Sph. cruenta), головни ячменя (U. nuda) и возбудителя снежной плесни (F'. nivale)

Вид растения К-ция* экстрактов П рорастание спор, %

головни ячменя головни проса снежной плесени

P. arabica 1 1 0 0 0

1 2 0 0 0,36

1 4 0 34,2 1,3

1 8 14,6 35,8 84,8

D. viscosa 1 1 0 1,5 0

1 2 0 11,5 0,6

1 4 1,2 29 0,75

1 8 2,0 55,5 65,6

L. inermis 1 1 0 0 0

1 2 0 1,0 59,9

1 4 2,0 4,0 98,4

1 8 4,0 6,25 99,0

R. nervosus 1 1 0 0 92,5

1 2 1,2 3,5 96,7

1 4 3,5 4,75 98,1

1 8 4,5 9,5 99,5

Контроль (вода) 85,3 97,3 97,7

HCPo5 3,17 7,55 2,80

* разведение исходного экстракта.

Прорастание спор F. nivale полностью ингибировали ацетоновые, хлороформные и этаноловые вытяжки 2 видов растений' (L. inermis и Р. arabica). В целом же биологическая эффективность ацетоновых экстрактов из разных растений по сравнению с контролем колебалась от 2,9 до 37,7%, хлороформных от 4,8 до 48,0% и этаноловых от 4,8 до 44,0%. Необходимо подчеркнуть, что активность их в сравнении с водными вытяжками практически сохранилась для 3-х видов, кроме D. viscosa.

Следует отметить, что активность вышеупомянутых экстрактов не превышала активность водных экстрактов. Это может иметь большое

значение при последующей работе, когда в экстрактах будут определяться основные действующие вещества.

Таблица 3. Сравнительная активность различных экстрактов из дустов растений против возбудителей головни проса Sph. cruenta и снежной плесени F. nivale in vitro*

Вид % прорастания спор** в экстрактах:

ацетоновых хлороформных этаноловых

Sph. cruenta F. nivale Sph. cruenta F. nivale Sph. cruenta F. nivale

Ar. mexicana 90,8 91,7 95,8 94,2 93,3 98,3

W. somnífera 88,3 95,0 86,5 91,7 95,0 95,0

С. procera 89,5 94,2 95,8 98,3 95,8 97,5

L. inermis 0 0 0 0 0 0

O. bacilicum 92,5 89,7 91,7 89,2 94,2 90,0

M. bengalensis 94,2 90,8 92,7 90,0 97,5 94,2

R. nervosus 0 93,3 9,2 80,2 1,7 93,3

Al. tomentosa 93,3 60,8 90,8 71,7 98,3 94,2

G. somalensis 95,8 85,8 96,7 91,7 94,2 95,0

K. odora 94,2 94,2 93,3 75,0 95,0 95,8

P. arabica 0 0 0 0 0 0

D. viscosa 7,3 38,3 7,8 82,5 0 77,5

A. orientalis 92,5 58,3 95,0 45,8 90,8 52,5

E. arabicus 88,3 84,2 91,7 77,5 90,0 79,2

Ch. ambrosoides 91,7 92,5 93,3 80,82 91,5 97,5

Az. indica 84,2 96,7 89,2 91,3 90,0 97,5

Вода (контроль) 97,3

НСР05 6,9 8,6 7,0 14,4 1 5,4 9,5

* подсчет проросших спор проводили через 24 ч. Исходная к-ция составляла 1:1 (или 1 г

дуста на 10 мл растворителя). ** для стимулирования проростания спор в раствор добавляли сахарозу (до 10%).

Таким образом, результаты проведенных испытаний свидетельствуют о том, что Sph. cruenta оказалась более чувствительной к вторичным метаболитам всех тестируемых видов растений. Возбудитель снежной плесени (F. nivale), как патоген приуроченный к подземным частям растений, проявил заметную устойчивость к экстрагируемым веществам. Более того, экстракты из R. nervosus и D. viscosa, эффективные против головни проса, поражающей надземные органы культуры, практически не оказывали на него фунгицидного действия. Среди всех изучавшихся видов 100% эффективность в отношении спор обоих возбудителей отмечена только для экстрактов из Р. arabica и L. inermis. Однако при разной эффективности их действия, тем не менее, отмечается стабильное подавление роста мицелия гриба на

агаризованной среде, размер колоний которого по сравнению с контролем снижался в 1,5 - 3,6 раза. Влияние вытяжек имеет пролонгированный характер и отмечается и через 8 сут. При добавлении в среду водных экстрактов L. inermis и P. arabica уже через 4 дн. наблюдалось активное торможение (до 60% по сравнению с контролем) радиального роста колоний F. nivale на картофельном агаре.

Проведенные нами эксперименты по изучению действия экстрактов из различных видов растений на Ph. infestons свидетельствует о том, что характер ингибирования развития возбудителя при их использовании определяется такими факторами, как сортовая принадлежность хозяина, штамм возбудителя, вид источника экстрагируемых веществ и степень их разведения. В целом, биологическая эффективность обработок экстрактами из L. inermis, P. arabica, D. viscosa и Е. arabicus колебалась от 64,6% до 97,0 по сравнению с контролем. Соответственно отмечалось уменьшение размеров некротической зоны поражения в 2,8 -36,5 раз (табл. 4).

После инфицирования зооспорами Ph. infestons поперечных сегментов из клубней картофеля на них развиваются некротические поражения разной величины (от 0,8 до 32,9 мм), на которых образуется налет из мицелия гриба. Следует отметить, что размеры некротического участка и диаметр формирующихся на них колоний гриба не совпадают. Обычно гриб не занимает всю поверхность отмершей ткани и локализуется в ее центре.

Найдено, что штаммы Ph. infestans дифференцированы по чувствительности к экстрактивным веществам из растений, что фиксируется по размерам вызываемых поражений. К наиболее агрессивным следует отнести ОСВ 12, некротическая зона на клубнях картофеля при инфицировании которым, достигает 32,9 мм, к наименее - Прил 2 (21,3 мм). Последний сильнее ингибируется экстрактами из A. mexicana, W. somnífera, Az. indica на всех сортах. При этом их биологическая эффективность, в частности на сорте Удача, составляет 6,4-68,9% В отношении штамма ОСВ 12 наибольшая фунгицидность зарегистрирована для экстрактов из Р. arabica и L. inermis, и в меньшей степени - для Е. arabicus и D. viscosa.

Этот аспект интересен как в теоретическом, так и практическом отношении. В теоретическом отношении, штаммы возбудителя фитофтороза могут отличаться по устойчивости к экстрактам, как и к фунгицидам. В практическом отношении, предпочтительнее использовать те экстракты, которые подавляли штаммы возбудителя фитофтороза вне зависимости от их происхождения и характеристик.

Таблица 4. Влияние водных экстрактов из разных растении на размер

некротической зоны на клубнях картофеля разных сортов после __заражения 3 штаммами Рк. _

Растение Удача Сантэ Дельфин Ср. по фактор АНСРо =1,8

ОСВ 12 Прил 2 6.2 ОСВ 12 Прил , 2 6.2 ОСВ 12 Прил 2 6.2

Ar. mexicana 32,9 0,8 25,4 21,3 15,7 20,0 20,9 12,9 16,3 18,5

W. somnífera 24,2 6,7 26,3 20 15,7 13,7 22,1 14,6 17,1 17,8

С. procera 28,4 14,7 18,1 21,7 14,9 13,7 22,3 13,8 15,7 18,1

L. inermis 1,3 8,8 0 0,8 0,8 0,8 0 7,9 0 2,3

0. bacilicum 16,6 24,5 21,7 21,7 18,4 18,4 24,9 20,0 16,7 20,3

M. bengalensis 22,3 16,1 17,9 21,3 24,2 16,4 22,1 22,5 22,9 20,6

R. nervosus 18,3 24,6 16,3 32,1 6,7 14,8 34,3 20,4 27,9 21,7

Al. tomentosa 22,9 15,9 11,7 25,8 18,1 19,6 25,4 16,7 15,0 19,0

G. somalensis 23,0 22,5 17,9 28,4 18,4 22,0 28,8 19,6 18,4 22,1

K. odora 22,9 15,5 20,4 20,9 16,4 18,9 27,1 17,5 16,7 19,6

P. arabica 0,7 10,1 1,9 2,2 5,2 0 0,8 7,5 2,5 3,4

E. arabicus 12,5 14,2 18,4 10,3 11,3 6,3 15,9 8,6 4,6 11,3

D. viscosa 12,2 11,0 9,2 8,8 9,6 2,8 20,6 10,9 6,6 10,2

A. orientalis 35,3 0 20,4 19,4 15,3 16,7 16,3 17,9 16,9 17,6

Ch. ambrosoides 23,1 11,7 21,3 21,3 14,2 17,1 18,1 18,4 18,4 18,2

Az. indica 30,8 8,4 21,3 19,0 14,2 17,1 26,1 16,7 15,0 18,7

Контроль 32,9 21,3 27,3 29,2 24,6 26,7 29,8 26,1 24,8 26,9

Ср. по фактору В** НСР05=4,3 17,3 15,9 17,3 HCPos, частных различи =7,5

Ср. по фактору С НСРо5=4,3 Осв Прил 2 6.2 HCPos для взаимоде йствия ав=4,3 НСР0!для ас=1,8 НСР0!для вс=4,3

20,4 14,6 15,6

* в мм, ** фактор А - вид растения, фактор В - сорт картофеля, фактор С - штамм возбудителя.

Высокий уровень подавления инфекции, индуцируемой штаммом 6.2 Ph. infestans, выявлен при воздействии экстрактивных компонентов из видов L. inermis, P. arabica и D. viscosa. Найдено, что его развитие полностью ингибировалось L. inermis на сортах Удача и Дельфин, ОСВ 12 - только на сорте Дельфин, а штамма Прил 2 при использовании A. orientalis - на сорте Удача. Отмечается полное подавление роста мицелия и спороношения у всех штаммов после обработки экстрактами из L. inermis, штамма Прил 2 от Р. arabica, Е. arabicus и D. viscosa, ОСВ 12 еще и от P. arabica.

Фунгицидная активность растительных экстрактов, в том числе экстрагируемых с помощью разных растворителей, оценивалась нами по способности к прорастанию и подвижности (жизнеспособности) различных стадий возбудителей. В качестве тест - объекта использовались конидии и зооспорангии Ph. infestons. Установлено, что степень прорастания спор фитофторы варьирует в зависимости от вида растений, из которого получен экстракт. Наибольшее ингибирование зарегистрировано для P. arabica, L. inermis и R. nervosas. Фунгицидный эффект характерен также для вытяжек из D. viscosa. Степень его колебалась от 74,3 до- 100%, за исключением хлороформных экстрактов. Однако, в целом, существенных различий в активности экстрагируемых веществ из отмеченных видов не прослеживается. Подобное действие экстрактов выявляется также при скрининге испытуемых видов в отношении развития возбудителя на стадии спороношения.

Абсолютный фунгицидный эффект продемонстрирован лишь в вариантах с экстрактами из P. arabica и L. inermis. Подобный результат получен при использовании вытяжек из Е. arabicus на сорте Удача против штаммов ОСВ 12 и Прил 2, сорте Сантэ и Дельфин- для штамма Прил 2, а также A. orientalis для того же штамма.

Проявление токсических свойств в отношении фитофторы наглядно видно при изучении подвижности ее зооспор в экстрактах из разных видов растений. Выявлены штаммовые различия. Как показывают результаты, наиболее активно подавляют стадию зооспор экстракты из видов L. inermis, P. arabica, D. viscosa и Е. arabicus. Затем следуют R. nervosus и А. orientalis, под действием которых зооспоры сохраняли жизнеспособность 1,52,5 мин. Экстракты из С. procera, A. tomentosa, К. odora и Ch ambrosoides оказались менее эффективными. Промежуточное положение занимают варианты с О. bacilicum, M. bengalensis и G. somalensis. Дифференциация по токсичности в отношении штаммов особенно наглядно проявляется в вариантах с О. bacilicum (5,0-10,1 мин.), A. tomentosa (3,1-8,0 мин.) и G. somalensis (3,5-10,5 мин.). По мере разбавления фунгицидная активность экстрактов снижается. Следует подчеркнуть, что изучение -особенностей их действия во времени имеет практический интерес (Mekuria et al., 1999, Amadioha, 2000, Leeto Nteso, Pretorius, 2006). Таким образом, результаты наших испытаний in vitro свидетельствуют о потенциальной возможности снижения вредоносности грибных инфекций при использовании активных компонентов некоторых видов растений с учетом патогенности возбудителей и сроков обработки защищаемой культуры.

