Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Эпизоотология и терапия основных арахнозов животных Краснодарского края
ВАК РФ 03.00.19, Паразитология
Автореферат диссертации по теме "Эпизоотология и терапия основных арахнозов животных Краснодарского края"
На правах рукописи У/1
КАТАЕВА Татьяна Семеновна
ЭПИЗООТОЛОГИЯ И ТЕРАПИЯ ОСНОВНЫХ АРАХНОЗОВ ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ В КРАСНОДАРСКОМ КРАЕ
Специальность 03.00.19 - Паразитология
АВТОРЕФЕРАТ диссертации на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук
Москва-2009
о д АП? 2ПСЭ
003466522
Работа выполнена на кафедре паразитологии, ветсанэкспертизы и зоогигиены ФГОУ ВПО «Кубанский государственный аграрный университет» и в хозяйствах Краснодарского края.
Научный консультант: доктор ветеринарных наук, профессор
АРХИПОВ Иван Алексеевич
Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук, профессор САФИУЛЛИН Ринат Туктарович
доктор ветеринарных наук, профессор МАЙОРОВ Анатолий Ильич
доктор ветеринарных наук, профессор ШУСТРОВА Маргарита Викторовна
Ведущая организация: ФГОУ ВПО «Ставропольский государственный аграрный университет»
Защита диссертации состоится г. в ././.часов
на заседании Совета по защите докторских и кандидатских диссертаций Д 006.011.01 при ГНУ «Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина» (ВИГИС)
Адрес: 117218, Москва, Б. Черемушкинская ул., д. 28.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГНУ ВИГИС
Автореферат разослан г.
Ученый секретарь Совета по защите докторских и кандидатских диссертаций, доктор биологических наук
В.К. Бережко
Введение
Актуальность работы. Арахнозы животных широко распространены в различных природно-климатических зонах России и других стран (И.Г. Галузо, 1950; А. Бердыев, 1981); A.A. Водянов, 1986; Ф.И. Василевич, 1986; Э.Б. Кербабаев, 1998; R.S. Mueller, 2007 и др.). По данным Э.Б. Кер-бабаева (1998) всего зарегистрировано в мире свыше 25 тыс. видов клещей, а в странах СНГ и Прибалтики около 12 тыс. Наибольшее ветеринарное значение имеют представители семейств Psoroptidae, Canestrini, 1892; Sarcoptidae, Murray, 1877; Demodicidae, Nicolet, 1855; Psorergatidae, Dubinin, 1954 и Ixodidae, Murray, 1877.
Клещи, паразитируя на животных, причиняют огромный экономический ущерб. Так, при демодекозе крупного рогатого скота удои молока снижаются при сильном поражении на 30-40 %, прирост массы тела на 80 г в сутки, качество шкур на 47-80 % (JI.H. Скосырских, 1994, Ф.И. Василевич, 1998). При псороптозе овец настриг шерсти уменьшается на 69 % (В.И. Ремез, 1985). Саркоптоидные клещи приводят к снижению на 48-50 % привесов у свиней (Р.Т. Клочко, 1983). В ряде случаев при высокой степени поражения животных демодекозными и саркоптоидными клещами отмечают падеж животных (Э.Б. Кербабаев, JI.H. Скосырских, 1988; Т.С. Катаева, 1989 и др.). Экономический ущерб, причиняемый иксодовыми клещами, во многом усугубляется тем, что они являются переносчиками возбудителей ряда инфекционных, вирусных и паразитарных заболеваний животных и человека: клещевого энцефалита, чумы, туляремии, клещевого возвратного тифа, лихорадки КУ, Крым-Конго геморрагической лихорадки, пироплазмидозов и др. (В.Н. Беклемишев, 1955; Ю.С. Балашов, 1967; А.Н. Алексеев, З.Н. Кондрашова, 1985; Э.Б. Кербабаев, 1998).
В последние годы для борьбы с арахнозами животных предложено большое количество отечественных и импортных препаратов из разных классов химических соединений, в том числе пиретроидов, макроцикличе-ских лактонов, ФОСов и др. (R.S. Mueller, 2007). Однако разработка и внедрение научно-обоснованных эффективных схем защиты сельскохозяйственных и домашних животных от кровососущих членистоногих невозможны без подробного изучения эколого-эпизоотологических особенностей заболеваний, вызываемых клещами у животных в условиях различных природно-климатических зон Краснодарского края.
В предыдущие годы изучению видового состава клещей в условиях Северного Кавказа посвящены работы отечественных исследователей (С.Р. Калита, 1955; Э.Б. Кербабаев, Т.С. Катаева, P.A. Брудный, 2001; Э.Б. Кербабаев, В.Н. Шевкопляс, 2004; В.Н. Шевкопляс, В.Г. Лопатин, 2006а,б и др.). Однако исследования касались, в основном, фауны и распространения иксодовых клещей в отдельных регионах. Особенности эпизоотологии заболеваний, вызываемых саркоптоидными и демодекозными клещами, у
сельскохозяйственных и домашних животных в условиях Кубани до сих пор остаются недостаточно изученными.
Актуальным для ветеринарной практики является изучение эффективности и персистентности действия новых препаратов против разных видов клещей и обоснование сроков их применения.
Цели и задачи исследований. Целью нашей работы явилось изучение эколого-эпизоотологических особенностей основных акарозов сельскохозяйственных и домашних животных в условиях различных зон Северного Кавказа и разработка научно обоснованных схем борьбы с арахнозами животных с учетом персистентности действия новых акарицидов.
Научная новизна. На территории Краснодарского края автором выявлено 18 видов иксодовых клещей. Впервые в условиях Кубани обнаружен вид Amblyomma variegatum. Основными эктопаразитами, причиняющими наибольший экономический ущерб, являются у свиней Sarcoptes suis, у овец Psoroptes ovis, у кроликов P. cuniculi, у крупного рогатого скота иксодовые клещи, у собак D. canis и у кошек О. cati. Установлена зараженность различных видов животных клещами в разных природно-климатических зонах Краснодарского края и изучено влияние сезона года, возраста животных, технологии и типа содержания животных на зараженность их основными видами клещей семейств Ixodidae, Psoroptidae, Sarcop-tidae и Demodicidae. Максимальный индекс обилия иксодовых клещей отмечен в июне-июле. Максимальная зараженность крупного рогатого скота, овец и кроликов клещами рода Psoroptes отмечена в осенне-зимний период (25-91,5 %). Саркоптоз чаще проявляется у свиней в возрасте 3-6 мес в зимний период, поражая 36,2 % поголовья. Циркуляция клещей рода De-modex у собак осуществляется в течение всего года с подъемом зараженности у молодых животных до 24,5 %. Выявлены основные факторы передачи и распространения отодектоза у кошек при различных типах содержания.
Автором изучены и предложены для борьбы с арахнозами животных эффективные препараты мустанг и бовизан в форме водных эмульсий для опрыскивания и купки животных. Изучена персистентность их действия.
Научная новизна работы подтверждена 3 Патентами на изобретения (2003, 2005,2006).
Практическая ценность. Результаты исследований автора позволили установить оптимальные в условиях Северного Кавказа сроки обработки животных акарицидами и разработать эффективные схемы защиты животных от кровососущих членистоногих с учетом персистентноси действия акарицидов и эпизоотологии конкретных арахнозоз животных.
Результаты исследований автора использованы при разработке следующих нормативно-технических документов:
Временное наставление по применению препарата Мустанг-100, утверждено Департаментом ветеринарии МСХиП РФ 07.08.1998 г. № И840-2.2115.
Временное наставление по применению бовизана для борьбы с иксо-довыми клещами на крупном рогатом скоте и псороптозом овец, утверждено Департаментом ветеринарии МСХиП РФ 19.02.1999 г. № ПВИ-5-1.9.00010.
Учебное пособие для ВУЗов «Арахноэнтомозы сельскохозяйственных животных», рекомендовано Департаментом образования МСХиП РФ (2000 г.).
Рекомендации по профилактике пироплазмидозов и вирусных заболеваний, передаваемых иксодовыми клещами в Краснодарском крае и средства борьбы с ними. Утверждены Администрацией Краснодарского края (2001 г.) и одобрены секцией «Инвазионные болезни животных» РАСХН, 05.12.2001 г., протокол № 4.
Методические рекомендации «Паразитарные болезни нутрий и меры борьбы с ними в Краснодарском крае», утверждены управлением ветеринарии Краснодарского края 23.04.2004 г.
Методические рекомендации «Паразитарные болезни кроликов и меры борьбы с ними в Краснодарском крае», одобрены секцией «Инвазионные болезни животных» РАСХН, 2006 г.
Апробация работы. Материалы диссертационной работы доложены на следующих научно-практических конференциях:
- X съезд Всесоюзного общества энтомологов. Ленинград, 1989;
- У1-е Всесоюзное совещание по проблемам теоретической и прикладной акарологии. Ленинград, 1990;
- Научная конференция, посвященная 50-летию Уральского сельскохозяйственного института. Свердловск, 1990;
- Объединенная сессия Координационного совета по ветеринарной гельминтологии, Центрального совета общества гельминтологов РАН и секции «Инвазионные болезни» РАСХН г. Москва (1996, 1997, 1998, 1999, 2000,2001,2003,2004,2005, 2006, 2007);
- Научная конференция Всероссийского общества гельминтологов РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». Москва, 1999, 2000;
- Научная конференция, посвященная 60-летию Уральской государственной сельскохозяйственной академии. Екатеринбург, 2000 г;
- Научная конференция «Научные основы обеспечения защиты животных от экотоксикантов, радионуклидов и возбудителей опасных заболеваний». Казань, 2005;
- Международная конференция и 3-й съезд Паразитологического общества РАН. Санкт-Петербург, 2003;
- Международная научно-практическая конференция «Актуальные проблемы ветеринарии в современных условиях». Краснодар, 2006.
Личный вклад соискателя. Представленная диссертационная работа является результатом 18-летних научных исследований автора. Исследования по изучению эпизоотологии основных арахнозов домашних животных
в условиях Кубани, а также основная часть экспериментальных работ по терапии акарозов домашних животных выполнена соискателем лично. В опубликованных работах совместно с О.И. Манукало по испытанию препаратов при псороптозе кроликов, Э.Б. Кербабаевым по борьбе с иксодо-выми клещами, В.Г. Лопатиным по паразитозам нутрий основная часть работы выполнена Т.С. Катаевой. О.И. Манукало, Э.Б. Кербабаев, В.Г. Лопатин не возражают об использовании результатов совместных исследований диссертантом Т.С. Катаевой (справки представлены в Совет по защите докторских и кандидатских диссертаций).
Основные положения, выносимые на защиту:
1. Иксодофауна крупного рогатого скота Кубани и влияние на нее различных факторов;
2. Эколого-эпизоотологическая характеристика псороптоза овец и кроликов;
3. Эколого-эпизоотологическая характеристика саркоптоза свиней;
4. Эколого-эпизоотологическая характеристика демодекоза собак и отодектоза кошек;
5. Эффективность и персистентность акарицидного действия мустанга и бовизана;
6. Оптимальные схемы применения мустанга при основных арахно-зах животных.
Публикации. По теме диссертации опубликовано 47 работ, в том числе 20 работ в изданиях, рекомендованных ВАКом, в которых изложены основные положения и выводы по изучаемым вопросам.
Объем и структура работы. Диссертация изложена на 314 страницах машинописного текста. Состоит из введения, обзора литературы по изучаемым вопросам и собственных исследований, состоящих из описания материалов и методов, а также результатов исследований (10 глав), обсуждения, выводов, практических предложений, списка литературы, содержащего 375 отечественных и 246 иностранных источников. Работа иллюстрирована 54 таблицами и 3 рисунками. Приложение на 25 страницах.
1. Обзор литературы
Представлен анализ отечественной и иностранной литературы по эпизоотологии и терапии арахнозов животных, вызванных клещами родов Sarcoptes, Psoroptes, Demodex, Otodectes и иксодовыми клещами.
2. Собственные исследования 2.1. Материалы и методы
Видовой состав иксодовых клещей на крупном рогатом скоте в условиях Краснодарского края изучали в 1992-2002 гг. путем учета и сбора клещей с тела крупного рогатого скота. Сбор и учет иксодовых клещей
проводили в период их активности согласно Методических указаний «Сбор, учет и подготовка к лабораторному исследованию кровососущих членистоногих - переносчиков возбудителей природно-очаговых болезней» (2002).
Определение видового состава клещей проводили в лаборатории кафедры паразитологии Кубанского аграрного университета.
Идентификацию клещей осуществляли по определителям Б.И. Померанцева (1950), Г.В. Сердюкова (1956), Н.А. Филипповой (1977), Э.Б. Кербабаева (1998).
При изучении иксодофауны крупного рогатого скота учитывали индекс обилия (ИО, экз.) по В.Н. Беклемишеву (1970), а также среднее, минимальное, максимальное количество клещей на одном животном и ошибку средней величины.
Места обитания иксодовых клещей на теле крупного рогатого скота изучали в июле-сентябре 1994 г. в Динском и Мостовском районах Краснодарского края на 166 коровах, пораженных иксодовыми клещами. При сборе клещей с тела крупного рогатого скота учитывали место обитания с указанием стадии развития клеща. Всего нами собрано 3413 экз. иксодовых клещей с тела крупного рогатого скота.
Равитие Boophilus armulatus Sag, ] 821 с учетом хризалидной стадии изучали в условиях Краснодарского края с момента прикрепления личинок к животным до отпадения напитавшихся самок, а также вне хозяина, поместив их в специальные садки в прибрежной растительности.
С целью определения акарицидной активности препарата мустанг на хризалидные нимфы В. annulatus провели серию опытов по определению СК 8 концентраций от 0,00000025 до 0,00005 % препарата.
Распространение иксодидозов крупного рогатого скота изучали в 1995-2006 гг. путем сбора и учета клещей на 2065 животных из разных зон Краснодарского края, в том числе степной, лесостепной, предгорной, горной, пойменной и прибрежной.
Численность иксодовых клещей определяли на крупном рогатом скоте разного возраста, в том числе 247 головах молодняка в возрасте до 1 года, 384 головах 1-3-х лег, 465 животных в возрасте 4-6 лет и 454 головах в возрасте старше 6 лет.
Сезонную динамику зараженности крупного рогатого скота иксодовыми клещами изучали путем ежемесячного осмотра и учета количества обнаруженных клещей у 134 животных.
Влияние пола и породы на численность иксодовых клещей у крупного рогатого скота изучали на основании исследований 523 коров и 116 быков, а также при учетах клещей на 386 коровах черно-пестрой породы, 325 коровах гольштинской породы, 417 коровах красной степной породы и 308 помесных животных.
Зараженность крупного рогатого скота иксодовыми клещами изучали при разной технологии содержания, в том числе на 483 коровах при па-
стбищном содержании с летними лагерями, 475 коровах при пастбищно-стойловом содержании и 423 головах при стойловом содержании.
Возрастную структуру иксодовых клещей на крупном рогатом скоте определяли ежемесячно путем осмотра 134 коров.
Распространение псороптоза овец в разных зонах Кубани изучали в 1995-2005 гг. путем клинического осмотра 2161 животного с целью выявления зараженных овец по наличию у них характерных очагов псороптоза, а также обязательной выборочной микроскопии соскобов кожи на границе с пораженных и здоровых участков под микроскопом МБС-10 (Э.Б. Керба-баев, Ф.И. Василевич, Т.С. Катаева и др., 2000). Возраст клещей определяли по цвету кутикулы: у особей старшего возраста она более темная и упругая. Обнаруженных клещей идентифицировали до вида по определителю Б.И. Померанцева (1950).
Сезонную динамику пораженности овец клещами P. ovis изучали в овцеводческих хозяйствах Краснодарского края на основании клинических обследований 1243 овец в разные месяцы года с целью выявления характерных псороптозных поражений. Диагноз подтверждали при исследовании соскобов кожи зараженных овец. При этом определили количество зараженных овец и степень поражения.
Возрастную динамику зараженности овец клещами P. ovis изучали аналогично путем клинического осмотра овец разных возрастных групп, в том числе 417 голов молодняка до 1 года, 426 овец в возрасте 1-3 лет, 435 овец в возрасте 4-7 лет и 423 овец старше 7 лет.
Влияние пола и породы овец на зараженность P. ovis изучали на 1362 и 2308 овцах разного пола и разных пород соответственно.
Зараженность овец клещами P. ovis в разных типах хозяйств определяли аналогично. Всего исследовано 2000 овец, в том числе в СПК 823 головы, фермерских хозяйствах 434 головы, 218 овец из личного подворья граждан Кубани и 525 голов из СПК и личного подворья, выпасавшихся совместно.
Распространение саркоптоза свиней изучали путем клинического осмотра 2042 свиней из разных хозяйств и районов Кубани с целью выявления зараженности клещами S. suis, а также на основании взятия и исследований соскобов кожи с участков тела, в том числе из слухового прохода.
Сезонную динамику зараженности свиней Кубани клещами S. suis изучали на 817 свиньях аналогично ежемесячно исследуя этих же животных. При этом определяли количество и % пораженных свиней и численность популяции клещей на участке тела размером 20x20 см2.
Возрастную динамику зараженности свиней клещами S. suis устанавливали также при клиническом осмотре 1839 голов разных возрастных групп, в том числе 242 поросят в возрасте 1-2 мес, 417 поросят в возрасте 3-5 мес, 382 животных в возрасте 6—12 мес, 423 голов в возрасте 1-2 лет и 375 свиней в возрасте старше 2-х лет.
Влияние пола и породы свиней на зараженность их S. suis изучали на 853 и 2356 свиньях разного пола и разных пород соответственно.
Зараженность свиней S. suis в разных типах хозяйств определяли аналогично. Всего исследовано 1468 свиней, в том числе в СПК 586 голов, фермерско-крестьянских хозяйствах 375 голов, 127 свиней из личного подворья граждан и 380 голов из племенных хозяйств.
Распространение псороптоза кроликов изучали по результатам клинического осмотра и лабораторных исследований соскобов с пораженных участков ушной раковины 642 кроликов из племзверосовхозов, 564 голов из ООО и 283 кроликов индивидуальных хозяйств граждан Краснодарского края.
Сезонную динамику зараженности кроликов клещами Psoroptes cuni-culi устанавливали путем исследований 243 кроликов ежемесячно в течение 2003 г.
Возрастную динамику зараженности кроликов клещами Р. cuniculi изучали при исследовании 187 крольчат до 4-х месячного возраста, 165 кроликов в возрасте 4-6 мес, 148 голов в 7-12 месяцев, 184 кроликов 1-2-летнего возраста и 206 кроликов старше 2-х лет.
Влияние пола и породы кроликов на зараженность Р. cuniculi определяли при исследовании 556 самцов и 687 самок, а кроликов разных пород, в том числе 318 голов породы белый великан, 343 кроликов породы шиншилла, 216 голов породы серебристый, 67 декоративных и 147 помесных кроликов. Для постановки диагноза и дифференциации заболевания нами был применен витальный метод.
Распространение демодекоза собак изучали на основании исследований 207 собак городской популяции и 173 сельских собак на наличие де-модекозных поражений на коже.
Сезонную динамику зараженности собак Demodex canis устанавливали при ежемесячном исследовании 75 собак.
Возрастную динамику зараженности собак D. canis определяли при исследовании собак разных возрастных групп.
Влияние пола, породы и длины волосяного покрова собак на зараженность D. canis изучали на 196 суках и 184 кобелях, а также при исследовании 380 собак разных пород и с разной длиной волосяного покрова.
Изучение влияния типа содержания и назначения собак на зараженность D. canis проводили путем обследования 87 служебных, 68 охотничьих, 50 бойцовых, 76 комнатно-декоративных и 85 бездомных собак.
Распространение отодектоза изучали на основании обследования и обнаружения клещей Otodectes cati у 83 кошек городской популяции и 58 сельских кошек.
Изучение сезонной динамики зараженности кошек О. cati проводили путем ежемесячного исследования ушных раковин 72 кошек.
Возрастную динамику зараженности кошек О. cati изучали при осмотре и исследовании кошек разных возрастных групп.
Влияние пола и породы кошек на зараженность О. cati изучали при исследовании 78 котов и 82 кошек, а также 206 кошек разных пород.
Изучение влияния типа содержания кошек на зараженность О. cati проводили при исследовании 42 комнатных, 27 бездомных и 45 кошек при комнатно-выгульном содержании.
Усовершенствование диагностики демодекоза собак проводили в частной клинике г. Краснодар на 50 собаках разных пород, зараженных D. canis.
Эффективность мустанга при иксодидозах крупного рогатого скота определяли в июле 1997 г. в СПК «Нефтегорский» Краснодарского края на 30 коровах, пораженных клещами, в основном, трех видов: Ixodes ricinus, Boophilus annulatus и Dermacentor marginatus. Животных разделили на 2 группы: одну подопытную (23 гол.) и одну контрольную (7 гол.) группы. Опрыскивание коров проводили из ручного опрыскивателя Орион-6 (Квазар) водной эмульсией мустанга (10%-ная в.э. зета-циперметрина) в 0,006%-ной концентрации из расчета 0,5-1 л жидкости на животное в зависимости от массы тела. До и через 7 сут после обработки исследовали животных обеих групп на наличие клещей, их количество и состояние.
Титрацию терапевтической дозы мустанга при иксодидозах крупного рогатого скота проводили в этом же хозяйстве на 53 коровах, пораженных иксодовыми клещами. Крупный рогатый скот 1, 2 и 3-й подопытных групп по 15 голов в каждой обрабатывали мустангом соответственно в 0,003; 0,006 и 0,009%-ной концентрации из расчета 0,5 л на голову. Эффективность препарата определяли спустя 7 сут после обработки аналогично.
Титрацию терапевтической дозы мустанга при псороптозе овец проводили в ОАО «Удобненское» Краснодарского края в октябре-ноябре 1996 г. на 60 овцах, пораженных псороптозом. Овец 1, 2 и 3-й подопытных групп по 15 голов в каждой обрабатывали методом купания в ваннах с водной эмульсией мустанга соответственно в 0,0007; 0,0015 и 0,003%-ной концентрации. Эффективность препарата определяли путем исследований соскобов с места повреждения кожи до и через 7 сут после купки животных. Эффективность мустанга рассчитывали по типу «контрольный тест».
Испытание мустанга при псороптозе овец с учетом степени пораженное™ проводили в этом же хозяйстве в октябре-ноябре 1996 г. совместно с E.H. Катаевой. При исследовании овцепоголовья нами были отобраны 25 овец с легкой формой течения псороптоза, 27 голов со средней степенью поражения и 17 овец с признаками тяжелой степени псороптоза.
Эффективность 0,0015%-ной в.э. мустанга определяли путем исследований соскобов с мест поражения кожи (на границе со здоровым участком) до и через 7 сут после купки животных. Под лупой определяли количество, стадии развития клещей и их состояние. Учет эффективности проводили по типу «критический тест».
Эффективность мустанга при псороптозе кроликов изучали в плем-зверосовхозе Северинский Краснодарского края в 2005 г. на 54 кроликах,
спонтанно зараженных Р. cuniculi. Кроликов разделили на 3 группы по 18 голов в каждой. Животных 1 и 2-й подопытных групп обработали мустангом соответственно одно- и двукратно в 0,0015%-ной концентрации. Препарат вносили по 2-3 мл в каждую ушную раковину и, сложив ее вдоль пополам, слегка массировали основание. Повторно животных подопытной группы лечили через 7 сут.
Эффективность препарата определяли на основании учета проявления клинических признаков и исследования ушной раковины на наличие клещей Р. cuniculi через 7 сут после первой и спустя 7 сут после второй обработки животных.
Испытание мустанга при саркоптозе свиней проводили на 60 свиньях, спонтанно зараженных S. suis. Свиней 1, 2 и 3-й подопытных групп по 17 голов в каждой обработали путем опрыскивания мустангом соответственно в 0,003; 0,006 и 0,009%-ной концентрации с расходом 0,5 л на животное двукратно с интервалом 7 сут. Эффективность препарата определяли путем учета количества обнаруженных клещей на поверхности тела площадью 20x20 см2 до и через 7 сут после второй обработки свиней.
Эффективность мустанга при отодектозе кошек изучали на 36 кошках, зараженных клещами О. cati в условиях г. Краснодара. Кошек разделили на 2 подопытные и одну контрольную группы по 11-13 голов в каждой. Животных 1 и 2-й подопытных групп обработали мустангом соответственно одно- и двукратно в 0,0015%-ной концентрации с водой. Препарат вносили по 2—3 мл в каждую ушную раковину. Повторно животных подопытной группы обработали через 7 сут.
Эффективность препарата определяли на основании учета проявления клинических признаков и исследования ушной раковины на наличие клещей О. cati через 7 сут после первой и спустя 7 сут после второй обработки кошек.
Влияние мустанга на морфологический и биохимический состав крови кроликов изучали на 2 группах, включающих по 5 клинически здоровых животных. От всех животных до применения препарата брали кровь из ушной вены и определяли количество гемоглобина, эритроцитов, лейкоцитов, выводили лейкограмму и биохимические показатели.
Животных подопытной группы обрабатывали двукратно с интервалом 7 сут 0,0015%-ной водной эмульсией мустанга. Препарат наносили по 2-3 мл в каждую ушную раковину и, сложив ее вдоль пополам, слегка массировали основание. Кроликам контрольной группы наносили на кожу внутренней поверхности ушной раковины 2-3 мл воды. Через 1, 3 и 7 сут у всех животных брали пробы крови и определяли те же показатели, что и до применения препаратов. Все подопытные и контрольные животные находились в отдельных клетках и имели одинаковые условия содержания и кормления.
При изучении клинического статуса у кроликов измеряли температуру тела, частоту пульса в минуту, количество дыхательных движений в минуту, вели наблюдения за поведением и аппетитом животных.
Эффективность бовизана при псороптозе овец учитывали в СХТОО «Апшеронское» Апшеронского района Краснодарского края в октябре-ноябре 1998 г. на 27 овцах с признаками клинического псороптоза. Бови-зан, содержащий 57 % малатиона, испытали в соответствии с «Методическими указаниями по испытанию пестицидов, предназначенных для борьбы с эктопаразитами животных». Овец разделили на 3 группы по 9 голов в каждой. У каждой овцы брали соскобы и подсчитывали количество имаго, нимф, личинок и яиц Р. о\аз в одном поле зрения. Овец 1, 2 и 3-й групп купали в переносной ванне в 0,2; 0,25 и 0,3 % в.э. бовизана. Эффективность препарата учитывали, просматривая под микроскопом соскобы кожи, которые брали через 1,3,7 т 10 сут после обработки.
Испытание бовизана в производственных условиях при псороптозе овец проводили на 956 овцах, из которых при визуальном осмотре у 28 овец обнаружили признаки псороптоза, а у 19 овец были обнаружены клещи Р. охчэ. В проплывной ванне объемом 10 м3 готовили 0,25 % в.э. бовизана, где и искупали 956 нестриженных овец, длина руна которых достигала 16-18 см. Повторно животных купали в растворе бовизана через 7 сут. Эффективность препарата учитывали через 50 сут после 2-й обработки.
Эффективность бовизана против иксодовых клещей изучали на 21 телке, пораженной клещами, в условиях СХТОО «Апшеронское» Краснодарского края. Препарат испытали в 0,25; 0,35 и 0,5 % в.э. при расходе 0,5 и 1,5 л на животное.
Для определения акарицидной эффективности до начала обработки и через 13 сут обследовали телок на наличие иксодовых клещей.
В производственных условиях бовизан испытали на 164 головах крупного рогатого скота.
Оптимальную схему применения мустанга при псороптозе овец разрабатывали на основе учета срока начала повторного обнаружения клещей Р. оу1б у животных после обработки препаратом. Исследования проводили в октябре-декабре 1998 г. в АО «Удобненское» Краснодарского края на 30 овцах, пораженных псороптозом. Овец разделили на 2 группы: подопытную и контрольную по 15 голов в каждой.
Овец подопытной группы обрабатывали в ванне водной эмульсией мустанга в 0,0015%-ной концентрации. Купку овец осуществляли 2 раза с интервалом 7 сут. Овцы контрольной группы обработке не подвергались.
Персистентность акарицидного действия мустанга определяли путем исследований соскобов с мест поражения кожи до и через 7,14,21,28,35 и 42 сут после купки животных. Эффективность мустанга рассчитывали по типу «Контрольный тест».
Оптимальную схему применения мустанга при саркоптозе свиней разрабатывали на 26 свиньях, пораженных саркоптозом.
Персистентность акарицидного действия мустанга при саркоптозе свиней определяли путем учета количества обнаруженных клещей на поверхности тела площадью 20x20 см2 через 7, 14, 21, 28, 35 и 42 сут после второй обработки свиней.
Оптимальную схему применения мустанга при псороптозе кроликов разрабатывали в племзверосовхозе «Северинский» Краснодарского края в 2005 г. на 36 кроликах, зараженных P. cuniculi.
Персистентность действия препарата определяли на основании исследований ушной раковины на наличие клещей P. cuniculi до и через 7, 14,21,28,35 и 42 сут после обработки животных.
Оптимальную схему применения мустанга при отодектозе кошек изучали в условиях г. Краснодар на 24 кошках, зараженных клещами О. са-ti. Эффективность препарата определяли на основании учета проявления клинических признаков и исследований ушной раковины на наличие клещей О. cati до и через 7, 14,21, 28, 35 и 42 сут после второй обработки кошек.
2.2. Результаты исследований 2.2.1. Видовой состав иксодовых клещей крупного рогатого скота в условиях Краснодарского края
Анализ изучения иксодофауны крупного рогатого скота Краснодарского края показал, что на них установлено паразитирование 18 видов клещей семейства Ixodidae, относящихся к 7 родам: Boophilus (В. annulatus), Dermacentor (D. reticulatus, D. marginatus), Haemaphysalis (H. punctata, H. inermis, H. concinna, H. sulcata, H. erinacei и H. parva), Hyalom-ma (H. anatolicum, H. detritum, H. marginatum marginatum, H. scupense), Rhi-picephalus (R. bursa, R. sanquineus, R. turanicus), Ixodes (I. ricinus) и Am-blyomma (A. variegatum).
Количественное распределение видов иксодовых клещей в фауне Краснодарского края крайне неравномерно и значительно отличается в разных природно-климатических зонах. Доминирующее положение по численности и распространению у крупного рогатого скота занимают клещи из рода Boophilus - В. annulatus. Этот вид клещей обнаруживается, в среднем у 21,3 % поголовья крупного рогатого скота с индексом обилия 16,23 экз. и интенсивностью 18,3+1,2 экз./гол.
Многочисленными видами иксодовых клещей являются также I. ricinus (ИО - 4,77 экз.) и Н. scupense (ИО - 4,26 экз.). Эти три вида иксодовых клещей по численности составляют свыше 95% от всей фауны клещей крупного рогатого скота Краснодарского края. К очень редким видам иксодовых клещей для фауны края нами отнесены Н. inermis (ИО - 0,10 экз.), Н. cincinna (ИО - 0,12 экз.), Н. sulcata (ИО - 0,12 экз.), Н. detritum (ИО -0,07 экз.), R. turanicus (ИО - 0,08 экз.) и A. variegatum (ИО - 0,03 экз.).
Впервые в России на территории Краснодарского края нами обнаружен новый вид иксодовых клещей A. variegatum. Нами собрано более двух десятков самок и самцов A. variegatum, находящихся на разных стадиях насыщения. A. variegatum (Fabricium) 1794 - типичный представитель африканской саванны. Обитают они в основном в местах с суммой годовых осадков 500 мм и более.
Первоначально было обнаружено более двух десятков клещей, что, по-видимому, связано с их массовым заносом со скотом (маловероятно) или с птицами нескольких нимф, давших генерацию взрослых особей. В любом случае данная находка свидетельствует о возможности этого вида достаточно долго выживать и питаться в условиях Краснодарского края.
