Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Участие эндогенных олисахаридов в адаптации проростков озимой пшеницы к низким положительным температурам

ВАК РФ 03.00.12, Физиология и биохимия растений

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Аюпова, Дина Анваровна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1 Строение и функции клеточной стенки высших растений.

1.2. Метаболизм клеточной стенки.

1.3. Биологически активные олигосахариды.

1.3.1. Олигосахарины, участвующие в ответе на патогенное воздействие.

1.3.2. Олигосахарины, регулирующие рост, морфогенез и дифференцировку.

1.3.3. Рецепция олигосахаринов.

1.3.4. Биологическая значимость олигосахаринов.

1.4. Метаболические изменения при низкотемпературной адаптации растений.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. Растительный материал.

2.2. Выделение олигосахаридных фракций.

2.3. Гель-проникающая хроматография на Bio-gel Р-4.

2.4. Высоко-эффективная анионообменная хроматография.

2.5. Анализ моносахаридного состава олигосахаридных фракций.

2.6. Обработка активной фракции гидролитическими ферментами.

2.7. Определение влияния на морозостойкость проростков пшеницы.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Выделение олигосахаридов, влияющих на формирование морозостойкости проростков озимой пшеницы.

3.2. Изучение динамики накопления олигосахаридов, повышающих морозостойкость проростков озимой пшеницы в первые часы охлаждения.

3.3. Влияние активных олигосахаридов на процесс формирования морозостойкости проростков озимой пшеницы.

3.4. Совместное действие активных олигосахаридов и ингибиторов биосинтеза РНК и белка на морозостойкость проростков озимой пшеницы.

3.5. Очистка фракции, повышающей морозостойкость проростков озимой пшеницы.

3.6. Моносахаридный состав активных олигосахаридных фракций.

ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.

4.1. Обнаружение эндогенных олигосахаридов, вовлеченных в формирование морозостойкости проростков пшеницы.

4.2. Характер функционирования активных олигосахаридов в ходе формирования морозостойкого состояния.

4.3. Состав активного компонента олигосахаридной фракции и его вероятное происхождение.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Участие эндогенных олисахаридов в адаптации проростков озимой пшеницы к низким положительным температурам"

Постановка проблемы, ее актуальность. В конце 1970х гг. впервые были обнаружены биологически активные олигосахаридные фрагменты клеточной стенки, названные олигосахаринами, и высказана идея о том, что они могут являться регуляторными молекулами растений (Элберсгейм, Дарвилл, 1985). Последующие за этим многочисленные работы показали, что фрагменты гетерополисахаридов как грибных, так и растительных клеточных стенок обладают широким спектром биологического действия, оказывая влияние на рост, морфогенез, дифференцировку растений (Aldington, Fry, 1993). Особенно подробно изучено их участие во взаимодействиях растение-патоген (Cote, Hahn, 1994 ). Интенсивная метаболизация полисахаридов клеточной стенки в ходе активного роста, созревания и в стрессовых условиях дает основания предполагать наличие и функционирование олигосахаринов в растительном организме, однако в определенной степени "искусственный путь" получения (щелочной, кислотный или ферментативный гидролиз полимеров клеточной стенки) большинства известных из них на данный момент оставлял этот вопрос открытым. Важным шагом на пути развития представлений об олигосахаринах как регуляторных молекулах явилась работа, в ходе которой впервые были выделены эндогенные олигосахариды, влияющие на рост и органогенез (Заботина и др., 1995), однако и в ней их физиологическая значимость в жизнедеятельности растения оставалась не выясненной.

В последнее время обоснована вовлеченность клеточной стенки в формирование гипотермического синдрома: показана метаболизация гемицеллюлоз, изменение их моносахаридного состава и кратковременная активация локализованных в клеточной стенке гликозидаз в первые часы действия низких положительных температур (Zabotin et al.,1998). Тем не менее, данные об участии в этом процессе регуляторных олигосахаридов, возникновение которых вполне вероятно в результате протекания этих процессов, отсутствуют.

Цель и задачи исследования. Цель данной работы заключалась в обнаружении и идентификации олигосахаридов, участвующих в процессе адаптации растений к низким положительным температурам. В связи с этим были поставлены следующие задачи:

1. Идентификация и очистка олигосахаридов, вовлеченных в процесс низкотемпературной адаптации.

2. Изучение динамики эндогенного содержания олигосахаридов в первые часы гипотермии.