Проведенные нами полевые испытания водных экстрактов из дустов 4-х видов растений на разных тест-объектах показали, что они способны

ингибировать развитие заболеваний на надземных органах, приближаясь по уровню хозяйственной эффективности к химическим (ридомил голд, тиовит-джет, скор) и биологическим (фитосприн, циркон) препаратам, взятым в качестве эталона. Так, размер некротической зоны на клубнях сорта Удача при поражениях фитофторой в сравнении с контролем снижался практически в 2 раза. На сорте Ильинский фунгицидный эффект несколько выше, за исключением варианта с видом D. viscosa (табл. 5). Поражаемость листьев по срокам учета снизилась в среднем на 36,5%, приближаясь по эффективности к действию стандарта - химического фунгицида (ридомил голд). На сорте Удача этот показатель (по сравнению с контролем) достигал 81,2%. В итоге отмечено увеличение продуктивности обработанных растений по сравнению с контролем в 2,1-2,3 раза. Наибольший эффект наблюдался при использовании водных экстрактов из P. arabica. Следует отметить, что биологическая эффективность в случаях применения пестицида ридомил голд варьировала от 53,6% до 84,5% по сравнению с экстрактами из Р. arabica (27,7 - 50,3), D. viscose (4,0 -29,6%), L. inermis (31,8 -57,5%) и E. arabicus (13,6 - 41,4%).

Таблица 5. Влияние растительных экстрактов на поражаемость

фитофторозом и биометрические показатели картофеля

Вариант Поражаемость листьев, в %, Ср. биометрические

по срокам учета: показатели:

1 2 3 4 высота растений, см число клубней, шт. масса клубней, кг/м2

Сорт Ильинский

P. arabica 13,8 19,2 23,7 56,4 38,4 39 2,9

D. viscosa 16,7 24,4 49,6 75,2 31,4 28,7 1,8

L. inermis 10,2 21,8 27,9 50,4 37,3 41 3,0

E. arabicus 13,8 24,5 39,1 67,5 40,4 34 2,1

Ридомил голд* 10,1 14,9 12,2 12,1 40,2 41,7 3,2

Контроль** 23,8 32,2 48,2 78,1 37,7 27 1,4 .

HCPos 6,509 10,58 15,74 14,56 9,86 12,92 1,32

Сорт Удача

P. arabica 22,4 27,0 27,9 33,5 48,1 20,5 1,9

D. viscosa 19,2 21,5 28,3 39,2 45,6 25,5 1,8

L. inermis 19,4 23,1 30,3 37,2 41,2 32 1,8

Ридомил голд 17,9 21,8 27,6 28,7 43,3 22 2,0

Контроль 56,6 61,6 70,1 81,2 46,9 26 1,7

HCPos 23,66 3,82 7,11 13,49 4,83 5,07 1,00

* эталон, ** вода.

Расчеты показывают, что применение растительных экстрактов против фитофторозы, в частности из P. arabica и D. viscose на картофеле сорта Удача, не уступают по хозяйственной эффективности химическому препарату Ридомил Голд Мц. Подобные результаты при испытаниях экстрактов из растений 2-х видов, проявивших наибольшую фунгицидную активность, показаны также на розах при использовании их против возбудителей мучнистой росы (Sph. pannosa Lev) и ржавчины {Ph. disciflorum). Найдено, что эффективность, подавления спороношения . облигатных паразитов после обработок растительными экстрактами из Р. arabica и D. viscose практически не отличалась от таковой после применения химических и биологических препаратов фитоспорина, циркона и скора, но почти в 2 раза превышала уровень, наблюдавшийся в контроле. Практически отсутствуют преимущества в случаях применения тиовит-джет. Существенное снижение массы формирующихся спор отмечено лишь для возбудителя мучнистой росы при сравнении с контролем.

Рассчитанный уровень затрат показывает, что использование экстрактов из растений с фунгицидными свойствами перспективно для снижения вредоносности грибных инфекций, поражающих надземные и подземные органы растений, особенно в системах интегрированной защиты (табл. 6).

Таблица 6. Расчет эффективности применения растительных экстрактов

Показатели Контроль (без обработки) Ридомил голд (эталон) Экстракт из P. arabica Экстракт из L. inermis

Хозяйственная эффективность, % - 55,4 52,3 53,3

Урожай картофеля, т/га 14,3 32,1 29,7 29,9

Ст-сть урожая, тыс. руб./га 185,9 417,3 386,1 388,7 ,

Технологические затраты, тыс. руб./га 71,7 71,8 71,7 71,7

Ст-сть нормы препарата, руб./га - 3675,0 1548,6 2647,5

Чистый доход, тыс. руб./га 114,1 341,9 312,8 314,2

♦цена 1 т картофеля 13 тыс. руб. **Для приготовления экстракта берется 40 кг дуста/400 л воды, расход ридомил голд составляет 1 кг/га.

Затраты на обработку (за счет разницы в цене на препарат) с использованием растительных экстрактов снижаются по сравнению с применением ридомил голд на 57,9% (для P. arabica) и 28,0% (для L. inermis).

Выводы

1. У 16 испытанных видов растений изучена способность к . ингибированию развития возбудителей грибных заболеваний -

мучнистой росы (S. pannosá) и ржавчины {Ph. disciflorum) на розах, головни проса (Sph. cruenta) и ячменя (U. nuda), возбудителя снежной плесени (F. nivale) и фитофторы картофеля (Ph. infestons), принадлежащих к разным таксономическим группам. Найдено, что степень фунгицидной активности зависит от вида растения и патогена, его штаммовой принадлежности, концентрации экстрактивных веществ и экспозиции взаимодействия.

2. Сравнительная оценка фунгицидных свойств растений позволила отобрать наиболее эффективные их виды. Наибольшая активность в отношении патогенных грибов отмечена для водных экстрактов из Psidia arabica, Dodonaea viscosa и Lawsonia inermis. Действие экстрактивных веществ, полученных из растений с помощью разных растворителей, на прорастание спор и рост мицелия различно. Подавление головни проса Sph. cruenta (на 90-100%) отмечается при использовании вытяжек (ацетоновых и этаноловых) из 4-х видов растений (L. inermis, P. arabica, R. nervosus, D. viscosa), тогда как прорастание спор F. nivale полностью ингибировали только вытяжки 2 первых видов растений. Их активность по сравнению с водными вытяжками практически не изменилась для 3-х видов, кроме D. viscosa.

3. Оценка фунгицидных свойств показала, что практически все экстракты в первом разведении (1:1), полученные из дустов испытуемых растений, оказывали ингибирующее действие на рост колоний почвенного гриба F. nivale. Наиболее активное торможение радиального роста колоний in vitro на картофельном агаре наблюдалось при добавлении в среду водных экстрактов L. inermis и P. arabica.

4. Отмечена различная чувствительность у возбудителей, приуроченных к надземной и подземной частям растений. Так, показано, что головня проса - Sph. cruenta - более восприимчива к вторичным водорастворимым метаболитам тестируемых видов растений по сравнению с возбудителем снежной плесени -F. nivale. Разная чувствительность к экстрактивным веществам выявлена у Ph. infestons и на штаммовом уровне. Она прослеживалась во всех случаях, за исключением показавших абсолютный результат.

на уровне сортов составило от 25,8% до 100% при использовании экстрактов из L. inermis и от 30,9% до 89,5% из D. viscosa.

6. Полевые испытания на картофеле и розах растительных экстрактов из L. inermis, P. arabica, D. viscosa, Е. arabicus показали, что они не уступают по эффективности промышленным химическим и биологическим препаратам (Ридомил голд Мц, скор, фитоспорин, циркон).

7. Поражаемость по срокам учета листьев картофеля на сорте Ильинский Удача приближаясь по эффективности к действию стандарта -химического фунгицида (Ридомил голд Мц). Однако у устойчивого сорта Удача по всем вариантам с обработкой экстрактами отмечено значительное снижение хозяйственной эффективности по сравнению с вариантом с обработкой Ридомил голд Мц, тогда как у восприимчивого сорта Ильинский такое снижение хозяйственной эффективности было значительно меньше. Наибольший эффект наблюдался при использовании водных экстрактов из P. arabica.

8. Расчеты показывают, что использование растительных экстрактов для защиты растений от возбудителей грибных и псевдогрибных заболеваний экономически и экологически выгодно по сравнению с применением химических препаратов, в частности, фунгицида ридомил голд. Отмечается существенное снижение уровня денежных затрат на обработку (57,9% для P. arabica и 28,0% для L. inermis).

теме диссертации опубликованы следующие работы:

1. Al-Saadi M. N. The Effect of some Oils in Proticting Stroed Faba Bean Seeds from Bruchidius incarants / A. M. Muharram, M.N. Al-Saadi // Yemen J. Agric. Res. Stud.- №3,2000,- P.52-62

2. Al-Saadi M. H. The current state of protected Agriculture in Yemen (Analytical study) /А. H Alkirshi., A. M. Jouhaish, H.S.Bahamish, M. H. Al-Saadi // Yemen J. Agric. Res. Stud. №6, 2002.-P. 118-120

3. Al-Saadi M.N. Integrated production and protection Management (IPPM) Used In cucumber Greenhouses / A.M.Muharrum, M.N.A1-Saadi, M. N. Issa, A.H. Alkirshi // Yemen J. Agric. Res. Stud.- №9, 2003.-P. 29-44

4. Аль-Саади M.H Влияние растительных экстрактов на численность тлей / С.М.Башомайла, М.Н.Аль-Саади, К.Слободянюк //Структурная ботаника и биохимия растений, сер. Биол. науки, РУДН, 2006,- С. 86-87.

5. Аль-Саади М.Н Испытание растительных экстрактов из Tephrosia dura и Azadirachta indica против розанной листовертки Cacoecia rosana L. / С.М.Башомайла, М.Н. Аль-Саади // Структурная ботаника и биохимия растений, сер. Биол. науки, РУДН, 2006,- С. 81-82.

6. Аль-Саади М.Н., Изучение пестицидных свойств некоторых растений / С.М.Башомайла, К.В Слободянюк. //М.: Роснаучкнига, 2006. - С. 57-58.

7. Аль-Саади М.Н.Ингибирующее действие экстрактов из растений на возбудителей снежной плесени (Fusarium nivale), головни проса (Shacelotheca cruenta) и ячменя (Ustilago nudu) / М.Н.Аль-Саади, M.А., Келдыш Ю.И. Помазков // Вестник РУДН, № 1,2008.- С. 71-78.

8. Аль-Саади М.Н. Оценка фунгицидных свойств некоторых растений //Докл. Межд. науч.-практ. Конф. «Биологическая защита растений, перспективы и роль в фитосанитарном оздоровлении агроценозов»/ М.Н. Аль-Саади, Помазков Ю.И. // Вып. 5, 2008,-С.322-324.

9. Аль-Саади М.Н. Влияние экстрактов растительного происхождения на возбудителя фитофтороза картофеля / М.Н Аль-Саади, А. H Смирнов., Ю.И. Помазков // Изв. Тимир. с.х. акад., № 1, 2009. - С.136-144.

Аль-Саади М.Н.

Оценка фунгицидной активности некоторых тропических видов флоры Йемена

В результате сравнительной оценки фунгицидной активности экстрактов из 16 видов тропических растений Йемена выявлены виды (Psiadia arabica, Euryops arabicus, Lawsonia inermis и Dodonaea viscosa), экстракты из которые наиболее эффективно подавляли развитие возбудителей фитофтороза картофеля - Phytophthora. infestans, снежной плесени зерновых- Fusarium nivale, головни проса - Sphacelotheca cruenta и ячменя - Ustilago nuda, мучнистой росы розы- Sphaerotheca pannosa и ржавчины розы - Phragmidium disciflorum Полученные данные свидетельствуют о возможности применения экстрактов из Psiadia arabica в качестве биофунгицида широкого спектра действия. Найдено, что их использование в защите растений экономически и экологически выгодно.

AI-Saadi M.N.

Estimation fungicidal of activity some tropical species flora of Yemen

As a result of a comparative estimation of fungicidal activity of extracts from 16 species of tropical plants of Yemen, four .species (Psiadia arabica, Euryops arabicus, Lawsonia inermis и Dodonaea viscosa) have been revealed. Their extracts the most effectively suppressed development of agents of late blight of potato - Phytophthora. infestans, snow mold of cereals - Fusarium nivale, smut of millet - Sphacelotheca cruenta , smut of barley - Ustilago nuda, mildew of rose -Sphaerotheca pannosa, and rust of rose - Phragmidium disciflorum.

Obtained data evidence about opportunity of application of P. arabica extracts as biofungicide with wide spectrum of action. Their use in plant protection is found to be economically and ecologically favorable.

Отпечатано с готового оригинал-макета

Формат 60Х84'/|6 Объем 2,75 пл. Тираж 100 экз. Заказ 314.

Издательство РГАУ - МСХА имени К.А. Тимирязева 1275 50,Москва, ул. Тимирязевская,44

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Мохамед Наджи Салех Аль-Саади

1. Введение.

2. Обзор литературы.

2.1. Использование растительных экстрактов.

2.2. Роль семиохемиков растительного происхождения в экологизированных системах защиты растений.

2.3. Спектр биологической активности препаратов из высших растений.

2.3.1. Инсектицидные и антифидантные свойства высших 11 растений.

2.3.2. Растительные нематициды.

2.3.3. Использование растительных экстрактов против 17 возбудителей грибных заболеваний.

2.3.4. Применение природных иммуномодуляторов и 33 регуляторов роста.