В связи с тем, что A. variegatum впервые на территории РФ обнаружен нами, для диффенциальной диагностики дана морфологическая характеристика этого вида.
Таким образом, на территории Краснодарского края у крупного рогатого скота нами зарегистрировано 18 видов иксодовых клещей, из них по одному виду из родов Boophilus, Ixodes и Amblyomma, двух видов рода Dermacentor, трех видов рода Rhipicephalus и четырех видов рода Hyalom-ma и шести видов рода Haemaphysalis. Наиболее распространенными видами иксодовых клещей являются В. annulatus (ИО - 16,23 экз.), I. ricinus (ИО - 4,77 экз.) и Н. scupense (ИО - 4,26 экз.), численность популяции которых составляет более 95 % от общего количества иксодид, обнаруженных на крупном рогатом скоте.
Впервые в России на территории Краснодарского края зарегистрирован вид иксодовых клещей A. variegatum и представлена его морфологическая характеристика.
2.2.2. Места обитания иксодовых клещей па теле крупного рогатого скота
Результаты изучения излюбленных мест обитания основных видов иксодовых клещей на теле крупного рогатого скота проведены в степной и предгорной зонах Краснодарского края.
В степной зоне нами у 88 коров собрано 1645 экз. клещей, из них 3,34 % обнаружены в области головы (основание ушей, подчелюстная ямка, щеки), 8,13 % на шее, подгрудке и плечах, 3,02 % на боках, брюхе и бедрах, 81,4 % на внутренних поверхностях задних ног у вымени и на нем и 4,76 % на хвосте и околоанальной складке.
В предгорье (Мостовской район) с 5 июля по 10 сентября 1994 г. с 78 коров собрано 1768 иксодовых клещей. Из них на голове обнаружено 1,17 % клещей, на шее, подгрудке и плечах 8,28 %, на боках, брюхе и бедрах 2,86 %, на внутренних поверхностях задних ног и вымени 83,4 %, а на хвосте 4,29 %.
Как следует из результатов, клещи на теле коров распределяются как на равнине, так и в предгорье примерно одинаково. Это объясняется тем, что в обеих ландшафтных зонах доминировали одни и те же виды клещей - В. annulatus, I. ricinus и D. marginatus.
Обращаем внимание, что личинки и нимфы клещей родов Hyalomma и Rhipicephalus прикрепляются на передней части тела - от головы до плеч, а также на хвосте и у основания его, а половозрелые особи в области паха, вымени, мошонки и внутренних поверхностях конечностей; клещи рода Ixodes - области шеи, подгрудка, вымени и паха; вид D. reticulatus - в передней части тела, а В. annulatus - на шее, подгрудке и нижней поверхности задней части тела.
Из приведенных материалов следует, что на территории бывшего СССР иксодовые клещи пяти родов: Ixodes, Dermacentor, Boophilus, Rhipicephalus, Hyalomma прикрепляются во всех частях тела крупного рогатого скота; излюбленным местом их обитания являются вымя и пах. Следовательно, для выявления скота, пораженного клещами, обследование надо начинать с этой части тела животных и обрабатывать эти места особенно тщательно.
2.2.3. Развитие Boophilus annulatus Say, 1821 с учетом хризалидной стадии в условиях Краснодарского края
Первые личинки В. annulatus на коровах были обнаружены 18 апреля. Располагались они группами по 5-15 особей. В последующие Дни аналогичные скопления личинок отмечены на внутренней поверхности бедер на уровне вымени, затем на подгрудке и в других местах.
Личинки, собранные в течение 7-12 сут после присасывания, были активны, а собранные в последующие 3-6 сут и часть ранее собранных напитавшихся личинок были неподвижны, не реагировали на прикосновение холодной и подогретой иглой. На 3-6 сут после снятия первых пассивных личинок в течение 4-8 сут из них вылуплялись нимфы. В это же время отмечено появление нимф на животных; через 3-5 сут на них не было личинок.
Из приведенного следует, что цикл развития В. annulatus на скоте длится 31-36 сут. При этом, у преимагинальных особей отмечено по две стадии - активная и пассивная, или хризалидная.
Личинки в активной стадии пребывают 8-12 сут, в хризалидной 3-6. Появляющиеся из них нимфы питаются 8-15 сут, в хризалидной стадии пребывают 3-6 сут. Вылупляющиеся из них имаго сосут кровь 6-11 сут, напитавшись, покидают хозяина.
Результаты испытания акарицида мустанга против активной и хризалидной стадии В. annulatus показали, что среди активных нимф гибель отмечена во всех концентрациях; в минимальной концентрации погибло 3,3
% нимф, в 0,00001 % - 96,6 %, в более высоких концентрациях погибли все нимфы.
Среди хризалидных нимф гибель отмечена только в 2-х максимальных концентрациях - 0,000025 % в.э. погибло 43,3 %, а в 0,00005 % все нимфы.
Изучение развития однохозяинного клеща Boophilus annulatus в динамике с момента присасывания личинок до отпадения напитавшейся самки показало, что преимагинальные особи имеют две стадии развития - активную и пассивную и активная стадия длится у личинок 8-12 сут, у нимф 8-15, а хризалидная стадия продолжается от 3 до 6 сут. Особи, находящиеся в хризалидной стадии, не подвергаются действию акарицида и при этом погибают лишь особи, контактировавшие с поверхностью экзувия, покрытого дозой препарата, в 2-5 раз превышающей таковую для активных стадий.
Из приведенного следует, что обрабатывать животных надо в первые 2-3 сут после прикрепления личинок В. annulatus. Во-первых, это предупредит передачу возбудителя бабезиоза, во-вторых, личинки еще не войдут в стадию хризалиды.
Результаты наших опытов согласуются с наблюдениями предыдущих исследователей и указывают на то, что иксодовые клещи в своем развитии имеют хризалидную стадию.
Таким образом, изучая развитие клеща В. annulatus установлено, что личинки и нимфы проходят хризалидную стадию (стадию покоя). В это время происходит формирование следующей стадии развития клеща и организм его недоступен действию акарицида.
Мустанг оказался эффективным против хризалидной стадии В. annulatus только в высокой концентрации.
2.2.4. Распространение иксодидозов крупного рогатого скота в разных зонах Краснодарского края
Пораженность крупного рогатого скота иксодовыми клещами в разных зонах Краснодарского края значительно отличалась. При исследовании 2065 голов крупного рогатого скота иксодовые клещи обнаружены нами у 599 голов, что составляет 29,0 %, в среднем по краю. Максимальная зараженность крупного рогатого скота иксодовыми клещами отмечена в пойменной (ЭИ - 34,85 %), лесо-степной (ЭИ - 33,78 %) и прибрежной (ЭИ-33,7%) зонах.
В степной зоне пораженность крупного рогатого скота иксодидами составила, в среднем 19,53 % при обнаружении 6,4+0,62 экз. на теле одного животного. Индекс обилия составил 1,25 экз. В этой зоне доминирующим видом был I. ricinus. Многочисленными были также D. marginatus, R. bursa и Н. punctata. Остальные виды встречались реже.
В лесо-степной зоне 33,78 % поголовья крупного рогатого скота оказалось зараженной нксодовыми клещами при индексе обилия 3,93 экз. в среднем и обнаружении 11,63+0,95 экз. у одного животного. В большей степени крупный рогатый скот в этой зоне был заражен I. ricinus, D. margi-natus, Н. marginatum и Н. punctata.
В предгорной зоне зараженность крупного рогатого скота нксодовыми клещами составила, в среднем, 29,06 % при обнаружении у одного животного 8,24+0,73 экз. Индекс обилия клещей был равен 2,4 экз. Широко распространены в этой зоне В. annulatus, I. ricinus, D. marginatus. Остальные виды встречались реже и в небольшом количестве.
Горная зона характеризуется наименьшей зараженностью животных иксодовыми клещами. Средняя зараженность крупного рогатого скота нксодовыми клещами составила 21,5 %, а плотность популяции клещей 5,86+0,64 экз. на одном животном при индексе обилия равном 1,26 экз. В этой зоне индекс обилия был максимальным у I. ricinus, В. annulatus, R. bursa и R. sanquineus.
В пойменной зоне из 373 исследованных голов иксодовых клещей обнаружили у 34,85 %. В этой зоне индекс обилия клещей был максимальным (4,29 экз.) У одного животного обнаруживали, в среднем 12,32+0,12 экз. клещей. Доминировали в этой зоне клещи видов В. annulatus, D. marginatus, I. ricinus. Остальные виды иксодовых клещей встречались реже.
В причерноморской зоне 33,7 % крупного рогатого скота, в среднем были заражены иксодидами при индексе обилия, равным 3,65 экз. у одного животного обнаруживали, в среднем, 10,84+0,83 экз. клещей. В этой зоне обнаружили 14 видов клещей, из них доминирующими были В. annulatus, R. bursa, R. sanquineus, I. ricinus.
Таким образом, иксодовые клещи на крупном рогатом скоте встречаются в разных зонах у 19,5-34,8 % поголовья при интенсивности от 5,86+0,64 до 12,32+0,92 экз. и индексе обилия от 1,25 до 4,29 экз. Максимальная пораженность крупного рогатого скота иксодидами установлена в пойменной и причерноморской зонах.
2.2.5. Численность иксодовых клещей на крупном рогатом скоте разного возраста
При изучении возрастной динамики зараженности крупного рогатого скота иксодидами установлено, что животные всех возрастных групп поражены иксодовыми клещами. Зараженность крупного рогатого скота разного возраста значительно отличалась. Следует отметить, что молодняк был заражен в большей степени, чем коровы. Экстенсивность заражения составила, в среднем у крупного рогатого скота в возрасте до 1 года 29,95 %, 1-3 лет 41,14, 4-6 лет 26,02 и старше 6 лет 20,26 % при плотности популяции клещей у одного животного соответственно 8,76+0,72; 12,63+1,04;
9,12+0,76 и 5,33+0,51 экз./гол. Индекс обилия составил у животных до года 2,12 экз., 1-3 лет 5,19,4-6 лет 2,37 и старше 6 лет 1,08 экз.
Таким образом, максимальная пораженность иксодовыми клещами установлена у крупного рогатого скота в возрасте 1-3 лет. Отмечено, что с возрастом животных пораженность их иксодидами снижается, что по-видимому, обусловлено возрастной устойчивостью животных и утолщением кожи у животных старшего возраста, что снижает возможность их питания.
2.2.6. Сезонная динамика зараженности крупного рогатого скота иксодовыми клещами
По результатам ежемесячных осмотров 126-147 голов крупного рогатого скота установлено, что животные были поражены иксодовыми клещами в течение всего года. Экстенсивность заражения колебалась от 4,61 до 68,07 %. Отмечено постепенное повышение пораженности крупного рогатого скота в весенний период. Максимальная пораженность животных иксодидами была в мае и достигала 65,07 % при обнаружении в среднем у одного животного 18,4+1,33 экз. клещей. Индекс обилия клещей в мае составил 11,97 экз. Высокая численность популяции иксодид на крупном рогатом скоте обусловлена массовым нападением имаго на животных в связи с наступлением благоприятных условий. В июле-августе с наступлением жаркой погоды численность клещей на крупном рогатом скоте снижалась, а начиная с августа снова повышалась до октября, достигая 48,5%-ной пораженности в октябре. В последующие месяцы пораженность животных существенно снижалась, оставаясь на низком уровне в зимний период.
2.2.7. Влияние пола и породы на численность нксодовых клещей у крупного рогатого скота
При анализе полученных результатов исследований 523 коров и 116 быков на наличие иксодовых клещей не установлено существенной разницы в показателях пораженности иксодидами, интенсивности заражения и индексе обилия.
Пораженность коров составила 30,21, а быков 27,58 % при обнаружении соответственно 9,42+0,80 и 8,90+0,72 экз. клещей у одной головы. Индекс обилия клещей у быков был равен 2,45, а у коров 2,84 экз.
Результаты исследований крупного рогатого скота разных пород свидетельствуют о незначительных колебаниях в пораженности крупного рогатого скота разных пород иксодидами (Р>0,05). Зараженность крупного рогатого скота голыптинской породы составила 32,92 %, черно-пестрой 31,34 и помесной 27,59 %. В меньшей степени был поражен крупный рогатый скот красной степной породы (26,85 %).
2.2.8. Зараженность крупного рогатого скота иксодовыми клсщамн при разной технологии содержания
В максимальной степени были поражены иксодидами коровы при пастбищно-лагерном содержании. Экстенсивность поражения составила 29,39 % при интенсивности 10,16+0,86 экз./гол. и индексе обилия 2,98 экз. Несколько ниже оказалась пораженность иксодовыми клещами крупного рогатого скота при пастбищно-стойловом содержании. При этом экстенсивность поражения составила 28,0 %, ИИ равна 9,12+0,83 экз./гол. и индекс обилия 2,55 экз. Разница в пораженности крупного рогатого скота при пастбищно-лагерном и пастбищно-стойловом содержании была несущественной (Р>0,05).
Крупный рогатый скот, находящийся в течение всего года на стойловом содержании, был практически свободен от иксодовых клещей, за исключением обнаружения единичных экземпляров клещей у 1,65 % поголовья. У этих животных интенсивность клещей составила 1,42+0,10 экз./гол. при индексе обилия 0,02 экз. Показатели пораженности крупного рогатого скота при стойловом содержании были значительно ниже (Р<0,05), и тем самым этот метод содержания животных можно рекомендовать в качестве метода профилактики иксодидозов животных.
2.2.9. Возрастная структура иксодовых клещей на крупном рогатом скоте в разные сезоны года
Нами установлена существенная разница в возрастном составе иксодовых клещей (без учета Н1. БсирепБе) в сборах с крупного рогатого скота в разное время года. В период с января по март на крупном рогатом скоте обнаруживали только имагинальных иксодовых клещей в незначительном количестве у 2,2-6,1 % поголовья. С наступлением весны пораженность крупного рогатого скота иксодидами (имаго) повышалась и составила в апреле 28,68 и мае 65,07 %. Пораженность крупного рогатого скота взрослыми клещами составила в июне 43,75 %. В жаркий период: июль-август пораженность животных снижалась до 23,01 %, а в сентябре и, особенно, октябре отмечали повторное повышение пораженности до 48,48 %. С ноября наблюдали снижение пораженности до 19,68, а в декабре до 4,61 %.
Максимальную численность личинок иксодовых клещей на крупном рогатом скоте установили в мае-июне и октябре. Единичные экземпляры личинок начали обнаруживать на животных в апреле. В период с декабря до апреля личинок иксодид на животных не находили.
Нимфы иксодовых клещей паразитировали на крупном рогатом скоте в период с мая по декабрь с пиком численности в июне-июле и октябре-ноябре.
Следует отметить, что возрастная структура иксодид на крупном рогатом скоте в разные сезоны года значительно отличалась. В январе-марте
100 % популяции клещей на животных составляли имаго, которые были в течение года. В апреле начали обнаруживать личинок клещей, которые составляли 13,52 % от всего сбора. В мае соотношение имаго, личинок и нимф на крупном рогатом скоте составило соответственно 48,81, 44,56 и 6,63 %. В последующие месяцы доля имаго снижалась, а количество личинок и нимф повышалось и составило в июне 40,10; 32,82 и 27,08 % и июле 24,36; 17,45 и 58.18 % соответственно. В ноябре-декабре преобладали нимфы (57,22 и 55,56%).
2.3. Эпизоотология псороптоза овец Кубани 2.3.1. Распространение псороптоза овец в разных зонах Кубани
По результатам клинических осмотров, проведенных нами, псороп-тоз овец установлен во всех природно-климатических зонах Кубани. Зараженность овец клешами Р. оу1Б колебалась в регионе от 10,1 до 21,5 %, а в среднем составила 16,06 %. В максимальной степени овцы были заражены Р. оVIб в увлажненных районах, в том числе в пойменной (21,52%-ная по-раженность), прибрежной (19,81 %) и лесо-степной (19,02 %) зонах. При проведении микроскопии соскоб кожи пораженных овец выявлены клещи Р. оу1З.
У зараженных овец отмечали зуд, очаги «зачесов» и бесшерстных участков кожи.
2.3.2. Сезонная динамика пораженности овец клещами Рвоп^еэ оу^
Результаты ежемесячных клинических и лабораторных исследований 1243 овец показали, что животные в течение всего года заражены клещами Р. оу18. Зараженность овец в течение года колебалась от 0,8 % в июле до 27,6 % в январе. Средняя зараженность была равной 15,5 %. Максимальная зараженность овец отмечена в зимний период и составила 27,6 %. В это время обнаруживали явные клинические признаки псороптоза, а именно почесывание, зуд, бесшерстные участки кожи. Широкое распространение псороптоза овец зимой обусловлено скученным содержанием, высокой влажностью помещений и ослабленностью организма животных.
Весной после стрижки овец и особенно летом вследствие инсоляции зараженность животных значительно снижается, достигая минимальных показателей.
2.3.3. Возрастная динамика зараженности овец клещами Р. оук
По результатам исследований 1701 овцы разных возрастных групп из хозяйств Краснодарского края 266 голов оказались зараженными Р. оу1з. Зараженность овец составила в возрасте до года 19,42 %, 1-3 лет 21,26,4—7
лет 12,41 и в возрасте старше 7 лет 9,69 %, а в среднем 15,64 %. Таким образом, нами установлено, что максимальная зараженность овец клещами Р. ovis отмечена в возрасте до 3 лет.
2.3.4. Влияние пола и породы овец на зараженность клещами Р. ovis
При анализе полученных результатов исследований 1107 овцематок и 255 баранов разного возраста не установлено существенной разницы в показателях зараженности клещами Р. ovis. У овцематок зараженность, в среднем составила 15,53, а баранов 16,86 %.
Изучение и анализ результатов исследований овец разных пород свидетельствуют о колебаниях в зараженности овец разных пород клещами Р. ovis. Зараженность овец породы ставропольский меринос составила 19,10, цигайских овец 16,74 %.
В меньшей степени были заражены местные помесные и романовские грубошерстные овцы.
2.3.5. Зараженность овец клещами Р. ovis в разных типах хозяйств
При клиническом осмотре 2000 овец, в том числе 823 голов, принадлежащих СПК, 434 голов фермерским хозяйствам, 218 овец из личного подворья граждан села и 525 овец СПК и личного подворья, выпасавшихся совместно, установлена незначительная разница в зараженности их клещами Р. ovis. В максимальной степени были поражены клещами Р. ovis овцы, принадлежащие СПК, зараженность их составила 17,37 %. В меньшей степени оказались пораженными Р. ovis овцы личного подворья граждан, что, вероятно, обусловлено хорошими условиями содержания, меньшей скученностью и более своевременным уходом. Овцы фермерских хозяйств и овцы СПК и личного подворья были заражены практически в равной степени.
2.4. Эпизоотология сарко1Гтоза свиней Кубани 2.4.1. Распространение саркоптоза свиней
По результатам исследований саркоптоз свиней нами установлен во всех районах Краснодарского края, где проводились исследования. Зараженность свиней колебалась от 13,9 до 25,9 %. В среднем, пораженность свиней клещами S. suis составила 19,96 %. Наибольшую пораженность свиней саркоптозом отмечали в Брюховецком, Динском, Тимошевском районах, где более 23 % поголовья свиней было заражено клещами S. suis. С возрастом свиней (5-6 мес) поражения распространяются на спину, боковые поверхности туловища. Вокруг мелких зудящих узелков скаплива-
ются отрубевидные чешуйки, выпадает щетина, образуются серо-белые корки. При ушной форме процесс локализуется в ушной раковине.
2.4.2. Сезонная динамика зараженности свиней Кубани клещами S. suis
Результаты исследований свиней показали, что саркоптоз регистрируется во все сезоны года. Однако пораженность свиней колеблется от 3,9 до 30,7 % (Р<0,05). Средняя зараженность свиней оказалась равной 15,7 %. Пик поражения свиней саркоптозом отмечали в зимний период (30,76 % в феврале), что, по-видимому, связано с условиями, благоприятными для их развития. Весной зараженность животных клещами S. suis и степень сар-коптозных поражений снижались до 13,81 % в мае, а летом зараженность была минимальной и составила 3,96 % в июле, что, на наш взгляд, связано с инсоляцией.
2.4.3. Возрастная динамика зараженности свиней клещами S. suis
При исследовании 1839 свиней разных возрастных групп из хозяйств Краснодарского края 293 головы оказались зараженными клещами S. suis.
Поражения саркоптозом отмечали у поросят после 30-суточного возраста. Зараженность поросят в возрасте 1-2 мес составила 9,09 %, поросят 3-4-месячного возраста 20,62, а 5-7-месячного возраста в среднем 23,04 %. В последующем, с возрастом свиней зараженность снижалась и составила у свиней в возрасте 8-12 мес 14,18, а у свиней старше года 10,93 %. Как правило, у свиней старше года заболевание переходит в хроническую форму. Клещей у этих животных обнаруживали на отдельных участках головы, шеи и спины.
2.4.4. Влияние пола и породы свиней на зараженность их S. suis
При анализе полученных результатов исследований 637 свиноматок и 216 хряков не установлено существенной разницы в показателях зараженности клещами S. suis. У свиноматок зараженность составила, в среднем, 17,89, а хряков 16,20 % (Р>0,05).
Изучение и анализ результатов исследований свиней разных пород свидетельствуют о колебаниях в зараженности свиней разных пород клещами S. suis. Зараженность свиней породы ландрас, дюрок и йоркшир практически не отличалась (Р>0,05) и составила соответственно 17,97; 18,98 и 18,0 %. В меньшей степени были заражены свиньи крупной белой породы и помесные свиньи.
2.4.5. Зараженность свиней S. suis в разных типах хозяйств
При клиническом осмотре 1468 свиней, в том числе 586 голов, принадлежащих СПК, 375 голов - фермерско-крестьянским хозяйствам, 380 голов - племенным хозяйствам и 127 свиней частного подворья установлена значительная разница (Р<0,05) в зараженности их клещами S. suis. В максимальной степени были поражены клещами S. suis свиньи, принадлежащие СПК, где зараженность свиней составила 19,96 %. В меньшей степени были поражены клещами S. suis свиньи в племенных хозяйствах, что, вероятно, обусловлено хорошими условиями содержания, меньшей скученностью и более своевременным уходом. Свиньи фермерско-крестьянских хозяйств и личного подворья граждан были заражены клещами практически в равной степени.
2.5. Эпизоотология псороптоза кроликов в условиях Кубани 2.5.1. Распространение псороптоза кроликов
Псороптоз кроликов нами установлен в различных типах хозяйств, включая специализированные кроликофермы, многоотраслевые животноводческие хозяйства и индивидуальные кроликофермы, где заболевание зарегистрировано соответственно у 41,90; 40,07 и 48,41 % поголовья кроликов.
Таким образом, при исследовании 1489 кроликов псороптоз зарегистрирован в различных типах хозяйств с поражением, в среднем, 42,44 %. Максимальная пораженность кроликов псороптозом установлена в индивидуальных зверофермах.
2.5.2. Сезонная динамика зараженности кроликов клещами Psoroptes cuniculi
Как показали результаты клинических и лабораторных исследований кроликов в разные месяцы года псороптоз отмечается в разные месяцы со значительными колебаниями в разные сезоны года. Максимальная зараженность кроликов Р. cuniculi установлена в зимние месяцы и составила в январе 73,6 %, феврале 64,8 и декабре 60,8 %. Весной и осенью заболеваемость кроликов псороптозом снижалась до 38,7-30,5 %. В летние месяцы вследствие инсоляции и высокой температуры зараженность кроликов снижалась до минимума и достигла в июле 19,7 и августе 17,7 % (Р<0,05). Следует отметить, что в зимние месяцы заболевание проявлялось, в основном, в средней и тяжелой форме.
2.5.3. Возрастная динамика зараженности кроликов клещами
Р. сишсиИ
Исследованиями 890 кроликов разных возрастных групп установлено, что животные разного возраста заражены Р. сипгсиН практически в равной степени. Не отмечено существенной разницы в пораженности взрослых и молодых кроликов (Р>0,05), за исключением крольчат до 4-месячного возраста. По форме проявления заболевание у молодняка проявлялось, в основном, в легкой форме и у некоторых животных в средней форме, а у взрослых кроликов псороптоз протекал в средней и тяжелой форме.
2.5.4. Влияние пола и породы кроликов на зараженность Р. сишсиИ
Полученные результаты исследований 556 самцов и 687 крольчих показали незначительную разницу в зараженности их Р. сигнсиП. У самцов зараженность составила, в среднем, 42,26, а крольчих 41,19 % (Р>0,05).
Таким образом, пол кроликов не оказывает существенного влияния на зараженность их клещами Р. сигпсиН. Самцы и самки кроликов были практически в равной степени поражены псороптозом.
Результаты исследований 1245 кроликов разных пород свидетельствуют о незначительных колебаниях в пораженности кроликов разных пород псороптозом (Р>0,05).
Зараженность клещами Р. сишсиИ составила у кроликов породы белый великан 40,88 %, шиншилла 41,98, серебристый 42,13, калифорнийская 40,26, декоративных 43,28 и помесных 39,45 %.
2.6. Эпизоотология демодекоза собак в Краснодарском крае 2.6.1. Распространение демодекоза собак
При исследовании 207 собак городской популяции и 173 сельских собак установлена соответственно 10,1 и 6,9%-ная зараженность клещами Б. сашБ. Пораженность собак городской популяции оказалась на 31,66 % выше зараженности сельских собак, что, на наш взгляд, объясняется большой плотностью популяции животных в городе и более частым контактом их в городских условиях, а также наличием большого числа бродячих собак в городе.
У городских собак отмечали различные формы течения демодекоза. Пустулезную форму наблюдали у 46,8 %, сквамозную у 37,8 и генерализованную у 15,4 % зараженных собак. Причем у 84,6 % собак поражения были очаговыми и чаще всего в области головы и конечностей. Таким образом, демодекоз собак распространен на Кубани как в городской так в сельской личности.
2.6.2. Сезонная динамика зараженности собак Оетос!ех сагш
По результатам исследований собак демодекоз зарегистрирован нами во все сезоны года. Однако зараженность собак в разные сезоны года значительно отличается. Максимальную зараженность собак Б. сашя наблюдали в зимне-весенний период. Так, экстенсивность заражения собак в январе и феврале составила 14,6 %, марте 16,2, апреле 13,5 %. В последующие месяцы зараженность животных была ниже, а летом снижалась до 5,5 %. В осенние месяцы зараженность собак постепенно повышалась и достигала 11,43 % в ноябре.
Таким образом, собаки во все сезоны года поражены клещами Б. са-шб. Пик зараженности собак отмечается в зимне-весенний период (16,2 %), а летом пораженность животных снижается до 5,5 %.
2.6.3. Возрастная динамика зараженности собак О. сагш
При исследовании 374 собак разных возрастных групп 30 голов оказались пораженными демодекозом.
Поражения демодекозом отмечали у щенков после 2-месячного возраста. Зараженность щенков в возрасте 2-4 мес составила 8,77, 5-6 мес 10,0 %. Максимальная зараженность собак О. саше отмечена в возрасте 712 мес и составила 12,9 %. В последующем, с возрастом собак пораженность их О. сашэ снижалась и составила у собак в возрасте 1-2 года 10,34 %, 3-6 лет 6,25 и 7 лет и старше 2,17 %. По нашему мнению наибольшая зараженность молодых собак обусловлена снижением резистентности организма и тонуса кожи.
Таким образом, демодекозные поражения кожи отмечаются у собак разного возраста, начиная с 2 мес. Максимальная зараженность собак де-модекозными поражениями установлена в возрасте 7-12 мес.
2.6.4. Влияние пола, породы и длины волосяного покрова собак на зараженность Б. саше
При анализе полученных результатов исследований 196 сук и 184 кобелей не установлено существенной разницы в пораженное™ их демодекозом. У сук зараженность составила, в среднем, 7,65, а кобелей 8,69 %.
Таким образом, пол собак не оказывает существенного влияния на зараженность их клещами Б. сашБ.
Результаты исследований собак разных пород свидетельствуют о колебаниях в пораженное™ собак разных пород демодекозом.
Зараженность клещами О. сашэ составила у собак породы немецкий дог 12,55 %, ротвейлер 11,11, боксер 11,54, мастино 10,52 %. В меньшей степени были поражены демодекозом собаки породы немецкая овчарка, канне-корсо, дратхар, пикинес (5,0-5,5 %), шарпей (4,34 %).
На пораженность собак демодекозом большое влияние оказала длина волосяного покрова. Так, у собак короткошерстных пород (ротвейлер, боксер, мастино) зараженность клещами Э. сагш оказалась почти в 2 раза выше, чем у собак длинношерстных пород (немецкая овчарка, шарпей, пудель).
Следовательно, порода собак и особенно длина волосяного покрова оказывают существенное влияние на пораженность их демодекозом. Максимальная зараженность установлена у собак короткошерстных пород.
2.6.5. Влияние содержания и назначения собак на зараженность
Б. сашэ
При исследовании 366 собак, в том числе 87 служебных, 68 охотничьих, 50 бойцовых, 76 комнатно-декоративных и 85 бездомных установлена значительная разница (Р<0,05) в пораженности их демодекозом.
В наибольшей степени были поражены клещами Б. сагш бездомные собаки (14,12 %) и собаки бойцовых пород (12,0 %). Служебные и комнат-но-декоративные собаки были менее заражены Б. саше, что по-нашему мнению, связано с меньшим их контактом, а также наличием более длинного волосяного покрова. Высокая пораженность бездомных собак обусловлена отсутствием лечебных мер, что способствует быстрому распространению заболевания.
Таким образом, установлена зараженность клещами В. сап ¡б собак при разном типе содержания и назначения. Максимальная пораженность демодекозом установлена у бездомных собак и собак бойцовых пород.
2.7. Эпизоотология отодектоза кошек в Краснодарском крае 2.7.1. Распространение отодектоза кошек
Исследования 141 кошки, в том числе 83 кошек городской популяции и 58 кошек из сельской местности, показали несущественную разницу в зараженности кошек городской и сельской популяций. Отодектозом было поражено 18,07 и 17,24 % поголовья кошек соответственно городской и сельской популяций.
Таким образом, отодектоз кошек распространен в Краснодарском крае, как в городской так и в сельской местности с поражением соответственно 18,07 и 17,24% поголовья.
2.7.2. Сезонная динамика зараженности кошек СИо(1ейе8 саН
Результаты изучения сезонной динамики зараженности кошек О. сап свидетельствуют о пораженности кошек отодектозом в разные сезоны года. В течение года отмечены колебания в зараженности кошек О. сай. Максимальная зараженность кошек клещами О. сай установлена в весенний
(апрель-май) и осенний (сентябрь-октябрь) периоды, когда соответственно 19,72—22,53 и 17,65-19,12 % животных были поражены клещами О. саИ. Зимой зараженность кошек снижалась до 10,6-13,8 % (Р<0,05).
Таким образом, отодектоз кошек встречается в течение года с колебаниями от 10,6 в декабре до 22,5 % в мае.
2.7.3. Возрастная динамика зараженности кошек О. саИ
По результатам исследований 300 кошек разных возрастных групп 42 были зараженными О. сай. Установлена различная степень пораженно-сти отодектозом кошек разного возраста. Зараженность котят в возрасте до 2 мес была минимальной и составила 4-87 %. С возрастом кошек зараженность их О. саи повышалась и составила у молодняка 2—4 мес 9,30, 5-6 мес 15,79 %. Максимальная степень зараженности кошек О. саи отмечена в возрасте 7-12 мес (20,0 %) и 1-2 года (18,0 %). Заражение щенков, по-видимому, происходит при контакте с зараженными кормящими кошками.