Введение Диссертация по сельскому хозяйству, на тему "Оценка фунгицидной активности некоторых тропических видов флоры Йемена"

Широкое и повсеместное распространение возбудителей вредоносных грибных заболеваний (Fusarium nivale, Sphacelotheca cruenta, Ustilago nuda, Sphaerotheca pannosa,Phragmidium disciflorum,Phytophthora infestans, на различных культурах, в том числе выращиваемых в условиях закрытого грунта, создает немалые трудности по организации защитных мероприятий. Пропаривание почвы, обработка ее фунгицидами для их уничтожения в целях сохранения урожая - мероприятия сравнительно дорогостоящие. Более того, для использования химических препаратов в закрытом грунте имеются ограничения, как по срокам применения, так и их ассортименту. Поэтому поиск альтернативных методов подавления популяций вредных видов, например, путем использования растительных препаратов (экстракты, дусты), обладающих пестицвдными свойствами и безвредных для теплокровных, весьма актуально. Оценка их действия показывает, что около 30% испытанных препаратов ингибирует рост мицелия, прорастание спор, предотвращая тем самым инфицирование растений и развитие заболеваний (Daayf et al., 2003, Dom et al., 2007, El-sheik et al., 2002, Latten et al., 1994, Neuhoff et al., 2002, Rohmer et al., 2004). Из семян 8 видов растений (Jacobson et al., 1989), различных надземных органов (листья, побеги, плоды) 35 видов (Berenbaum et al., 1989) уже получают в промышленных масштабах препараты для борьбы с вредителями и болезнями. Особенно широко используется ним - Azadirachta indica. В России также прведен мониторинг около 50 видов растений, ингибирующих развитие вредителей (Семаков, 1989). Показано, что хотя по эффективности препараты, получаемые из них, и уступают химическим средствам, тем не менее, они обладают способностью снижать численность популяций на 60-80%. Это позволяет в ряде случаев сокращать число применяемых обработок химическими средствами и снижать их концентрацию за счет комбинирования с растительными препаратами.

Флора Йемена (западная и восточная горная часть, а также восточные, северные пустынные и прибрежные равнины) весьма богата эндемичными видами растений. Около 15% их не произрастают в других ргионах. В настоящем время описано около 2810 видов, относящихся к 1006 родам и 173 семействам. Среди них 2559 натурализовавшихся видов, 121 культивируемых и 111 шпродуцентов (А1 Khulaidi, 2000).

Цели и задачи исследования. Основной целью работы является скрининг к* растений флоры Йемена с целью выделения потенциальных семиохемиков и сравнительная оценка их пестицидного действия против различных групп патогенов, в том числе почвенных. Для ее выполнения поставлены следующие задачи:

2. Обзор литературы

В процессе совместного эволюционного развития патогена и растения между ними складываются взаимоотношения, характеризующиеся разным уровнем влияния друг на друга. Одним из результатов этого может быть приобретение растением химических свойств за счет синтеза и накопления в тканях соединений, способных ингибировать развитие организмов, использующих их в качестве субстрата.

Заключение Диссертация по теме "Защита растений", Мохамед Наджи Салех Аль-Саади

Выводы:

1. У 16 испытанных видов растений изучена способность к ингибированию развития возбудителей грибных заболеваний — мучнистой росы (S. pannosa) и ржавчины (Ph. disciflorum) на розах, головни сорго (Sph. cruenta) и ячменя (U. nuda), возбудителя снежной плесени (F. nivale) и фитофторы картофеля (Ph. infestans), принадлежащих к разным таксономическим группам. Найдено, что степень фунгицидной активности зависит от вида растения и патогена, его штаммовой принадлежности, концентрации экстрактивных веществ и экспозиции взаимодействия.

2. Сравнительная оценка фунгицидных свойств растений позволила отобрать наиболее эффективные их виды. Наибольшая активность в отношении патогенных грибов отмечена для водных экстрактов из Psiadia arabica, Dodonaea viscosa и Lawsonia inermis. Действие экстрактивных веществ, полученных из растений с помощью разных растворителей, на прорастание спор и рост мицелия различно. Подавление головни сорго Sph. cruenta (на 90100%) отмечается при использовании вытяжек (ацетоновых и этаноловых) из 4-х видов растений (L. inermis, P. arabica, R. nervosus, D. viscosa), тогда как прорастание спор F. nivale полностью ингибировали только вытяжки 2 первых видов растений. Их активность по сравнению с водными вытяжками практически не изменилась для 3-х видов, кроме D. viscosa.

1Ъ

4. Отмечена различная чувствительность у возбудителей, приуроченных к надземной и подземной частям растений. Так, показано, что головня сорго-Sph. cruenta - более восприимчива к вторичным водорастворимым метаболитам тестируемых видов растений по сравнению с возбудителем снежной плесени -F. nivale.

Дифференциация чувствительности к экстрактивным веществам выявлена у Ph. infestans и на штаммовом уровне, которые прослеживаются во всех случаях, за исключением показавших абсолютный результат.

5. Выявлены сортовые различия у картофеля в процессе патогенеза после обработки его водными экстрактами некоторых растений, обладающих фунгицидным действием Варьирование биологической эффективности на уровне сортов составило от25,8% до 100% при использовании экстрактов из L. inermis и от 30,8% до 89,5% из D. viscosa.

7. Поражаемость по срокам учета листьев картофеля на сорте Ильинский приближаясь по эффективности к действию стандарта — химического фунгицида (Ридомил голд Мц). Однако у устойчивого сорта Удача по всем вариантам с обработкой экстрактами отмечено значительное снижение хозяйственной эффективности по сравнению с вариантом с обработкой Ридомил голд Мц, тогда как у восприимчивого сорта Ильинский такое снижение хозяйственной эффективности было значительно меньше. Наибольший эффект наблюдался при использовании водных экстрактов из Р. arabica.

8. Расчеты показывают, что использование растительных экстрактов для защиты растений от возбудителей грибных заболеваний экономически и экологически выгодно по сравнению с применением химических препаратов, в частности, фунгицида ридомил голд. Отмечается существенное снижение уровня денежных затрат на обработку (83,1% для P. arabica и 71,2% для L. inermis).

Библиография Диссертация по сельскому хозяйству, кандидата биологических наук, Мохамед Наджи Салех Аль-Саади, Москва

1. Авдюшко С.А., Чалова Л.И., Озерецковская О.Л. Продуктылипоксигеназного окисления полиеновых кислот индуцируют устойчивость клубней картофеля к фитофторозу // Докл. биох. Т. 296, 1987а. — С. 328-330.

2. Авдюшко С.А., Чалова Л.И., Озерецковская О.Л. Способностьпростогландинов индуцировать устойчивость клубней к возбудителю фитофтороза // Докл. биох. — Т. 294, 1987b. -С. 141144.

3. Ахатов А. К., Джалилов Ф. С., Белошапкина О. О., Стройков

4. Ю. М., Чижов В. Н., Трусевич А. В. Защита овощных культур и картофеля от болезней. М.: 2006. 351 с.

5. Баташов Е. С. Получение хитозансодержащих препаратов изнекондиционных цист Artemia sp. и изучение их влияния на растения//Автореф. дис. канд. биол. наук: 03.00.16. — Барнаул. — 2006.-19 с.

6. Беляева Н. Л. Индуцирование фитофтороустойчивости картофеляв процессе оздоровления посадочного материала // Изв. ТСХА.-№1, 1992а.-С. 71-76.

7. Беляева Н. Л. Химическая индукция фитофтороустойчивостикартофеля на этапе ускоренного размножения оздоровленного от вирусов материала //Автор, дис. канд. биол. наук: 06.01.11. — М., 1992b.-24 с.

8. Башомайла С.М., Помазков Ю.И. Новые растения синсектицидными свойствами //VI Межд. симп. «Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования» .-Т. 3.-Пущино.-Изд. РУДН.-2005.-С. 28-30.

9. Башомайла С.М., Слободяншк К.В., Помазков Ю.И.

10. Пестицидные свойства некоторых тропических видов растений //МатЛ Веер, съезда по защ. раст. С.-П.- Т. II, 2005.- С. 429-430.

11. Васюкова Н. И., Зиновьева С. В., Ильинская JI. И., Переход Е.

12. А., Чаленко Г. И., Герасимова Н. Г., Ильина А. В. Модулирование болезнеустойчивости растений с помощью водорастворимого хитозана // Прикладная биохимия и микробиология. 2001. - Т. 37. - № 1. - С. 115-122.

13. Васюкова Н. И., Чаленко Г. И., Герасимова Н. Г., Переход Б.

14. А., Озерецковская О. JL, Ильина А. В., Варламов А. П., Албулов А. И. Производные хитина и хитозана как элиситоры устойчивости картофеля к фитофторозу //Прикл. биох. микроб. — Т. 36, № 4, 2000. -С. 372-376.

15. Вилкова Н.А. Иммунитет растений к вредным организмам и егобиоцинотическое значение в стабилизации агроэкосистем и повышении устойчивости растениеводства //Вестник защ. раст. С.-П.-П.- №2,2000.-С.З-15.

16. Воловик А. С., Глез В. М. Система защиты картофеля от болезней и вредителей //Картофель России /под ред. А. В. Коршунова/. Т. 3, 2003.-С. 10-23.

17. Георгиева О., Певичарова Г. Науч.тр. Аграрен унив.

18. Пловдив.- Т.46.-КН.1.- 2001. С. 257-260.

19. Гродзинский А.М. Основы химического взаимодействиярастений.- Киев.-«Наукова Думка».-1973.-204 с.

20. Деревягина М.К., Еланский С.Н., Дьяков Ю.Т.

21. Резистентность Phytophthora infestans к фунгициду диметоморфу // Микология и фитопатология, Т. 33, Вып. 3, 1999. С. 208-213.

22. Дорожкина Л. А., Пузырьков П. Е., Зейрук В. Н., Абашкнн О. В. Применение регуляторов роста позволит снизить пестицидную нагрузку //Ж. Картофель и овощи. № 3, 2006 - С. 30-31.

23. Жариков И.С., Якубовский М.В., Липницкий С.С.

24. Биологически активные вещества и растения в профилактике паразитов //Минск.-«Ураджай».-1986.- 136 с.

25. Захаренко В.А., Новожилов К.В., Павлюшин В.А. К 75-летиюобразования Российской академии с.-х. наук. Этапы развития фитосанитарной науки в системе Академии //Вест. защ. раст.-№2, 2004.- С. 3-14.

26. Качаловой З.П., Арутюнян Е.С. и Попковой К.В. Практикум посельскохозяйственной фитопатологии.- М.: Колос, 1976.- С. 328334.

27. Кваснюк Н. Я., Гуревич Б. И., Можаева К. А., Гирсова Н. В.,

28. Матвеева Е. В., Игнатов А. Н., Жеребцова Л. Н., Филиппова Е. И., Анисимов Б. В., Симаков Е. А., Смирнов А. И., Черкашин

29. В. И. Интегрированная система защиты картофеля от грибных,вирусных и бактериальных болезней //Практическое руководство. М.: ФГНУ «Росинфорагротех». - 2006. - 71 с.

30. Клюшникова Е. В. Использование хитозаров в защите картофеляот комплекса клубневой и аэрогенной инфекции // Вестник защиты растений. № 2,2004. - С. 68-76.

31. Козарь Е.Г., Котова В.В., Шестиперов А.А., Кононков П.Ф.,

32. Балашова К.А. К вопросу о механизме действия растительных препаратов водяного кресса и хрена обыкновенного в патосистеме «растение-хозяин-галловая нематода» //Мат.П Веер, съезда по защ, раст. С.-П.- Т. II, 2005.- С. 433-434

33. Кузнецова М. А. Обоснование применения некоторыхбиологически активных препаратов и средств для защиты картофеля от фитофтороза // Автореф. дис. канд.биол. наук: 06.01.11.-М.: Малые Вяземы, 2000. 24 с.

34. Можарова И. П. Влияние регуляторов роста на продуктивностькартофеля и устойчивость к болезням // Автореф. дис. канд. с. х. наук: 06.01.11. М. - 2007 - 24 с.

35. Озерецковская О. JL, Ильинская JI. И., Васюкова Н. И.

36. Механизмы индуцирования элиситорами системной генной устойчивости растений к болезням // Физиология растений. 1994.-Т. 41. С. 626-633.

37. Озерецковская О. JL, Васюкова Н. И., Чаленко Г. И.,

38. Герасимова Н. Г., Гришанына А. Н., Хромова JI. Я., Яковлева Г. А., Варламов В. П. Индукция устойчивости к фитофторозу клубней трансгенного картофеля // Прикладная биохимия и микробиология. Т. 38, № 5, 2002. - С. 470-473.

39. Озерецковская О. JL, Васюкова И. И., Чаленко Г. И.,

40. Герасимова Н. Г., Гришанина А. Н., Хромова JI. Я., Яковлева Г. А., Варламов В. П. Индукция устойчивости к фитофторозу клубней трансгенного картофеля // Прикладная биохимия и микробиология. Т. 38, № 5,2002. - С. 470-473.

41. Павлюшин В.А., Буров В.Н., Новожилов К.В., Танский В.И.

42. Фундаментальные проблемы сельскохозяйственной энтомологии //Вестник защ. раст. С.-П.-П.- №1,2008.- C3-13.

43. Панина Я. С. Модулирование индуцированной устойчивости ивосприимчивости картофеля // // Автореф. дис. канд.биол. наук: 03.00.04. М. - 2005. - 23 с.

44. Переход Е. А., Чаленко Г. И., Герасимова Н. Г. и др. Хитозанрегулятор фитофтороустойчивости картофеля //Докл. РАН — Т. 355, № 1,1997. -С. 120-122.

45. Попов В.А. Адаптация растений к биологически активнымсоединениям //В кн. Аллелопатия в естественных и искусственных фитоценозах.- Киев.-«Наукова Думка».-1982.-С.55-61.

46. Пукайпе Р.Х., Рупайс А.А. Тез. докл. 13 рабочего совещания руководителей служб защиты растений ботанических садов СССР. Рига.- 1989. - С. 53-54.

47. Работнев Т.А. Фитоценология. М. Изд-во Москов. Ун-та.-1978.382 с.

48. Раздорская JLA. К вопросу о сырьевой базе растительныхинсектицидов СССР //В кн. Состояние и перспективы изучения растительных ресурсов CCCP.-M.JI.-1982.-C.82-92.

49. Рогозина Е.В., Патрикеева М.В. Пути создания новыхисточников устойчивости картофеля к фитофторозу //Вестн. защиты растений, N2.- 2001. С. 43-49.

50. Сальседо Карденас Родриго Фортунато. Методы созданияиндуцированной устойчивости пасленовых к фитофторозу. Автореф. дис. канд.биол. наук: 06.01.11. М. 1988.-22 с.

51. Самерсов В. Ф., Иванюк В. Г. Фитофтороз картофеля //Защитарастений. 1992. - № 5. - С.21-22.

52. Сафин Р. И. Оптимизация минерального питания и защитырастений в адаптивных технологиях возделывания картофеля в лесостепи Поволжья. Автореф. дис. докт.с.х. наук: 06.01.04, 06.01.11. Казань, 2002. - 45 с.

53. Сафин Р. И., Ильясов М.М. Характер воздействия медьмолибденового хелатного комплекса на Phytophthora infestans dBy на картофеле //Ж. Защита растений и охрана природы в Татарстане, Вып. 6,2000. С. 80-83.

54. Сафин Р.И., Гайсин И.А., Тагиров М.Ш. Снижениепестицидной нагрузки при производстве картофеля //Агрохим. вестн., N 6.-2001. С. 34-37.

55. Семаков В.В. Растительные экстракты в защите растений.1. Душанбе.- 1989.-80 с.

56. Тарчевский И. А., Макс готова Н. Н., Яковлева В. Г. Янтарнаякислота — миметик салициловой кислоты //Физиология растений. Т. 46, № 1, 1999. — С. 23-28.

57. Токнн Б.П. Целебные яды растений //Из-во Лен. Ун-та.-1980.279 с.

58. Тютерев С. Л. Индуктивный иммунитет к болезням иперспективы его использования // Защита и карантин растений. -№4,2004,- С. 21-26.

59. Тютерев С. Л. Действие фунгицидов и индукторовболезнеустойчивости на фитопатогены //Современная микология в России //Мат. 2-го Съезда микологов России. М.: Национальнаяакадемия микологии.- Т. 2, 2008.- С. 305-306.

60. Удалова Ж.В. Изопреноидные нематицидные соединения из высших растений //В сб.2Актуальные проблемы общей паразитологии» (Под ред. Фрезе В.).-«Наука».-2000.-С.293-302.

61. Удалова Ж.В., Зиновьева С.В. Соединения из высших растений с нематицидными свойствами.- Ж. Нетрадиционные сельскохозяйственные, лекарственные и декоративные растения.-№4 .-2006.-С.44-51.

62. Хуммель Э. Растительные инсектициды-один из путей снижениязагрязнения окружающей среды // Мат.Н Веер, съезда по защ. раст. С.-П.- Т. П, 2005.- С. 439-440.

63. Чаленко Г.И., Ильинская Л.И., Озерецковская О.Л.

64. Воздействие арахидоновой кислоты на клубни картофеля в период хранения //Прикл. биохимия и микробиология, T.37,N 3.-2001.-С. 355-358.

65. Черменская Т.Д. Ботанические пестициды —состояние иперспективы //СП6.-2000.- 54 с.

66. Филиппов А. В. Фитофтороз картофеля //Защита и карантинрастений. — № 4, 2005. С. 73-91.

67. Филиппов А. В., Кузнецова М. А. Различное влияниенекоторых биофуницидов на динамику восприимчивости картофеля к Phytophthora infestans (Mont) de Вагу //Микология и фитопатология. — Т. 28, 1994.- С. 64-69.

68. Шпаар Д., Быкин А., Дрегер Д., Захаренко А., Ивашок В.,

69. Каленская С., Кюрцингер Б., Кюрциигер В., Постников А., Шкаликов, В., Шуман П., Щербаков В., Ястер К., Эллмер Ф. Картофель. ~ Торжок: ООО Вариант. 2004. - 464 с.

70. Abawi G.S., Widmer T.L. Impact of soil health management practices on soil borne pathogens,nematodes and root diseases of vegetable crops //Appl. Soil Ecol.-№15,2000.-P. 37-47.

71. Abdelrahim S.I., Almagboul A.Z., Omerb M.E.A, Elegamib A. Antimicrobial activity of Psidium guajava L.//Fitoterapia.- №73, 2002.-P. 713-715.

72. Abou-Jawdah ¥., Sobh H., Salameb A. Antimycotic activities of selected plant flora, growing wild in Lebanon, against phytopathogenic fungi.-Bibliogr.-2002.-P.3212-3213.

73. Adandonon A., Aveling T.A.S., Labuschagne N., Tamo M. Biocontrol agents in combination with Moringa oleifera extract for integrated control of Sclerotium-caused cowpea damping-of and stem rot //Europ. J. of Plant Pathol. №115,2006.-P. 409-418.

74. Adandonon A., Aveling T.A.S., Labuschagne N., Abohuendo В. C. Epidemiology and biological control of the causal agent ofd amping-off and stem rot of cowpea in the Oueme valley, Benin //Ann. Sci.

75. Agronom. Benin.- №6,2003.-P. 21-36.

76. Adekunele A.A., Duru C., Odufuwa O.M. Abnifimgal activity and phytochemical screening of the crude extracts of Kaya ivorenses Juss (Meliacceae) and Tetracera potatoria L. (Dilleniaceae) //South African J. Bot.- V.69.-№4.- 2003.-P. 568-571.

77. Agbenin O.N., Marley P.S. In-vitro assay of some plant extracts against Fusarium oxysporum causal agent of tomato wilt //Plant protect. Res. Polish acad. Sci.-Poznan-Warsaw.- 2006.- V. 46, № 3.- P. 215-220.

78. Agrawal A.A., Kobayashi C., Thaler J.S. Influence of prey avalabitily and induced host plant resistance on omnivory by western flower thrips //Ecology.-v.80, 1999.-P. 518-523.

79. Agrawal A.A., Tuzun S., Bent E. Induced plant defenses againstpathogens and herbivore: biochemistry, ecology and agriculture //Amer. Phytopath. Soc.-1999.-P. 333-345.

80. Ahmad L, Beg A.Z. Antimicrobial and phytochemical studies on 45 Indian medicinal plants against multi-drug resistant human pathogens //J. Ethnophannacol.-№74,2001.-P. 113-123.

81. Al-Abed A. S., Qasem J. R., Abu-Blan H. A. Anti-fungi effects of some common wild plant pecies on certain plant pathogenic fungi //Dirasat (Pure and Applied Science).- №20, 1993ю-Р. 149-158.

82. Alberghina A. The inhibitory activity of extracts of Chenopodium amaranticolor leaves on the infection by tobacco necrosis virus //Phytopath. Z. -№87, 1976.-P. 17-27.

83. Alkhulaidi A., Kessler J. J. Plants of dhamar (YEMEN), 1999.- P.68.132.

84. Al Khulaidi A. A. Flora of Yemen //Agric. Res. Extens. Authority (AREA).- 2000.-P.3-4.

85. Al Khulaidi A.A., Aldubai Ab.S. Medicinal plants and essential in Yemen -spreading- Containing Effective-uses. 2005.-P. 164,198, 206,212,228, 266,279.

86. Amal H.A., Edrada-Ebel R.A., Wray V., Werner E.G., Kozytska S., Hentschel U., Proksch P., Ebe R. Bioactive metabolites from the endophytic fungus Ampelomycessp.isolated from the medicinalplant Urospermumpicroid //Phytochem.-№69,2008.-P. 1716-1725.

87. Atawodi S., Alafiatayo A. Assessment of the phytochemical andantitrypanosomal properties of some extracts of leaves, stem and bark of alandolphia sp., P. Beauv. //J. Ethnopham.-v. 114,2007.- P207-211.

88. Alviano D.S., Rodrigues K.F., Leitao S.G., Rodrigues M.L., Matheus M.E., Fernandes P.D. Antinociceptive and free radical scavering activities of Cocos nucifera L.(Palmae)husk fiber aqueous extract //J. Ethnopharmacol.-№ 92,2004.-P. 269-273.

89. Amadioha A. C. Control of powdery mildew of pepper (Capsicum annum L.) by leaf extracts of Caricapapaya //J. Herbs, Spices Medic. Plants.- №6, 1998.-P. 41-47.

90. Amadioha A. C. Controlling rice blast in vitro and in vivo with extracts of Azadirachta indica //Crop Prot.- №19, 2000.-P. 287-290.

91. Amadioha A. C. Evaluation of some Plant Leaf Extracts against

92. Colletotrichum lindemuthianum in Cowpea //Acta Phytopath. Entomol. Hungar.-v. 38,№3-4, 2003.-P. 259-265.

93. Amadioha A. C., Obi V. I. Fungitoxic activity of Azadiracta indica and Xylopia aethiopica on Colletotrichum lindemuthianum /Л. Herbs, Spices Medic. Plants.-№6,1998.-P. 33-40.

94. Amadioha A. C., Obi V. I. Control of anthracnose disease of cowpea by Cymbopogon citratus and Ocimum gratissimum //Acta Phytopath. Entomol.- 34, 1999.-P. 85-89.

95. Rex J. H., Rinald M. G., Pfaller M. A. American Society for Microbiology. -Rep. ASM Task force on antidiotic resist. Antimicrob. Agents Chemother.- v 39, №1,1995. P.- 1-8

96. Anltri S., Mirelman D. Antimicrobial properties of allicin from garlic //Microb. Infect.-№2,1999.-P. 125-129.

97. Arnason J. Т., Philogene B. J. R., Peter Morand. Insecticides of OriginT. 387.-1989.-P. 2- 106.

98. Atawodi S.E., Alafiatayo A.A. Assessment of the phytochemical and antitrypanosomal properties of some extracts of leaves,stem and root bark of Landolphia sp. //P. Beauv. J. Ethnopharm.-№114, 2007.-P. 207-208.

99. Avancini C.A.M., Wiest J.M., Mundstock E. Bacteriostatic and bactericidal activity of the Baccaris trimera (Less.) D.C. Compositae decocto, as disinfectant or antiseptic //Arq. Bras. Med. Vet. Zootec.-№ 52, 2000.-P. 230-234.

100. Aziz N.H., Farag S.E., MousaL A.A., Abo-Zaid M.A. Comparative antibacterial and antifungal effects of some phenolic compounds //Microbios.- №93, 1998.-P.- 43-54.

101. Bailey K.L., Lazarovits G. Suppressing soil-borne diseases with residue management and organic amendments //Soil Tillage Research.-№72, 2003.-P. 169-180.

102. Banerjee G., Mukherjee A. Portulaca oleracea L. a gem of aliens in1.dia Hi. Phytol. Res.- v.9,№2, 1996.-P. 111-115.

103. Banejee G., Mukherjee A. Biological activity of acoramn weed -Portulaca oleracea L. antifungal activity //Acta Botanica Hungarica, v. 44, №3-4, 2002.- P. 205-208.

104. Bankova V.S.,Castro S.L.D., Mareucci M.C. Proolis:recent advances in chemistry and plant origin. Apidogy 31,2000.- P. 3-15.

105. Bastos A.F, Simone M., D. Macedo J., Ademils E. E., Maria Spivak. In vitro study of the antimicrobial activity of Brazilian propolis against Paenibacillus larvae //J. of Invertebrate Path.- 97,2008.- P. 273-281.

106. Becker J.O., Schwinn F.J. Control of soil -borne pathogens with living bacteria and fungi: status and out look //Pestic.Sci.-№37,1993.-P.355-363.

107. Belanger R.R., Labbe C. Control of powdery mildews without chemicals: prophylactic and biological alternatives for horticultural crops control of powdery mildew (Erysiphepisi) of pea (Pisumsativum) //J. Plant Dis. Prot.-№105,2002.-P. 274-278.