Таким образом, кошки разных возрастных групп заражены клещами О. саи. Наибольшая пораженность отодектозом отмечена у кошек в возрасте 0,5-2-х лет.
2.7.4. Влияние пола и типа содержания кошек на зараженность О. саи
При исследовании 82 кошек и 78 котов не установлено значительной разницы в пораженности их отодектозом. Зараженность клещами О. са11 составила котов 17,95, кошек 17,07 %. Следовательно, пол животных не оказывай существенного влияния на зараженность их клещами О. саи.
Результаты исследований кошек разных пород свидетельствуют о колебаниях в пораженности кошек разных пород отодектозом.
Пораженность отодектозом составила у кошек породы Майн Кун 20,0 %, Турецкая ванн 17,65, персидская 17,14, сиамская 18,75, барманская 16,66 %. 15,47 % беспородных кошек были заражены О. сай.
Таким образом, порода не оказывает существенного влияния на зараженность кошек О. саи.
При анализе зараженности бездомных, комнатных кошек и кошек, содержащихся в домах с выгулом на улице установлена значительная разница в зараженности клещами О. саи.
Комнатные кошки были практически свободными от О. саи, за исключением одной кошки у которой обнаружили слабую зараженность клещами.
Наибольшую зараженность клещами О. саи отмечали у бездомных кошек (22,22 %). При содержании кошек в домах с выгулами на улице пораженность составила 15,55 %.
Таким образом, изолированное содержание кошек в комнате практически препятствует заражению их О. сай. Максимальная пораженность отодектозом установлена у бездомных кошек (22,22 %).
2.8. Усовершенствование метода диагностики демодекоза собак
В настоящее время существует несколько методов лабораторной диагностики демодекоза у собак, которые направлены на глубокое взятие со-скоба кожи при помощи скальпеля, при этом для получения волосяных фолликулов и содержимого сальных желез соскабливается верхний слой эпидермиса (СБ. Старченков, 1999). Эта болезненная процедура может привести к осложнениям, внедрению секундарной инфекции. Нами предложен щадящий метод, отличающийся отсутствием побочных явлений после лабораторной диагностики. Способ взятия проб у собак при помощи кровоостанавливающего зажима повышает эффективность лабораторной диагностики, так как уменьшается травматизация собаки, за счет осторожного вытягивания волоса с фолликулом, время взятия соответственно уменьшается. Упрощается фиксация животного. Затраты времени на проведение исследования незначительные, благодаря очищенному керосину, при добавлении которого, происходит размягчение и просветление соско-ба. К тому же соскоб на предметном стекле не засыхает в течение 10 мин, клещи Б. сагш не погибают и отчетливо видны. В случае необходимости можно добавить еще раз каплю керосина в тот же соскоб и еще раз микро-скопировать. Во время проведения диагностики при помощи скальпеля велика вероятность самотравматизации животного, так как животное, испытывая боль, ведет себя неспокойно. Соскоб берут глубокий до появления крови, время взятия увеличивается, к тому же соскоб на предметном стекле смешанный с лимфой и кровью, очень быстро засыхает (4 мин). После проведения исследования при помощи скальпеля след на коже от соскоба может стать воротами инфекции и повлечь за собой осложнения с бактериальным воспалительным процессом. Это требует дополнительных затрат времени и медикаментов на санацию кожного покрова.
Новый метод диагностики подходит для взятия соскобов с трудно доступных мест, а именно с надбровных дуг. При демодекозе клещей можно обнаружить при микроскопическом исследовании секрета глаз, ушей и препуция. Это позволяет выявить заболевание на ранних стадиях, до появления обширных очагов поражения, что может позволить сократить длительность заболевания и ускорить лечение. Возможно также развитие воспаления кожи в межпальцевых щелях с образованием болезненных гиперемированных желваков. Такая форма создает серьезные трудности для традиционного способа диагностики ввиду высокой болезненности. Новый метод позволяет выявить заболевание после извлечения нескольких луковиц, это не требует жесткой фиксации животного.
Пододерматит, вызванный демодекозным клещом, может изначально проявляться в виде эритемы или локальной аллопеции в межпальцевых пространствах, но быстро осложняющейся бактериальной флорой по типу фурункулеза, проявляющееся в виде целлюлита, что осложняет клиническую картину (очень быстро проходящие пустулы, свищи, узлы, гиперпигментация). С данным процессом иногда может ассоциироваться болезненность, отек, в частности, мешающий и провоцирующий хромоту. К тому же следует помнить, что при генерализованном демодекозе животное проявляет себя особо беспокойно вследствие зуда, понижения иммунной системы. Дополнительные болезненные операции, связанные с взятием соско-ба и дальнейшее заживление ран после взятия, могут принести дополнительные осложнения как собаке, так и владельцу.
Поэтому, становится актуальным вопрос меньшей травматизации кожного покрова животных, а для этого необходимо правильное взятие со-скоба - безболезненное. К тому же мы привыкли брать соскоб скальпелем, вызывая мацерацию кожи, не задумываясь над тем, зачем нам снимать верхний слой эпидермиса, если клещ размножается в волосяном фолликуле и сальных железах. При взятии глубоких соскобов брюшистым скальпелем с свежепораженного участка или старого, но на границе со здоровым участком кожи с сукровицей данный участок кожи заживает очень длительное время, а иногда может осложняться вторичной инфекцией (Е. Бсн-зиор, Д.Н. Карютти, 2000). Болезненность при новом способе взятия со-скоба практически отсутствует, волос свободно вытягивается т.к. при демодекозе волос выпадает сам вследствие размножения клещей рода D. са-nis в волосяных фолликулах и сальных железах (Ф.И. Василевич, C.B. Ларионов, 2001; Т.С. Катаева, М.А. Костылева, 2008).
Таким образом, новый способ диагностики уменьшает травматиза-цию животного, повышает эффективность лабораторной диагностики за счет осторожного вытягивания волоса из волосяного фолликула и исключает осложнение вторичной инфекцией.
2.9. Усовершенствование терапии арахнозов животных 2.9.1. Эффективность мустанга при иксодидозах крупного рогатого
скота
Полученные результаты испытания мустанга при иксодозах крупного рогатого скота указывают на 100%-ную эффективность препарата в концентрации, равной 0,006 %. Через 7 сут после обработки крупного рогатого скота мустангом в указанной концентрации все животные оказались свободными от иксодовых клещей. До обработки у одного животного обнаруживали в среднем 26,9+2,7 экз. иксодовых клещей. Количество обнаруженных клещей на крупном рогатом скоте контрольной группы в течение опыта существенно не изменялось и составило до опыта 27,8+2,4 и в конце опыта 29,2+3,3 экз. Таким образом, мустанг в 0,006%-ной концен-
трации показал 100%-ную эффективность против иксодовых клещей, паразитирующих на крупном рогатом скоте.
2.9.2. Титрация терапевтической дозы мустанга при иксодозах крупного рогатого скота
Учитывая то, что в предыдущем опыте при испытании мустанга в 0,006%-ной концентрации была получена 100%-ная эффективность, нами проведена работа по установлению оптимальной концентрации препарата при обработке крупного рогатого скота против иксодовых клещей.
Результаты титрации оптимальной концентрации мустанга при иксодозах крупного рогатого скота представлены в таблице 2.9.2 и свидетельствуют о различной степени эффективности препарата в разных концентрациях.
По результатам учета обнаруженных клещей мустанг в 0,003%-ной концентрации показал 89,4%-ную эффективность против иксодовых клещей. Только 11 из 15 коров полностью освободились от клещей. Через 7 сут после опрыскивания 15 коров 0,006%-ной водной эмульсией мустанга 14 голов полностью были свободны от иксодовых клещей. Эффективность препарата в этой концентрации составила 99,1 %. После применения мустанга в 0,009%-ной концентрации клещей на крупном рогатом скоте не находили и следовательно, эффективность была равной 100 %.
Исходя из полученных результатов, рекомендуем при иксодозах крупного рогатого скота применять мустанг в 0,006%-ной концентрации, которую считаем как оптимальную обеспечивающую высокий акарицид-ный эффект (99,1 %).
2.9.3. Титрация терапевтической дозы мустанга при псороптозе овец
Результаты определения оптимальной концентрации мустанга для применения при псороптозе овец свидетельствуют о различной степени эффективности препарата в разных концентрациях.
Через 7 сут после применения препарата в 0,0007%-ной концентрации освободилось от клещей только 10 из 15 обработанных овец. Численность клещей (имаго, нимф, личинок) снизилась на 89,3 %.
100%-ная эффективность мустанга против клещей Р. 0У13 была получена при купке овец в 0,003%-ной концентрации. У всех обработанных овец клещей не находили.
Получена высокая эффективность мустанга при псороптозе овец в 0,0015%-ной концентрации. 15 обработанных овец полностью были свободны от Рэоп^ез оуб. Эффективность препарата в этой концентрации составила 100 %. На пораженных участках кожи исчезли признаки воспаления, отмечали отторжение корочек.
Таким образом, концентрацию мустанга, равную 0,0015% по ДВ мы считаем оптимальной и рекомендуем для дальнейшего применения как терапевтическую.
2.9.4. Эффективность мустанга при псороптозс овец
с учетом степенн пораженное™
Псороптоз у овец может протекать в легкой, средней и тяжелой форме. В связи с этим представлял интерес выяснение эффективности мустанга при этих формах проявления псороптоза в производственных условиях.
Результаты испытания мустанга в 0,0015%-ной оптимальный концентрации, установленной наше ранее, при разной степени пораженности овец псороптозом указывают на значительную разницу в эффективности препарата.
При легкой степени поражения овец псороптозом однократная купка в водной 0,0015%-ной эмульсии мустанга приводила к гибели всех клещей на животных (100 %).
При средней степени поражения овец псороптозом получена высокая эффективность, равная 99,6 %.
Препарат в 0,0015%-ной концентрации проявил недостаточную эффективность тяжелой степени поражения овец псороптозом. Только 13 из 17 обработанных овец освободились от клещей. Численность клещей на животных снизилась на 89,9 %.
Таким образом, эффективность мустанга в испытанной 0,0015%-ной концентрации зависит от степени поражения животных псороптозом. При легкой и средней степени поражения овец псороптозом получена соответственно 100 и 99,6%-ная эффективность. При тяжелой степени псороптоза овец рекомендуем применять препарат повторно или повысить концентрацию ДВ.
2.9.5. Испытание мустанга при псороптозе кроликов
Как показали результаты однократного применения мустанг проявил недостаточный эффект. У 50 % кроликов через 7 сут после обработки обнаружили в ушных раковинах клещей Р. сишсиН. Количество клещей снизилась на 80 %. В связи с этим препарат применяли двукратно в 0,0015%-ной концентрации. Через 7 сут после второй обработки кроликов получена 100%-ная эффективность против Р. сишсиП.
Таким образом, при псороптозе кроликов рекомендуем применять мустанг в 0,0015%-ной концентрации двукратно с интервалом 7 сут, что обеспечивает полное освобождение кроликов от клещей Р. сишсиН.
2.9.6. Испытание мустанга при саркоптозе свиней
Результаты испытания мустанга при саркоптозе свиней свидетельствуют о разнице в его эффективности при применении в разной концентрации. Результаты титрации оптимальной концентрации показали, что мустанг в 0,009%-ной водной эмульсии обладает при двукратном применении 100%-ной эффективностью. Препарат в 0,003%-ной концентрации показал недостаточный эффект против клещей S. suis, равный 86,5 %. Оптимальной оказалась концентрация мустанга, равная 0,006%. Через 7 сут после повторного опрыскивания свиней 0,006%-ной водной эмульсией мустанга получена 100 %-ная эффективность.
На наш взгляд, эта концентрация является наиболее рациональной и ее мы рекомендуем для применения при саркоптозе свиней.
2.9.7. Эффективность мустанга при отодектозе кошек
Результаты испытания мустанга в 0,0015%-ной концентрации при одно- и двукратном, с интервалом 7 сут, применении при клиническом проявлении отодектозе кошек указывают на высокую эффективность препарата при двукратной обработке ушных раковин. Животные полностью освободились от клещей. Эффективность препарата в 0,0015%-ной концентрации через 7 сут после повторного применения составила 100 %.
После однократной обработки улучшении клинического состояния кошек и освобождение от клещей О. cati отмечали у 50 % животных. Количество клещей снизилось на 81,6 %. Пораженность кошек контрольной группы в период опыта существенно не изменялась и составила в начале опыта 7,4+0,4 и в конце опыта 7,6+0,5 экз.
Таким образом, мустанг при отодектозе кошек в 0,0015%-ной концентрации двукратно с интервалом 7 сут показал 100 %-ную эффективность.
2.9.8. Влияние мустанга на организм кроликов
Результаты изучения влияния мустанга на организм кроликов при нанесении препарата на внутреннюю поверхность ушной раковины свидетельствуют об отсутствии его токсического действия на организм. Температура тела, количество сердечных ударов и дыхательных движений кроликов подопытной и контрольной практически не отличались (Р>0,05), как до так и через 3 и 7 сут после применения препарата.
Не установлено также отрицательного влияния мустанга на уровень гемоглобина, эритроцитов и лейкоцитов (Р>0,05).
При изучении влияния мустанга на лейкограмму кроликов не отмечено разницы в показателях животных подопытной и контрольной группы.
Результаты изучения влияния мустанга на биохимические показатели кроликов до и через 1, 3 и 7 сут после применения препарата свидетельствуют о незначительной разнице в показателях животных подопытной и контрольных животных (Р>0,05).
Таким образом, применение мустанга в 0,0015%-ной концентрации безопасно для организма кроликов. Препарат не оказывает влияния на клинические, морфологические и биохимические показатели крови животных.
2.9.9. Эффективность бовизана при псоронтозе овец
Полученные результаты указывают, что бовизан в концентрации 0,20,3 % водной эмульсии не обладает овоцидным действием. Препарат в 0,2%-ной концентрации обеспечивает резкое снижение всех активных стадий клеща, но не обеспечивает необходимой персистентности. Бовизан в 0,25 и 0,3%-ной концентрации оказывает губительное действие на имаго, нимфы и личинок Р. ovis. Однако часть вылупляющихся из яиц личинок остается жизнеспособной и превращается в нимф, а затем в имаго. Это требовало проведения повторной купки животных. Из 9 овец, искупанных в 0,2%-ном растворе препарата, у четырех были обнаружены клещи, а у овец, искупанных в 0,25 и 0,3%-ном растворах акарицида, клещей не находили. На основании полученных результатов в качестве оптимальной концентрации бовизана рекомендуем 0,25 %.
При испытании препарата в 0,25%-ной концентрации в производственных условиях на 956 овцах все активные стадии клещей погибли на 23-и сут. На 7-е сут после обработки у трех овец были отмечены единичные живые личинки, поэтому была проведена повторная обработка, после которой ни у одной из обследованных овец клещей не обнаружили. При повторном обследовании обработанных овец через 50 сут после второй купки не выявили ни одного зараженного животного.
2.9.10. Эффективность бовизана против нксодовзлх клещей
До обработки телок нами собрано с животных 79 экз. В. annulatus, 61 экз. 1. ricinus, 3 экз. D. marginatus и 1 экз. Н. concinna. Индекс обилия был в пределах 6,3-7,7 экз. клещей на животное до начала опыта.
Гибель иксодовых клещей наступала после обработки бовизаном в дозе 9,2 и 13,2 г ДВ на животное как при расходе 1,5, так и 0,5 л водной эмульсии. Продолжительность акарицидного действия в обоих случаях составила 8-9 сут, после чего единичные экземпляры клещей начинали присасываться. Следовательно, повторные обработки в энзоотической и латентной зонах пироплазмидозов надо проводить через 9-10 сут, а в угрожаемой и благополучной зонах через 13-15 сут.
При испытании бовизана в производственных условиях до обработки на животных зарегистрировано 5 видов иксодовых клещей: В. annulatus, I. ricinus, Н. concinna, Н. parva, HI. marginatum. На одном животном паразитировало от 15 до 150 экз. клещей. Доминировали В. annulatus (61,2 %), массовыми были I. ricinus (37 %), остальные виды были единичными.
Спустя сутки после обработки крупного рогатого скота клещи теряли тургор и отпадали. Повторное нападение клещей наступало в июле на 11-14-е сут, а в августе и сентябре на 10-14-е сут. Аналогичные результаты получены при опрыскивании крупного рогатого скота из опрыскивателя «Росинка» в Анапском районе Краснодарского края.
2.10. Сроки начала повторного обнаружения клещей у животных после лечения мустангом 2.10.1. Оптимальная схема применения мустанга при псороптозе овец
Результаты, полученные нами, свидетельствуют о том, что повторное обнаружение единичных экземпляров клещей P. ovis в соскобах кожи и незначительные поражения начали отмечать через 28 сут после обработки овец мустангом в ванне с 0,0015%-ной концентрацией препарата. В последующие сроки исследований количество клещей в соскобах кожи с пораженных участков повышалось и составило 2,3+0,2 экз. на 35-е сут и 4,6+0,3 экз. на 42-е сут после лечения, а эффективность составила соответственно 92,1 и 84,5 %. У овец контрольной группы количество клещей в соскобах кожи в период опыта незначительно повысилось с 27,3+2,6 до 29,8+2,7 экз. в 10 см2 (Р>0,05). Кроме того отмечали клинические признаки псороптоза.
Таким образом, персистентность акарицидндого действия мустанга при псороптозе овец составила 28-35 сут. Полученные нами результаты позволяют рекомендовать применение мустанга при псороптозе овец с интервалом 28-35 сут.
2.10.2. Оптимальная схема применения мустанга при саркоптозе свиней
Результаты изучения персистентносгги акарицидного действия мустанга при саркоптозе свиней указывают на то, что повторное обнаружение единичных экземпляров клещей S. suis на поверхности тела свиней начали отмечать через 35 сут после обработки животных мустангом в 0,006%-ной концентрации с расходом 0,5 л на животное. В последующий срок исследований количество клещей на коже свиней повышалось и составило 3,7+0,5 экз. на 42-е сут после опрыскивания, а эффективность составила 86,4 %.
У свиней контрольной группы количество клещей в период опыта повысилось с 23,2+2,1 до 27,3+2,5 экз. на площади кожи 20x20 см.
Таким образом, персистентность акарицидного действия мустанга при двукратном применении при саркоптозе свиней составила 35 сут, что позволяет рекомендовать его применение в неблагополучных по саркопто-зу свиней хозяйствах с интервалом 35 сут.
2.10.3. Оптимальная схема применения мустанга при псороптозе
кроликов
Результаты изучения персистентности акарицидного действия мустанга в 0,0015%-ной концентрации двукратно с интервалом 7 сут свидетельствуют о продолжительном акарицидном действии препарата. Повторно клещей Р. сигнеиП начали обнаруживать в ушной раковине кроликов через 42 сут после двукратной их обработки. Эффективность мустанга оказалась равной 94,76 %. У кроликов контрольной группы количество обнаруженных клещей Р. си-шсиН в период опыта незначительно повысилось с 25,2+2,1 экз. до лечения до 28,6+2,4 экз. на 42-е сут после обработки (Р>0,05).
Таким образом, персистентность акарицидного действия мустанга при двукратном применении при псороптозе кроликов составляет 35 сут. Полученные результаты позволяют рекомендовать применение мустанга при псороптозе кроликов с интервалом 35 сут.
2.10.4. Оптимальная схема применения мустанга прн отодектозе кошек
При изучении персистентности акарицидного действия мустанга в 0,0015%-ной концентрации при отодектозе кошек установлена активность препарата в течение 28 сут после двукратного применения. На 35-е сут после обработки у отдельных кошек начали обнаруживать единичные экземпляры О. сай. Эффективность препарата составила 97,4 % на 35-е и 79,0 % на 42-е сут после лечения. Через 7 сут последующие сроки исследований после лечения отмечали выздоровление кошек и отсутствие симптомов болезни. Кошки контрольной группы оставались зараженными О. сай в течение всего опыта (Р>0,05).
Таким образом, персистентность акарицидного действия мустанга при двукратном применении при отодектозе кошек составляет 28 сут, что позволяет рекомендовать его применение с этим интервалом.
3. Обсуждение
Дано обсуждение результатов собственных исследований и данных литературы по вопросам эпизоотологии и терапии основных арахнозов животных.
Выводы
1. У крупного рогатого скота в условиях Краснодарского края обнаружено 18 видов иксодовых клещей, из них по одному виду из родов Воо-philus, Ixodes и Amblyomma, двух видов рода Dermacentor, трех видов рода Hyalomma и шести видов рода Haemaphysalis. Наиболее распространенными видами являются В. annulatus (ИО - 16,2 экз.), I. ricinus (ИО - 4,7 экз.) и H. scupense (ИО - 4,2 экз.), численность которых составляет более 95 % от общего количества иксодид, обнаруженных на крупном рогатом скоте. Впервые в России нами зарегистрирован вид клещей A. variegatum.
2. Основными местами обитания иксодовых клещей являются область вымени и паха крупного рогатого скота. Развитие В. annulatus на крупном рогатом скоте происходит в течение 31-36 сут. Личинки и нимфы пребывают в активной стадии в течение 8-12 и 8-15 сут соответственно и в хризалидой стадии по 3-6 сут. Особи клещей, находящиеся в хризалид-ной стадии, более устойчивы к действию акарицидов.
3. Иксодовые клещи на крупном рогатом скоте встречаются в разных зонах Кубани у 19,5-34,8 % поголовья при интенсивности от 5,8 до 12,3 экз. и индексе обилия от 1,25 до 4,29 экз. Максимальная пораженность ик-содидами установлена в пойменной и причерноморской зонах у крупного рогатого скота в возрасте 1-3 лет. С возрастом животных пораженность клещами снижается.
4. Крупный рогатый скот поражен иксодовыми клещами в течение всего года с колебаниями от 4,6 % зимой до 68,0 % весной. Пик поражен-ности отмечается в мае (65,0 %) и октябре (48,5 %). Пол и порода крупного рогатого скота не оказывают существенного влияния на пораженность ик-содидами. При стойловом содержании крупный рогатый скот практически свободен от иксодид. Пораженность животных повышается до 29,4 % при пастбищно-лагерном содержании. Возрастной состав иксодовых клещей на теле крупного рогатого скота отмечается в разные месяцы года. Во все сезоны года, кроме января-марта обнаруживали на животных клещей на разной стадии развития. Количество клещей на стадии имаго повышается в мае-июне и сентябре-октябре, личинок в мае-июне и октябре и нимф в июне и октябре-ноябре.
5. Зараженность овец Psoroptes ovis в Краснодарском крае составляет, в среднем 16,0 % с колебаниями в течение года от 0,8 % в июле до 27,6 % в январе. Максимальную зараженность и клинические признаки псороп-тоза отмечали у овец в возрасте до 3-х лет в зимний период. Зараженность овец разного пола и пород отличалась незначительно при содержании в разных типах хозяйств.
6. Саркоптоз свиней установлен в среднем у 19,96 % поголовья. Свиньи поражены Sarcoptes suis во все сезоны года с пиком зараженности зимой (30,7 %). Летом пораженность свиней снижается до 3,9 %. Максимальная зараженность свиней S. suis была в возрасте 3-7 мес. С возрастом
зараженность свиней снижается. Пол и порода свиней не оказывают влияния на зараженность свиней S. suis. Зараженность свиней S. suis в разных типах хозяйств отличалась незначительно, за исключением племенных.
7. Зараженность кроликов в Краснодарском крае Psoroptes cuniculi составляет в среднем 42,4 %. Зимой зараженность кроликов повышается до 73,6 %, а летом снижается до 17,7 %. Установлена незначительная разница в зараженности кроликов разного возраста, пола и породы.
8. У 10,1 % собак городской популяции и 6,9 % сельских собак зарегистрирован демодекоз с проявлением очаговых поражений преимущественно в области головы и конечностей. Зараженность собак Demodex canis повышается в зимне-весенний период до 16,2 %, а летом снижается до 5,5 %. Максимальная зараженность установлена у собак в возрасте 7-12 мес и, особенно у собак длинношерстных пород и бездомных.
9. Отодектозом поражено 17,2 % сельских и 18,0 % городских кошек. Зараженность кошек Otodectes cati повышается в апреле-мае и сентябре-октябре и снижается зимой до 10,6 %. Максимальная зараженность отмечена у кошек в возрасте 0,5-2-х лет (20-18 %) и особенно у бездомных. Пол и порода не оказывают влияния на зараженность кошек. Комнатные кошки были заражены слабо.
10. Для диагностики демодекоза собак предложено вместо трудоемкого и болезненного взятия соскоба кожи скальпелем щадящий метод взятия пробы - волосяной фолликулы путем ее вытягивания кровоостанавливающим зажимом, что повышает эффективность диагностики, уменьшает болезненность, травматизацию тканей, снижает затраты времени на взятие пробы и возможные осложнения.
11. Оценена эффективность нового препарата мустанга (10%-й в.э. зетациперметрина) при акарозах на различных видах животных. Препарат в 0,003; 0,006 и 0,009%-ной концентрации показал соответственно 89,4; 99,1 и 100%-ную эффективность против иксодовых клещей на крупном рогатом скоте. Концентрация мустанга равная 0,006 %, рекомендована нами как оптимальная против иксодовых клещей на крупном рогатом скоте.
12. Испытание мустанга в 0,0007; 0,0015 и 0,003%-ной концентрации при псороптозе овец методом купки показало соответственно 89,3; 100 и 100%-ную эффективность. Концентрацию мустанга, равную 0,0015 %, считаем оптимальной для применения. Установлена различная эффективность препарата при разной степени пораженности овец псороптозом. Мустанг в 0,0015%-ной концентрации проявил 100; 99,6 и 89,9%-ный эффект соответственно при легкой, средней и тяжелой степени поражения овец.
13. Мустанг в 0,0015%-ной концентрации на кроликах, пораженных Psoroptes cuniculi показал 80 и 100%-ную эффективность соответственно при одно- и двукратном с интервалом 7 сут применении.
При саркоптозе свиней мустанг в 0,003; 0,006 и 0,009%-ной концентрации двукратно с интервалом 7 сут показал соответственно 86,5; 100 и 100%-ный эффект.
Мустанг в 0,0015%-ной концентрации двукратно с интервалом 7 сут показал 100 %-ный эффект при отодектозе кошек. Препарат в 0,0015%-ной концентрации безопасен для организма кроликов, не оказывает влияния на клинические, морфологические и биохимические показатели крови животных.
14. Купка овец при псороптозе в растворе бовизана (малатиона) в 0,2; 0,25 и 0,3%-ной концентрации двукратно с интервалом 7 сут обеспечивает полное освобождение от клещей. Бовизан эффективен в течение 8-9 сут против иксодовых клещей на крупном рогатом скоте в дозе 9,2 и 13,2 г ДВ на животное при расходе 0,5 и 1,5 л водной эмульсии.
15. Персистентность акарицидного действия мустанга после двукратного применения в 0,0015%-ной концентрации составила при псороптозе овец 28 сут, псороптозе кроликов 35 сут, отодектозе кошек 28 сут, при саркоптозе свиней в 0,006%-ной концентрации двукратно 35 сут, что позволяет рекомендовать его применение при указанных акарозах в неблагополучных зонах с интервалом 28-35 сут.
Практические предложения
Результаты изучения эпизоотологии основных арахнозов животных, полученные с учетом местных природно-климатических условий, являются основой для научно-обоснованной организации и проведения в оптимальные сроки мероприятий против акарозов в условиях Краснодарского края.
Испытана эффективность и установлена оптимальная концентрация мустанга и бовизана при основных акарозах на разных видах животных. Установлена персистентность и оптимальные сроки применения мустанга в условиях Краснодарского края, обеспечивающие максимальное акари-цидное воздействие.
Полученные результаты использованы при разработке «Временного наставления по применению мустанга» (1998), «Временного наставления по применению бовизана» (1999), утвержденных Департаментом ветеринарии МСХ РФ, «Методических рекомендаций по профилактике пиро-плазмидозов и вирусных заболеваний, передаваемых иксодовыми клещами в Краснодарском крае и средства борьбы с ними», утвержденных Администрацией Краснодарского края (2001) и одобренных секцией «Инвазионные болезни животных» РАСХН 05.12.2001г., протокол №4; Методических рекомендаций «Паразитарные болезни нутрий и меры борьбы с ними в Краснодарском крае», утвержденных управлением ветеринарии Краснодарского края 23.04.2004г.; Методических рекомендаций «Паразитарные болезни кроликов и меры борьбы с ними в Краснодарском крае», одобренных секцией «Инвазионные болезни животных» РАСХН (2006); Учебного пособия для ВУЗов «Арахноэнтомозы сельскохозяйственных животных», рекомендованного Департаментом образования МСХиП РФ (2000).
Список работ, опубликованных по теме диссертации
1. Катаева Т.С. Псороптоз кроликов и их лечение / Т.С. Катаева // Матер, докл. У1 Всес. совещ. по пробл. теоретич. и прикл. акарологии. -Ленинград, 1990.-С. 62.
2. Катаева Т.С. К вопросу эпизоотологии псороптоза / Т.С. Катаева // Матер, докл. XXXIII науч. конф., посвящ. 50-летию Свердловского с.-х. ин-та. - Свердловск, 1990. - С. 43-^4.
3. Катаева Т.С. Акарицидная эффективность некоторых химических препаратов / Т.С. Катаева // Сб. «Новое в профилактике и лечении животных». - Пермь, 1991. - С. 18-20.
4. Катаева Т.С. Демодекоз собак / Т.С. Катаева // Бгол. ассоц. вет. спец. Свердловской обл. - 1991. - С. 11-12.
5. Катаева Т.С. Методические указания по диагностике чесотки животных для студентов ветеринарного факультета / Т.С. Катаева / Екатеринбург, 1992.-34 с.
6. Катаева Т.С. Применение акрозоля при отодектозе пушных зверей / Т.С. Катаева, Ж.М. Тункель // Сборник научных трудов Кубанского гос. аграрного ун-та. - 1993. - Вып. 333. - С. 12-13.
7. Катаева Т.С. Экологические обоснования применения системных препаратов при паразитарных заболеваниях сельскохозяйственных животных / Т.С. Катаева // Сборник научных трудов Кубанского гос. аграрного ун-та. - 1995. - Вып. 349. - С. 12-25.
8. Катаева Т.С. Арахнология / Т.С. Катаева / Методические указания к лабораторно-практическим занятиям по паразитологии для студентов факультета ветеринаркой медицины очного и заочного отделения. - Краснодар, 1995.-51 с.
9. Катаева Т.С. Изучение ассоциативных болезней у свиней в хозяйствах Краснодарского края / Т.С. Катаева, O.A. Голоскоков, С.И. Багрий // Сборник научных трудов Кубанского гос. аграрного ун-та. - 1997. - Вып. 359.-С. 59-61.
10. Катаева Т.С. Новый инсектоакарицид «Мустанг» как наиболее эффективный препарат в борьбе с зоофильными мухами и комарами / Т.С. Катаева, E.H. Катаева // Сборник научных трудов Кубанского гос. аграрного ун-та. - 1997. - Вып. 359. - С. 61-63.
11. Катаева Т.С. Возможность использования системных препаратов для одномоментного воздействия на экто- и эндопаразитов животных / Т.С. Катаева, Э.Б. Кербабаев // Вестник Рос. академии с.-х. наук. - 1997. -№2.-С. 71-74.
12. Катаева Т.С. Обнаружение иксодового клеща Amblyomma variegatum в Краснодарском крае / Э.Б. Кербабаев, О.В. Волцит, Т.С. Катаева // Ветеринария. -1997. -№ 12. - С. 33-36.
13. Катаева Т.С. Экономичный способ обработки скота / В.Г. Гладков, Т.С. Катаева, Э.Б. Кербабаев // Ветеринарная газета. - 1997. - № 17. -С. 5.
14. Катаева Т.С. Мустанг - перспективный иксодоцид / Э.Б. Кербабаев Т.С. Катаева // Сб. докл. «Современное состояние и перспективы интеграции ветеринарной науки и практики в условиях реформирования сельскохозяйственного производства прикаспийского региона». - Махачкала, 1997.-С. 178-179.
15. Катаева Т.С. Новый перспективный акарицид для борьбы с иксо-довыми клещами - переносчиками пироплазмидозов / Э.Б. Кербабаев, Т.С.Катаева // Вестник ветеринарии. - Ставрополь, 1997. - № 7. - С. 96-98.
16. Катаева Т.С. Выбор наиболее экологически безопасных химических средств борьбы с псороптозом овец / E.H. Катаева, Т.С.Катаева // Сб. «Экология, право, образование». - Краснодар, 1999. - С. 37-38.
17. Катаева Т.С. Развитие клещей Boophilus annulatus в Краснодарском крае / Т.С. Катаева // Сборник научных трудов Кубанского гос. аграрного ун-та. - 1999. - Вып. 375. - С. 173-179.
18. Катаева Т.С. Хризалидные стадии клещей / Т.С. Катаева II Сборник научных трудов Кубанского гос. аграрного ун-та. - 1999. - Вып. 375. -С. 179-181.
19. Катаева Т.С. Методы обработки крупного рогатого скота инсек-тоакарицидными препаратами / Т.С. Катаева, A.A. Бурова // Сб. докл. науч. конф. Всерос. о-ва гельминтол. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». - М., 1999. - С. 119-121.
20. Катаева Т.С. Бовизан - препарат с выраженной избирательной токсичностью для членистоногих / Э.Б. Кербабаев, A.A. Бурова, Т.С. Катаева // Сб. докл. науч. конф. Всерос. о-ва гельминтол. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». - М., 1999. - С. 124—126.
21. Катаева Т.С. Места обитания иксодовых клещей на теле крупного рогатого скота / Т.С. Катаева // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. - М., 2000. -Т. 36.-С. 50-53.
22. Катаева Т.С. Обоснование методов и средств борьбы с иксодо-выми клещами, комарами и мухами на крупном рогатом скоте в условиях многоукладного хозяйствования / Э.Б. Кербабаев, В.Г. Гладков, Т.С. Катаева, Э.А. Смирнова, A.A. Бурова // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. - М., 2000.-Т. 36.-С. 58-64.
23. Катаева Т.С. Эпизоотическая ситуация по пироплазмидозам и борьба с их переносчиками / Э.Б. Кербабаев, H.A. Яременко, Т.С. Катаева, И.П. Ралка // Ветеринария. - 2000. -№ 6. - С. 10-13.
24. Катаева Т.С. Эффективность применения инсекто-акарицидов бовизан и мустанг в животноводстве / Т.С. Катаева // Тез. докл. науч. конф., посвящ. 60-летию Уральской гос. с.-х. академии. - Екатеринбург, 2000.-С. 10-12.
25. Катаева T.C. Новый препарат бовизан для борьбы с иксодовыми клещами / A.A. Бурова, Э.Б. Кербабаев, В.Г. Гладков, Т.С. Катаева // Ветеринария. - 2000. - № 5. - С. 28-30.
26. Катаева Т.С. Эффективность бовизана при псороптозе овец / Б.Р. Конов, М.М. Басаргина, Т.С. Катаева // Ветеринария. - 2000. - № 8. - С. 13-14.
27. Катаева Т.С. Арахноэнтомозы сельскохозяйственных животных / Э.Б. Кербабаев, Ф.И. Василевич, Т.С. Катаева, М.В. Розовенко / Уч. пособие для вузов. - М., 2000. - 137 с.
28. Катаева Т.С. Результаты изучения развития иксодовых клещей на примере Boophilus annulatus как критерий выбора акарицида / Т.С. Катаева // Сборник научных трудов Кубанского гос. аграрного ун-та. - 2001. - Вып. 387.-С. 46-49.
29. Катаева Т.С. Влияние антропогенного воздействия на фауну иксодовых клещей в Краснодарском крае / Э.Б. Кербабаев, Т.С. Катаева, P.A. Брудный, В.М. Костюковский // Сб. науч. тр. «Проблемы энтомологии и арахнологии».-Тюмень,2001. -№43.-С. 115-117.
30. Катаева Т.С. Рекомендации по профилактике пироплазмидозов и вирусных заболеваний, передаваемых иксодовыми клещами в Краснодарском крае и средства борьбы с ними / Э.Б. Кербабаев, Т.С. Катаеза, О.В. Волцит, P.A. Брудный, В.Н. Шевкопляс, В.Н. Пшеничный / Краснодар, 2001.-28 с.
31. Катаева Т.С. Экологическое обоснование борьбы с иксодовыми клещами - переносчиками пироплазмидозов и арбовирусов (на примере Краснодарского края) /' Э.Б. Кербабаев, Т.С. Катаева // Сб. науч. тр. «Проблемы энтомологии и арахнологии». - Тюмень, 2001. -№ 43. - С. 120-123.
32. Катаева Т.С. Способ взятия крови у нутрии / Т.С. Катаева, В.Г. Лопатин / Патент на изобретение №2236815 от31 марта 2003 г.
33. Катаева Т.С. Обоснование сроков обработки животных против клещей Boophilus annulatus / Т.С. Катаева // Матер. Междунар. конф. и III съезда паразитол. о-ва при РАН. - Санкт-Петербург, 2003. - С. 198-199.
34. Катаева Т.С. Паразитарные болезни нутрий и меры борьбы с ними в Краснодарском крае / Т.С. Катаева, В.Г. Лопатин / Методические рекомендации ГУ Ветеринарии Краснодарского края. - 2005. - 38 с.
35. Катаева Т.С. Энтомозан - инсектоакарицидный препарат для борьбы с псороптозом кроликов / Т.С. Катаева, О.И. Манукало // Матер, докл. науч. конф. «Научные основы обеспечения защиты животных от эко-токсикантов, радионуклидов и возбудителей опасных инфекционных заболеваний». - Казань, 2005. - С. 174-176.
36. Катаева Т.С. Паразитарные болезни кроликов и меры борьбы с ними в Краснодарском крае / Т.С. Катаева, О.И. Манукало / Методические рекомендации ГУ Ветеринарии Краснодарского края. - 2005.
37. Катаева Т.С. Способ исследования демодекоза у собак / Т.С. Катаева, М.А. Костылева / Патент на изобретение № 2298583 от 25 июля 2005 г.
38. Катаева Т.С. Изучение развития иксодовых клещей как критерий выбора акарицида/ Т.С. Катаева // Ветеринария. - 2006. -№ 8. - С. 35-37.
39. Катаева Т.С. Эффективность энтомозана С (супер) при псоропто-зе кроликов / Т.С. Катаева, О.И. Манукало // Сб. докл. науч. конф. Всерос. о-ва гельминтол. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями (зоонозы)». - М., 2006. Вып. 7. - С. 169-170. -
40. Катаева Т.С. Эпизоотологический анализ псороптоза кроликов / Т.С. Катаева, О.И. Манукало // Матер, междунар. науч.-практ. конф., по-свящ. 60-летию Краснодарского НИВИ «Актуальные проблемы ветеринарии в современных условиях». - 2006. - С. 151-152.
41. Катаева Т.С. Псороптоз кроликов / Т.С. Катаева, О.И. Манукало // Ветеринария Кубани. - Краснодар, 2006. - № 4. - С. 4—5.
42. Катаева Т.С. Эпизоотическая ситуация по демодекозу собак в условиях города Краснодара / Т.С. Катаева, М.А. Костылева // Матер, рег. науч.-практ. конф. молодых ученых. - Краснодар, 2006. - С. 264.
43. Катаева Т.С. Способ лечения демодекоза у собак / Т.С. Катаева, М.А. Костылева / Патент на изобретение № 2320326 от 08 августа 2006 г.
44. Катаева Т.С. Эпизоотология и меры борьбы с псороптозом кроликов / Т.С. Катаева, О.И. Манукало // Актуальные вопросы ветеринарной медицины. - Екатеринбург, 2007. - Т. 2. - С. 33-38.
45. Катаева Т.С. Борьба с псороптозом кроликов / Т.С. Катаева, О.И. Манукало // Кролиководство и звероводство. - 2007. - № 4. - С. 27-28.
46. Катаева Т.С. Эпизоотология демодекоза собак в городе Краснодаре / Т.С. Катаева, М.А. Костылева // Российский паразитологический журнал. - М., 2008. -№ 1. - С. 64-67.
47. Катаева Т.С. Особенности диагностики демодекоза собак / Т.С. Катаева, М.А. Костылева // Российский паразитологический журнал. -2008,-№2.-С. 63-65.
Подписано в печать:
16.03.2009
Заказ №1718 Тираж - 100 экз. Печать трафаретная. Типография «11-й ФОРМАТ» ИНН 7726330900 115230, Москва, Варшавское ш., 36 (499) 788-78-56 www.autoreferat.ru
Содержание диссертации, доктора ветеринарных наук, Катаева, Татьяна Семеновна
Введение 6 Краткая характеристика природно-климатических условий
Краснодарского края
1. Обзор литературы
1.1. Иксодидозы животных
1.1.1. Распространение иксодидозов крупного рогатого скота
1.1.2. Меры борьбы с иксодидозами
1.2. Саркоптоз свиней
1.2.1. Эпизоотология саркоптоза свиней
1.2.2. Терапия саркоптоза свиней
1.3. Псороптоз овец
1.3.1. Эпизоотология псороптоза овец
1.3.2. Терапия псороптоза овец
1.4. Псороптоз крупного рогатого скота
1.4.1. Эпизоотология псороптоза крупного рогатого скота
1.4.2. Терапия псороптоза крупного рогатого скота
1.5. Псороптоз кроликов
1.5.1. Эпизоотология псороптоза кроликов
1.5.2. Терапия псороптоза кроликов
1.6. Демодекоз собак
1.6.1. Эпизоотология демодекоза собак
1.6.2. Терапия демодекоза собак
1.7. Отодектоз собак и кошек
1.7.1. Эпизоотология отодектоза собак и кошек
1.7.2. Терапия отодектоза собак и кошек
2. Собственные исследования 116 2.1. Материалы и методы
2.2. Эпизоотология иксодидозов крупного рогатого скота в условиях Краснодарского края
2.2.1. Видовой состав иксодовых клещей крупного рогатого скота
2.2.2. Места обитания иксодовых клещей на теле крупного рогатого скота
2.2.3. Развитие Boophilus annulatus Say, 1821 с учетом хризалидной стадии в условиях Краснодарского края
2.2.4. Распространение иксодидозов крупного рогатого скота в разных зонах Краснодарского края
2.2.5. Численность иксодовых клещей на крупном рогатом скоте разного возраста
2.2.6. Сезонная динамика пораженности крупного рогатого скота иксодовыми клещами
2.2.7. Влияние пола, породы на численность иксодовых клещей у крупного рогатого скота
2.2.8. Пораженность крупного рогатого скота иксодовыми клещами при разной технологии содержания
2.2.9. Возрастная структура иксодовых клещей на крупном рогатом скоте в разные сезоны года
2.3. Эпизоотология псороптоза овец Кубани
2.3.1. Распространение псороптоза овец в разных зонах Кубани
2.3.2. Сезонная динамика параженности овец клещами Psoroptes
2.3.3. Возрастная динамика зараженности овец клещами P. ovis
2.3.4. Влияние пола и породы овец на зараженность клещами P. ovis
2.3.5. Зараженность овец клещами P. ovis в разных типах хозяйств
2.4. Эпизоотология саркоптоза свиней Кубани
2.4.1. Распространение саркоптоза свиней
2.4.2. Сезонная динамика зараженности свиней Кубани клещами
Sarcoptes suis
2.4.3. Возрастная динамика зараженности свиней клещами S. suis
2.4.4. Влияние пола и породы свиней на зараженность их S. suis
2.4.5. Зараженность свиней S. suis в разных типах хозяйств
2.5. Эпизоотология псороптоза кроликов в условиях Кубани
2.5.1. Распространение псороптоза кроликов
2.5.2. Сезонная динамика зараженности кроликов клещами Psoroptes cuniculi
2.5.3. Возрастная динамика зараженности кроликов клещами P. cuniculi
2.5.4. Влияние пола и породы кроликов на зараженность P. cuniculi
2.6. Эпизоотология демодекоза собак в Краснодарском крае
2.6.1. Распространение демодекоза собак
2.6.2. Сезонная динамика зараженности собак Demodex canis
2.6.3. Возрастная динамика зараженности собак D. canis
2.6.4. Влияние пола, породы и длины волосяного покрова собак на зараженность D. canis
2.6.5. Влияние типа содержания и назначения собак на зараженность D. canis
2.7. Эпизоотология отодектоза кошек в Краснодарском крае
2.7.1. Распространение отодектоза кошек
2.7.2. Сезонная динамика зараженности кошек Otodectes cati
2.7.3. Возрастная динамика зараженности кошек О. cati
2.7.4. Влияние пола, породы и типа содержания кошек на зараженность О. cati
2.8. Усовершенствование метода диагностики демодекоза собак
2.9. Усовершенствование терапии арахнозов животных 189 2.9.1. Эффективность мустанга при иксодозах крупного рогатого скота
2.9.2. Титрация терапевтической дозы мустанга при иксодозах крупного рогатого скота
2.9.3. Титрация терапевтической дозы мустанга при псороптозе
2.9.4. Эффективность мустанга при псороптозе овец с учетом степени пораженности
2.9.5. Эффективность мустанга при псороптозе кроликов
2.9.6. Эффективность мустанга при саркоптозе свиней
2.9.7. Эффективность мустанга при отодектозе кошек
2.9.8. Влияние мустанга на организм кроликов
2.9.9. Эффективность бовизана при псороптозе овец
2.9.10. Эффективность бовизана против иксодовых клещей 206 2.10. Сроки начала повторного обнаружения клещей у животных после лечения мустангом
2.10.1. Оптимальная схема применения мустанга при псороптозе
2.10.2. Оптимальная схема применения мустанга при саркоптозе свиней
2.10.3. Оптимальная схема применения мустанга при псороптозе кроликов
2.10.4. Оптимальная схема применения мустанга при отодектозе кошек
3. Обсуждение
Выводы
Практические предложения
Введение Диссертация по биологии, на тему "Эпизоотология и терапия основных арахнозов животных Краснодарского края"
Актуальность работы. Арахнозы животных широко распространены в различных природно-климатических зонах России и других стран (И.Г. Галу-зо, 1950; А. Бердыев, 1981); A.A. Водянов, 1986; Ф.И. Василевич, 1986; Э.Б. Кербабаев, 1998; R.S. Mueller, 2007 и др.). По данным Э.Б. Кербабаева (1998) всего зарегистрировано в мире свыше 25 тыс. видов клещей, а в странах СНГ и Прибалтики около 12 тыс. Наибольшее ветеринарное значение имеют представители семейств Psoroptidae, Canestrini, 1892; Sarcoptidae, Murray, 1877; Demodicidae, Nicolet, 1855; Psorergatidae, Dubinin, 1954 и Ixodidae, Murray, 1877.
Клещи, паразитируя на животных, причиняют огромный экономический ущерб. Так, при демодекозе крупного рогатого скота удои молока снижаются при сильном поражении на 30-40 %, прирост массы тела на 80 г в сутки, качество шкур на 47-80 % (JI.H. Скосырских, 1994, Ф.И. Василевич, 1998). При псороптозе овец настриг шерсти уменьшается на 69 % (В.И. Ремез, 1985). Саркоптоидные клещи приводят к снижению на 48-50 % привесов у свиней (Р.Т. Клочко, 1983). В ряде случаев при высокой степени поражения животных демодекозными и саркоптоидными клещами отмечают падеж животных (Э.Б. Кербабаев, Л.Н. Скосырских, 1988; Т.С. Катаева, 1989 и др.). Экономический ущерб, причиняемый иксодовыми клещами, во многом усугубляется тем, что они являются переносчиками возбудителей ряда инфекционных, вирусных и паразитарных заболеваний животных и человека: клещевого энцефалита, чумы, туляремии, клещевого возвратного тифа, лихорадки КУ, Крым-Конго геморрагической лихорадки, пироплазмидозов и др. (В.Н. Беклемишев, 1955; Ю.С. Балашов, 1967; А.Н. Алексеев, З.Н. Кондрашова, 1985; Э.Б. Кербабаев, 1998).
В последние годы для борьбы с арахнозами животных предложено большое количество отечественных и импортных препаратов из разных классов химических соединений, в том числе пиретроидов, макроциклических лактонов, ФОСов и др. (R.S. Mueller, 2007). Однако разработка и внедрение научно-обоснованных эффективных схем защиты сельскохозяйственных и домашних животных от кровососущих членистоногих невозможны без подробного изучения эколого-эпизоотологических особенностей заболеваний, вызываемых клещами у животных в условиях различных зон Краснодарского края.
В предыдущие годы изучению видового состава клещей в условиях Северного Кавказа посвящены работы отечественных исследователей (С.Р. Калита, 1955; Э.Б. Кербабаев, Т.С. Катаева, P.A. Брудный, 2001; Э.Б. Кербабаев, В.Н. Шевкопляс, 2004; В.Н. Шевкопляс, В.Г. Лопатин, 2006а,б и др.). Однако исследования касались, в основном, фауны и распространения иксодовых клещей в отдельных регионах. Особенности эпизоотологии заболеваний, вызываемых саркоптоидными и демодекозными клещами, у сельскохозяйственных и домашних животных в условиях Кубани до сих пор остаются недостаточно изученными.
Актуальным для ветеринарной практики является изучение эффективности и персистентности действия новых препаратов против разных видов клещей и обоснование сроков их применения.
Цели и задачи исследований. Целью нашей работы явилось изучение эколого-эпизоотологических особенностей основных акарозов сельскохозяйственных и домашних животных в условиях различных зон Северного Кавказа и разработка научно обоснованных схем борьбы с арахнозами животных с учетом персистентности действия новых акарицидов.
Научная новизна. На территории Краснодарского края автором выявлено 18 видов иксодовых клещей. Впервые в условиях Кубани обнаружен вид Amblyomma variegatum. Основными эктопаразитами, причинющими наибольший экономический ущерб, являются у свиней Sarcoptes suis, у овец Psoroptes ovis, у кроликов P. cuniculi, у крупного рогатого скота иксодовые клещи, у собак D. canis и у кошек О. cati. Установлена зараженность различных видов животных клещами в разных природно-климатических зонах Краснодарского края и изучено влияние сезона года, возраста животных, технологии и типа содержания животных на зараженность их основными видами клещей семейства 1хосНс1ае, РБОгориёае, 8агсор11с1ае и Demodicidae. Максимальный индекс обилия иксодовых клещей отмечен в июне-июле. Максимальная зараженность крупного рогатого скота, овец и кроликов клещами рода Рзоп^еэ отмечена в осенне-зимний период (25-91,5 %). Саркоп-тоз чаще проявляется у свиней в возрасте 3-6 мес в зимний период, поражая 36,2 % поголовья. Циркуляция клещей рода Вешоёех у собак осуществляется в течение всего года с подъемом зараженности у молодых животных до 24,5 %. Выявлены основные факторы передачи и распространения отодектоза у кошек при различных типах содержания.
Автором изучен и предложен для борьбы с арахнозами животных эффективный препарат мустанг в форме водной эмульсии для опрыскивания и купки животных. Изучена персистентность его действия.
Научная новизна работы подтверждена 3 Патентами на изобретения (2003, 2004, 2005).
Практическая ценность. Результаты исследований автора позволили установить оптимальные в условиях Северного Кавказа сроки обработки животных акарицидами и разработать эффективные схемы защиты животных от кровососущих членистоногих с учетом персистентноси действия акарицидов и эпизоотологии конкретных арахнозов животных.
Результаты исследований автора использованы при разработке следующих нормативно-технических документов:
Временное наставление по применению препарата Мустанг-100, утверждено Департаментом ветеринарии МСХиП РФ 07.08.1998 г. № И840-2.2115.
Временное наставление по применению бовизана для борьбы с иксодо-выми клещами на крупном рогатом скоте и псороптозом овец, утверждено Департаментом ветеринарии МСХиП РФ 19.02.1999 г. № ПВИ-5-1.9.00010.
Учебное пособие для ВУЗов «Арахноэнтомозы сельскохозяйственных животных», рекомендовано Департаментом образования МСХиП РФ (2000 г.).
Рекомендации по профилактике пироплазмидозов и вирусных заболеваний, передаваемых иксодовыми клещами в Краснодарском крае и средства борьбы с ними. Утверждены Администрацией Краснодарского края (2001 г.) и одобрены секцией «Инвазионные болезни животных» РАСХН, 05.12.2001 г., протокол № 4.
Методические рекомендации «Паразитарные болезни нутрий и меры борьбы с ними в Краснодарском крае», утверждены управлением ветеринарии Краснодарского края 23.04.2004 г.
Методические рекомендации «Паразитарные болезни кроликов и меры борьбы с ними в Краснодарском крае», одобрены секцией «Инвазионные болезни животных» РАСХН, 2006 г.
Личный вклад соискателя. Представленная диссертационная работа является результатом 18-летних научных исследований автора. Исследования по изучению эпизоотологии основных арахнозов домашних животных в условиях Кубани, а также основная часть экспериментальных работ по терапии акарозов домашних животных выполнена соискателем лично. В опубликованных работах совместно с О.И. Манукало по испытанию препаратов при псороптозе кроликов, Э.Б. Кербабаевым по борьбе с иксодовыми клещами, В.Г. Лопатиным по паразитозам нутрий основная часть работы выполнена Т.С. Катаевой. О.И. Манукало, Э.Б. Кербабаев, В.Г. Лопатин не возражают об использовании результатов совместных исследований диссертантом Т.С. Катаевой (справки представлены в Совет по защите докторских и кандидатских диссертаций).
Апробация работы. Материалы диссертационной работы доложены на следующих научно-практических конференциях:
- X съезд Всесоюзного общества энтомологов. Ленинград, 1989;
- У1-е Всесоюзное совещание по проблемам теоретической и прикладной акарологии. Ленинград, 1990;
- Научная конференция, посвященная 50-летию Уральского сельскохозяйственного института. Свердловск, 1990;
- Объединенная сессия Координационного совета по ветеринарной гельминтологии, Центрального совета общества гельминтологов РАН и секции «Инвазионные болезни» РАСХН г. Москва (1996, 1997, 1998, 1999, 2000, 2001, 2003, 2004, 2005, 2006, 2007);
- Научная конференция Всероссийского общества гельминтологов РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». Москва, 1999, 2000;
- Научная конференция, посвященная 60-летию Уральской государственной сельскохозяйственной академии. Екатеринбург, 2000 г;
- Научная конференция «Научные основы обеспечения защиты животных от экотоксикантов, радионуклидов и возбудителей опасных заболеваний». Казань, 2005;
- Международная конференция и 3-й съезд Паразитологического общества РАН. Санкт-Петербург, 2003;
- Международная научно-практическая конференция «Актуальные проблемы ветеринарии в современных условиях». Краснодар, 2006.
Основные положения, выносимые на защиту:
1. Иксодофауна крупного рогатого скота Кубани и влияние на нее различных факторов;
2. Эколого-эпизоотологическая характеристика псороптоза овец и кроликов;
3. Эколого-эпизоотологическая характеристика саркоптоза свиней;
4. Эколого-эпизоотологическая характеристика демодекоза собак и отодектоза кошек;
5. Эффективность и персистентность акарицидного действия мустанга и бовизана;
6. Оптимальные схемы применения мустанга при основных арахнозах животных.
Публикации. По теме диссертации опубликовано 47 работ, в том числе 20 работ в изданиях, рекомендованных ВАКом, в которых изложены основные положения и выводы по изучаемым вопросам.
Объем и структура работы. Диссертация изложена на 314 страницах машинописного текста. Состоит из введения, обзора литературы по изучаемым вопросам и собственных исследований, состоящих из описания материалов и методов, а также результатов исследований (10 глав), обсуждения, выводов, практических предложений, списка литературы, содержащего 375 отечественных и 246 иностранных источников. Работа иллюстрирована 54 таблицами и 3 рисунками. Приложение на 25 страницах.
Заключение Диссертация по теме "Паразитология", Катаева, Татьяна Семеновна
Выводы
1. У крупного рогатого скота в условиях Краснодарского края обнаружено 18 видов иксодовых клещей, из них по одному виду из родов Boophilus, Ixodes и Amblyomma, двух видов рода Dermacentor, трех видов рода Нуа-lomma и шести видов рода Haemaphysalis. Наиболее распространенными видами являются В. annulatus (ИО - 16,2 экз.), I. ricinus (ИО - 4,7 экз.) и Н. scu-pense (ИО - 4,2 экз.), численность которых составляет более 95 % от общего количества иксодид, обнаруженных на крупном рогатом скоте. Впервые в России нами зарегистрирован вид клещей A. variegatum.
2. Основными местами обитания иксодовых клещей являются область вымени и паха крупного рогатого скота. Развитие В. annulatus на крупном рогатом скоте происходит в течение 31—36 сут. Личинки и нимфы пребывают в активной стадии в течение 8—12 и 8—15 сут соответственно и в хризалидой стадии по 3-6 сут. Особи клещей, находящиеся в хризалидной стадии, более устойчивы к действию акарицидов.
3. Иксодовые клещи на крупном рогатом скоте встречаются в разных зонах Кубани у 19,5-34,8 % поголовья при интенсивности от 5,8 до 12,3 экз. и индексе обилия от 1,25 до 4,29 экз. Максимальная пораженность иксодида-ми установлена в пойменной и причерноморской зонах у крупного рогатого скота в возрасте 1-3 лет. С возрастом животных пораженность клещами снижается.
4. Крупный рогатый скот поражен иксодовыми клещами в течение всего года с колебаниями от 4,6 % зимой до 68,0 % весной. Пик пораженности отмечается в мае (65,0 %) и октябре (48,5 %). Пол и порода крупного рогатого скота не оказывают существенного влияния на пораженность иксодидами. При стойловом содержании крупный рогатый скот практически свободен от иксодид. Пораженность животных повышается до 29,4 % при пастбищно-лагерном содержании. Возрастной состав иксодовых клещей на теле крупного рогатого скота отмечается в разные месяцы года. Во все сезоны года, кроме января-марта обнаруживали на животных клещей на разной стадии развития. Количество клещей на стадии имаго повышается в мае-июне и сентябре-октябре, личинок в мае-июне и октябре и нимф в июне и октябре-ноябре.
5. Зараженность овец Psoroptes ovis в Краснодарском крае составляет, в среднем 16,0 % с колебаниями в течение года от 0,8 % в июле до 27,6 % в январе. Максимальную зараженность и клинические признаки псороптоза отмечали у овец в возрасте до 3-х лет в зимний период. Зараженность овец разного пола и пород отличалась незначительно при содержании в разных типах хозяйств.
6. Саркоптоз свиней установлен в среднем у 19,96 % поголовья. Свиньи поражены Sarcoptes suis во все сезоны года с пиком зараженности зимой (30,7 %). Летом пораженность свиней снижается до 3,9 %. Максимальная зараженность свиней S. suis была в возрасте 3-7 мес. С возрастом зараженность свиней снижается. Пол и порода свиней не оказывают влияния на зараженность свиней S. suis. Зараженность свиней S. suis в разных типах хозяйств отличалась незначительно, за исключением племенных.
7. Зараженность кроликов в Краснодарском крае Psoroptes cuniculi составляет в среднем 42,4 %. Зимой зараженность кроликов повышается до 73,6 %, а летом снижается до 17,7 %. Установлена незначительная разница в зараженности кроликов разного возраста, пола и породы.
8. У 10,1 % собак городской популяции и 6,9 % сельских собак зарегистрирован демодекоз с проявлением очаговых поражений преимущественно в области головы и конечностей. Зараженность собак Demodex canis повышается в зимне-весенний период до 16,2 %, а летом снижается до 5,5 %. Максимальная зараженность установлена у собак в возрасте 7-12 мес и, особенно у собак короткошерстных пород и бездомных.
9. Отодектозом поражено 17,2 % сельских и 18,0 % городских кошек. Зараженность кошек Otodectes cati повышается в апреле-мае и сентябре-октябре и снижается зимой до 10,6 %. Максимальная зараженность отмечена у кошек в возрасте 0,5—2-х лет (20-18 %) и особенно у бездомных. Пол и порода не оказывают влияния на зараженность кошек. Комнатные кошки были заражены слабо.
10. Для диагностики демодекоза собак предложено вместо трудоемкого и болезненного взятия соскоба кожи скальпелем щадящий метод взятия пробы - волосяной фолликулы путем ее вытягивания кровоостанавливающим зажимом, что повышает эффективность диагностики, уменьшает болезненность, травматизацию тканей, снижает затраты времени на взятие пробы и возможные осложнения.
11. Оценена эффективность нового препарата мустанга (10%-й в.э. зе-тациперметрина) при акарозах на различных видах животных. Препарат в 0,003; 0,006 и 0,009%-ной концентрации показал соответственно 89,4; 99,1 и 100%-ную эффективность против иксодовых клещей на крупном рогатом скоте. Концентрация мустанга равная 0,006 %, рекомендована нами как оптимальная против иксодовых клещей на крупном рогатом скоте.
12. Испытание мустанга в 0,0007; 0,0015 и 0,003%-ной концентрации при псороптозе овец методом купки показало соответственно 89,3; 100 и 100%-ную эффективность. Концентрацию мустанга, равную 0,0015 %, считаем оптимальной для применения. Установлена различная эффективность препарата при разной степени пораженности овец псороптозом. Мустанг в 0,0015%-ной концентрации проявил 100; 99,6 и 89,9%-ный эффект соответственно при легкой, средней и тяжелой степени поражения овец.
13. Мустанг в 0,0015%-ной концентрации на кроликах, пораженных Р. сишсиН показал 80 и 100%-ную эффективность соответственно при одно- и двукратном с интервалом 7 сут применении.
При саркоптозе свиней мустанг в 0,003; 0,006 и 0,009%-ной концентрации двукратно с интервалом 7 сут показал соответственно 86,5; 100 и 100%-ный эффект.
Мустанг в 0,0015%-ной концентрации двукратно с интервалом 7 сут показал 100%-ный эффект при отодектозе кошек. Препарат в 0,0015%-ной концентрации безопасен для организма кроликов, не оказывает влияния на клинические, морфологические и биохимические показатели крови животных.
14. Купка овец при псороптозе в растворе бовизана (малатиона) в 0,2; 0,25 и 0,3%-ной концентрации двукратно с интервалом 7 сут обеспечивает полное освобождение от клещей. Бовизан эффективен в течение 8-9 сут против иксодовых клещей на крупном рогатом скоте в дозе 9,2 и 13,2 г ДВ на животное при расходе 0,5 и 1,5 л водной эмульсии.
15. Персистентность акарицидного действия мустанга после двукратного применения в 0,0015%-ной концентрации составила при псороптозе овец 28 сут, псороптозе кроликов 35 сут, отодектозе кошек 28 сут, при сар-коптозе свиней в 0,006%-ной концентрации двукратно 35 сут, что позволяет рекомендовать его применение при указанных акарозах в неблагополучных зонах с интервалом 28-35 сут.
Практические предложения
Результаты изучения эпизоотологии основных акарозов животных, полученные с учетом местных природно-климатических условий, являются основой для научно-обоснованной организации и проведения в оптимальные сроки мероприятий против акарозов в условиях Краснодарского края.
Испытана эффективность и установлена оптимальная концентрация мустанга и бовизана при основных акарозах на разных видах животных. Установлена персистентность и оптимальные сроки применения мустанга в условиях Краснодарского края, обеспечивающие максимальное акарицидное воздействие.