108. Bernal-Vicente A., Ros M., Tittarelli F., Intrigliolo JA. Citrus compost and Its wate rextract for cultivation of melon plants in green house nurseries. Evaluation of nutri active and biocontrol effects //Bioresource Techn.-2008.

109. Betoni J.E., Mantovani R.P., Barbosa L.N., Di Stasi L., Junior A. Synergism between plant extract and antimicribial drug used on Staphylococcus aureus diseases //Mem.Inst.Oswaldo Cruz.-v. 101, №4.-P. 387-390.

110. Beye F. Insecticides from the vegetable kingdom //Plant Res. Develop.7, 1978.-Р. 13-31.

111. Bharathimatha C., Doraiswamy S., Velazhahan R. Inhibition of fungal plant pathogens by seed proteins of Harpullia cupanioides (Roxb) //Acta Phytopath. Entomol. Hung. -№37, 2002.-P. 75-82.

112. Bisignano G., Tomaino A., Lo Cascio R., Crisafi G., Uccella N., Saija A. On the in vitro antimicrobial activity of oleuropein and hydroxytyrosol //J. Pharmacol.- №51, 1999.-P. 971-974.

113. Blaeser P., Steiner U. Antifungal activity of plant extracts against potato late b\\$it(Phytophthora infestans). In:Lyr, H. Russell PE, Dehne H. W. Siseer HD (eds) Modem Fungicides and Antifungal Compounds Il.Intercept Limited. 1999.- P. 491-499.

114. Bochovv H, Fritzshe S. Induction of phytoalexin biosynthesis by culture filtrates of bacterial antagonists//Bull. SROP.-v. 14,№8, 1991.-P. 158-161.

115. Bonvehi J.S., Coll F.V., Jorda R.E. The composition, activecomponents and bacteriostatic activity of propolis //J. Am. Oil Chem. Soc.- 71, 1994.- P. 529-532.

116. Boutler J.I., Boland G.J., Trevors J.T. Compost: a study of the development process and end-product potential for suppression of turfgr ass disease //World J. Microbiol. Biotechnol.-№16,2000.-P. 115-134.

117. Bowers J. H., Bailey B.A., Hebbar P.IC, Sanogo S., Lumsden R.D. Theimpact of plant diseases on world chocolate production //Plant Health Progress Online (2001) http://www. aps-net.org/online/feature/cacao/.

118. Bowers J.H., Locke J.C. Plant Dis., V.84, № 3,2000. P. 300-305.

119. Boyraz N., Ozcan M. Inhibition of phytopathogenic fungi by essential oil hydrosol,ground material and extract of summer savory (Satureja hortensis L.) growing wild in Turkey //Intern. J. Food Microb.-№107, 2006.-P. 238-242.

120. Brenno D.A., Alfredo J.B. Effectiveness of cow's milk against zucchini squash powdery mildew (Sphaerotheca fuliginea) in greenhouse conditions //Brazil.- v. 18, №5, 1999.-P.489-492.

121. Brimner Т., Boland G. Areviewofthenon-target effects of fungi used to biologically control plant diseases.Agric.Ecosyst.Environ.100, 2003.-P. 1-16.

122. Brunelli A. I prodotti naturali nella lotta alle malattie fungine //La Difesa delle Piante.-V. 18, 1995.-P. 51-69.

123. Cao Ke-qiang, Forrer H. R. Current status and prosperity on biological contol of potato late blight (Phytophthora infestans) //J. Agric. Univ. Hebei. 2001.

124. Caragay A. E. Cancer Prevention foods and ingredients //Food Tech. №46,1992.-P. 65-68.

125. Carlo P., Ferdinando D., Paolo C., Maria L. G. Effectiveness of antifungal compounds against rose powdery mildew (Sphaerotheca pannosa var. rosae) in glasshouses //Patologia vegetale, Crop Protect.-V,6, № 3, 1998.-P.251-256.

126. Cayuela M.L., Meyer S.L.F., Roig A., Millner P.D. Potential of olive mill waste and compost as biobased pesticides againstweeds,fungi,and nematodes //Sci. total envir.~№ 399, 2008.-P. 11-18.

127. Chase A. R. (www.chasehorticuituralresearch.com/pdfs/rose.pdf).

128. Chaudburi P. K., Rashmi Srivastava, Sunil Kumar, Sushi! ICumn. Phytotoxic and antimicrobial constituents of Bacopa monnieri and Holmskiodia sanguinea Phytotherapy Res., V. 18, №. 2,2004.- P. 114117.

129. Chitwood D. Phytochemical based strategies for nematode control //Ann. Rev. Phytophathol.- №40.-P.221-249.

130. Cizmarik J, Lahitova N. Antimutagenicity of propolis. Pharmazie.- 53, 1998.-P. 883-884.

131. Cohen Y., Gisi U., Mosinger E. Systemic resistance of potato plants against Phytophthora infestans induced by unsaturated fatty acids //Physiol. Mol. Plant Pathol. V. 38,№4, 1991. - P. 225-263.

132. Cohen Y., Gisi U. Niderman T. Local and systemic protection against Phytophthora infestans induced in potato and tomato plants by jasmonic acid and jasmonic acid methyl ester // J. Phytopath. V. 83, 1993. —P. 1054-1062.

133. Coimbra J. L., Fermino Soares A. C., Garrid M. S., Sousa C. S., Borges Ribeiro F. L., Cientificas N. Toxicidade de extratos vegetais a Scutellonema bradys //Pesq. agropec. bras., Brasilia, v.41, №7,2006.-P. 1209-1211.

134. Copping L. The Biopesticide //Manual British Crop Protection Council, UK, 1998.

135. Copping L.G., Menn J.JBiopesticides: a reviewof their action, applications and efficacy. Pest Manage. Sci. 56,. 2000. -P. 651-676.

136. Cunha F., Olivera В., Campas V. Extratos vegetais com Propriedades Nematicidas e Purificaceae do Principo Ativo do Extratode Seucaena Leucose //Fitopatol. bras.-V.28, №4, 2003.-P.438-441.

137. Daayf F., SchmittA, Belanger R. R. The effect of plant extracts of Reynoutria sachalinensison powdery mildew development and leaf physiology of Long English Cucumber //Plant Dis. 79(6): (1995) P. 577-580.

138. Daayf F., Adam L., Fernando W. Comparative screening of bacteria for biological control of potato late blight (strain US-8) using in vitro, detached leaves, and whole plant testing systems //Canad. J. Plant Pathol.- №25, 2003.-P. 276-284.

139. Dales MJ. A review of plant materials used for controlling insect pests of stored products //In:NRI Bull. 65, Nat. Res. Inst., Chatham, UK. 1996.

140. Delia Greca M., Monaco P., Pinto G., Pollio A., Previtera L., Temussi F. Phytotoxicity of low-molecular-weight phenols from olive mill, waste waters //Bull. Environ. Contam. Toxicol.-№67,2001.-P 352-359.

141. Demoz B.T., Korsten L. Bacillus subtilis attachment, colonization and survival on avocado Xowersand its mode of action on stem-end rot pathogens //Biological Control.-№37, 2006.-P. 68-74.

142. Dik A.J.,Van Der Staay M. The effect of Milsana on cucumber powdery mildew under Dutch conditions //Meded. Fac. Landb. Univ. Gent.-№ 59,1995.-P. 1027-1034.

143. Dikbas N., Ко tan R., Dadasoglu F., Sahin F. Control of Aspergillus flavus with essential oi land methanol extract of Satureja hortensis //Intern. J. Food Microb.-№124,2008.-P. 179-182.

144. Dimitra D. J., Basil N., Ziogas N., Polissiou M. G. The effectiveness of plant essential oils on the growth of Botrytis cinerea,Fusarium sp, Clavibacter michiganensis subsp. michiganensis // Sci. Direct, 22, 1, 2003.- P. 39—44.

145. Di Stasi LC, Hiruma-Lima С A Plantas Medicinaisna Amazonia na

146. Droebner K., Ehrhardt C., Poetter A., Ludwig S., Planz O. CYSTUS 052, apolyphenol-richplantextract, exertsanti-influenza virus activity in mice //Antiviral Res.-№ 76, 2007.-P. 1-10.

147. Dubber D., Harder T. Extracts of Ceramium rubrum, Mastocarpus stellatus and Laminaria digitata inhibitor owthofinarineand fish pathogenic bacteria at ecologically realistic concentrations //J. Aquacult.-№274, 2008.-P. 196-200.

148. Dzoyem J. P., Tangmouo J. G., Lontsi D., Etoa F. X., Lohoue P. J.

149. Vitro Antifungal Activity of Extract and Plumbagin from The Stem Bark of Diospyros crassiflora Hiern (Ebenaceae) //Phytother. Res.-№21,2007.-P. 671-674.

150. Ekart E. Slanaceae and Convolvulaceae -Secondary Metabolites Biosynthesis, chemotaxonomy, Biological and Economic Sighificance. A Handbok.- 2008.-P. 479, 637.

151. Elad Y., Chet I. Possible role of competition for nutrition inbiocontrol of Pythium damping-off by bacteria //Phytopath.-№77, 1987.- P. 190-195.

152. Elad Y., Malalhrakis N. E., Dik, A. J. Biological control of Botrytis-incited diseases and powdery mildews in greenhouse crops//Crop Protect.- V.15, 1996.-P. 229-240.

153. Eladrami A., Mabrouk Y., Sifi В., Boudabous A., ElHadrami I.,

154. Daayf F., Cherif M. Treatment of chickpea with Rhizobium isolates enhances the expression of phenylpropanoid defense-related genes in response to infection by Fusarium oxysporum f.sp. ciceris //Plant Physiol. Bioch.- №45,2007.-P. 470-479.

155. El-Fadaly H., Hassan В., El Badrawy E. Antifungal potentialities of some plant extracts comparedto some yeasts and bacteria//Proc. Sec. Intern. Conf. Fungi, Ellis Horwood Limited.- т.7, v. 3, № 9,1999,- P. 105-108.

156. El-Sheikh M., EI-Korany A., Shaat M. Screening for bacteria antagonistic to Phytophthora infestans for the organic farming of potato //Alexandria J. Agric. Res.-V.47, №3,2002.-P. 169-178.

157. Erkan S., Yorganci U. Investigations on the inhibition of potato Virus X (PVX) infectivity by some plant extracts Hi. Turk. Phytopathol.-№l 1, 1982.-P. 61-75.

158. Ernest-Detlef S., Erwin В., Klaus M., Hohenstein, Gudrn L.

159. Plant Ecology.- 2005.-P. 690.

160. Esquenazi D., Wigg M.D., Miranda M.M., Rodrigues H.M., Tostes В., Rozental S. Antimicrobial and antiviral activities of polyphenolicsfrom C. nucifera Linn (Palmae) husk fiber extract //Res. Microbiol,-№ 153,2002.-P. 647-52.

161. Etebarian H., Scott E., Wicks T. Trichoderma harzianum T39 and T-virens DAR 74290 as potential biological control agents for Phytophthora erythroseptica //Europ. J. Plant Pathol.- №106, 2000.-P. 329-337.

162. Falk S.P., Gadoury D.M., Pearson R.C., Seem R.C. Partial control of grape powdery mildew by the mycoparasit

163. Ampelomyces quisqualis //Plant Dis.-V.79, № 5, 1995.-P.483-490.

164. Fiorentino A., Gentili A., Isidori M., Monaco P., Nardelli A., Parrella A. Environmental effects caused by olive mill waste waters: toxicity comparison of low-molecular-weight phenolcomponents //Jagric. Food Chem.-№51,2003.-P. 1005-1009.

165. Flavia R. C., Denilson F. O., Vicente P.C.

166. Extratos Vegetais com Propriedades Nematicidas e Purificacao do Principio Ativo do Extrato de Leucaena leucocephala //Aceito para publicacao em.- №18,2003.

167. Fravel D., Connick W., Lewis J. Formulation of microorganisms to control plant diseases, Burges Formulation of Microbial Biopesticides: Beneficial Microorganisms, Nematodes and Seed treatments. Kluwer Academic Publ.- London.- 1998.-P. 187-202.

168. Garcia C., Pascual J. A., Mena E. In fluence of the stabilisation oforganic materials on their biopesticide effect in soils //Bioresour.Technol.-№95, 2004.-P. 215-222.

169. Garibalidi A., Aloi C., Minuto A. Osservazioni sullattivita di prodotti HATH Ginoate fitopatologiche.- V.3, №3,1994.-P.245-250.

170. Ghisalberti E.L. Propolis //Rev. Bee World.- V.60, 1979.-P. 59-84.

171. Girma TegegneJohan C. Pretorius, Invitro and invivo antifungal activity of crude extracts and powdered dry material from Ethiopian wild plants against economically important plant pathogens //Bio Control.-52.- 2007.-P. 877-888.

172. Gnan S.O., Demello M.T. Inhibition of Staphylococcus aureus by aqueous goiaba extracts //J. Ethnopharmacol, 68,1999. -P. 103-108.