Полученные результаты использованы при разработке «Временного наставления по применению мустанга» (1998), «Временного наставления по применению бовизана» (1999), утвержденных Департаментом ветеринарии МСХ РФ, «Методических рекомендаций по профилактике пироплазмидозов и вирусных заболеваний, передаваемых иксодовыми клещами в Краснодарском крае и средства борьбы с ними», утвержденных Администрацией Краснодарского края (2001) и одобренных секцией «Инвазионные болезни животных» РАСХН 05.12.2001г., протокол №4; Методических рекомендаций «Паразитарные болезни нутрий и меры борьбы с ними в Краснодарском крае», утвержденных управлением ветеринарии Краснодарского края 23.04.2004г.; Методических рекомендаций «Паразитарные болезни кроликов и меры борьбы с ними в Краснодарском крае», одобренных секцией «Инвазионные болезни животных» РАСХН (2006); Учебного пособия для ВУЗов «Арахноэнтомозы сельскохозяйственных животных», рекомендованного Департаментом образования МСХиП РФ (2000).
Библиография Диссертация по биологии, доктора ветеринарных наук, Катаева, Татьяна Семеновна, Москва
1. Аббасов Т.Г., Аббасов С.Б. Влияние перметрина на воспроизводитель-ную функцию кроликов // Сб. науч. тр. «Проблемы ветеринарной санитарии и экологии».- М., 1998. Т. 105. - С. 25-32.
2. Аббасов Т.Г., Поляков В.А. Препараты из группы пиретроидов дляборьбы с эктопаразитам животных // Вет. патология. — М., 2005. — № 2.-С. 10-11.
3. Аббасов Т.Г., Шерешкова С.Е. Псороптоз (ушная чесотка) кроликов ипрепараты, применяемые при лечении животных // Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. М., 204. — Т. 116. - С. 114-117.
4. Авдиенко В.А. Методические рекомендации по лечению демодекозаплотоядных, осложненного стафилококковой инфекцией // Рос. пара-зитол. журнал. 2007. - № 2. - С. 117-122.
5. Адетунджи Банколе, Майоров А.И. Распространение, патогенез и клинические проявления саркоптоидозов у кроликов // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. М., 2001. - Т. 37. - С. 29-33.
6. Айкимбаев М.А. Туляремия в Казахстане: Автореф. дис. . док. мед. наук. — Алма-Ата, 1967. 31 с.
7. Алексеев А.Н., Кондрашова З.Н. Организм членистоногих как средаобитания возбудителей. Свердловск: Уральский науч. центр АН СССР, 1985.- 181 с.
8. Алфеев Н.И. О длительности и формах диапаузы иксодовых клещей всвязи с условиями среды // Тр. Воен.-мед. акад. им. С.М. Кирова. — 1954.-Т. 58.-С. 121-138.
9. Андреева A.B., Кидрасова З.М. Эпизоотическая обстановка по демодекозу собак // Матер, конф. «Актуал. пробл. вет. медицины, животноводства, товароведения, обществознания и подготовки кадров на Южном Урале на рубеже веков». Троицк, 2000. — Ч. 1. - С. 3—4.
10. Андричук Б.В. Эффективность пиретроидных препаратов при псороптозе овец // Вопросы вет. токсикологи, энтомологии и дератизации. — М., 1987.-С. 103-106.
11. Андроников В.А., Семушкина М.А. Зоолого-паразитологические предпосылки о существовании очагов КЭ в Чувашии // Матер, межобл. науч. практ. конф. — Ижевск, 1968. С. 17—19.
12. Арестов И.Г., Ятусевич И.А. Саркоптоз свиней и меры борьбы с ним //
13. Матер. 11-й Междунар. и практ. конф. «Ветеринарные и зооинже-нерные проблемы в животноводстве и метод обеспечения учебного процесса». 1997. - С. 171-173.
14. Арзамасов И.Т. Иксодовые клещи. Минск, 1961. - 132 с.
15. Архипов И.А., Аксенова И.Н., Земенов В.А. Эффективность дуотинапротив эндо- и эктопаразитов крупного рогатого скота // Ветеринария. 1995. - № 2. - С. 38-39.
16. Архипов И.А., Кротенков В.П. Эффективность дуотина против нематодозов и демодекоза собак // Бюл. Всерос. ин-та гельминтол. — 1996. — Вып. 56. С. 4-7.
17. Архипов И.А., Мальцев К.Л., Дурдусов С.Д. и др. Оценка противопаразитарной активности Дектомакса // Ветеринария. — 1997. № 2. - С. 34.
18. Афанасьева А.И., Архипова К.Д., Богданов И.В. Сравнительная терапевтическая эффективность акарицидных препаратов при псороптозе кроликов // Актуальные проблемы патологии животных и человека. — Барнаул, 1996.-С. 112.
19. Ахмадеев Р.Н., Червяков Д.К. Новые лекарственные средства при псороптозе кроликов // Вопросы химизации сельского хозяйства в Татарской АССР. 1985. - С. 128-129.
20. Багамаев Б.М., Позов С.А. Препарат бутокс при псороптозах как экологический фактор борьбы // Животноводство на Европейском Севере:фундам. пробл. и перспективы развития. — Петрозаводск, 1996. — С. 136-137.
21. Базаршин М.Б. Меры борьбы при псороптозе овец // Ветеринария. —1989.-№9.-С. 20-23.
22. Байерден К. Антгельминтная персистенция моксидектина у овец // Тр.
23. Междунар. симп. Всемирн. ассоц. паразитол. — Кембридж, Великобритания, 1993.-С. 131.
24. Бакулов И.А. География болезней животных зарубежных стран. — М.,1971.- 178 с.
25. Балашов Ю.С. Периодизация овогенеза аргасовых и иксодовых клещей
26. Паразитологический сборник. Л., 1963. - Вып. 21. — С. 39—43.
27. Балашов Ю.С. Кровососущие клещи (1хосПс1ае) — переносчики болезнейчеловека и животных. Л., 1967. - 317 с.
28. Балашов Ю.С. Патогенность возбудителей трансмиссивных инфекцийдля членистоногих переносчиков // Итоги развития учения о природной очаговости болезней человека и животных и дальнейшие задачи. -М., 1972.-С. 162-179.
29. Балашов Ю.С. Паразито-хозяинные отношения членистоногих с наземными позвоночными. — Л., 1982. — 553 с.
30. Балашов Ю.С. Роль морфофизиологических особенностей кровососущих членистоногих в передаче возбудителей инфекций // Паразитологический сборник. Л., 1984. - Вып. 32. - С. 22-42.
31. Балашов Ю.С. Иксодовые клещи — паразиты и переносчики инфекций. —
32. Санкт-Петербург, 1998.-285 с.
33. Басистый П.А. Мнение практического врача // Ветеринария. 1985. - №2.-С. 60.
34. Беклемишев В.Н. Круг естественных переносчиков трансмиссивных болезней, поражающих человека // Зоол. журн. 1955. - Т. 34., Вып. 1. -С. 3-16.
35. Беклемишев В.Н. Некоторые вопросы эпидемиологии и эпизоотологииклещевого энцефалита // Мед. паразитол. и паразитар. болезни. -1959. — № 3. С. 310-318.
36. Беклемишев В.Н. Биоценологические основы сравнительной паразитологии. М., Л., 1970. - 502 с.
37. Белов А.Д., Данилов Е.П., Дукур И.И. Болезни собак. М.: Колос, 1995.-215 с.
38. Белозеров В.Н. Жизненные циклы и сезонные адаптации у иксодовыхклещей (Acariña, Ixodoidea) // Матер, докл. на XXVIII ежегод. чтении памяти H.A. Холодковского. Л., 1976. - С. 53-101.
39. Белозеров В.Н. Экологические ритмы у иксодовых клещей и их регуляции // Паразитологический сборник. Л., 1981. - Вып. 30. - С. 22-24.
40. Белоконов И.И., Пономаренко А.Н., Пономаренко В.Я. Бактериальныеассоциации при демодекозе собак // Пробл. и перспективы паразито-ценологии. Харьков, Луганск, 1997. - С. 16-17.
41. Белху Тесфайе Негуссие, Лукашова Е., Молчанов И.А. и др. Некоторыеэкстенсивные показатели эпизоотического процесса при демодекозе собак в условиях Москвы // Состояние, пробл. и перспективы развития вет. науки России. М., 1999. - Т. 2. - С. 303-304.
42. Беляева Н.С., Рябова И.Н. Жизненные циклы иксодовых клещей на юге
43. Хабаровского края // Вопросы географии Дальнего Востока. Хабаровск. 1971. - Т. 9. - С. 302-326.
44. Бензиор Е., Карлотти Д.Н. Руководство по демодекозу у собак // Ветеринар. 2000. - № 3. - С. 32-36.
45. Бердыев А.Б. Об экологии Hl. anatolicum exavatum в Туркмении // Зоологический журнал. 1973. - Т. 52, Вып. 2. - С. 191-196.
46. Бердыев А.Б. Экология иксодовых клещей Туркменистана и их роль вэпизоотологии природно-очаговых болезней. — Ашхабад, 1981.-281 с.
47. Березкина С.В„ Головина Л.П., Дриняев В.А. Эффективность аверсектапри псороптозе овец // Матер, конф. «Систематика, таксономии и фауна паразитов». М., 1996.— С. 15-16.
48. Вернадская З.М. Итоги работы УзНИВИ по изучению иксодовых клещей
49. Узбекистана // Болезни с.-х. животных. — Ташкент, 1959. — T. XIII. — С. 39-69.
50. Бирюков A.A. Терапевтическая эффективность препарата Леда при демодекозе собак // Сб. науч. тр. Всерос. гос. НИИ контроля, стандартизации и сертификации вет. препаратов. — 1996. — Т. 60. — С. 26—31.
51. Бирюков A.A. Некоторые биологические свойства соединения амитраз иакарицидной композиции на его основе // Сб. науч. тр. Всерос. НИИ вет. санитарии, гигиены и экологии. 1998. - Т.1 04. - С. 57-63.
52. Бирюков A.A. Санитарно-токсикологическая оценка амитраза как средства борьбы с демодекозом собак: Автореф. дис. . канд. вет. наук. — М, 1998.-23 с.
53. Биссерт С. Оценка орального препарата моксидектина против отдельныхрезистентных и чувствительных к антгельминтикам линий нематод у ягнят // New Zeland. Vet. J. 1992. - V. 40. - P. 97-100.
54. Богданов H.H. Курс кожных болезней животных. М.: Сельхозиздат,1936.-368 с.
55. Боженко В.П., Шевченко C.B. К экологии клеща Dermacentor marginatusв условиях дельты Дона // Зоол. журн. — 1954. -Т. 33, Вып. 3. С. 557-560.
56. Бойко В.А. Клещи I. persulcatus и I. ricinus в лесостепной зоне Среднего
57. Поволжья // Матер. III Междунар. акаролог. конгресса. Прага, 1971. -С.31.
58. Бойко В.А., Ивлиев В.Г., Аюпов A.C. Иксодовые клещи в лесах Среднего Поволжья (лесостепная зона). Казань, 1982. - 148 с.
59. Буланова-Захваткина Е.М. Семейство Psoroptidae Can. — чесоточныеклещи-накожники и кожееды // Клещи грызунов фауны СССР. М.— Л., 1955.-С. 119-122.
60. Бурлаков С.А., Паутов В.Н. Комары и клещи — переносчики возбудителей вирусных и риккетсиозных заболеваний человека. М.: Медицина, 1975.-215 с.
61. Бурова A.A., Кербабаев Э.Б., Гладков В.Г. и др. Новый препарата бовизан для борьбы с иксодовыми клещам // Ветеринария. 2000. - № 5. -С. 28-30.
62. Ванг Г., Смит Л. Эффективность инъекций моксидектина против вшей и эндопаразитов у крупного рогатого скота // Тр. Междунар. симпоз. Все-мирн. ассоц. паразитол. — Кембридж, Великобритания, 1993. С. 123.
63. Василевич Ф.И. Саркоптоидозы с.-х. животных.—М.: МВА, 1986. — С. 1-17.
64. Василевич Ф.И. Демодекозы животных. М.: МВА, 1993. - 21 с.
65. Василевич Ф.И. Химиотерапия демодекоза у собак // Матер, науч. конф.
66. Актуальные вопросы инфекц. и инваз. болезней животных». — М., 1993.-С. 36-37.
67. Василевич Ф.И., Розовенко М.В. Клинико-эпизоотологические особенности и химиотерапия демодекоза собак // Матер, науч. конф. «Актуальные вопросы инфекц. и инваз. болезней животных». — М., 1994. — С. 17-19.
68. Василевич Ф.И., Розовенко М.В. Эпизоотологические особенности и лечение при демодекозе собак // Ветеринария. — 1994. — № 6. — С. 36-38.
69. Василевич Ф.И., Ларионов C.B. Демодекоз животных. М., 2001. — 254 с.
70. Васильева В.А., Небайкина Л.А., Рыбин A.A. Гомеопатическое лечениедемодекоза собак // Новые подходы в естеств. исслед.: экология, биология, с.-х. науки. Саранск, 2001. — Вып.1. - С. 83-84.
71. Васильева В.А., Небайкина Л.А. Комплекс лечебно-профилактическихмероприятий при демодекозе собак // Новые подходы в естеств. исслед.: экология, биология, с.-х. науки. Саранск, 2001. - Вып. 1. - С. 84-86.
72. Вершинин И.И., Леонтьева Ф.Ф. Опыт применения хлорофоса при чесотках животных // Сб. раб. Свердлоского с.-х. ин-та. 1970. - С. 17—19.
73. Водянов A.A., Масленникова В.И. Изменение концентрации гаммаизомера ГХЦГ при купании овец // Научн. тр. Ставропольского с.-х. ин-та. 1973. - Т. 5. - С. 141-144.
74. Водянов A.A. Новые средства и совершенствование методов борьбы спсороптозом овец и крупного рогатого скота: Автореф. дис. . докт. вет. наук. М., 1985. - 33 с.
75. Водянов A.A. К вопросу видовой специфичности накожниковых клещей
76. Диагностика, лечение, профилактика инфекционных и паразитарных заболеваний сельскохозяйственных животных. — Ставрополь, 1986.-С. 72-76.
77. Волков Ю.П., Промоненков B.C. Этапы и перспектива развития синтезапиретроидов. М., 1984. - С. 24.
78. Воробьев М.М. Древесный деготь в борьбе с чесоткой кроликов // Кролиководство. 1936. - № 11. - С. 26-27.
79. Габдулин В.А. Эпизоотология основных паразитов свиней в фермерскиххозяйствах Московской области и разработка мер борьбы с ними: Автор, дис. . канд. вет. наук. — 2000. — 25 с.
80. Гаврилова H.A. Эффективность применения инъекционной формы авертина при демодекозе собак // Матер, межвуз. науч. конф. проф.- препод. сост., науч. сотр. и асп. С.-Петерб. гос. акад. вет. мед. — СПб., 2001.-С. 36-37.
81. Галузо И.Г. Кровососущие клещи Казахстана. Алма-Ата: Изд-во АН
82. КазССР, 1947.-Т. 2.-281 с.
83. Галузо И.Г. Кровососущие клещи Казахстана, роды Dermacentor, Rhipicephalus. Алма-Ата, 1948. - Т. 3. - 371 с.
84. Галузо И.Г. Кровососущие клещи Казахстана, роды Boophilus, Haemaphysalis и Ixodes. Алма-Ата, 1950. — Т. 4. — 338 с.
85. Гамалеев А.Д., Можаров A.B., Селезнев Ю.Л. и др. Профилактика Дальневосточного тейлериоза // Вет. нозогеография. Владивосток, 1973. -С. 106-113.
86. Гандзюк В.Н. Аэрозоли пиретроидов против эктопаразитов // Ветеринария. 1990. - № 1. - С. 21-22.
87. Ганиев И.М. Иксодовые клещи (фауна, экология, биология) и эпизоотология пироплазмидов и анаплазмоза овец и коз Западного Прикас-пия: Автореф. дис. . докт. биол. наук. М., 1970. - 35 с.
88. Гарипов Т.В. Фармакология сульфоксидов нефтехимического синтеза //
89. Сб. науч. тр. Ленингр. вет. ин-т. Л., 1989. - № 106. - С. 29-32.
90. Гарумянц Л.Г. Распространение псороптоза овец в Самаркандской области // Тр. Самаркандского СХИ. 1963. - Т. 14. - С. 47.
91. Гиляров М.С. Основные сведения о насекомых // Жизнь животных. М.:
92. Просвящение, 1969. Т. 3. - С. 182.
93. Гладков В.Г., Катаева Т.С., Кербабаев Э.Б. и др. // Ветеринарная газета.- 1997. -№ 17.-С. 5.
94. Голов Д.К., Федеров В.Н. О роли клещей Бегтасегйог БНуагит в эпидемиологии туляремии // Сообщение I Меж. журн. Казахстана. 1934. -Вып. З.-С. 37^48.
95. Головкина Л.П., Дриняев В.А. Применение аверсекта на овцах // Ветеринария. 1996. - № 7. - С. 38^40.
96. Головкина Л.П. Влияние лекарственной формы и путей введения перпарата на биодоступность аверсектина С при демодекозе собак // Акту-ал. вопр. диагностики и борьбы с болезнями с.-х. животных. — Ставрополь, 1999.-С. 173-174.
97. Гончаров А.П. Особенности поведения кроличьего накожника в условиях внешней среды // 10-е совещ. по паразитол. пробл. и природно-очаговым болезням. М.: Из-во академии наук СССР, 1959. - Вып. З.-С. 53.
98. Гончаров А.П. Морфологические особенности стадий развития кроличьего накожника // Сб. тр. Харьк. вет. ин-та. Харьков, 1960. - Т. 24. -С. 321-329.
99. Горбунов Ф.П., Протопопова О.М. Гипосульфитотерапия ушной чесоткикроликов // Кролиководство. 1935. - № 9. - С. 22.
100. Горчаковская Н.Н. Испытание метода прямого истребления клещей I.регБикаШБ в природе // В кн.: Природная очаговость болезней человека и краевая эпидемиология. Л., 1955. - С. 286-289.
101. Гурбо Г.Д. Эпидемиологическая характеристика очагов клещевого энцефалита подзоны осиново-березовых лесов лесной зоны Западной
102. Сибири и Восточного Зауралья: Автореф. дис. . канд. мед. наук. — Тюмень, 1972. 19 с.
103. Гусев В.Ф., Балашова A.B. Арахнозы животных Краснодарского края // Тр.
104. Азово-Черноморской краевой НИВС. 1937. - Вып. 5. - С. 189-204.
105. Гутира Ф., Марек И., Маннигер Р., Мочи И. Частная патология и терапия домашних животных. М., 1963. - 424 с.
106. Давыдова И.Н., Солопов Н.В. Распространение демодекоза среди собакг. Тюмени // Науч. обеспечение АПК Сибири, Монголии, Казахстана, Беларуси и Башкортостана. Новосибирск, 2002. — С. 395-396.
107. Давыдова М.С., Лукин A.M. Ландшафтно-географическое распределение иксодовых клещей // В кн.: Биологическое районирование Новосибирской области. Новосибирск, 1969. - С. 250-564.
108. Данилов Е.П., Майоров А.И., Чижов В.А. Болезни пушных зверей. М.:1. Колос, 1984.-105 с.
109. Демидов Н.В. Гельминтозы животных. Справочник. М.: Агропромиздат, 1987.-335 с.
110. Демьяненко Л.Л. Морфо-биологические особенности возбудителя и меры борьбы с псороптозом кроликов: Автореф. дисс. . канд. биол. наук.-Уфа, 2004.-23 с.
111. Демьянович М.П. Основы гипосульфитотерапии чесотки // Тр. ин-та вет.дерматол. — 1938. — Т. 1. — С. 6—16.
112. Денисов A.A. Фауна, экология, биология клещей семейства Ixodidae и ихроль в эпизоотологии инфекционных болезней в Нижнем Поволжье РФ: Автореф. дис. . канд. биол. наук. — Волгоград, 2005. 23 с.
113. Джапаридзе Н.И. Иксодовые клещи Грузии. — Тбилиси: АН ГрузССР,1960.
114. Дзасохов Г.С. Профилактика протозойных болезней животных. — М.:1. Колос, 1964.-403 с.
115. Домацкий Н.И., Дядечко В.Н., Кузнецов В.Д., Павлов С.Д. Методы химиотерапии при акарозе свиней в крупных специализированных хозяйствах // Вопросы вет. арахно-энтомологии и вет. санитарии. — Тюмень, 1972. Вып. 4. - С. 181-186.
116. Дубинин В.Б. Колебания численности популяций постоянных наружныхпаразитов млекопитающих и их причины // Журнал общей биологии. -1950.-Т. 11. № 2. - С. 15-17.
117. Дубинин В.Б. Современное состояние вопроса о классификации чесоточных клещей. Чесоточные клещи, их биология, вред в сельском хозяйстве, меры профилактики и борьбы с ними. М.: Советская наука, 1954.-С. 12-17.
118. Дубинин В.Б. Чесоточные клещи человека. -М.: Сов. наука, 1954. С. 171.
119. Дубинин В.Б. Чесоточные клещи, их биология, вред в сельском хозяйстве, меры профилактики и борьбы с ними. М.: Советская наука, 1954. - 172 с.
120. Дубинин В.Б. Надсемейство Sarcoptoidea (Megn. et Trt.) — чесоточныеклещи // Клещи грызунов фауны СССР. M.-JL, 1955. - С. 110-124.
121. Дубовой Б.Л., Циммерман В.А. Децис для борьбы с псороптозом кроликов // Актуальные вопросы диагностики и борьбы с болезнями с./х. животных. Ставрополь, 1999. - С. 177—178.
122. Дьяченко Ю.В. Арахноэнтомозы плотоядных (эпизоотическая ситуация,патогенез, симптомы и меры борьбы): Автореф. дис. . канд. вет. наук.- 1998.-24 с.
123. Ефремова Е.А., Опанасюк A.C. Лечение демодекоза у собак // Пробл.адаптации с.-х. животных. Новосибирск, 1997 (1998). - С. 182-183.
124. Жданов В.М., Львов Д.К. Эволюция возбудителей инфекционных болезней. -М., 1984.-270 с.
125. Жмаева З.М. Об иксодовых клещах в Серахском районе Туркменской ССР // В сб.: Вопросы краевой, общей, экспериментальной паразитологии.-Л., 1955.-№9.-С. 67-71.
126. Жмаева З.М. Иксодовые клещи и смешанная форма инфекций // Итогиразвития учения о природной очаговости болезней человека и животных и дальнейшие задачи. М., 1972. — С. 123-146.
127. Загребин А.И., Веселкин Г.А., Тихомиров С.Н. Циперметрин для защиты крупного рогатого скота от мух // Ветеринария. — 1990. — № 6. — С. 24-26.
128. Засухин Д.Н. Материалы к изучению биологии клещей Ixodes // Тр. Вет.
129. Ин-та. -Саратов, 1935(a). Т. 3. - С. 148-155.
130. Засухин Д.Н. Клещи и проблема борьбы с пираплозмозом лошадей // Тр.
131. Вет. ин-та. Саратов, 1935(6). - Т. 3. - С. 98-101.
132. Зимина Г.В., Куликова А.И. Иксодовые клещи Астраханской области иих роль в формировании природных очагов и передачи арбовирусов человеку // Сб. науч. труд. «Вопросы риккетсиологии и вирусологии». Астрахань-Москва, 1996. - С. 48-50.
133. Золотов П.Е., Сухомлинова О.И. Распространение иксодовых клещей натерритории Ленинградской области // Тр. инст. полиомиел. и вирус, энцифалитов. Акад. мед. наук. 1970. - Т. 18. - С. 44-47.
134. Ильященко В.И. К морфологии клещей рода Psoroptes // Ветеринария.1984.-№4.-С. 36-37.
135. Ильященко В.И. Исследование биологии псороптозных клещей // Тез.докл. 5-го Всес. Акарол. Совещ. Фрунзе, 1985. - С. 139-141.
136. Ильященко Н.В., Симецкий М.А., Милинец Е.И. Аэрозольные пены акарицидов при псороптозе кроликов // Ветеринария. 1979. - № 1. — С. 70-71.
137. Ильященко Н.В. Саркоптоидные клещи (Acariña, Psoroptidae,
138. Sarcoptidae). Совершенствование методов диагностики и борьбы с ними: Автореф. дис. . докт. биол. наук. — Кустанай, 1992. — 42 с.
139. Казакова И.К. Препарат цидем для лечения демодекоза собак // Пробл.вет. санитарии и экологии. М., 1993. - Ч. 2. - С. 95-96.
140. Калита С.Р. Иксодовые клещи Краснодарского края // Матер, докл. 8-госовещ. по паразитарным проблемам. — М., 1955. — С. 17—20.
141. Калита С.Р. Иксодофауна Краснодарского края // Науч. тр. Кубанскогомед. ин-та. Изд-во «Сов. Кубань», 1957. - Т. 15, № 28. - С. 203-207.
142. Карпов С.П. Томский очаг клещевого энцефалита и вопросы его оздоровления // Тр. Белорус. НИИ эпидемиол., микробиол. и гигиены. — 1965.-Т. 5.-С. 212-221.
143. Катаева Т.С. Ивомек в борьбе с псороптозом кроликов // Тез. докл. обл.науч.-практ. конф. «Эффективность применения пестицидов в снижении потерь сельскохозяйственной продукции». Тюмень, 1988. -С.12.
144. Катаева Т.С. Лечение псороптоза кроликов // Кролиководство и звероводство. 1989. - № 2. - С. 26-28.
145. Катаева Т.С., Давлетшин А.Н., Тихомиров С.М. Псороптоз кроликов имеры борьбы с ним в Свердловской области. Рекомендации. -Свердловск, 1989. 14 с.
146. Катаева Т.С. Псороптоз кроликов и совершенствование методов исредств лечения их: Автореф. дис. . канд. вет. наук. Тюмень, 1989.
147. Катаева Т.С. Акарицидная эффективность некоторых химических препаратов // Сб. раб. «Новое в профилактике и лечении животных». — Пермь, 1991.-С. 18-20.
148. Катаева Т.С. Экологические особенности применения системных препаратов при паразитарных заболеваниях сельскохозяйственных животных // Тр. КубГАУ. 1995. - Вып. 349. - С. 12-25.
149. Катаева Т.С., Кербабаев Э.Б.Возможность использования системныхпрепаратов для одномоментного воздействия на экто- и эндопаразитов животных // Вестник РАСХН. 1997. - № 2. - С. 71-74.
150. Катаева Т.С., Кербабаев Э.Б. Мустанг перспективный иксодоцид // Сб.
151. Современное состояние и перспективы интеграции ветеринарной науки и практики в условиях реформирования с.-х. производства прикаспийского региона». — Махачкала, 1997.— С. 178-179.
152. Катаева Т.С., Костылева М.А. Патент на изобретение №2298583. Способисследования демодекозау собак, от 10.05.2007.
153. Катаева Т.С., Костылева М.А. Особенности диагностики демодекоза собак // Рос. паразитол. журнал. — 2008. № 2. - С. 63-65.
154. Кенигсберг JI.M. Ушная чесотка кроликов и лечение ее гипосульфитом исоляной кислотой // Тр. гос. ин-та вет. дерматологии. 1938. - Т. 1. -С. 52-62.
155. Кербабаев Э.Б. Аргасовые и иксодовые клещи Туркмении: Автореф. дис.докт. биол. наук. -М., 1969. — 22 с.
156. Кербабаев Э.Б. Аргасовые и иксодовые клещи Туркмении: Дис. . докт.биол. наук. -М., 1969. 651 с.
157. Кербабаев Э.Б., Стринадкин П.С., Метелица А.К., Аксенова Н.И. Акарицид системного действия // Тез. докл. 5-го Всес. акарол. совещ. -Фрунзе, 1985. С. 149-150.
158. Кербабаев Э.Б., Скосырских JI.H. Ущерб, причиняемый иксодовыми идемодекозными клещами кожевенной промышленности // Паразитология. 1988. - Т. 22, Вып. 2. - С. 182-184.
159. Кербабаев Э.Б., Волцит О.В., Катаева Т.С. Обнаружение иксодовогоклеща Amblyomma variegatum в Краснодарском крае // Ветеринария. 1997. — № 12.-С. 33-36.
160. Кербабаев Э.Б. Борьба с псороптоидными клещами // Тр. Всерос. ин-тагельминтол. 1998. - Т. 34. - С. 188-192.
161. Кербабаев Э.Б. Основы ветеринарной акарологии. Методы и средстваборьбы с клещами // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. — 1998. — Т. 34. — 218 с.
162. Кербабаев Э.Б., Хайдаров K.M., Катаева Т.С. и др. Препарат фьюри какинсекто-акарицид в ветеринарии // Проблемы энтомологии в России. -СПб., 1998.-Т. 1.-С. 183-184.
163. Кербабаев Э.Б., Василевич Ф.И., Катаева Т.С., Розовенко М.В. // Арахноэктомозы с.-х. животных. 2000. — С.26-32.
164. Кербабаев Э.Б., Катаева Т.С., Брудный P.A. и др. Обоснование методов исредств борьбы с иксодовыми клещами, комарами и мухами на крупном рогатом скоте в условиях многоукладного хозяйствования // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. 2000. — Т. 36. - С. 58-64.
165. Кербабаев Э.Б., Катаева Т.С., Ралка И.П. Эпизоотическая ситуация попироплазмидозам и борьба с их переносчиками // В етеринария. -2000.-№6.-С. 10-13.
166. Кербабаев Э.Б., Катаева Т.С., Брудный P.A. Влияние антропогенноговоздействия на фауну иксодовых клещей в Краснодарском крае // Сб. науч. тр. «Проблемы энтомологии и арахнологии». 2001. - № 43. -С. 115-117.
167. Кербабаев Э.Б., Шевкопляс В.Н. Экологический тип паразитохозяинных отношений иксодовых клещей // Ветеринария. — 2004. — № 8. — С. 23-30.
168. Кербабаев Э.Б., Шевкопляс В.Н. Мониторинг ситуации по зараженностикрупного рогатого скота иксодовыми клещами в равнинной зоне Краснодарского края // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. — 2007. — Т. 45. -С. 112-120.
169. Кербабаев Э.Б., Шевкопляс В.Н. Иксодовые клещи у крупного рогатогоскота на северо-западном Кавказе // Тр. Всерос. ин-та гельминтол. -2007.-Т. 45.-С. 121-140.
170. Климок М.А., Константинов А.П., Шайкин В.И. Эффективность баймекапротив псороптоза кроликов // Матер, докл. науч. конф. «Вклад молодых ученых в развитие Сиб. агр. науки». Новосибирск, 1999. — С. 136-137.
171. Клочко Р.Т. Борьба с саркоптозом свиней // Ветеринария. 1976. - № 10.-С. 50-51.
172. Клочко Р.Т. Эпизоотология саркоптоза свиней и разработка мер борьбы:
173. Автореф. дис. канд. вет. наук. — 1983. 23 с.
174. Коллар O.JI. Фармако-токсикологическое изучение неочищенных сульфона и сульфоксида и их применение при псороптозе кроликов и ото-дектозе лисиц: Автореф. дис. канд. вет. наук. Казань, 1986. - 18 с.
175. Колонии Г.В. Мировое распределение иксодовых клещей род Наетаphysalis. -М., 1978.-72 с.
176. Колонии Г.В. Мировое распределение иксодовых клещей род Ixodes.1. M., 1981.- 116 с.
177. Колонии Г.В. Мировое распределение иксодовых клещей роды Hyalomта, Aponomma, Amblyomma-M., 1983. 121 с.
178. Колонии Г.В. Мировое распределение иксодовых клещей роды Dermacentor, Anocentor, Cosmiomma, Dermocentonomma, Boophilus, Margaropus, Nosomma, Ripicentor, Rhipicephalus, Boophilus, Margaropus, Anomalohimalaya. M., 1984. - 96 c.
179. Колчанова Л.П. Эколого-паразитологические предпосылки, распространения иксодовых клещевых боррелиозов в Западной Сибири: Авто-реф. дис. канд. биол. наук. Тюмень, 1996. — 17 с.
180. Комаров А.К., Гончаров А.П., Смирных И.Л. Эпизоотология псороптозаи цистицеркоза кроликов и их профилактика в условиях крупного кролиководческого хозяйства // Пр облемы паразитологии. — Ки ев, 1975.-Ч. 1.-С. 241-242.
181. Кононов В.П., Качулин В.И., Скосырских Л.Н. Перспективы внедренияпиретроидов при псороптозе // Сб. науч. тр. Всерос. НИИ вет. энтомологии и арахнологии. 1994(1995). - № 36. - С. 68-69.
182. Коренберг Э.И. Реакция таежных клещей (Ixodes persulcatus P. Sch.) науглекислый газ и некоторые перспективы его применения в полевых исследованиях // Мед. паразитол. и паразитарн. болезни. 1969. - № 4.-С. 427-431.
183. Коренберг Э.И., Ковалевский Ю.В. Районирование ареала клещевогоэнцефалита. М., 1981.- 148 с.
184. Котельникова Г.М. О сохранении вируса лихорадки Западного Нила в экспериментальном заражении иксодовых клещей // Тр. Биол.-почв. ин-та ДВНЦ, новая серия. Владивосток, 1975. - № 28(131). - С. 33-36.
185. Кравченко И. Гельминтозы маралов и цидектин // Ветеринарная газета. —1994. -№8(44). -С. 5.
186. Крайч Т. Эффективность моксидектина против ивермектинрезистентного штамма Н. contortus у овец // Vet. Parasitol. 1992. - V. 42.-P. 329-333.
187. Кротенков В.П., Архипов И.А. Эффективность дуотина против нематодозов и демодекозе овец // Бюл. Всерос. ин-та гельминтол. 1996. -Вып. 56. - С. 4-7.
188. Кудрявцев Е.А. Разработка аэрозольных форм инсектоакарицидов и изучение их эффективности в борьбе с псороптозом кроликов // Сб. науч. тр. Всерос. НИИ вет. санитарии, гигиены и экологии. М., 2000. -Т. 108.-С. 39-47.
189. Кузнецов В.Д., Коновалова В.М., Зыкова З.И. Псороптоз кроликов // Ветеринария. 1997. - № 7. - С. 27-28.
190. Кулик И.Л., Винокурова Н.С. Ареал клеща Dermacentor marginatus в
191. СССР // Мед. паразитол. 1982. - № 3. - С. 23-28.
192. Курчатов В.И. Иксодовые клещи Северного Кавказа // Тр. Всес. ин-таэксп. вет.-1935.-Т. 11.-С. 115-123.
193. Кучерук В.В., Коренберг Э.И., Смирнов A.B. и др. Оценка эффективности уничтожения таежных клещей в Удмурдской АССР авиахимическим методом / В кн.: Клещевой энцефалит в Удмуртии и прилежащих областях. Ижевск, 1969. - С. 9-14.
194. Лазарев Г., Понамарев И.А., Дурдусов С.Д., Онищук М.С. Эффективность цидектина при паразитарных болезней жвачных в аридной зоне юга России // Ветеринария. 1994. - № 2. - С. 29-32.
195. Ларионов C.B. Морфологические особенности клещей рода Demodexживотных: Автореф. дис. . докт. вет. наук. М., 1991. - 34 с.
196. Лесников А.И. Биологические особенности Demodex canis и эпизоотология демодекоза собак: Автореф. дис. . канд. вет. наук. С.-П., 1999. -23 с.
197. Лесников А.И. О распространенности демодекоза у собак города Воронежа // Обеспечение стабилизации в условиях рыноч. форм хозяйствования. Воронеж, 1997. - Ч. 2. - С. 54-55.
198. Липницкий С.С., Литвинов В.Ф., Шимко В.В., Гантимуро А.И. Справочник по болезням домашних и экзотических животных. — Мн: Урад-жай, 1996.-С. 170.
199. Листишенко A.A. Эффективность биологических и химических инсектоакарицидов в борьбе с наружными паразитами птиц: Автореф. дис. . канд. биол. наук. — М., 1982. — 16 с.
200. Ломсадзе Р.Н. Материалы к изучению эпизоотологии Ку-лихорадки вусловиях Грузинской ССР // Матер. 1-й науч. конф. Тбилиси, 1957. -С. 121-127.
201. Лотоцкий Б.В. Материалы по фауне, биологии клещей надсем. Ixodoideaв Гисарской долине Таджикистана в связи с обоснованием мер профилактики пироплазмозов крупного рогатого скота // Тр. Тадж. Фил. АН СССР. 1945.-Т. 14.-С. 69-121.
202. Луцких С.К. Нутталиоз лошадей: Автореф. дис. . докт. вет. наук. —1. Ставрополь, 1997. — 35 с.
203. Львов В.К., Лебедев А.Д. Экология арбовирусов. — М.: Медицина, 1974.- 183 с.
204. Львов Д.К., Ильичев В.Д. Миграции птиц и перенос возбудителей инфекции. -М.: Наука, 1979. 269 с.
205. Львов Д.К. Экология вирусов и эпидемиология вирусных инфекций //
206. Общая и частная вирусология. М.: Медицина, 1982. — Т. 1. — С. 407-436.
207. Львов Д.К., Клименко С.М., Гайдамович С .Я. Арбовирусы и арбовирусные инфекции. М., 1989. - 335 с.
208. Лысункина В.А., Звагельская В.Н. К изучению резервуара вируса лихорадки Ку в Узбекистане // ДАН Узбекской ССР. 1957. - № 7. - С. 36-42.
209. Любашенко С.Я., Петров А.М.Ушная чесотка. — М.: Колос, 1962. — С.146.149.
210. Любашенко С.Я. Арахно-энтомозы. Болезни пушных зверей. М.: Колос, 1973.-С. 205-218.
211. Магомедова С.А. Клещи и насекомые переносчики возбудителей инфекционных болезней человека в низменном и предгорном поясах Дагестана: Автореф. дис. . канд. биол. наук. Махачкала, 2004. - 22 с.
212. Майоров А.И. Применение ТАП-85 при отодектозе лисиц и песцов //
213. Науч. тр. НИИ пушного звероводства и кролиководства. 1973. - Т. 12.-С. 345-347.
214. Майоров А.И., Вачугов В.И., Сухов A.A. Предупреждение и лечение незаразных болезней // Кролиководство и звероводство. — 1981. — № 6.- С. 28-29.
215. Майоров А.И. Саркоптоидозы зверей и кроликов, пути их распространения // Науч. тр. НИИ пушного звероводства и кролиководства. — 1982.-Т. 27.-С. 131-134.
216. Майоров А.И. Новое в лечении и профилактике ушной чесотки у пушных зверей и кроликов // Науч. тр. НИИ пушного звероводства и кролиководства. 1982. - Т. 27. - С. 135-138.
217. Майоров А.И., Верета JI.E. Терапевтическая эффективность ивермектина при ушной и зудневой чесотке у пушных зверей и кроликов // Сб. науч. тр. НИИ пушного звероводства и кролиководства. 1986. - Т. 34.-С. 100-102.
218. Майоров А.И., Верета JI.E. Ивермектин против чесотки // Кролиководство и звероводство. М., 1988. - № 4. - С. 33-35.
219. Майоров А.И., Еремина Т.С., Банколе Л.И., Яхаев Л.И.Лечение и профилактика ушной чесотки // Кролиководство и звероводство. — 2002.- № 3. С. 25.
220. Макаревский А.Н. Заразные болезни кроликов и зайцев. М.: Гос. торг.изд-во, 1931.- 132 с.
221. Макаров В.В., Василевич Ф.И., Муравлева Т.В. и др. Эпизоотология демодекоза собак в соременных условиях // Вет. практика 2000. - № 3-4. - С. 27-35.
222. Мальцев В.П. Анаплазмоз овец в Тюменской области // Состояние изученности противопаразитарных и малоизученных протозойных болезней с.-х. животных и перспективы их ликвидации в стране. — М., 1975.-С. 35-37.
223. Марков A.A., Поляков Д.К. Состояния и задачи ветеринарной арахнологии // Проблемы вет. дерматологии арахнологии и энтомологии. -М, 1954.-С. 12-19.
224. Медведев К.С. Болезни кожи собак и кошек. Киев, 1999. - 109 с.
225. Медведь Л.И. Справочник по пестицидам. Киев: Урожай, 1974. - 448 с.
226. Мельникова A.C., Колобкова Н.М. Распространение отодектоза и нотоэдроза собак и кошек в г. Троицке и Троицком районе // Актуальные проблемы вет. медицины, животноводства на Южном Урале. Челябинск, 1996.-С. 44-46.
227. Мельникова Т.Г. Иксодовые клещи диких и домашних животных Крымского заповедника // Зоологический ж. — 1953. Т. 32, Вып.З. - С. 421-434.
228. Метелица А.К., Давлетшин А.Н., Тихомиров С.М., Пашкевич Г.И. Препараты дельтаметрина при саркоптоидозах животных // Сб. науч. тр. «Проблемы энтомологии и арахнологии». — Тюмень, 1994. Т. 36. -С. 74-80.
229. Метелкин А.И., Сахаров П.П. Инфекционные и инвазионные болезникроликов. М.: Сельхозгиз, 1940. - С. 205-218.
230. Минина О.П., Клейменова Л.В.Сравнительная оценка эффективностииверсекта, аверсекта-3, фармацина и рустомектина при псороптозе кроликов // Матер, науч. конф. «Сиб. аграр. наука III тысячелетия». -Новосибирск, 2000. С. 162-163.
231. Мирзоева Н.М. Итоги изучения арбовирусных инфекций в Азербайджане // Сб. «Арбовирусы». М., 1978. - Вып. 3. - С. 27-31.
232. Миронова Н.П., Карпузиди К.С., Клименко И.З. и др. Источники и переносчики чумы и туляремии. — М., 1965. 195 с.
233. Москалев В.Г., Акбаев М.Ш. Применение бытового инсектицида «Прима-71» для лечения отодектоза домашних плотоядных и псороптоза кроликов в вивариях // Сб. науч. тр. Ленингр. вет. ин-та. Л., 1989. -Т. 104.-С. 107-110.
234. Назаров Г.С. Дустотерапия чесотки у кроликов и кошек // Тез. докл. науч. конф. по фармакологии, посвящ. памяти A.A. Сошественского. — М., 1956.-С. 276.
235. Наумов Р.Л., Рубина М.А. Истребление переносчика клещевого энцефалита в зоне строительства в зоне строительства Саяно-Шушенской ГЭС и его паразитологический эффект // Мед. паразитол. и парази-тарн. болезни. 1971. - № 3. - С. 286-291.
236. Наумов Р.Л. Роль таежного клеща в природных очагах клещевого энцефалита / В кн. Таежный клещ. Л., 1985. - С. 350-352.
237. Ненюков Д.Е. К вопросу о борьбе с ушной чесоткой у кроликов. — М.:
238. Сов. Ветеринария. 1933. -№ 12. - С. 51.
239. Непоклонов A.A. Болезни животных, вызываемые оводами. М.: Колос,1980.-С. 3-78.
240. Никольский С.Н. Обнаружение иксодовых клещей на крупном рогатомскоте // Тр. Орджоникидз. НИВС. 1940. - Т. 11. - С. 9-15.
241. Никольский С.Н., Водянов A.A. Применение акарицидов для борьбы склещами животных // Химия в сельском хозяйстве. 1964. - № 10. -С. 14-16.
242. Никольский С.Н., Водянов A.A. Псороптозы овец и крупного рогатогоскота. -М.: Колос», 1979. 123 с.
243. Никольский С.Н., Овсянникова Ю.П. Ивермектин как средство борьбы спаразитами // Матер, науч. X конф. Укр. общества паразитол. — Киев: Наукова Думка, 1986. Ч. 2. - С. 64.
244. О'Брайн. Биологические и эпидемиологические аспекты псороптоза в
245. Ирландии // Тр. Междунар. симп. Всемирной асс. паразитологов. — Кембридж, Великобритания, 1993. — С. 80.
246. Оленев Н.О. Паразитические клещи Ixodoidae фауны СССР. JL: Изд-во1. АН СССР, 1932.-125 с.
247. Оленев Н.О. Чесоточные клещи. Л.: Изд-во АН СССР, 1932. - С. 1-64.
248. Олсуфьев Н.Г. Туляремия. М., 1960. - 459 с.
249. Олсуфьев Н.Г., Дунаева Т.Н. Эпизоотология (природная очаговость) туляремия // В кн. Туляремия. — М., 1960. — С. 136-206.
250. Олсуфьев Н.Г., Дунаева Т.Н. Природная очаговость, эпидемиология ипрофилактика туляремии. — М., 1970. — 272 с.
251. Олсуфьев Н.Г. Таксономия, микробиология и лабораторная диагностикавозбудителя туляремии. М., 1975. - 191 с.
252. Омаров Л.М. Пироплазмиды и пироплазмидозы крупного рогатого скота
253. Терско-Сулакской низменности Дагестанской АССР // Современные проблемы паразитологии. Вильнюс, 1982. - С. 269.
254. Онищенко Г.Г. Распространение вирусных природно-очаговых инфекций в Российской Федерации и меры по их профилактике // Эпидемиология и инфекционные болезни. 2000. - № 4. - С. 4—8.
255. Онищенко Г.Г., Москвитина Э.А., Ломов Ю.М. и др. Крымская-Конгогеморрагическая лихорадка в Ростовской области: эпидемиологические особенности вспышки 1999 г. // Проблемы особо опасных инфекций. Саратов, 2000. - Вып. 80. - С. 3-13.
256. Опанасюк A.C., Ефремова Е.А. Применение дектомакса при демодекозесобак // Пробл. стабилизации и развития сел. хоз-ва Казахстана, Сибири и Монголии. Новосибирск, 2000. - С. 190.
257. Орлов Н.П. Чесотка с/х животных и современные методы борьбы с ней.- Алма-Ата: Казах. Гос. изд-во, 1951. Т. 3. - 240 с.
258. Орлов Н.П. Биологические основы лечения и профилактики паразитарных заболеваний. М.: Сельхозгиз, 1961. — С. 22.
259. Павловский E.H. Противоклещевые меры как этап борьбы с пироплазмозом. -Новгород, 1926. С. 28-35.
260. Павловский E.H. Основы учения о природной очаговости трансмиссивныхболезней человека // Журн. Общ. биологии, 1946. Т. 7. - С. 3-30.
261. Павловский E.H. Общие проблемы паразитологии и зоологи. М., JL,1961.-424 с.
262. Палимпсестов М.А. Отличительные признаки личинок чесоточных клещей рода Psoroptes Gervais, 1841 // Ветеринария. 1944. - № 10. - С. 23-24.
263. Палимпсестов М.А. Некоторые стороны биологического поведения чесоточных клещей рода Psoroptes Gervais, 1841 // Науч. тр. Укр. ИЭВ.- Харьков, 1946. Т. 14. - С. 35-45.
264. Палимпсестов М.А. Отличительные признаки личинок, протонимф, телеонимф и взрослых чесоточных клещей рода Psoroptes Gervais, 1841 // Науч. тр. Укр. ИЭВ. Харьков, 1946. - Т. 14. - С. 216-226.
265. Палимпсестов М.А. Особенности развития накожниковых чесоточныхклещей // Ветеринария. 1947. - № 1. — С. 6-9.
266. Палимпсестов М.А. Особенности развития накожниковых чесоточныхклещей // Сб. трудов Харьковского вет. ин-та. 1948. - Т. 19, Вып. 2. -С. 5-10.
267. Палимпсестов М.А. Особенности роста и превращения чесоточных клещей рода Psoroptes Gervais, 1841 // Сб. тр. Харьков, вет. ин-та, Харьков.- 1948.-Т. 19, Вып.2.-С. 11-25.
268. Палимпсестов М.А. Новые представления о метаморфозе чесоточныхклещей // Сб. тр. Харьковского вет. института. — 1948. — Вып. 2. — С. 5-10.
269. Палимпсестов М.А. Дустотерапия в борьбе с псороптозом овец // Ветеринария. 1951. - № 5. - С. 41-43.
270. Панасенко Ф.Т. Жизнеспособность чесоточных клещей-накожников внеорганизма овцы в условиях Северного Кавказа // Тр. Ворошилов-градского зовет, ин-та. 1941. - Вып.1. - С. 77-87.
271. Папова Л.Б. Эпидемиология клещевого энцефалита в Куйбышевской области / В кн.: Природно-очаговые заболевания. М., 1958. - С. 114119.
272. Пашанина Т.П., Смелянский В.П., Мананков В.В., Смирнова С.Е. Крымская Конголезная геморрагическая лихорадка // Сб. науч. тр. «Природно-очаговые инфекции в Нижнем Поволжье». Волгоград, 2000. -С. 179-182.
273. Первомайский Г.С. Опыт борьбы с иксодовыми клещами в очаге весенне-летнего энцефалита // Матер. 2-го совещ. по паразитол. пробл. -Л., 1940.-С. 28-29.
274. Петров В.Г., Олсуфьев Н.Г. О размножении Baterium tularense в клещах
275. Dermacentor pictus в процессе их метамрфоза // В кн.: Вопросы краевой, общей и экспериментальной паразитологии и медицинской зоологии.-М., 1953.-Т. 8.-С. 149-156.
276. Петров В.Г. Итоги изучения иксодовых клещей как переносчиков туляремии / В Кн.: X совещание по паразитологическим проблемам и природно-очаговым болезням. М., Л., 1959. - Вып. 1. - С. 160-162.
277. Петров Д., Мылушев И., Монов М. Распространение акароза свиней в1973-1975 гг. в Болгарии // Вет. мед. науки. 1977. - У.14, № 6. - С. 61-67.
278. Петрухин И.В. Домашний ветеринар. М.: «Воскресенье», 1993. — С.160.161.
279. Петунин Ф.А. Нуа1отта БсирепБе — переносчик нутталиоза лошадей //
280. Ветеринария. 1948. - № 9. - С. 16-17.
281. Петунин Ф.А. Эпизоотология пироплазмоза и бабезиоеллоза крупногорогатого скота в Краснодарском крае и меры борьбы с ними // Тр. Кубанского СХИ. Краснодар: Советская Кубань, 1957. - Вып. 3-31. -С. 196-213.
282. Петунин Ф.А., Козин Н.П. Адаптация пироплазмид к овцам и козам //
283. Тр. ВИЭВ. 1970. - Т. 38. - С. 36-40.
284. Петунин Ф.А. Арахнозы и протозойные болезни с.-х. животных. М.:1. Колос, 1977.-С. 22-31.
285. Пионтковская С.П. Численность половозрелых клещей Б. пиИаШ на участке, подвергнутом выжиганию // Сб. раб. «Вопросы краевой, общей и экспериментальной паразитологии». — 1951. — № 8. С. 47—51.
286. Плотинский И.М., Гончаренко Э.В. Акарицидная активность и некоторые показатели токсичности биорекса // Информ. бюл. Укр. акад. аг-рар. наук, ин-та эксперим. клинич. вет. медицины. 1994. - С. 228.
287. Покровская Е.И. К биологии клеща БегтасепШг та^таШБ в условиях
288. Воронежской области // Зоол. журн. 1949. - Т. 7, Вып. 3. - С. 225230.
289. Поленова И.Н., Белкова Н.П., Шестаков В.И. Экспериментальное изучение восприимчивости иксодовых клещей к вирусу японского энцефалита // Труды Биолого-почвенного ин-та ДВНЦ, Новая серия. — Владивосток, 1975. № 28(131). - С. 21-25.
290. Поляков В.А., Узаков У.Я., Веселкин Г.А. Ветеринарная энтомология иарахнология. М., 1990. - С. 27.
291. Поляков В.А. Ветеринарная энтомология и арахнология. Справочник. —
292. М.: Агропромиздат, 1999. — 165 с.
293. Поляков В.А., Аббасов Т.Г., Шерешкова С.Е. Препарат эктоп для борьбы с демодекозом и отдектозом собак, кошек и кроликов // Сб. науч. тр. Всерос. НИИ вет. санитарии, гигиены и экологии. 2000. - Т. 108.-С. 124-128.
294. Поляков Д.К., Андричук Б.В., Кан П.Т. Эффективность диазинона при псороптозе овец // Тр. Всес. ин-та вет. санит. 1976. - Т. 52. - С. 170-174.
295. Померанцев Б.И. К вопросу о происхождении клещевых очагов в Ленинградской области / В кн. Вредители животноводства. М., 1935. - С. 32-110.
296. Померанцев Б.И. Географическое распространение клещей Ixodoidae исостав их фаун в палеоарктической области // Тр. ЗИН АН СССР. —1948.-Т. 7.-С. 132-148.
297. Померанцев Б.И. Иксодовые клещи (Ixodidae). Паукообразные. (Фауна
298. СССР). М., Л., 1950. - Т. 4, Вып.2. - 223 с.
299. Помрой В. Эффективность моксидектина и комбинаций других антгельминтиков против множественно резистентной линии Ostertagia, выделенной от овец // New Zeland. Vet. J. 1992. - V. 40. - P. 76-78.
300. Приселкова Д.О. Патогенез и диагностика чесотки // Ветеринария.1949.-№ 12.-С. 12-15.
301. Пчелкина A.A. Хранители и переносчики возбудителя Ку-лихорадки вприродных очагах: Дис. канд. вет. наук. М., 1956. - 145 с.
302. Ремез В.И. Сравнительная эффективность акарицидов при саркоптоидозах овец и свиней // Сб. тр. Ставропольского СХИ. — 1985. — С. 25-27.
303. Ремез В.И., Жаров В.Г. Профилактика псороптоза овец // Вестник ветеринарии. Ставрополье, 1997. - № 5. - С. 87-94.
304. Розовенко М.В. Комплексный метод лечения демодекоза у собак // Матер. докл. науч. конф. «Актуал. вопр. инфекц. и инваз. болезней животных». М., 1993. - С. 43-44.
305. Рогаткин А.К. Экологические аспекты обследования эпидемиологического благополучия по особо опасным и природно-очаговым инфекциям на территории Астраханской области: Дис. . канд. мед. наук. -Астрахань, 1995. 189 с.
306. Рогаткин А.К., Андросова C.B., Мальков П.М. и др. Распространениеарбовирусов на территории Астраханской области // ЮжноРоссийский Медицинский журнал. 1999. - № 2. — С. 16-19.
307. Ромашов В., Лесников А. Демодекоз у собак Воронежа // Охота и охотничье хоз-во. 1997. - № 9. - С. 25.
308. Роменский В.И. Демодекоз собак в г. Иванове (эпизоотология, патогенез, клиника, лечение): Автореф. дис. . канд. вет. наук. Иваново, 2001.- 17 с.
309. Рубахова Ю.В. Распространение арбовирусов в субтропической зоне
310. Краснодарского края и их роль в патологии человека: Автореф. дис. . канд. мед. наук. М., 1994. - С. 16-19.
311. Рютова В.П. Болезни кроликов. М.: Россельхозиздат, 1985. - С. 6-14,109.112.
312. Сафиуллин Р.Т. Лечебная и экономическая эффективность премикса сивермектином при паразитарных болезнях свиней // Ветеринария. -1995.-№6. -С. 43—47.
313. Сафиуллин Р.Т., Дриняев В.А., Юрков В.А. Эффективность фармацинапри паразитарных болезнях свиней // Ветеринария. — 1998. — № 1. — С. 29-34.
314. Сафиуллин Р.Т., Буров В.В. Эффективность и экономичность авермектина при саркоптозе и гематопинозе свиней. // Проблема инфекционных и инвазионных болезней в животноводстве на современном этапе. -М., 1999.-С. 308-310.
315. Сафиуллин Р.Т., Волкова Г. Эффективность фармацина при саркоптозе игематопинозе свиней // Свиноводство. 1999. — № 3. - С. 22—23.
316. Сафиуллин Р.Т., Габдулин В.А., Волкова Г.Н. Универм при эктопаразитозах свиней // Ветеринария. 1999. - № 6. - С. 34-36.
317. Седельникова Л.Ю. Меры борьбы при некротических поражениях кожи усвиней // Сб. науч. тр. «Проблемы вет. санитарии». — 1992. — С. 79-85.
318. Седых A.C., Абеленцев Г.М., Креманская Т.Н. Действие пиретроидныхпрепаратовна членистоногих // Ветеринария. 1985. — № 6. - С. 28-30.
319. Сердюкова Г.В. Иксодовые клещи фауны СССР. М., Л., 1956. - 122 с.
320. Сиварай С. Лекарственная резистентность H. contortus у овец в Малайзии и эффективность моксидектина // Тр. Междунар. симп. Всемирн. асс. паразитол. Кембридж, Великобритания, 1993. - С. 64.
321. Сивков Г.С., Скосырских Л.Н., Гришаева H.A., Полянская О.В. Аверсектин при демодекозе собак // Сб. науч. тр. Всерос. НИИ вет. энтомологии и арахнологии. 1977. - № 38. - С. 143-149.
322. Сивков Г.С. Эстроз овец и коз: Автореф. дис. . докт. вет. наук. С-Пб.,1995.-45 с.
323. Сидоркин В.А., Семенов C.B. Опыт применения новой препаративнойформы ивермектина «Ивермек» при паразитозах плотоядных // Вет. практика. - 2001. - № 2. - С. 7-11.
324. Симецкий М.А. Эффективность аэрозольных форм инсектоакарицидов,применяемых с помощью беспропеллентных баллонов // Дезинфекция и санитария продуктов животного происхождения. М., 1985. -С. 24-27.
325. Симецкий М.А., Павленко Г.И., Тункель Ж.М. Акарицидная эффективность и безвредность аэрозольного применения акрозоля // Ветеринария. 1993. - №. - С. 35.
326. Симецкий M.А. Дерматозоль для борьбы с демодекозом и псороптозомживотных // Сб. раб. «Проблемы вет. санитарии, гигиены и экологии (дезинфекция, дезинсекция, дератизация)». М., 1999. - С. 83-84.
327. Симецкий М.А. Псороптол в аэрозольных баллонах для борьбы с псороптозом животных // Сб. раб. «Проблемы вет. санитарии, гигиены и экологии (дезинфекция, дезинсекция, дератизация)». — М., 1999. — С. 84-85.
328. Сковронский Р.В. Эксперсс диагностика чесотки у кроликов // Кролиководство и звероводство. 1984. - № 4. - С. 35.
329. Скосырских JI.H. Изучение влияния препарата ивомека на организм животных при паразитарном применении // Сб. науч. тр. «Проблемы энтомологии и арахнологии». Тюмень, 1994. - Вып. 36. - С. 123-129.
330. Скуфьин К.В. Развитие медицинской энтомологии и арахнологии в Воронежской области // Тез. докл. на VI энтомологич. съезде. — Воронеж, 1970.-С. 21-35.
331. Слинько В. Саркоптоз свиней // Ветеринария. 1979. - № 5. - С. 44-46.
332. Смирнова С.Е., Седова А.Г., Зимина Ю.В., Караванов А.С. О случаях
333. Конго-Крымской геморрагической лихорадки в Астраханской области // Вопросы вирусологии. 1990. - № 3. - С. 228-231.
334. Соболев Н.А., Никольский С.Н., Никитин М.О. Зараженность крупногорогатого скота иксодовыми клещами // Тр. Северо-Кавказской вет. станции. Пятигорск, 1937. - Т. 1. - С. 35-74.
335. Соколова Т.В., Ланге А.В. Паразито-хозяинная специфичность чесоточного зудня — Sarcoptes scabiei (Acariformes Sarcoptidae) человека и животных (Обзор литературы) // Паразитология. — 1992. Т. 2, № 2. -С. 93-104.
336. Соколова Т.В., Федоровская Р.Ф., Ланге А.В. Чесотка. — М.: Медицина,1989.- 175 с.
337. Соколовский В.А., Толстова-Пори И.Г., Палимпсестов М.А., Лукашев
338. И.И. Кожные болезни животных. — М.: Колос, 1986. — С. 269-278.
339. Соммер Ц. Ивермектин, выделяемый с калом коров после подкожнойинъекции или накожного применения: концентрация и воздействие на фауну навоза // Bull. Entomol. Research. 1992. - V. 82. - P. 257-264.
340. Староверов C.A., Сидоркин В.А., Пристенский В.Д. Лечение кроликовпри псороптозе // Ветеринария. 2003. - № 8. - С. 23.
341. Старченков C.B. Болезни мелких животных. Диагностика, лечение, профилактика. С.-П.: Изд-во «Лань», 1999. - С. 475.
342. Стишковская Л.Л. 1000 советов: как лечить домашних животных. — М.1. Аст-Пресс, 1997. 364 с.
343. Стринадкин П.С. Обработка кроликов и пушных зверей при саркоптоидозах // Ветеринария. 1980. - № 9. -С. 44.
344. Стринадкин П.С., Кононов В.П. Саркоптоидозы с.-х. животных в Сибири и меры борьбы // Сб. науч. тр. «Проблемы эктомологии и арахнологии». 1994.-Вып. 36.-С. 156-158.
345. Строн Л. Воздействие авермектина на насекомых, обитающих в коровьем навозе. Обзор // Bull. Entomol. Res. 1992. - V. 82. - P. 265-274.
346. Субботин A.C., Залучкая Л.И., Пучкова Т.И. Иксодовые клещи Адлеровского района и их эпидемиологическое значение // Мед. паразитол. и паразит, болезни. 1952. - Вып. 21, № 1. - С. 23-31.
347. Сулейманов Т.Т., Онаньев О.П. Влияние анаплазмоза на мясную и шерстяную продуктивность овец // Матер. Всес. семинара «Опыт выращивания, нагула, откорма и профилактики болезней крупного рогатого скота». Самарканд, 1984. - С. 85-86.
348. Тарасевич И.В. Клещи Hyalomma plumbeum plumbeum Panz., 1795 и Rhipicephalus bursa Can, et Fanz, 1877 переносчики и резервуары риккет-сий Бернета в Крыму: Автореф. дис. канд. вет. наук. 1956. — 21 с.
349. Тарасов В.В. Членистоногие переносчики возбудителей болезней человека.-М.: МГУ. 1981.-287 с.
350. Тимофеев Б.А., Кирюткин Г.В., Красняков В.Я. и др. Акарицидная эффективность ивомека // Сб. науч. тр. «Применение химиотерапевти-ческих препаратов в ветеринарии и разработка методов их контроля».-М., 1989.-С. 3-5.
351. Тимофеев Б.А., Бондаренко В.О., Кирюткин Г.В. и др. Токсичность иэффективность некоторых пиротроидов // Ветеринария. — 1994. — № 10.-С. 55.
352. Тимофеев Б.А., Кирюткин Г.В., Бондаренко В.О. и др. Биорекс новоепротивочесоточное средство на основе циперметрина // Ветеринария. 1997. -№ 3. - С. 54.
353. Толоконников В.П., Трухачев В.И., Заерко В.И. и др. Эктопаразиты животных: Учебное пособие. Ставрополь: СтГАУ «АГРУС», 2004. -С. 5-20.
354. Узаков У.Я. Иксодовые клещи Узбекистана. Ташкент: ФАН, 1972.350 с.
355. Ульямс Дж. Действие цидектина при экспериментальном заражениидиктиокаулезом и буностомозом телят, имеющих естественное заражение желудочно-кишечными паразитами // Vet. Parasitol. 1993. -V. 43.-P. 293-299.