173. Greenaway W., May J., Scaysbrook Т., Whatley F.R. Identification by gaschromatography-massspectrometiy of 150 compoundsinpropolis. Z. Naturforsch.- С 46,1991.- P. 111-121.

174. Griffiths D.C., Hassanali A., Merritt L.A. Proc. Brighton crop protection conf. pests and diseases. Thornton Heath (Sur.).- 1988.- T. 3.-P. 1041-1046.

175. Guenther E. The Essential Oils, Vol. 5.Rabert E Krieger Publishing Co: New York, 1975.-P. 343-348.

176. Gullino M. L., Garibaldi A. Diseases of roses: evolution of problems and new approaches for their control//Acta Horticult.-1996.-P. 195-201.

177. Gulluce M., Adiguzel A., Outcu H., Tengul M., Karaman L, Tahin

178. F. Antimicrobial Effects of Quercus ilex L. //Extract, Phytother. Res.-№18,2004.-P. 208-211.

179. И J. Agric. Food Chem. v.51,№14, 2003.-P. 3958-3965.

180. Guo F.C., Savelkoul H.F.J., Kwakkel R.P., Williams B.A., Verstegen M.W. Immunoactive, Medicinal Properties of Mushroom andherb polysaccharides and their potential use in chicken diets.World's Poultry Sc. J., V. 59, № 4,2003. P. 427-440.

181. Gyung Ja Choi, Seon-Woo Lee, Kyoung Soo Jang, Jin-Seog Kim, Kwang Yun Cho, Jin-Cheol Kim. Effects of chrysophanol, parietin, and nepodin of Rumex crispus on barley and cucumber powdery mildews, Crop Protection 23.- 2004.- P. 1215-1221.

182. Guynot M.E., Marin S., SetO L., Sanchis V., Ramos A.J. Screening for antifungal activity of some essential oils against common spoilage fungi of bakery products // Food Sci. Technol. Intern.- v.l 1,1, 2005.- P. 25-32.

183. Halama P., Chantal Vanhaluwi. Antifungal activity of lichen extracts and lichenic acids //BioControl, 49:2004.-P. 95-107.

184. Hamsa O. et al. Antifungal activity of some Tanzanian plants used traditionally for the treatment of fungal infections //J. Ethnopham.v.108,2006.-P. 124-132.

185. Hegnauer R., Hegnauer M. Chemotaxonomie der Pflanzen //Birkhauser Verlag Basel, Boston, Berlin. V. 4 - 1992.-P. 157.

186. Henderson C., Asante E., Donkor M., Ameyaw K., Luterbacher M., Akrofi A., Boakye P. Farmer managed fungicide trials //Ann. Rep. Cocoa Res. Inst.- 1994.

187. Herger G., Klingauf F. Control of powdery mildew fungi with extracts of the giant knotweed Reynoutria sachalinensis (Polygonaceae) //Med. Facult. Landbouw. Rijksuniv. Gent.- V.55, 1990.-P. 1007-1014.

188. Hirschfeld A., Klingauf F., (ed.) Fac. Landbouww. Rijksuniv. Gent.-1988.-T.53.- P. 997-1005.

189. HislopE., Park P. Fungicide research //Ann. Rep. Cocoa Res. Inst.-№61, 1960.-P.96-106.

190. Hoiby N. Ecological antibiotic policy //J. Antimicrob. Chemother.-№46, 2000.-P. 59-62.

191. Hoitink Н.АЛ., Bochm M.J. Biocontrol within the context of soil microbial communities: A substrate dependen tphenomenon //Ann. Rev. Phytopath.-№37, 1999.-P. 427-446.

192. Holetz F.B., Pessini G.L., Sancbes N.R., Cortez D.A.G., Nakamura C.V., Dias Filho B.P. Screening of some plants used in the Brazilian folk medicine for the treatment of infectious diseases //Mem. Inst. Oswaldo Cruz.- №97, 2002.-P. 1027-1031.

193. Hu Z, Wu Q A, Adams J. E. Studies of ther are and endangered plant speciesin the Yunnan region of China // In: Adams RP (ed)

194. Conservation of plant genes: DN Abankingand in vitro biotechnology //Proc. of the Royal Bot. Gard., Kew, UPpK, 1992.- P. 267-271.

195. Irkin R., Korukluoglu M. Control of Aspergillus niger withgarlic, onion and leek extracts //Afr. J. Biotechn. v. 6,№4,2007.- P. 384— 387.

196. Isebaert S., Verhoeven R., Haesaert G. Control of Phytophthora infestans in tomato by means of induced resistance //Parasitica, Vol. 58, N 2/4.-2002. P. 117-125.

197. Isidorl M., Lovorgna M., Nardelli A., Parrella A. Model study on the effect of 15phenolic olive mill waste water constituents on seed germination and Vibrio fischeri metabolism //J. agric Food Chem.-№53,2005.-P. 8414-8417.

198. Istvan U. Transforming natural products into natural pesticides— experience and expectations //Phytoparasitica.- №30,2002.-P. 439-442.

199. Ivanscbenro L.S. Biologically active plant compaunds in relation to insects impact on plant //JOBC-WRES Bull. OSEB Crop.-v.19, №5, 1996.-H.49-53.

200. Jackson R. Antibiosis and fungistasis of soil microorganisms /Яп: Ecology of Soil-Borne Plant Pathogens (ed. Baker K., Snyder W.) Univ. California Press, Berkeley.- 1965.-P. 363-369.

201. Jacobsen B.J., Zidack N.K., Larson B.J. The role of Bacillus-based biological control agents in integrated pest management systems //Plant dis.Phytopath.-№94,2004.-P. 1272-1275.

202. Jairj P., Khoohaswan P., Wongkrajan Y., Peungvicha P., Suriywong P., Sumal Saraya M.L., Ruangsomboon O. Anticough and antimicrobial activities of Psidium guajava Linn, leaf extract //J. Ethnopharmacol.- №67, 1999.-P. 203-212.

203. Jassode Rodriguez D., Hernandez-Castillo D., Rodriguez-Garcia R,, Angulo-Sanchez J.L. Antifungal activity in vitro of Aloe vera pulp and liquid fraction against plant pathogenic fungi //Indust. Crop.

204. Prod.-№21, 2005.-P. 81-87.

205. Jespers А. В. К., DeWaard M. A. Natural products in plant protection //Netherl. J. Plant Pathol.- V. 99, № 3, 1993.-P. 109-117.

206. Jin-Cheol 1С., Gyung J.C., Seon-Woo L., Jin-Seog K., Kyu Y.

207. Screening extracts of Achyranthes japonica and Rumex crispus for activity against various plant pathogenic fungi and control of powdery mildew //Pest Management Sci.-V. 60, № 8, 1996.-P. 803-808.

208. Jin Jung ICang, Adams, D.O., Yeong, Yu Chin Wen, Lin Chin. Aviglycine and propargylglycine inhibit conidial germination and mycelial growth of Fusarium oxysporium F. sp luffae.- Mycopathol., V.158, № 3,2004.-P. 369-375.

209. John H., James C. Effect of Botanical extracts on the population density of Fusarium and control of fusarium wilt in the greenhouse.-Plant dis. Amer. Phytopth. Soc. V. 48,№ 3.-2000.- P.300-305.

210. Betoni J. E. C., Mantovani R. P., Barbosa L. N., Di Stasi L

211. C., Junior A. F. Synergism between plant extract and antimicrobial drugs used on Staphylococcus aureus diseases //Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro^ VoL 101Д4, 2006.- P. 387-390.

212. Juma B.F., Yenesew A., Midiwo J.O., Waterman P.G. Flavones and phenylpropenoids in the surface exudate of Psiadia punctulata //Chemi. Univ. Nairobi, Kenya.-V. 57, № 4,2001.-P. 571-574.

213. Keeler R.K., Anthony T. Plant and Fungal Toxins.-1983.- P. 258.

214. Ken Fern. Notes from observations, tasting etc at Plants For A

215. Future and on field trips.www.pfaf.org/database/plants.php?Dodonaea+viscosa 23k)

216. Kessel G. J. Т., Jongebloed P. H. J., Molhoek V. V. M. L., van der

217. Plas С. H., Fokkema N. J. Biological control of Phytophthora infestans with bacterial antagonists // 6th Intern. Symp. Aerial Plant Surf., lie de Bendor, Bandol, France. 1995.- P. 45.

218. Kim J.-C., Choi G.J., Park J.-H., Kim H.T., Cho K.Y. Activity against plant pathogenic fungi of phomalactone isolated from Nigrospora sphaerica. Pest Manage. Sci. 57,2001.- P. 554-559.

219. Kirsberg C., Esquenazi D., Alviano C.S., Rumjanek V.M. The effect of catechin-richextractof Cocosnucifera on lymphocytesproliferation //Phytother. Res.- №17, 2003.-P. 1054-1058.

220. Kiss L. A review of fungal antagonists of powdery mildews and their potential as biocontrol agents //Pest Manage. Sci.-№59,2003.-P. 475483.

221. Kmati H., Cardoso C.O.M., Bergamin F.A. Doencas das cucurbitaceas /Яп: Manual de Fitopatologid. (ed. Galli F.), Paulo.-1980.-P.251-269.

222. Kmati H., Gimenes F.N., Soave J., Kurozawa C., Brignani Neto F., Bettiol W. Guiade Fungicidas agricolas, recomendacoes por cultura //2nd ed. Grupo palulista de fitopatologia, Jaboticabal.- 1997.

223. Koduru S., Grierson D.S., Adolayan A.J. Antimicrodial activity of Solanum aculeastrum.- Pharmac. Biol.- V. 44.-№ 4.- 2006.-P.283-286.

224. Koko W.S., Mesaik M.A., Yousaf S., Galal M„ Iqbal Choudhary M. Invitro immunomodulating properties of selected Sudanese medicinal plants //J. Ethnopharmacol. -№118, 2008.-P. 26-34.

225. Konning G.H, Ayare С., Ennison В. Antimicrobial activity of some medicinal plants from Ghana //Fitoterapia.-№ 75,2004.-P. 65-67.

226. ICoschek P.R., Alviano D.S., Alviano C.S., Gattass C.R. Thehusk fiber of C. nucifera L, (Palmae) is asourceofanti neoplastic activity //Braz. J. Med. Biol. Res.-№ 40,2007.-P.1339-1343.

227. Kubo S., Ikeda Т., Imaizumi S., Takanami Y., Mikami Y. A potent plant virus inhibitor found in Mirabilis jalapa L. //Ann. Phytopathol. Soc. Japan.-№ 56,1990.-P. 481-487.

228. Kumar R., Mishra A.K., Dubey N.K., Tripathi Y.B. Evaluation of Chenopodium ambrosioides oil as a potential source of antifungal,antiaflatoxigenic and antioxidantactivity //Intern. J. Food Microb.-№l 15,2007.-P. 159-164.

229. Lassak E. V., Mc Carthy T. Australian Medicinal Plants. A very good and readable guide to the subject (www.pfaf.org/database/plants.php?Dodonaea+viscosa 23k).

230. Latten J. Biologische Beka.mpfung phytopathogener Pilze mit Hilfe von Pflanzenextrakten //Justus Liep. Univ. PhD thesis.-1994.-H.121.

231. Lawrence В. M. Progress in essential oils //Perfumer Flavorist 20 (November-December) 1995.- P. 42.

232. Leeto Nteso A., Johan C., Pretorius A. B. Tulbaghia violacea L. II: In vivo antifungal properties towards plant pathogens.- Austr.J. Agric. Res.-V.57.-№5.- 2006.- P. 517-523.

233. Lemma A., Heyneman D., Silangwa S.M. Phytolacca dodecandra (Endod)towards controlling transmission of schisto somiasis with the use of anatural product //Fin. rep. of the intern, workshop, Lusaka, Zambia. Tycooly Intern. Publish., Dublin. 80.-1984.

234. Lesage-Meessen L., Navarro D., Maunier S., Sigoillot J.C., Lorquin J., Delattre M. Simple phenolic contentin olive oilresidues as a function of extraction systems //Food Chem.-№75,2001.-P.501-507.

235. Lewis J.A., Papavizas G.C., Hollenbeck M.D. Biological control ofdamping-off of snapbeans caused by Sclerotium rolfsii in the greenhouse and field with formulations of Gliocladium virens //Biol. Contr.- v. 3, №2,1993.-P. 109-115.

236. Lewu F.B., Grierson D.S., Afolayan A.J. Extracts from Pelargonium sidoides inhibit the growth of Bacteria and Fungi. Pharmac. Biol. - V.44, № 4. - 2006.- P. 279-282.

237. Lima M.R.F., Luna J.S., Santos A.F., Andrade M.C.C., Sant'Ana A.E.G., Genet J.P. Anti-bacterial activity of some Brazilian medicinal plants //J. Ethnopharmacol.-№105,2006.-P. 137-147.

238. Lopez P., Sanches C., Battle R., Nerin C. Solid-and vaporphase antimicrobial activities of six essencial oils: susceptibility of selected foodborne bacterial and fungal strains //J. Agric. Food Chem.-№53, 2005.-P. 6939-6946.