356. Успенская И.Г. Иксодовые клещи Днестровско-Прутского междуречья.-Кишинев, 1987. 144 с.
357. Успенский И.В. Возможность использования гранулированных инсектицидов для борьбы с клещами в очагах клещевого энцефалита // Тр. 4-й конф. паразитологов УССР. 1963. - С. 409-410.
358. Успенский И.В. Метод прямого истребления переносчика клещевого энцефалита. Состояние и перспективы // Мед. параз. и паразитар. болезни. 1965. - Т. 34, № 5. - С. 544-549.
359. Уткин Л.Г. Кролиководство. Справочник. М.: Агропромиздат, 1987.1. С. 189.
360. Ушакова З.А., Красовская Е.В., Дымин В.А., Кирилов В.А. Клещевойэнцефалит / В кн. Природно-очаговые заболевания в Амурской области. Благовещенск, 1975. - С. 87—92.
361. Федорченко O.A. Применение иммунопаразитана и АСП в комплексномлечении демодекоза собак // Тез. науч.-практ. конф. «Препараты Центра Игнатьева. Теория и опыт применения». — Б.М., 1997. С. 59-61.
362. Филиппова H.A. Иксодовые клещи подсем. Ixodidae. СПб., 1977. - 396 с.
363. Филиппова H.A. Таксономический состав клещей семейства Ixodidae
364. Acariña, Parasitiformes) в фауне СССР и перспективы его изучения // Паразитологический сборник. Л., 1984. — Вып. 32. - С. 61-68.
365. Филиппова H.A. Ревизия рода Dermacentor Koch фауны СССР и сопредельных территорий (Ixodoidae, Ixodidae) // Паразитологический сборник. Л., 1989. - Вып. 35. - С. 49-96.
366. Филиппова H.A. Токсиномические аспекты переноса возбудителя болезни Лайма // Паразитология. 1990. - Т. 24, Вып. 4. - С. 257-267.
367. Фирсов Н.Ф., Каратунов Г.А. Комплексный метод лечения пустулезнойформы демодекоза собак // Сб. науч. раб. «Пробл. инфекц. и инваз. болезней в животноводстве на соврем, этапе». М., 1999. — С. 300-301.
368. Фирсов Н.Ф., Каратунов Г.А., Деркачев В.В. Эпизоотология и терапиядемодекоза собак на урбанизированных территориях юга России // Вестн. ветеринарии. 2000. - № 21(4). - С. 27-38.
369. Фитчер Ф. Инъекционный моксидектин для крупного рогатого скота:действие на два вида навозных жуков // South. West. Entomol. 1992. - V. 17, N 4. — P. 303-306.
370. Флинт В.Е., Земская A.A., Сидоров В.Е. Роль экологических группировок птиц в прокормлении клещей Ixodes persulcatus // Зоол. журн. — 1959. Т. 38, Вып. 3. - С. 476^180.
371. Фролов Б.А., Смирнова О.И. Эффективные препараты против эктопаразитов животных и птиц // Ветеринария. — 1992. № 7. - С. 41.
372. Фролов Б.А., Аббасов Т.Г., Макаев М.Х. и др. Эффективность пэкта иципэкта против эктопаразитов овец и коз // Ветеринария. 1996. - № 2.-С. 34-38.
373. Фролов Б.А., Казаков И.К., Букштынов В.И., Омаров JI.M. Эффективность применения препаратов на основе синтетических пиретроидов и ФОС при энтомозах и арахнозах животных // Ветеринария. 1997. -№ 7.-С. 31-33.
374. Хатин М.Г. Ликвидация чесотки овец важнейшая задача работникововцеводства // Сов. Ветеринария. 1952. - № 8. - С. 75-79.
375. Хван М.В., Досжанова Л.Т., Кущенко З.В. и др. Патологические и функциональные изменения половых органов у быков-производителей и коров при тейлериозе // Сб. науч. тр. КазНИВИ. Алма-Ата, 1984. -Т. 21.-С. 144-147.
376. Хитерман И.Б. Состав и структура эктопаразитоценотических комплексов мелких млекопитающих центра нечерноземной зоны России в условиях различной антропогенной нагрузки: Автореф. дис. . канд. биол. наук. Иваново, 2003. - 23 с.
377. Ходусов A.A. Инсектицидная эффективность новых препаратов при гематопинозе свиней // Сб. раб. «Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных». Ставрополь, 1999. - С. 54-57.
378. Храпай H.H. Демодекоз собак в условиях Черноморского побережья
379. Краснодарского края (эпизоотология, патогенез, меры борьбы): Автореф. дис. . канд. вет. наук. М., 2001. - 22 с.
380. Храпай H.H. Сравнительная оценка влияния системно-действующих акарицитдов на функциональное состояние печени и почек собак // Матер. 9-го Моск. междунар. вет. конгр. -М., 2001. С. 199-200.
381. Храпова Н.П., Тихонов Н.Г., Жуков А.Н. и др. Лихорадка Ку: состояниепроблемы и перспективы совершенствования лабораторной диагностики // Сб. научн. тр. «Природно-очаговые инфекции в Нижнем Поволжье». Волгоград, 2000. - С. 307—318.
382. Чабовский В.И. Значение активных пассивных перемещений клещей1.odes persulcatus P. Sch. в очагах клещевого энцефалита // Тез. докл. 4-го съезда Всесоюз. энтомол. общ-ва. 1959. - С. 264-265.
383. Чернуха В.К., Смолянинов В.К. К вопросу эпизоотологии кокцидиоза,псороптоза и цистицеркоза при поточной технологии промышленного кролиководства // Тр. Харьковского СХИ. 1976. - Т. 228. - С. 40-46.
384. Чумаков М.П. Новая вирусная болезнь — крымская геморрагическая лихорадка // Новости медицины. 1947. - С. 4.
385. Чумаков М.П. Вирусные геморрагические лихорадки. -М., 1979. 190 с.
386. Чунихин С.П. Связи таежного клеща с вирусами и другими патогенными для позвоночных микроорганизмами / В кн. Таежный клещ. Л., 1985.-С. 343-346.
387. Чунихин С.П., Леонова Г.Н. Экология и географическое распространение арбовирусов. -М.: Медицина, 1985. 125 с.
388. Чучина Т.В., Бардасова О.Г., Лот В.П., Мухаметшин Р.У. Эффективность препарата ивомек при псороптозе кроликов и саркоптозе лисиц // Бюл. ВИЭВ. 1988. - Т. 65. - С. 76-78.
389. Шапулатов Ж.Ж. Саркоптоз свитей и лечение его: Автореф. дис. . канд.вет. наук. Самарканд, 1988. - 23 с.
390. Шатас Я.Ф. Эколого-фаунистический очерк иксодовых клещей Сталинградской области в связи с новостройками // Зоол. журн. 1952. - Т. 31, Вып. 6.-С. 802-818.
391. Шевкопляс В.Н., Лопатин В.Г. Мониторинг пастбищных клещей Мостовского района Краснодарского края // Ветеринария. — Кубань, 2006.-№6.-С. 13-15.
392. Шевкопляс В.Н., Лопатин В.Г. Иксодофауна гидроморфных равнинныхландшафтов Краснодарского края // Вестник ветеринарии. 2006. -№40.-С. 16-17.
393. Шевченко С.Ф. Роль иксодовых клещей в природных очагах туляремиив низовье реки Дон: Автореф. дис. . канд. биол. наук. 1960. - 19 с.
394. Шустрова М.В. Демодекоз собак в условиях города // Ветеринария. —1995.-№4.-С. 54-55.
395. Шустрова М.В. Чесоточные болезни и демодекозы животных разныхвидов: Автореф. дис. . докт. вет. наук. 1996. - 37 с.
396. Шустрова М.В., Пашкин П.И., Новиков В.П. Некоторые вопросы эпизоотологии демодекоза собак в условиях г. Санкт-Петербурга и Ленинградской области // Учен. зап. Витеб. гос. акад. вет. медицины. -1998.-Т. 34.-С. 188-189.
397. Эпельдимов Л.С., Гордиенко Л.Н., Катаман А.Б. Формы проявления демодекоза у собак в условиях Сибири // Сб. раб. «Пробл. адаптации с.-х. животных».-Новосибирск, 1997(1998).-С. 190-191.
398. Эргашев A.A. Изыскание средств, совершенствование реживом терапиии профилактики эстроза овец: Автореф. дис. . канд. вет. наук. — Тюмень, 1994.-18 с.
399. Эскин В.А., Чагин К.П. Организация противоклещевых мероприятий вочагах клещевого энцефалита // Мед. паразитол. и паразитарн. болезни. 1944. - № 1. - С. 78-85.
400. Якимов В.Л., Белавин B.C., Растегаева Е.Ф., Никольский С.Н. Распространение иксодид в Краснодарском крае // Русский журнал тропической медицины. 1929. - Т. 7, № 1. - С. 34-35.
401. Якимов B.J1., Белавин B.C., Растегаева Е.Ф., Никольский С.Н. Географическое распространение пироплазм и клещей крупного рогатого скота на Северном Кавказе // Русский журнал тропической медицины. — 1929. -Т. 8, Вып. 1. С. 19-24.
402. Якубовский М.В., Карасев Н.Ф. Паразитарные болезни животных. Справочное пособие. Мн.: Ураджай, 1991. - С. 60-67, 233-235.
403. Ятусевич А.И., Карасив Н.Ф., Золотов В.М. и др. Перспективы использования лекарственных растений при паразитозах животных // Сб. раб. «Экологические проблемы патологии, фармакологии и терапии животных». Воронеж, 1997. - С. 279-280.
404. Яшкуль В.К. Цикл развития, зональная приуроченность и меры борьбы склещами D. marginatus в условиях центрального Казахстана // Сб. раб. «Природно-очаговые заболевания». М., 1958. - С. 284-290.
405. Abolins S., Thind В., Jackson V. et al. Control of the sheep scab mite Psoroptes ovis in vivo and in vitro using fungal pathogens // Vet. Parasitol. -2007. -V. 148, № 3-4. -P. 310-317.
406. Addison E.M., VcLaughlin R.F. Growth and development of winter tick,
407. Dermacentor albipictus, on moose, Alcec alces // J. Parasitol. 1988. — V. 74, № 5. - P.670-678.
408. Akucewich L.H., Thilman K., Clark A. et al. Prevalence of ectoparasites in apopulation of feral cats from north central Florida during the summer // Vet. Parasitol. 2002. - V.109, № 1-2. - P. 129-139.
409. Alvarez L., Medina O.C., Garcia M.E., Garcia H. First report of an unclassified Demodex mite causing demodicosis in a Venezuelan dog // Ann. Trop. Med. Parasitol. 2007. - V. 101, № 6. - P. 529-532.
410. Alva-Valdes R., Wallace D.H., Benz G.W., Foster A.G. Efficacy of ivermectin against the mange mite Sarcoptes scabiei var. suisin pigs // Ann. J. Vet. Res. 1989. - V. 45, № 10. - P. 2113-2114.
411. Arends J J. Epidemiology of mange mites: Life cycle, diagnosis and prevalence // A. Pfizer. Symposium, Birmingham. U.K., 1998. - P. 9-11.
412. Arends J J., Skogerboe T.L., Ritzhaupt L.K. Persistent efficacy of doramectinand ivermectin against experimental infestations of Sarcoptes scabiei var. suis in swine // Vet. Parasitol. 1999. - V. 82, № 1. - P.7 1-79.
413. Arlian L.G., Kaiser S., Estes S.A., Kummel B. Infectivity of Psoroptes cuniculi in rabbits // American. J. of Vet. Res. 1981. - V. 42, № 10. - P. 1782-1784.
414. Arrieta A.P., Aloisis G. Accion del Closantel (R 31520) en Sarna ovina // Gaseta veterinaria. 1983. - V. 45, N 378. - P. 197-203.
415. Arrieta A.P., Vidal J.M., Aristorian J., Schmied L.M. Efecto de Closantel inyectable al 5% enbovinos artificialmente infestdos con Boophilus microplus // Gaseta veterinaria. 1981. - V. 44, N 372. - P. 683.
416. Ashmawy K., Fahmy M.M. Acaricidal efficiency of Ivomec against Psoropticand Sarcoptic mites infesting rabbit // J. Egup. Veter. Med. Assn. 1987. -V. 47, № 1/2.-P. 315-319.
417. Baier S. Mange eradication in piglet Producing farms in the Weser-Ems region //
418. Dtsch. Tierarztl. Wochenschr. 2005. - V. 112, № 8. - P. 296-309.
419. Barriga O.O., Al-Rhalidi N.W., Martin S., Wyman M. Evidence of immunosuppression by Demodex canis // Vet. Immunol. Immunopathol. 1992. -V. 32, № 1-2.-P. 37-46.
420. Barth D., Sutherland I.H. Ivermectin: evaluation in bovine acariasis // XXII
421. World Vet. Congr. Perth, Australia. 1983. - P. 109-117.
422. Bates P.G., Groves B.A., Conrtney S.A., Coles G.C. Control in sheep scab
423. Psoroptes ovis) on artificially infested sheep with a single injection of doramectin//Vet. Rec.- 1995.-V. 137, № 19.-P. 491-492.
424. Bates P.G. Inter- and intra-specific variation within the Psoroptes (Acari: Psoroptidae) // Vet. Parasitol. 1999. - V. 83, № 3-4. - P. 201-217.
425. Bates P.G. Bacterial associations with the sheep scab mite (Psoroptes ovis) //
426. Vet. Rec. 2003. - V. 152, № 7. - P. 206-208.
427. Berge T., Lennete E. Wolld distribution of Q-fever: human, animal and arthropod infection // Am. J. Hyg. 1953. - V. 57. - P. 125-143.
428. Berriatua E., French N.P., Broster C.E. et al. Effect of infestation with Psoroptes ovis in the nocturnal rubbing and lying behaviour of housed sheep // Appl. Anim. Behaw. Sci. 2001. - V. 71, № l.-P. 43-55.
429. Blot C., Kodjo A., Reynaud M.C., Bourdoiseau G. Efficacy of selamectinadministered topicallg in the treatment of feline otoacariosis // Vet. Parasi-tol. 2003. - V. 112, № 3. - P. 241-247.
430. Bogatkow W. Studies on the occurrence of Saroptes scabiei var. suis (Gerlach, 1857) in clinically normal pigs // Med. Weter. 1974. - B. 30. - S. 38-39.
431. Bowman D.S., M.L. Fogelson, L.G. Carbone Effects of ivermectin on thecontrol of ear mite (Psoroptes cuniculi) in naturally infested rabbits // Am. J. Vet. Res. 1992. - V. 52, № 1. - P. 105-109.
432. Bridi A.A., Rehbein S., Carvalho L.A., Barth D. Efficacy of imermectin in acontrolled release formulation against Psoroptes ovis (Hering, 1838) gervais, 1841 (Acari: Psoroptidae) on sheep // Vet. Parasitol. 1998. - V. 78, №3.-P. 215-221.
433. Bridi A.A., Carvalho L.A., Cramer L.G., Barriek R.A. Efficacy of a longacting formulation of ivermectin against Psoroptes ovis (Hering, 1838) on cattle // Vet. Parasitol. 2001. - V. 101, № 1. - p. 81.
434. Brimer L., Bak H., Henriksen S.A. Rapid quantitative assag for acaricidae effects on Sarcoptes scabiei var. suis and Otodectes cynotis // Exp. Appl. Acarol. -2004. V. 33, №2.-P. 81-91.
435. Brockis D.C. Otitis externa due to Demodex canis // Vet. Rec. — 1994. V.135, №319.-P. 464.
436. Broek A., Huntley J., Machell J. et al. Cutaneous and systemic response during primary and challenge infestations of sheep with the sheep scab mite Psoroptes ovis // Parasite Immunol. 2000. - V. 22, № 8. - P. 407-414.
437. Broek A.H., Huntley J.F., Holliwell R.E. et al. Cutaneous hypersensitivityreactions to Psoroptes ovis in sheep previously infested with P. ovis // Vet. Immunol. Immunopathol. 2003. - V. 91, № 2. - P. 105-117.
438. Broek A., de Muro M.A., Burree E. et al. Graroth and pathogencity of isolatesof the fungus Metarhizim anisopliae against the parasitic mite, Psoroptes ovis: effects of temperature and formulation // Pest. Manag. Sci. 2004. -V. 60, № 10.-P. 1043-1049.
439. Cadiergnes M.C., Lagnerre C., Raques M., Franc M. Evaluation of the bioequivalence of troo formulations of deltamethrin for treatment of sheep with psorop-tic mange // Amer. J. Vet. Res. 2004. - V. 65, № 2. - P. 151-154.
440. Cargill C., Davies P., Carmichael I. et al. Treatment of sarcoptic mite infestation and mite hypersensitivity pigs with injectable doramectin // Vet. Rec.- 1966.-V. 138, №4.-P. 468—471.
441. Cargill C.F., Moore M.J., Pointon A.M., Garcia R. A retrospective evaluationbased on slaughter monitoring of using ivermectin to control and eradicate sarcoptic mange // Proc. Int. Pig Vet. Soc. Congr. Bologna, Italy, 1966. -V. 14.-P. 356.
442. Cargill C.F., Davies P.R. External Parasites. In: Straw B.E., D'Allaire S.,
443. Mengeling W.L., Taylor D.J., editor. Diseases of Swine. 8. Ames, Iowa: Iowa State University Press; 1999. P. 669-675.
444. Cargill C.F., Garcia R. The efficacy and economic benefits of twice yearlytreatment of the sow herd with ivomec premix // Proc. 19 JPVS Congress.- Copenhagen, 2006. V. 2. - P. 19-24.
445. Cerny V., Szymanski S., Dusbabek F. et al. Survival of unfed Dermacentorreticulatus adults under natural conditions // Wiad. Parazitol. 1982. V. 28, № l.-P. 27-31.
446. Chatterjee A., Chattopadhyay D., Gupta D.W., Chakrabarti A. An unusual association of Trichaphyton mentagrophytes and Demodex canis in a mongrel dog with multiple kerians // Ann. Trop. Med. Parasitol. 1980. — V. 74, № l.-P. 101-102.
447. Chesney C.J. Short form of Demodex species mite in the dog: occurrence andmeasurements // J. Small Anim. Pract. 1999. - V. 40, № 2. - P. 58-61.
448. Clark A.M., Stephen F.B., Cawley G.D. et al. Resistance of the sheep scabmite Psoroptes ovis to propetamphos // Vet. Rec. 1996. - V. 139, № 18. -P. 451.
449. Collett M.G., Doyle A.S., Reyers F., Kruse T., Fabian B. Fatal disseminatedcryptococcosis and concurrent thrlichiosis in a dog // J.S. Afr. Vet. Assoc. 1987. - V. 58, № 4. - P. 197-202.
450. Coman B.Y., Ines E.H., Driesen M.A. Helminth parasites and arthropods offeral cats // Austr. Vet. J. 1974. - V. 57, № 7. - P. 324-327.
451. Corba J., Prasliska J., Varady M. et al. Efficacy of moxidectin (Cydectin inj.)in mixed Psoroptes ovis and Sarcoptes ovis infestations in sheep // Vet. Med. (Praha). 1995. - V. 40, № 7. - P. 209-211.
452. Corba J., Varady M., Praslicka J., Tomasovicova O. Efficacy of injectablemoxidectin against mixed (Psoroptes ovis and Sarcoptes scabiei var. ovis) mange infestations in sheep // Vet. Parasitol. 1995. - V. 56, № 4. - P. 339-344.
453. Corba J., Broom D.M. The behavior of sheep with sheep scab Psoroptes ovisinfestation // Vet. Parasitol. 1999. - V. 83, № 3-4. - P. 291-300.
454. Courthey C.H., Ingalls W.L., Stitzlein S.L. Ivermectin for the treatment ofswine scabies: Relative values of prefarrowing treatment of sows and weaning treatment of pigs // Am. J. Vet. Res. 1983. - V. 44, № 10. - P. 1220-1223.
455. Curtis C.F. Current trends in the treatment of Sarcoptes, Cheyletiella and
456. Otodectes mite infestation in dogs and cats // Vet. Dermatol. 2004. — V. 15.-P. 108-114.
457. Curtis S.K., Housley R., Brooks D.L. Use of ivermectin for treatment of earmite infestation in rabbits // J. Am. Vet. Med. Assn. 1990. - V. 196, № 7.-P. 1139-1140.
458. Curtis S.K. Diagnostic exercise: moist dermatitis on the hind guarters of arabbit // Laboratory Animal Science. 1992. - V. 41, № 6. - P. 623-624.
459. Cutler S.L. Ectopic Psoroptes cuniculi infestation in a pet rabbi // J. Small
460. Anim. Pract. 1998. - V. 39, № 2. - P. 86-87.
461. Dalton P.M., Ryan W.G. Productivity effects of pig mange and control withivermectin // Vet. Rec. 1988. - V. 122, № 2. - P. 307-308.
462. Das S.S., Bhatia B.B. Efficacy of drugs against Demodex canis // Ind. J. Indig. Mes. 1993. - V. 18, № 31. - P. 49-52.
463. Davis W.L., Arther R.G., Settje T.S. Clinical evaluation of the efficacy andsafety of Topically Applied imidocloprid plus moxidectin against Ear mites (Otodectes cynotis) in Client-owned catys // Parasitol. Rec. 2007. -V. 101, № l.-P. 19-24.
464. Delpi L. Revision par des voies experimentales du genre Hyalomma. Notepreliminaire // Ann. Parasitol. Hum. Comp. 1946. - V. 21, № 3-4. - P. 267-293.
465. Desch C., Nutting W.B. Demodex cati Hirst 1919: a redescription // Cornell.
466. Vet. 1979. - V. 69, № 3. - P. 280-285.
467. Desch C., Hillier A. Demodex injai: a new species of hair follicle mite (Acari:
468. Demodecidae) from the domestic dog (Canidae) // J. Med. Entomol. — 2003.-V. 40, №2.-P. 146-149.
469. Donko T. Comparative study of rabbit ear mange treatment and epizootic aspects in medicinal prevention // Acta agrarian kaposvariensis. — Kaposvar,1999. -V. 3, № 1.-P. 41-49.
470. Donko T. The significance of ear mange (Psoroptes cuniculi) infestation levelin does and their offspring // Acta agrarian kaposvariensis. — Kaposvar,2000. V. 4, № 2. - P. 53-56.
471. Draz A.A. Effect of some insecticides on the sarcoptic and psoroptic mangeof rabbits // Assuit Vet. Med. J. 1993. -V. 29, № 58. - P. 123-128.
472. Drummond R.O., Whetstone T.M., Miller I.A. Control of ticks systemicallywith Nerck MK-933, an avermectin // J. Econ. Entomology. — 1981. — V. 74.-P. 432-436.
473. Duclos D.D., Jeffers J.G., Shanley K.J. Prognosis for treatment of adult — onset demodicosis in dogs: 34 cases (1979-1990) // J. Amer. Vet. Med. Assoc. 1994. - V. 204, № 4. - P. 616-619
474. Ebbesen T.J., Henriksen SA. Eradication of sarcoptic mangein two sow herdswith ivermectin // Proc. Int. Pig Vet. Soc. Congr. 9. Barctlona, Spain. -1986.-P. 364.
475. Egerton I.R., Birnbaum I., Blair L.S. et al. 22, 23-Dihydroavermectin Bi, anew broad-spectrum antiparasitic agent // Br. Vet. J. — 1980. V. 136. -P. 88-97.
476. Egerton I.R., Sewal L., Robin B.L. Ivermectin: un angent antiparasitare pourles chevaux // Ree. Med. Vet. 1983. - V. 160, № 6. - P. 595-599.
477. Elbers A.R., Rambags P.G., Heijden H.M., Hunneman W.A. Production performace and pruritic behaviour of pigs maturally infected by Sarcoptes scabiei var. suis in contact transmission experiment // Vet. Q. — 2000. — V. 22, №3.-P. 145-149.
478. Eibl A., Anastes G. Ixodid Ticks (Acarina, Ixoidae) of Central Africa. 1966.
479. V.l. Genus Amblyomma Koch, 1844. Tervuren.
480. Engelen M.A., Anthonissens E. Efficacy of acaricidae containing otic preparations in the treatment of otoacariasis in dog and cats // Vet. Ree. — 2000.- V. 147, № 20. P. 567-569.
481. Fichi G., Flamini G., Zaralli L.J., Perrucci S. Efficacy of an essential oil of
482. Cinnamomum zeylanicum against Psoroptes cuniculi // Phytamedicine. — 2007. -V. 14, № 2-3. P. 227-231.
483. Firkins L.D., Jones C.J., Keen D.P., Thompson L. Preventing transmission of
484. Sarcoptes scabiei var. suis from infested sows to nursing piglets by a pre-farrowing treatment with doramectin injectable solution // Vet. Parasitol. -2001.-V. 99, №4.-P. 323-330.
485. Folz S.D., Kratzer D.D., Conklin R.D. et al. Chemotherapentic treatment ofnaturally acquired generalized // Vet. Parasitol. 1983. - V. 13, № 1. - P. 85-93.
486. Folz S.D., Kakuk T.J., Henke C.L., Tesar F.B. Clinical evaluation of amitrazfor treatment of canine scabies // Med. Vet. Proct. 1984. - V. 65, № 8. -P. 597-600.
487. Foreyt W.J. Safety and efficacy of ivermectin against ear mites (Otodectescynotis) in ranch foxes // J. Amer. Vet. Med. Assoc. 1991. - V. 198, № l.-P. 96-98.
488. Forles A.B., Pitt S.R., Baggott D.G. et al. A review of the use of a controlled- release formulation of ivermectin in the treatment and proplujlaxic of Psoroptes ovis infestations in sheep // Vet. Parasitol. 1999. - V. 83, № 3-4.-P. 319-326.
489. Fourie L.J., Meintjes T., Kok D.J., Horak J.G. The growth of sheep scab lesions in relation to sheep breed and time of the year // Exp. Appl. Acarol. 2002. - V. 27, № 4. - P. 277-281.
490. Fourie L.J., Du Rand C., Heine J. Evaluation of the efficacy of imidacloprid10% (moxidectin 25%) spot-on against Sarcoptes scabiei var. canis on dogs // Parasitol. Res. 2003. - V. 9, № 1. - P. 135-136.
491. Fourie L.J., Kok D.J., Heine J. Evaluation of the efficacy of imidacloprid 10%moxidectin 1%) spot-on against Otodectes cynotis in cats // Parasitol. Res.-2003.-V. 90, № l.-P. 112-113.
492. French N.P., Berriatua E., Wall R. et al. Sheep scab outbreaks in Great Britainbetween 1973 and 1992: spatial and temporal patterns // Vet. Parasitol. -1999. -V. 83, № 3-4. P. 187-200.
493. Friis C., Bjoern H.A. Pharmacokinetics of doramectin and ivermectin in pigs
494. Pfizer Symposium. Bologna, Italy. 6 July 1996. P. 25-28.
495. Frossard T.L. Stuies on the suitability of rabbits as a model for testing systematic acaricides under laboratory canditions // Thesis, Munich University, German Federal Republic, 1981. P. 39.
496. Fthenaris G.C., Papadopoulas E., Himonas C. et al. Efficacy of moxidectinagainst Sarcoptic magne and effects on milk yield ofewes andgrowth of lambs // Vet. Parasitol. 2000. - V. 87, № 2-3. - P. 207-216.
497. Geurden T., Verelst A., Somers R. et al. Efficacy of ivermectin against Sarcoptesscabiei var. suis in pigs // Vet. Rec. 2003. - V. 30, № 9. - P. 272-273.
498. Gilot B., Pautou C. Repartition et ecologie de Dermacentor marginatus Sulzer, 1976 (Ixodoidea) sans les alpes françaises et leur avant-pays // Acaro-logia. -1985. -V. 24, № 3. P. 261-273.
499. Gomes A.F. Stuby of Amblyomma variogatum // Rev. elev. et med. vet. Pays.
500. Trop. 1993. - V. 46, № 1-2. - P. 23-24.
501. Gordon S.W., Linthicum K.J., Moulton J.R. Transmission of Crimean-Congohemorrhagic fever virus in two species of Hyalomma ticks from infected to cofeeding immature forms // Amer. J. Trop. Med. Hyg. 1993. - V. 48, №6. -P. 576-580.
502. Gothe R. Demodicosis of dogs a factorial disease // Berl. Munch. Tierarztl.- 1989. -V. 102, № 9. P. 293-297.
503. Goudie A.C., Evans N.A., Gration K.A. et al. Doramectin a potent novelendectocide // Vet. Parasitol. 1993. - V. 49, № 1. - P. 5-15.
504. Graunke W.D. Practical experiences with ivermectin in Psoroptes menge ofsheep // Prakt. Tierarzt. 1984. - V. 65. - P. 732-736.
505. Greve J.H., Gaafar S.M. Natural transmission of Demodex canis in dogs // J.
506. Amer. Vet. Med. Assoc. 1966. - V. 148, № 9. - P. 1043-1045.
507. Guillot F.S, Meieney W.P. The infectivity of surviving Ps. ovis (Hering) oncattle treated with ivermectin // Vet. Parasitol. 1982. - V. 10. - P. 7378.
508. Guillot F.S., Wrigt F.S., Meleney W.P. Trials with same acaricides on sheeps
509. Prev. Vet. Med. 1983. -V. 1, № 2. - P. 179-189.
510. Heath A.C., Bishop D.M., Tenquist J.D. Observations on the potential fornatural transfer of Psoroptes cunicult and Chorioptes bovis (Acari: Pso-roptidae) between goats and sheep // N.Z. Vet. J. 1989. - V. 37, № 2. -P. 56-58.
511. Heinze-Mutz E.M., Barth D., Cramer T.G. et al. Efficacy of abamectinagainst ectoparasites of cattle // Vet. Rec. 1993. - V. 132, № 18. - P. 455-457.
512. Henriksen S.A., Ebbesen T.J., Nielsen K.V. Eradication of mange from alarge sow and slaughter pig herd // Danslc Vet. Tidsskr. — 1987. — V. 70, №4.-P. 575-579.
513. Hillier A., Desch C.E. Large-badied Demodex mite infestation in 4 dogs // J.
514. Amer. Vet. Med. Assoc. 2002. - V. 220, № 5. - P. 623-627.
515. Hogemeister P., Schutz W. Untersuchungen uber die Wirksomkeit uou ivermectin gegen die linderrange // Prak. Tierarz. Zt. 1983. - V. 64, № 9. -P. 807-813.
516. Hogg A. Eradication of sarcoptic mange in swine with ivermectin // Proc. Int.
517. Pig. Vet. Soc. Congr. Ghent, Belgium. 1984. - P. 206.
518. Hogg A. The control and eradication of sarcoptic mange in swineherds //
519. Agric. Practice. 1989. -V. 6, № 1. - P. 8-10.
520. Hogg J.C., Lehane M.J. Microfloral diversity of cultured and strains of Psoroptes ovis infesting sheep // Parasitology. 2001. - V.l 23, № 5. - P. 441-446.
521. Hollander W., Vercruysse J., Paes S., Bornstein S. Evaluation of an enzymelinlced immunosorbent assay (ELISA) for the serological diagnosis of sarcoptic mange in swine // Vet. Parasitol. 1997. - V. 69, № 1-2. — P. 117— 123.
522. Hoogstraal H., Valdex R. Ticks (Ixodoidae) from wild sheep and goats in Iran
523. Fieldiana: Zool., 1980. V. 6, № 1. - p. 16.
524. Isdebska J.N. The occurrence of parasitic arthropods in two groups of European bison in the Biolowieza primeval forest // Wiad. Parazytol. — 2001. — V. 47, №4.-P. 801-804.
525. Jacobson M., Bornstein S., Wallgren P. Experiences from eradication systemsdirected against Sarcoptes scabiei // Proc. Int. Pig Vet. Soc. Congr. 2. V.15. Birmingham, England. 1998. P. 118.
526. Jacobson M., Bornstein S., Wallgren P. The efficacy of simplified eradicationstrategies against sarcoptic mange mite infestations in swine herds monitored by an ELISA // Vet. Parasitol. 1999. - V. 81, № 2. - P. 249-258.
527. Jacobson M., Bornstein S., Palmer E., Wallgren P. Elimination of Sarcoptesscabiei in pig herds by a single or double administration of an avermectin // Acta. Vet. Scand. 2000. -V. 41, № 1. - P. 227-235.
528. Jacober P., Ochs H., Risi J., Deplazes P. Outbreak of sheep scab on two adjacent common alpine pastures in the canton of Schwyz (Switzerland) // Schweiz. Arch. Tierheilkd. 2004. - V. 146, № 2. - P. 61-69.
529. Jacober P., Ochs H., Torgerson P.R. et al. A method for sheep scab control byapplying selective treatment based on flock serolgy // Vet. Parasitol. — 2006. V. 136, № 3-4. - P. 373-378.
530. Jensen J.C.E. Experiences with short medication periods using tiamulin for eradication of swine dysentery and ivermectin for eradication of mange // Proc. Int. Pig Vet. Soc. Congr. V.10. Rio De Janeiro, Brazil. 1988. P. 269.
531. Kamboj D.S., Khahra S.S., Singh P.J., Nauriyal D.S. Comparative efficacy ofvarious acaricides against psorptic mange in rabbits // Indian J. of Vet. Med. 1995.-V. 15, № l.-P. 53.
532. Kanbur M., Atalay O., Ica A. et al. The curative and antioxidative efficiencyof doramectin and doramectin + bitamin A1D3E treatment on Psoroptes cuniculi infestation in rabbits // Res. Vet. Sei. 2007. - V. 30, № 3. - P. 240-243.
533. Knottenbelt M.K. Chronic etitis extena due to Demodex canis in a Tibetanspaniel // Vet. Ree. 1994. - V. 135, № 19. - P. 464.
534. Korenberg E.I. Comparative ecology and epidemiology of Lyme diseases andtics-borne encephalitis in the former Sovien Union // Parasitol. 1994. -Today.-V. 10.-P. 157-160.
535. Kraft W., Kraiss-Gothe A., Gothe R. Otodectes cynotis infestation of dogsand cats: biology of the agent, epidemiology, pathogenesis and diagnosis and case description of generalized mange in dogs // Tiearztl. Prax. — 1998. -V. 16, №4. -P. 409-415.
536. Kurade N.P., Bhat T.K., Jithendran K.P. Effect of ivermectin against earmange mite (Psoroptes cuniculi) in naturally infested rabbits // World Rabbit Sc. 1996. - V. 4, № 1. - P. 25-27.
537. Kurtdede A., Karaer Z., Acar A. et al. Use of selamectin for treatment of psoroptic and sarcoptic mite infestation in rabbits // Vet. Dermatol. 2007. -V. 18, № l.-P. 18-22.
538. Lekimme M., Mignon B., Tombeux S. et al. In vitro entamopathogenic activity of Beauveria bassiana against Psoroptes spp. (Acari: Psoroptidae) // Vet. Parasitol. 2006. - V. 139, № 1-3. - P. 196-202.
539. Liebisch A., Rahman M.C. Beitrag 2-ur Therapie Psorptes und Sarcoptesraude Verschidener Haus-tieraten mit dem Phosphorsaureester Sebacil // Vet. Med. Nochricht. 1980. -№ 1. - S. 3-16.
540. Lohse J., Rinder H., Gothe R., Zahler M. Validity of species status of the parasitic mite Otodectes cynotis // Med. Vet. Entomol. 2002. - V. 16, № 2. -P. 133-138.
541. Lonneux J.F., Losson В. Field efficacy of injectable and pour-on moxidectinin cattle naturally infested with Psoroptes ovis (Acarina: Psoroptidae) // Vet. Parasitol. 1992. -V. 45, № 1-2. - P. 147-152.
542. Lonneux J.F., Nguyen T.Q., Hollanders W., Losson B.J. A sandwich enzymelinked immunosorbent assay to study the antibody response against Psoroptes ovis in cattle // Vet. Parasitol. 1996. - V. 64, № 4. - P. 299-314.
543. Lonneux J.F., Nguyen T.Q., Losson В.J. Efficacy of moxidectin and ivermectin in cattle naturally infected with Psoroptes ovis // Vet. Parasitol. — 1997. V. 69, № 3-4. - P. 319-330.
544. Lonneux J.F., Nguyen T.Q., Detry J. et al. The relationship between parasitecounts, lesion, antibody titres and daily weight gains in Psoroptes ovis infested cattle // Vet. Parasitol. 1998. - V. 76, № 1-2. -P.l 37-148.
545. Losson В., Lonneux J.F. Field efficacy of flumethrin pour-on against Psoroptes ovis in cattle // Vet. Parasitol. 1992. - V. 131, № 4. - P. 73-75.
546. Losson В., Lonneux J.F. Field efficacy of moxidectin 0,5% pour-on against
547. Chorioptes bovis, Damalinia bovis, Linognathus vituli and Psoroptes ovis in naturally infected cattle // Vet. Parasitol. 1996. - V. 63, № 1-2. - P. 119-130.
548. Losson B.J., Lonneux J.F., Lekimme M. The pathology of Psoroptes ovis infestation in cattle with a special emphasis on breed difference // Vet. Parasitol. 1999. - V. 83, № 3-4. - P. 219-229.
549. Loewenstein M., Ludin A., Schuh M. Comparison of scratching behaviour ofgrowing pigs with sarcoptic mange before and after treatment, employing two distinct approaches // Vet. Parasitol. 2006. - V. 140, № 10. - P. 334-343.
550. Lulcesova D., Zirlasky et al. Prevalence a diagnostika svarabu v. Chovechprasat v Ceske republike // Veterinarstvi. 2000. V. 50, № 5. - P. 190192.
551. Macchioni F., Perrucci S., Cioni P.L. et al. Acaricidae activity of aqueous extracts of chamomile flowers, Matricaria chamomilla, against the mite Pso-roptes cuniculi II Med. Vet. Entomol. 2004. - V. 18, № 2. - P. 205-207.
552. Madsen S.A. Eradication of mage in pigs with Sebacil® pour-on in combination with Ivomec® and Sebacil® Linement 50 % II Proc. Int. Rig Vet. Soc. Congr. V.l 1. Lausanne, Switzerland. 1990. - P. 321.
553. Malaka A., Samy S. Diazinon in treatment of mange in farm animals // I.
554. Rabbit mange 11. Sheep mange. I. Arab. Vet. Med. Assoc. 1965. — V. 25, №3.-P. 41-48.
555. Malaka A., Hameda E., Zenab E. Experiment on chlorinated hydrocarbonswith comparison to organophosphates for treatment of mange in farm animals //1. of Egypt. Vet. Med. Assoc. 1971. -V. 31. -№ 1/2. -P. 39-41.
556. Masselle R.M., Kambarage D.M., Kimera S.I. et al. Psoroptes cuniculi infestation in rabbits // Bull. Anim. Health. Product. In Africa. 1995. - V. 43, № l.-P. 77-79.
557. Mazyad S.A., Sanad E.M., Morsy T.A. et al. Two types of scab mites infesting man and sheep in North Sinai // J. Egypt. Soc. Parasitol. 2001. — V. 31,№ l.-P. 213-222.
558. McKellar Q.A., Midgley D.M., Galbroith E.A. et al. Clinical and pharmacological properties of ivermectin in rabbits and guinea pigs // Vet. Rec. -1992. V. 130, № 4. - P. 71-73.
559. McTier T.L., Hair J.A., Walstram D.J., Thompson L. Efficacy and safety oftopical administration of selamectin for treatment of ear mite infestation in rabbits // J. Amer. Vet. Med. Assoc. 2003. - V. 223, № 3. - P. 322-324.
560. Meintjes T., Fourie L.J., Horak J.G. On-host ecology and off-host survival ofthe sheep scab mite Psoroptes ovis // Onderstepoort J. Vet. Res. 2002. -V. 69, №4.-P. 273-283.
561. Meintjes T., Fourie L.J., Horak J.G. Effect of the scab mite Psoroptes ovis onthe haemotology and live moss of Merino and Dorper sheep // Onderste-poort J. Vet. Res. 2002. - V. 69, № 4. - P. 285-293.
562. Meintjes T., Fourie L.J., Horak J.G. Host preference of the sheep scab mite,
563. Psoroptes ovis // J. S. Afr. Vet. Ass. 2002. - V. 73, № 3. - P. 135-136.
564. Meintjes T., Fourie L.J., Horak J.G. The rate of spread of sheep scab mithinsmall groups of Merino and Dorper sheep // J. S. Afr. Vet. Ass. 2002. -V. 73, №3.-P. 137-138.
565. Mignon B.R., Losson B.J. Efficacy of phyto-aromatic gel against auricularmange in rabbits and carnivores // Vet. Rec. 1996. - V. 138, № 14. - P. 329-332.
566. Miller R.S. Control of parasites on animals // Vet. Rec. 1994. - V. 135, №12.-P. 600-601.
567. Miller R.S., Eagle R.P., Zabel S. et al. Efficacy and safety of selamectin in thetreatment of Otodectes cynotis infestation in domestic ferrets // Vet. Rec. 2006. - V. 159, № 22. - P. 748.
568. Morsy T.A., Habib K.S., Haridy F.M. Ivermectin and clarsulon (ivomec super) in treatment of gaates naturally infested with scab mites and biting lice // J. Egypt. Soc. Parasitol. 2001. - V. 31, № 2. - P. 373-379.
569. Mueller R.S., Bettaney S.V. Efficacy of selamectin in the treatment of caninecheyletiellosis // Vet. Rec. 2002. - V. 151, № 5. - P. 773.
570. Mueller R.S. Treatment protocols for demodicosis: An evidence based review // Vet. Dermatology. 2004. - V. 15. - P. 75-89.
571. Mueller R.S. Dermatology for the Small Animal Proctitioner. 2006. - 106 p.
572. Mueller R.S. Update on the diagnosis and treatment of fleas and mites // Proc.of the WSAVA Congress, Sydney. 2007. - P. 22-24.
573. Mumcuoglu K.Y. A technique for quantitative evaluation of ectoparasiticmites and incects of domestic animals // Exp. Appl. Acarol. 1990. - V. 9,№ 1-2.-P. 97-101.
574. Nayak D.C., Tripathy S.B., Dey P.C. et al. Prevalence of canine demodecosisin Orissa (India) // Vet. Parasitol. 1977. - V. 73, № 3-4. - P. 347-352.
575. Nijhof A.M., Bodaan C., Postigo M. et al. Tricks and Associated Pathogenscollected from Domestic Animals in the Nederlands // Vector Borne Zoonotic Dis. 2007. - № 2. - P. 17-19.
576. Nisbet A.J., Huntley J.F. Progress and opportunities in the development ofvaccines against mites, fleas and myiasis causing flies of veterinary importance // Parasite Immunol. - 2006. - V. 28, № 5. - P. 229.
577. Nsosos J., Mosala K.P., Ndebete R.T., Ramabu S.S. The prevalence of infernal and external parasites in pigs of different ages and sexes in Southeast District, Botswana // Onderstepoort J. Vet. Res. 2000. - V. 15, N1. - P. 261-262.
578. Nutting W.B., Desch C. Demodex canis: redescription and réévaluation //
579. Cornall Vet. 1978. -V. 68, № 2. - P. 139-149.
580. O'Brien D.J., Gray J.S, O'Reilly P.F. Examination of possible transmission ofsheep scab mite Psoroptes ovis between host species // Vet. Res. Commun. 1994.-V. 18, №2.-P. 113-117.
581. O'Brien D.J., Gray J.S, O'Reilly P.F. The use of maxidectin 1 % injectablefor the control of psoroptes mange in sheep // Vet. Parasitol. 1994. - V. 52, № 1-2.-P. 91-96.
582. O'Brien D.J., Morgan J.P., Lane M.F. et al. Treatment and prophylaxis ofpsoroptic mange of sheep by a 10 % w/w dip formulation of high CJS -cynermethrin // Vet. Parasitol. 1997. - V. 69, № 1-2. - P. 125-131.
583. O'Brien D.J. Treatment of psoroptic mange with reference to epidemiologyand history // Vet. Parasitol. 1999. - V. 83, № 3-4. - P. 177-185.
584. O'Brien D.J., Forbes A.B., Pitt S.R., Baggott D.G. Treatment and prophylaxisof psoroptic mange (sheep scab) using an ivermectin intraruminal controlled release bolus for sheep // Vet. Parasitol. - 1999. - V. 85, № 1. — P. 79-85.
585. O'Brien D.J., Brown D., Parker L.D. et al. Evaluation of the persistent of injectable endectocides against Psoroptes ovis // Vet. Ree. 2001. - V. 149, № 17.-P. 522-523.
586. Ochs H., Lonneux J., Losson B.J., Deplazes P. Diagnoses of psoroptic sheepscab with an improved enzyme-linked immunosorbent assay // Vet. Para-sitol. 2001. - V. 96, № 3. - P. 23-242.
587. Okerman L. Diseases of the skin. Diseases of Domestic Rabbits. Oxford
588. Blakwell Scientific, 1994. P. 52-53.
589. Olsen J.D. Imidacloprid plus moxidectin topical solution — a novel therapeuticfor ectaparasitic diseases in dogs and cats // Med. Vet. 2007. - V. 1. -P. 74-75.
590. Otranto D., Milillo P., Mesto P. et al. Otodectes cynotis: examination of survinal off the - host under natural and laboratory conditions // Exp. Appl. Acarol. - 2004. - V. 32, № 3. - P. 171-179.
591. Palovic J. Swine scabies eradication by using doramectin (dectomax) farm experience // Proc. 19 JPVS Congress, Copenhagen, 2006. V. 2. - P. 27-28.
592. Pan B.5 Wang M., Xu F. et al. Efficacy of an injectable formulation of eprinomectin against Psoroptes cuniculi the ear mange mite in rabbits // Vet. Parasitol. 2006. - V. 137, № 3-4. - P. 368-390.
593. Pandey V.S. Treatment of psoroptic mange of rabbit with ivermectin // Programme and abstracts. 1987. - P. 32.
594. Pandey V.S. Effect of ivermectin on the ear mange mite, Psoroptes cuniculi,of rabbits // Brit. Vet. J. 1989. - V. 145, № 1. - p. 54-56.
595. Pap L., Sarkösy P., Farkas R. et al. Efficacy of come pyrethroides against astrain of the rabbit ear mite (Psoroptes cuniculi): ununusual cross — resistance pattern // Parasitol. Res. 1977. - V. 83, № 2. - P. 203-205.
596. Parker R.R., Spenser R.R. Hereditary transmission of tularemia infection bythe wood ticks, Dermacentor andersoni Sticks // Publ. Health Rep. 1924. -V.41.-P. 1403-1407.
597. Pathak K.M.L., Kapoor M. Efficacy of ivermectin against psoroptes in rabbits
598. Indian J. Anim. Heaith. 1990. - V. 29, № 2. - P. 189-190.
599. Payne P.A., Dryden M.W., Carter G.R. External Parasitic Diseases of Dogsand Cats / In: A Concise Guide to Infections and Parasitic Diseases of Dogs and Cats. Ed. Carter G.R., Payne P.A. 2005. - 409 p.
600. Pegler K.R., Wall R. Tactic response of the parasitic mite Psoroptes ovis tolight and temperature // Exp. Appl. Acarol. 2004. - V. 33, № 1-2. - P. 69-79.
601. Perrucci S., Cioni P.L., Flamini G. et al. Acaricidae agents of natural originagainst Psoroptes cuniculi // Parasitología. 1994. - V. 36, № 3. - P. 269271.
602. Perrucci S., Macchioni G., Cioni P.L. et al. Structure / activity relationship ofsome natural monoterpenes as acaricides against Psoroptes cuniculi // J. Nat. Prod. 1995. - V. 58, № 8. - P. 1261-1264.
603. Perrucci S., Cioni P.L., Cascella A., Macchioni F. Therapeutic efficacy of linalool for the topical treatment of parasitic otitis caused by Psoroptes cuniculi in the rabbit and in the goat // Med. Vet. Entomol. 1997. - V. 11, №3.-P. 300-302.
604. Perrucci S., Rossi G., Aerobic and microaerophilic bacteria isolated from Psoroptes cuniculi // Parasitología. 2002. - V. 44, № 3-4. - P. 149-151.
605. Perrucci S., Rossi G., Fichi G., O'Brien D.J. Relationship between Psoroptescuniculi and the infernal bacterium Serration marcescens // Exp. Appl. Acarol. 2005. - V. 36, № 3. - P. 199-206.
606. Pott J.M., Riley C.J. The efficacy of a topical ear preparation against Otodectes cynotis infection in dogs and cats // Vet. Rec. — 1979. V. 104, № 25.-P. 579.
607. Porchet M.J., Sager H., Muggli L. et al. A descriptive epidemiological studyon canine babisiosis in the Lake Geneva region // Schveiz. Archiv Tier-heilk. 2007. - V. 149, № 10. - P. 457-465.
608. Prosl H., Kanout A.G. Treatment of ear mange in rabbits with ivermectin //
609. Berliner-und-munchener-Tierarztliche-Wochenschrift. — 1985. -V. 398. — P. 45-47.
610. Prosl H. Treatment of ear mange in rabbits with ivermectin // Tierarzt. — 1985.-V. 92, №2.-P. 45-47.
611. Pruett J.H., Temeyer K.B., Fisher W.F. et al. Evaluation of natural Psoroptesovis (Acarina: Psoroptidae) soluble proteins as candidate vaccine immunogens //J. Med. Entomol. 1998. -V. 35, № 5. - P. 861-871.
612. Peccini V., Giangaspero A., Facanella A. Efficacy of maxidectin against Oestrus ovis larvae in naturally infected sheep // Vet. Ree. 1994. - V. 135, № 12.-P. 600-601.
613. Pullar E. Mange or scabies of pigs // J. Agric. Victoria Aust. 1941. - V. 39.-P. 99-104.
614. Rahbari S., Nabian S., Shayan P. Primary report on distribution of tick faunain Iran//Parasitol. Res. 2007. - V. 101, №2.-P. 175-177.
615. Randolph S.E., Craine N.G. General framework for comparative guantitavestudies on transmission of ticks-borne diseases using Lyme borreliosis in Europe as an example // Med. Entomol. J. Med. Entomol. 1995. - V. 32, №6.-P. 765-777.
616. Reddin J.P. Mange — eradication in pigs. Pig Production // Univ Sydney Post
617. Grad Comm Vet Sei Proc. 1997. - P. 111-117.
618. Rehbein S., Visser M., Winter R., Maciel A.E. Effecacy of a new long acting formulation of ivermectin and other injectable avermectins against induced Psoroptes ovis infestations in cattle // Parasitol. Res. 2002. - V. 88, № 12.-P. 1061-1065.
619. Reese N.E., Boyce W.M., Gardner I.A., Nelson D.M. Fixation affects morphometric characters of Psoroptes cuniculi mites (Acari: Psoropticae) // J. Med. Entomol. 1996. - V. 33, № 5. - P. 835-838.
620. Restani R., Tampieri M.P., Lorenzi G. Ricirche sull "attivita dell" ivermectinanella terapia della rogna psoroptica in conigli // Riv. Coniglicolt. 1984. -V. 21, №38.-P. 23-27.
621. Rodriguez-Vivas R.I., Ortega-Pacheco A., Rosado-Aguilar J.A., Bolio G.M.
622. Factors affecting the prevalence of mange mite infestations in stray dogs of Yucatan, Mexika // Vet. Parasitol. - 2003. - V. 115, № 1. - P. 61-65.
623. Rubina M., Hodani A., Ziv M. The life cucle of the tick Hyalomma anatolicum excavatum Koch. 1844, maintained under field conditions in Israel // Rev. Elev. Med. Vet. Pays Trop. -1982. V. 35, № 3. - P. 255-264.
624. Sanders A., Frogott P., Wall R., Smith K.E. Life-cycle stage morphology of
625. Psoroptes mange mites // Med. Vet. Entomol. 2000. - V. 14, № 2. - P. 131-141.
626. Sargison N.D., Scott P.R., Penny C.D., Pirie R.S. Effect of an outbreak ofsheep scab (Psoroptes ovis infestation) during mid pregnancy on ewe body condition and lamb birthweight // Vet. Rec. - 1995. - V. 136, № 12. - P. 287-289.
627. Sargison N.D., Scott P.R., Penny C.D., Pirie R.S. Treatment of naturally occurring sheep scab (P. ovis) in the United Kingdom with ivermectin // Vet. Ree. 1995.-V. 136, № 15.-P. 400.
628. Saridomichelakis M., Koutinas A., Papadogiannakis E. et al. Adult onsetdemocicosis in two dogs due to Demodex canis and a short-lailed demo-dectic mite // J. Small Anim. Pract. 1999. - V. 40, № 11. - P. 529-532.
629. Schetters T. Towards a Psoroptes ovis vaccine // Trends Parasitol. — 2001.1. V. 17, №8.-P. 360.
630. Shanks D.J., McTier T.L., Rowan T.G. et al. The efficacy of selamectin in thetreatment of naturally acquired anral infestations of Otodectes cynotis on dogs and cats // Vet. Parasitol. 2000. - V. 91, № 3-4. - P. 283-290.
631. Shpynov S., Fournier P.E., Rudolcov N. et al. Detection of members of thegenera Rickettsia, Anaplasma and Ehrlichia in ticks collected in the Asiatic part of Russia // Ann. N.Y. Acad. Sei. 2006. - V. 1078, № 10. - P. 378-383.
632. Siegfried E., Ochs H., Deplaces P. Clinical development and serological antibody responces in sheep and rabbits experimentally infected with Psoroptes ovis and P. cuniculi // Vet. Parasitol. 2004. - V. 124, № 1-2. - P. 109-124.
633. Sinski E. Enzootic reservoir for new Ixodes ricinus — transmitted infections //
634. Wiad. Parazytol. 1999. -V. 45, № 2. - P. 135-142.
635. Six R.H., Clemence R.G., Thomas C.A. et al. Efficacy and safety of selamectin against Sarcoptes scabiei on dogs and Otodectes cynotis on dogs and cats presented as veterinary patients // Vet. Parasitol. 2000. - V. 91, № 3-4. -P. 291-309.
636. Smets K., Neirynck W., Vercruysse J. Eradication of sarcoptic mange from a
637. Belgian pig breeding farm with a combination of inj actable and in feed ivermectin//Vet. Ree. - 1999. -V. 145, № 25. - P. 721-724.
638. Smith K.E., Wall R., Berriatua E., French N.P. The effects of temperature andhumidity on the off host survival of Psoroptes ovis and Psoroptes cuni-culi // Vet. Parasitol. - 1999. - V. 83, № 3-4. - P. 265-275.
639. Smith K.E., Wall R., French N.P. The use of entomopathogenic fungi for thecontrol of parasitic mites Psoroptes spp. // Vet. Parasitol. 2000. — V. 92, №2.-P. 97-105.
640. Smith W.D., Broek A., Hemtley J. et al. Approaches to vaccines for Psoroptesovis//Res. Vet. Sci. 2001. - V. 70, № l.-P. 87-91.
641. Smith W.D., Bates P., Pettit D.M. et al. Attempts to immunize sheep againstthe scab mite Psoroptes ovis // Parasite Immunol. — 2002. — V. 24, № 6. — P. 303-310.
642. Smith W.D., Pettit D.M. Immunisation against sheep scab: preliminary identification of fractions of Psoroptes ovis witch confer protective effects // Parasite Immunol. 2004. - V. 26, № 6-7. - P. 307-314.
643. Soli M.D., Carmichael I.H., Swan G.E., Abrey A. Treatment and control ofsheep scab (P. ovis) with ivermectin under field conditions in South Africa // Vet. Rec. 1992. - V. 130, № 26. - P. 572-574.
644. Sonza C.P., Correia T.R., Melo R.M. et al. Mulicidal efficacy of thiabendazollagainst Otodectes cynotis (Hering, 1838) in dog // Rev. Bras. Parasitol. Vet. 2006. - V. 15, №4.-P. 143-146.
645. Sotiraki S.T., Koutinas A.F., Leontides L.S., Himonas C.A. Factors affectingthe frequency of ear canal and face infestation by Otodectes cynotis in the cat // Vet. Parasitol. 2001. - V. 96, № 4. - P. 309-315.
646. Spencer B.T. Eradication of Sarcoptes scabiei var. suis by use of ivomec premix abone // Proc. of the 19 JPVS Congress, Danmark. 2006. - V. 2. -P. 27-29.
647. Srivastava C.P., Maru A., Dubey S.C. Efficacy of ivermectin against mangemite infection in rabbits // Indian J. Vet. Med. 1991. - № 11. - p. 74.
648. Stegeman J.A., Rambags P.G., Elber A.R., Hunneman W.A. Experimqntalquantification of the transmission of Sarcoptes scabiei var. suis among finishing pigs // Vet. Parasitol. 2000. - V. 93, № 1. - P. 57-67.
649. Thind B.B., Ford H.L. A simple pump assisted method for collecting live,undamaged Psoroptes ovis from sheep using circulating saline // Vet. Parasitol. 2003. - V. 114, № 3. - P. 215-222.
650. Thind B.B., Ford H.L. Maintaining Psoroptes ovis (Acari: Psoroptidae) off- host inthe laboratory // Exp. App. Acarol. 2007. - V. 43, № 3. - P. 205-211.
651. Thomas P., Bicknell S.R., Hamlet E.J., Janowicz J. Porcine sarcoptic mange.
652. An eradication project. A preliminary report // Proc. Rig Vet. Soc. 1986. — № 15. - P. 96-99.
653. Trauna O., Cafarchia C., Capelli G. et al. In vitro acaricidae activity of fourmonoterpenes and solvents against Otodectes cyanotic (Acari: Psoroptidae) // Exp. App. Acarol. 2005. - V. 37, № 1-5. - P. 141-146.
654. Tripathi S.C., Sharma R.J., Singh V. et al. Therapeutic efficacy of ivermectinin rabbits (Oryctolagus cuniculus) experimentally infected with Psoroptic cuniculi // Indian J. anim. Health. 1993. - V. 32, № 1. - P. 55-56.
655. Uhlir J., Volf P. Ivermectin: its effect on the u immune system of rabbits anrats infested with ectoparasites // Vet. Immonol. Immunopathol. 1992. -V. 34, № 3-4. - P. 325-326.
656. Ugochukwu E J., Nnadozie C.C. Ectoparasitic infestation of dogs in Bendel
657. State, Nigeria // Int. J. Zoonoses. 1985. - V. 12, № 4. - P. 308-312.
658. Ulutas B., Voyvoda H., Bayramli G., Karagenc T. Efficacy of topical administration of eprinomectin for treatment of ear mite infestation in six rabbits // Vet. Dermatol. 2005. - V. 16, № 5. - P. 334-337.
659. Varge I. Parazitak okozta betegsegek. Hazinyul-egeszsegtan. Szerk. Vetesi F.
660. Mezôgazdasagi Kiado, Budapest, 1990. P. 227-229.
661. Vercruysse J., Rehbein S., Holdsworth P.A. et al. World Association for the
662. Advancement of Veterinary Parasitology (W.A.A.V.P.) guidelines forevaluating the efficacy of acaricides against (mange and itck) mites on ruminants I I Vet. Parasitol. 2006. - V. 136, № 1. - P. 56-66.
663. Vogelnest LJ. Cutaneous xanthomas with concrent demodicosis and dermatophylosis in a cat // Aust. Vet. J. 2001. - V. 79, № 7. - P. 470-475.
664. Voros G. A nyulak ruhessege. Kistermelok Lapja, 1992. — V. 36, № 12. P. 27.
665. Wagner R. Field efficacy of moxidectin in dogs and rabbits naturally infestedwith Sarcoptes spp., Demodex spp. and Psoroptes spp. mites /R. Wagner, U. Wendberger // Vet. Parasitol., 2000. V. 93, № 2. - P. 149-158.
666. Wall R., Smith K.E, Berriatia E., Trench W.P. Simulation analysis of thepopulation dynamics of the mite Psoroptes ovis infesting sheep // Vet. Parasitol. 1999. - V. 83, № 3-4. - P. 253-264.
667. Wall R., Kolbe K. Taxonomic priority in Psoroptes mange mites: P. ovis or P.equi // Exp. Appl. Acarol. 2006. - V. 39, № 2. - P. 159-162.
668. Wayr F. Die Beriehungen des Q-Fiebers-Frreger (Rickettsia burneti) zu Arthropoden // Ztschr. Tropenmed. Parasitol. 1953. - V. 4, № 3. - P. 344-382.
669. Weisbroth S.H., Wilhelmsen C., Powell M. Efficacy of Vapona containingflea collars" for control of Otodectes cyanotic // Cornell Vet. — 1974. — V. 64, №4.-P. 549-558.
670. White M.E.C., Ryan G.W. Control of an outbreak of pig mange with ivermectin// Vet. Rec. 1987. -V. 121, №2. -P. 496.
671. Williams H.G., Parker L.D. Control of scab sheep (Psoroptes ovis) by a singleprophylactic injection of moxidectin // Vet. Rec. 1996. - V. 139, № 24. -P. 598-599.
672. Wilkins C.A., Conroy I., Ho P., O'Shanny W. Efficacy of ivermectin againstticks on cattle // Proc. 25th Annu. Meet. Am. Assoc. Vet. Paraitol., Washington, D.C. 1980. -V. 18. - P. 20-22.
673. Wolt R., Ophir J., Avigad J. et al. The hair follicle mites (Demodex spp.).
674. Cold they be vectors of pathogenic microorganisms? // Acta Derm. Ven-eral. 1988. - V. 68, № 6. - P. 535-537.th
675. Wright F.C. Chemical control of psoroptic mites // Abstr. 186, 58 Annu.
676. Meet. Am. Soc. Parasitol. San. Antonio Texas, Dec. 4-8, 1983.
677. Wright F.C. Preliminary trials using a macrolyctic lactone against psoropticscabies of cattle // Vet. Parasitol. 1990. - V. 34, № 4. - P. 289-294.
678. Yazwinski T.A., Pote 1., Tilley W. et al. Efficacy of ivermectin against Sarcoptes scabiei and Otodectes cynotis infestations of dogs // Vet. Med. Small Anim. Clin. 1981. -V. 76, № 12. - P. 1749-1751.
679. Zahler M., Hendrikx W.M., Essig A. et al. Species of the genus Psoroptes
680. Acari: Psoroptidae) a taxonomic consideration // Exp. Appl. Acarol. — 2000. V. 24, № 3. - P. 213-225.
681. Zeybek H. Aktivity of ivermectin aganst Hypoderma larva and other endoand ectoparasites in Angola goats // Etlik Viteriner Microbiology Enstitu-su Dergisi. 1985. - V. 5, № 8/9. - P. 51-60.
-
Катаева, Татьяна Семеновна
-
доктора ветеринарных наук
-
Москва, 2009
-
ВАК 03.00.19
- Паразитофауна домашних и диких плотоядных животных Юга России и меры борьбы с основными паразитозами
- Основные арахноэнтомозы и гельминтозы крупного рогатого скота в Тюменской области
- Важнейшие инвазионные болезни мелких домашних животных в условиях Европейского Севера России
- Аноплоцефалятозы крупного рогатого скота в Центральной Якутии и меры борьбы с ними
- Эпизоотологический надзор при гемоспоридиозах крупного рогатого скота в условиях Нижегородской области