239. MachadoT.B., Leall C.R., Kuster R.M., Amaral A.C.F., Kolds V., Silva M.G. Brazilian phytopharmaceuticals—evaluation against hospital bacteria//Phytother. Res. №19, 2005.-P. 519-525.

240. Madi L., Katan Т., Katan J. Henis Y. Biological control of Sclerotium rolfsii and Verticillium dahliae by Talaromyces flavus is mediated by different mechanisms//Phytopath.-№87, 1997.-P. 1054-1060.

241. Marcucci M.C. Propolis: chemical composition, biological properties and therapeutic activity. Apidology.- 26,1995.-P. 83-99.

242. Marcucci M.C., Bankova V. Chemical composition,plant origin and biological activity of Brazilian propolis. Curr Topics Phytochem 2, 1999.- P. 115-123.

243. Marco S., Ziv O, Cohen R. Suppression of powery mildew in squash by applications of whaitwash,clay and antitranspirant materials // Phytoparasitica.-V.22, № 1,1994.-P.19-29.

244. Mares D., Tosi В., Poli F., Andreotti E., Romagnoli C. Antifungal activity of Tagetes patula extracts on some phytopathogenic fungi: ultrastructural evidenceon Pythium ultimum

245. Microbiol. Res.-№159, 2004.-P. 295-304.

246. Marston A, Gafner F, Dossaji F. S., Hostettmann K. Fungicidal and molluscicidal saponins from Dolichos kilimandscharicus //Phytochemistry 27(5) 1988.- P. 1325-1326.

247. Masika P.J., Afolayan A.J. Antimicrobial activity of some plants used for treatment of livestock disease in the eastern cape south Africa.- J. Ethnopharm. V. 83.- №1.- 2002.- P.129-134.

248. Mason J. R., Mathew D. N. Evaluation of neem as a bird repellent chemical //Intern. J. Pest Manag.-№ 42, 1996.-P. 47-49.

249. Mc Grath M.T. In creased resistance to triadimefon and benomyl in Sphaerotheca fuliginid propulation following fungicide usage over one season //Plant Dis.-V.80, № 6,1996.-P. 633-639.

250. Mc Grath M.T., Stanizewska H., Shishkoff N. Fungicicides sensitivity fo Sphaerotheca fuliginid propulations in the united states //Plant Dis.-V. 80, №6,1996.- P.697-703.

251. Meinck S. Speisekartoffelanbau im O. kologischen Landbau: Optimierung des Anbauverfahrens durch Sortenwahl und Phytophthora-Prophylaxe //Diss Univ. Gesamthochschule KasseL1999. P. 201.

252. Mendonca-Filho R.R., Rodrigues I.A., Alviano D.S., Santos A.L.S., Soares R.M.A., Alviano C.S. Leishmanicidal activity of polyphenolic-rich extract from husk fiber of C. nucifera Linn.(Palmae) //Res. Microbiol.-№155, 2004.-P. 136-143.

253. Mendes C.C., Bahia M.V., David J.M., David J.P. Constituents of Caesalpineapyramidalis //Phytochem. Commun.-№ 71,2000.-P. 205207.

254. Mercado-BIanco J., Rodriguez-Jurado D., Hervas A., Jimenez-Diaz

255. R.M. Suppressionof Verticillium wilt in olive planting stocks by, root-associated fluorescent Pseudomonas spp. //Biolog. Contr.-№ 30, 2004.-P.474—486.

256. Mercier J., Smilanick J.L. Control of green mold and sour rot of stored lemon by bio fumigation with Muscodor albus //Biol. Contr.-№32, 2005.-P. 401—407.

257. Merzlyak M. N. Chivkunova О. В., Maximova N. I. On the involvement of arachidonic and eicosapenaenoic acids in the elicitation of a defence process in potato plants // J. Rus. Phytopath. Soc. Vol. 1, 2000. —P. 51-58.

258. Miller S. K., Lyong G. D. Assessment of the ability of elicitors to induce resistance to Phytophthora infestans H Europ. Assoc. Potato Res.-1995.-P. 370-371.

259. Myeon H.N, Wonk K.L., Sole L.N., Hong G. Control Efficacy of Milk Concentration Against Powdery Mildew of Strawberry Korea //J. Plant pathol.- V.21, №3,2005.-P. 270-274.

260. Molisch N. Der Einflus einer Pflanze auf die andre //In: Allelopathie.1. Jena.-1937.

261. Monnet D.L. European recommendations to respond to the treat of antimicrobial- resistant microorganisms //ASMNews.-№ 65,1999.-P. 390-391.

262. Montes-Belmont R., Carvajal M. Controlof Aspergillus flavus in maize with plant essential oils and their components //J. Food Protect.- v.61, №5, 1998.-P. 616-619.

263. Nadasie E., Prantner I., David Т., Ember I. Effect of a plant-orignated naaural compound, cod extract, on c-myc, ha-ras and P53 gene expression in short-term animal experiments //Acta Alimentaria.-V.37, №1,2008.- P. 87-92.

264. Nascimento G. G. F., Locatelli J., Freitas P. C., Silva G. L.

265. Antibacterial activity of plant extracts and phytochemicals on antibiotic-resistant bacteria //Braz J. Microbiol. 31: 2000. -P. 247-256.

266. Neri F., Mari M., Brigati S. Control of Penicillium expansum by plant volatile compounds //Plant Pathol.-v. 55, №1,2006.-P. 100-105.

267. Nieva Moreno M.I., Isla M.I., Sampietro A.R.,Vattuone M.A. Comparison of the freeradical-scavenging,activity of propolis from severalregions of Argentina, Ethnopharmacol 71,2000.- P. 109-114.

268. Nikolov A., Boneva I. Screening tests of fungicides from plant origin towards powdery mildews from roses and cucumbers //Bulg. J. Agric. Sci.-№5, 1999.-P. 975-978.

269. Ogechi N., Agbenin P.S. Marley, in- vitro Assay some plant extracts extracts against Fusarium oxysporum f. SP. Lycopersici causal agaent of tomato wilt.- Ahmadu Bello Univ. Nigeria.- J. plant protect. Res. V.46, №3.-2006.-P.215-219.

270. Ogunlana M. О., Oparaeke A. M, Alegbejo M. D. Screening of plant materials against flea beetles(Podagrica spp.) on okra in Zaria, Nigeria //The Plant Scientist.-№3, 2002.-P. 55-62.

271. Ojala Т., Remes S., Haansuu P., Vuorela H., Hiltunen R., Haahtela 1С, Vuorela P. J. Ethonopharm., V. 73, №l.-2000.-P.299-305.

272. Olayide S. O., Eweka J. A., Bello S. V. Nigeria Small Farmers: Problems and Prospects in Integrated Rural Development for Agricultural Rural Development //Univ/ Ibadan, Ibadan, Nigeria. -1980.-P. 315.

273. Oliva A., Lahoz E., Conttlo R., G. Aliottal, Fungistic Activity of Ruta graveolens extract and its allelochemicals, Journal of Chemical Ecology,1. Vol. 25, No. 3, 1999.

274. Olojede F., Engelhardt G., Wallnofer P. R., Adegoke G. O. Decreaseof growth and alotoxin production in Aspergillus parasiticus caused by spices. World Journal of Microbiology and Biotechnology.- №2, 1993.-P. 103.

275. Omidbeygi M., Barzegar M., Hamidi Z., Nagbdibadi H. Antifungal activity of thyme,summer savory and close essential oils against Aspergillus flavus inliquid medium and tomato paste //J. Food Control.-2007.

276. Oparaeke A. M. Collection, identification and screening of indigenous herbal extracts and waste matter for the control of insect pests of cowpea, Vigna unguiculata (L.) //Walp. PhD Thesis, Ahmadu Bello University, Zaria.- 2004.- 330 p.

277. Opoku I., Appiah A., AkrofI A. Phytophthora megakarya: A potential threat to the cocoa industry in Ghana // Ghana J. Agric. Sci.-№33, 2000.-P. 135-142.

278. Ozeretskovskaya О L, Vasyukova N I. The mechanisms of elicitation of plant systemic resistance against diseases //Rus. J. Plant

279. Physiol. -B. 41, №4, 1994.-C. 550-556.

280. Papp N. Antimicrobial activity of extracts of fivehungarian euphorbiaspicies and someplantmetabolits //Acta Botan. Hungarica/-v. 46 №3-4, 2004.-P. 363-371.

281. Paranagama P.A., Abeysekera К.Ы., Abeywickrama K.,

282. Nugaliyadde L. Fungicidal and anti- aflatoxigenic effects of the essential oil of Cymbopogon c*7ra/ws(DC.)Stapf. (lemongrass)against

283. Aspergillus flavus Link. Isolated from stored rice //Lett. Appl. Microb.-v. 37,№1,2003.-P. 86-90.

284. Pascual J.A., Hernandez M.T., Garcia C., Lerma S., Lynch J.M. Effectiveness of municipal solid waster compost and its humicfraction in suppressing Pythium ultimum //Microbiol. Ecol. -№44, 2002.-P. 59-68.

285. Pasini C., Daguila F., Curir P., Gullino MX. Effectiveness of antifungal compounds against rose powdry mi\dew(Sphaerotheca fuliginid) in glasshouses //Crop Protect.-V.16, №3, 1997.-P.251-256.

286. Pegg G.F., Brady B.L. Verticillium Wilts //CABI Publish., Wallingford, UK.-2002.

287. Pesman. M. W. Meet Flora Mexicana. Dale S. King. Arizona. 1962.-Very readable flora but rather lacking botanically. A few notes on useful plants. (www.pfaf.org/database/plants.php?Dodonaea+viscosa- 23k).

288. Pesticides for the year 2000: mycochemicals and botanicals /Яп: PesManagement and the Environment in 2000 (eds. S.A. Kadirand, H. S. Barlow).- CAB International, Wallingford, UK.-P.127-164.

289. Pickett S.A., Wadhams L.S.,Woodcock CM. New approaches to the development of semiochemicals for insect control //Proc.Conf. Insect Chem. Scje, 1991.-Tabor.-P. 333-345.

290. Press C.M., Loper J.P., Kloepper J.W. Role of iron in Rhizobacteria-mediated induced systemic resistance of cucumber //Phytopath.-№91, 2001.-P. 593-598.

291. Pretorius J.C., Zietssman P.C., Eksteen D. Fungi toxic properties of selected South African plants pecies against plant pathogens of economic importancein agriculture //Ann. App. Biol. 141: 2002.- P. 117-124.

292. Prithiviraj В., Singh U.P., Manickman M., Srivastava J.S., Ray A.B.

293. Antifungal activity of bergenin, a constituent of Fluggea microcarpa //Plant Pathol.-№46, 1997.-P. 244-248.

294. Qadan F., Thewaini A.J., Ali D.A., Afifi R., Elkhawad A., Matalka K.Z. The antimicrobial activities of Psidium guajava and Juglans regia leaf extracts to acne-developing organisms //Am. J. Chin. Med.-№33, 2005.-P.l97-205.

295. Qasem J. R-, Abu-BIan H. A. Fungicidal activity of some common weed extracts against different plant pathogenic fungi //J. Phytopath.-№144, 1996.-P. 157-161.

296. Quintanilla P., Brishammar S. Systemic induced resistance to late blight in potato by treatment with salicylic acid and Phytophthora cryptogea //Potato Res., Vol. 41, N 2.- 1994. P. 135-142.

297. Quintanilla P., Rohloff J., Iversen Т.Н. Influence of essential oils on Phytophthora infestans // Potato Res., Vol.45, N 2-4,2002. P. 225235.

298. Quiroga E.N., Sampietro D.A., Soberon J.R., Sgariglia M.A., Vattuone M. A. Propolis from the north west of Argentina as a source of antifungal principles //J. of Appl. Microb. ISSN.- 2006.- P. 1364-507.

299. Ramamoorthy V., Viswanathan R., Raguchander Т., Prakasam V., Samiyappan R. Induction of systemic resistance by plant growth promoting rhizobacteria in crop plants against pests and diseases // Crop Prot.- №20,2001 .-P.l-l 1.

300. Refaat A. M., Momen F. M., Amer S. A. A. Acaricidal Activity of Sweet Basil and French Lavender Essential Oils Against Two Species of Mites of the Family Tetranychidae (Acari: Tetranychidae) //Acta Phytopath. Entom. Hung. 37, №1-3,2002.-P. 287-298.

301. Reimers F., Smolka S.E., WerresS., Plank-Schumacher K., Wagner

302. K.G. Effect of ajoene, acompound derived from Allium sativum on phytopathogenic and epiphytic microorganisms //J. Plant Dis. Prot.-№100, 1993.-P. 622-633.

303. Reuveni M., Agarov V., Reuveni R. Suppression of cucumber powery mildew (Sphaerotheca fuliginidjby foliar sprays of phosphate and potassium salts //Plant Pathol.-V. 44, №1,1995.-P. 31-39.

304. Riveros B.F., Sotomayor R., Rivera V., Secor G., Espinoza B. Resistance of Phytophthora infestans (Montagne) de Вагу to metalaxayl in potato crops in Northon chile // Agric. T'ecnica.- V. 63, N2, 2003.-P. 117-124.

305. Romero C., Brenes M., Garcia P., Garrido A. Hydroxytyrosol 4-b-D-glucoside, an important phenolic compoundin olive fruits and derived products //J. Agric. Food Chem. -№50,2002.-P. 3835-3839.

306. Sahin F., Karaman I., Gulluce M., Ogutcu H., Sengul M., Adguzel , A., Ozturk S., Kotan R. Evaluation of antimicrobial activities of

307. Satureja hortensis L. //J. Ethnopharmac.-№87, 2003.-P. 61-65.

308. Sardari S., Amin G., Micetich R.G., Daneshtalab M. Antifungal activity of selected Iranian and candian plants.- Pharmac. Biol.-№9.-1998.-P.180-182.

309. Saha, D., Dasgupta S., Saha A. Antifungal activity of some plant extracts against fungal pathogenrs of Tea (Camellia sinesis).- Pharmac. Biol.- V.43.- № 1.-2005.-P. 87-91.

310. Saikia R., Azad P. In vivo effect of some Trichoderma spp. and Dithane M-45 against late blight of potato //Neo Botanica.-№7, 1999.-P.89-91.

311. Salomao 1С, Dantas A.P., Borba C.M., Campos L.C., Machado D.G.,

312. Aquino Neto F.R., De Castro S. L. Chemical composition and microbocidal activity of extracts from Brazilian and Bulgarian propolis // Lett. Appl. Microbiol.- 38,2004.- P. 87-92.

313. Saxena R. C. Insecticicides from Neem//In. of plant origin (Ed. Arnason, J. Т.), 1989.-p.110- 117.

314. Sebastian Eugene, Nidiry J., Bujji C. S. Antifungal Activity of Tuberose Absolute and Some of its Constituents //Phyt. Res. 19, 2005.- P. 447-449.

315. Shahi S., Patra M., Shukla A.C., Diksbit A. Use of essential oil as botanical pesticide against post harvest spoilage in Maluspumilo fruits //Bio. Control.-№ 48, 2003.-P. 223-232.

316. Shahina A.Ghazanfar. Handbook of Arabian Medicinal Plants.-1994.- P. 249.

317. Sheng-Hsien Lee, Ku-Shang Chang, Min-Sheng Su, Yung-Sheng Huang, Hung-Der Jang. Effects of some Chinese medicinal plant extracts on five different fungi //Food Contr.-№18,2007.-P. 1547-1554.

318. Sible G. V., Marimuthu Т., Rabindranr R. R. Velazhan R. R Induction of Resistance in Rice against Xanthomonas oryzae pv. oryzaeby Foliar Application of Cow Dung Water Extract //Acta Phytopath. et Entom. Hungarica, 39, №l-3.-2004.-P. 15-27.

319. Silva Junior A.A., Vizotto Y. J., Giorgi E., Macedo S.G., Marques L.F. Plantas medicinais, caracterizacao e cultivo //EPAGRI. Bol. Tecnico Florianopolis.-№68, 1994.-P. 1-71.

320. Simmonds M.S. J., Evans H.C., BIaney,W.M.

321. Pesticide for the year 2000: mycochemicals and botanicals // In: KadirA.S., Barlow H.S.(Eds.).- Pest Manag. Environ, in 2000.-CAB Internat., Wallingford, UK, 1992.-P. 127-164.

322. Singh D. Scope of medicinal and aromatic plants in pest management //Intern. Symp. Allelopathyin Sust. Agric., Forestry and Environment New Delhi.- №6-8, 1994.-P. 68.

323. Singh U.P., Srivastava B.P., Singh K.P., Mishra G.D. Control of pea powdery mildew with ginger extract. Indian Phytopathol. 44, 1991.-P.55-59.

324. Singh U.P., Prithiviraj B. NeemAzal, a product of neem (Azadirachta indica), induces resistance in pea (Pisum sativum) against powdery mildew (Erysiphe pisi) //Physiol. Plant Pathol.-№ 51, 1997.-P. 181-194.

325. Singh U.P., Prithivira В., Schumacher K.P., Wagner K.G. Effect of ajoene, a constituent of garlic {Allium sativum) on powdery mildew

326. Erysiphe pisi) of pea (Pisum sativum)//}. Plant Dis. Prot.-№105, 1995.-P. 399-407.

327. Souwalak P., Sanan S., Chatchai W. Antifungal activities of extracts from Thai medicinal plants against opportunistic fungal pathogens associated with ADDS patients //Blackwell Publish.-Ltd .- Mycoses.-№48, 2005.- P. 333-334.

328. Srinivasan D., Nathan S., Suresh Т., Perumalsamy P.L. Antimicrobial activity of certain Indian medicinal plants used in folkloric medicine //J. Ethnopharmacol.-№74, 2001 .-P. 217-220.

329. Srivastava N., Verma H. N. Chenopodium murale leaf extract, a potent virus inhibitor//Indian Phytopath.-№48,1995.-P. 177-179.

330. Stavroula K.D., Annegret S. Impact of treatment with plant extracts from Reynoutria sachalinensis (F. Schmidt) Nakai on intensity of powdery mildew severity and yield in cucumber under high disease pressure //Crop Protect.- V.17, №8, 1998.- P.649-656.

331. Stephan D., Schmitt A., Carvalho S., Seddon В., Koch £. Evaluation of diocontrol preparation and plant extracts for the control of P. infestans on potato leaves //Europ. J. Plant Pathol.- V. 112, N3, 2005.-P 235-246.

332. Stein A.C., Sortino M., Avancini C., Zacchino S., Gilsane von Poser.

333. Ethnoveterinaiy medicine in the search for antimicrobial agents:Antifungal activity of some species of Pterocaulon (Asteraceae)

334. J. Ethnopharm.-№99, 2005.-P. 211-214.

335. Stromerg G. A, Brishammar S. A histological evaluation of induced resistance to Phytophthora infestans de Bary in potato leaves //J/. Phytopath.-V. 137, №1,1993.-P. 15-25.

336. Stromerg G. A. Systemically induced resistance in potato cultivars with different degree of resistance to late blight caused by Phytophthora infestans de Bary //J. Phytopath.- V.143, №1, 1995, P. 27-31.

337. Sturz A.V., Christie B.R., Nowak J. Bacterial Endophytes: Potential Role in Developing Sustainable Systems of Crop Production //Critical Rev. Plant Sci.-№19, 2000.-P. 1-30.

338. Tadeg H., Mohammed Endris, Asres Kaleab, Tsige Gebre-M. Antimicrobial activities of some selected traditional Ethiopian medicinal plants used in the treatment of skin disorders //J. Ethnopharm.-№ 100, 2005.-P. 168-175.

339. Takanami Y., Kuwata S., Ikeda Т., Kubo S. Purification and characterization of antiviral proteinfrom Mirabilis jalapa L. //Ann. Phytopathol. Soc. Japan.-№56,1990.-P. 488-494.

340. Tan W. Z., LiQ. J., Qing, L. Biological Control of alligatol weed

341. Alternantheraphiloxeroides) With a Fusarium sp . // BioControl. V.47, №. 4,2002,- P. 463- 479.

342. Tassou C.C., Koutsoumanis 1С., Nychas G.J.E. Inhibition of Salmonella enteridis and Staphyloccus aureus on nutrient broth by mint essential oil //Food Res. Internat.-№48,2000.-P. 273-280.

343. Tazawa S., Warashina Т., Noro Т., Miyase T. Studies on theconstituents of Brazilian propolis. Che. Pharm. Bull. 46, 1998.-P. 14771479.

344. Tegegne G., Pretorius J.C., Swart W. J., Antifungal properties of Agapanthus africanus L. extracts against plant pathogens //Crop Protect.-№27, 2008.-P. 1052-1060.

345. Terry LA., Joyce D.C., Khambay B.P.S. Antifungal compownds in Gerladton wasxflower tissues.- Austral, plant pathol.- 2003.-№ 32.-P.411-420.

346. Terry L.A., Joyce D.C., Khambay B.P.S. Antifungal compownds in Gerladton wasxflower tissues.- Austral, plant pathol.- 2003 .-№ 32.-P.411-420.

347. Thomashow L.S., Weller D.M. Current concepts in the use of introduced bacteria for biological disease control:mechanisms and antifungal metabolites //In: Stacey G., Keen N.T. (Eds.), Plant-Microb. Interact. -NewYork, USA, 1995.-P.187-235.

348. Timothy L.,Widmer, Laurent N. Plantext racts containing caffeic acid and rosmarinic acid inhibitz oospore germination of Phytophthora spp. pathogenic to Theobroma cacao //Europ. J. of Plant Path. 115, 2006.-P. 377-388.

349. Glass J. R., Johnson K.B., Powelson M.L. Assessment of Barriers to Prevent the development of potato Tuber Blight Caused by Phytophthora infestans/rP\mt Dis., V.85, N5- 2001. P. 521-528

350. Uppal A.K., El Hadrami A., Adam L.R., Tenuta M., Daayf F. Biological control ofpotato Verticillium wiltunder controlled and field conditions using selected bacterial antagonists and plant extracts //Biolog. Contr.-№ 144,2008.-P. 90-100.

351. Vivanco J. M., Querci M., Salazar L.F. Antiviral and antiviroid activity of MAP-containing extracts from Mirabilis jalapa roots //Plant Dis. №83, 1999.-P. 1116-1121.

352. Wagner S.A., Alviano D.S., Diniz C.G., Antoniolli A.R.,

353. Warkentin T.D., Xue A.G., Mc Andrew D.W. Effect of mancozeb on the control of Mycosphaerella blight on field pea //Can. J. Plant Sci. №80,2000.-P. 403-406.

354. Watanabe K., Kawasaki Т., Sako N., Funatssu G. Actions of341.342.343.344.345.pokeweed antiviral protein on virus-infected protoplast //Biosci Biotech. Biochem.- 61, № 6, 1997.-P.994-997.

355. Whittaker R.N. The biochemical ecology of higer plants //In: Chemical ecology.-New York-London.-Akad.Press.-1970.-286 p.

356. Widyastuti S.M., Sumardi H., Yuniarti D. Biological control of

357. Sclerotium rolfsii damping-off of tropical pine (Pinus merkusii) with three isolates of Trichoderma spp. //J. Biolog. Sci. -v. 3, №1, 2003.-P. 95-102.

358. Wolff K., El-Akkad S., Abbott R. J. Population substructure in Alkanna orientalis (Boraginaceae) in the Sinai Desert, in relation to its pollinator behaviour//Molecular Ecology, Vol. 6.-№4.- 1997.-P. 365-372.

359. Wroth J.M. Possible role for wild geno type of Pisum spp. to enhance Ascochyta blight resistance in pea //Aust. J. Exp. Agric.-№38, 1998.-P. 469-479.

360. Wuyts N., Elsen A., Sagi J. Effect of plant secondary metabolites on plant-parasitic nematodes //Nematology.-V.4, №2,2002.-P. 208.

361. Xue A.G., Warkentin T.D. Partial resistance to Mycosphaerella pinodes in field pea //Can. J. Plant Sci.-81,2001.-P. 535-540.

362. Yamaguchi K., Kida ML, Arita M., Takahashi M. Induction of systemic resistance by Fusarium oxysporum MT0062 in solanaceous crops//Ann. Phytopath. Soc. Japan.- .№58,1992.-P. 16-22.

363. Yange С. H., Menge J. A., Cooksey D. A. Role of copper resistance in competitive survival of Pseudomonas fluorescens in soil // Appl. Environ. Microbiol. V. 59, 1993. -P. 580-584.

364. Yange С. H., Menge J. A., Cooksey D. A* Mutations affecting hyphal colonization and pyoverdine production in pseudomonads antagonistic toward Phytophthora parasitica //Appl. Environ. Microbiol. V. 60, 1994.-P. 473-481.

365. Yin M., Tsao S. Inhibitory effect of seven Allium plants upon three Aspergillus species //Intern. J. Food Microb.-№ 49,1999.-P. 49-56.

366. Youdeowei A., Services M. N. (eds.). Plant Disease Handbook //4-th edition.- Longman Group Ltd., London and New York.-1983.

367. Zarzycka H., Poloszynowicz J. Wplyw wywaru z bulw na infekcyjnosc zawiesiny zarodnikow Phytophthora infestans (Mont.) de Bary w stosunku do ziemniaka //Biul. Inst. Ziemn.-Bonin, N 44.- 1994.- S. 121130.

368. Ziv O., Zitter T.A. Effects of bicarbonates and film-forming polymers on cucurbit foliar diseases //Plant Dis.-V.76, № 5, 1992,-P. 513-517.

Информация о работе

Мохамед Наджи Салех Аль-Саади
кандидата биологических наук
Москва, 2009
ВАК 06.01.11

Диссертация

Оценка фунгицидной активности некоторых тропических видов флоры Йемена - тема диссертации по сельскому хозяйству, скачайте бесплатно

Автореферат

Похожие работы