3. Изучение влияния олигосахаридов на формирование морозостойкого состояния проростков озимой пшеницы.

4. Изучение зависимости эффекта олигосахаридов от функционирования белок-синтезирующей системы.

Научная новизна работы. Впервые не только обнаружена и охарактеризована эндогенная олигосахаридная фракция, повышающая морозостойкость растений, но и продемонстрирована ее вовлеченность в низкотемпературную адаптацию. Показано, что динамика эндогенного содержания этих олигосахаридов в корнях проростков озимой пшеницы в первые сутки гипотермии характеризуется одновершинной кривой с максимумом на 6ч охлаждения. Внесение олигосахаридной фракции в среду выращивания проростков озимой пшеницы до начала или не позднее первых суток закаливания (2°С, 7 сут) приводило к существенному (более 30%) увеличению морозостойкости проростков. Одновременное внесение в среду выращивания проростков олигосахаридов с актиномицином D или циклогексимидом, полностью ингибирующих развитие морозостойкости, восстанавливало способность растений к закаливанию. Согласно данным анализа активных олигосахаридов, они представлены фрагментами гемицеллюлоз (наиболее вероятно ксилоглюкана) со степенью полимеризации 12.

Теоретическая и прикладная значимость работы. Результаты проведенного исследования вносят вклад в развитие представлений об олигосахаринах как эндогенных регуляторных молекулах растений и расширяют спектр адаптивных процессов, в формирование которых они вовлечены. Дальнейшее изучение механизмов их действия может иметь значение для углубленного понимания механизмов формирования устойчивости растений к низкотемпературному воздействию. Благодаря способности повышать морозостойкость озимой пшеницы, полученные олигосахариды представляют практический интерес в области сельского хозяйства.

Апробация работы. Материалы диссертации докладывались и обсуждались на Международном симпозиуме «The extracellular matrix of plant: molecular, cellular and developmental biology» (США, 1996), на II-ой Республиканской научной конференции молодых ученых и специалистов (Казань, 1996), на 1-ой Всероссийской конференции по ботаническому ресурсоведению (Санкт-Петербург, 1996), на 8-м Международном симпозиуме по сахаридам (Словакия, 1997), на Международной конференции «Stress and inorganic nitrogen assimilation» (Москва, 1998), на 8-м Международном конгрессе 7 по клеточной стенке (Великобритания, 1998), на 8-м Международном конгрессе Шотландской Группы по Клеточной Стенке (Шотландия, 1998), на 2-ой Международной конференции «Progress in Plant Sciences: from plant breeding to growth regulators» (Венгрия, 1998), на П(Х)-м съезде Русского ботанического общества «Проблемы ботаники на рубеже XX-XXI в.» (Санкт-Петербург, 1998), на Ш-м Всероссийском совещании «Лесохимия и органический синтез» (Сыктывкар, 1998), на Всероссийской молодежной научной конференции «Растение и почва: проблемы агрохимии, агрофизики и фитофизиологии» (Санкт-Петербург, 1999)

Заключение Диссертация по теме "Физиология и биохимия растений", Аюпова, Дина Анваровна

ВЫВОДЫ

1. Впервые обнаружена и охарактеризована олигосахаридная фракция, вовлеченная в процесс формирования морозостойкого состояния проростков озимой пшеницы.

2. Впервые изучена динамика эндогенного содержания олигосахаридной фракции в первые сутки формирования морозостойкого состояния, которая характеризуется одновершинной кривой с максимумом на 6ч гипотермии. Такой кратковременный всплеск эндогенного содержания характерен для сигнальных молекул.

3. Показано, что максимальное увеличение морозостойкости (более 30%) достигается при внесении олигосахаридной фракции в среду выращивания проростков в концентрации 10'8М.

4. Установлено, что олигосахариды участвуют в формировании морозостойкости только на самых начальных этапах. Эффект олигосахаридов проявлялся только при предобработке проростков или при добавлении на не позднее первых суток закаливания.

5. Поскольку одновременное внесение в среду выращивания проростков олигосахаридов с ингибиторами биосинтеза РНК и белка, полностью подавляющих процесс закаливания, восстанавливало способность растений к формированию морозостойкого состояния, эффект олигосахаридов, вероятно, связан скорее с посттрансляционными процессами, чем с дифференциальной экспрессией генома.

6. Моносахаридный анализ показал, что активный компонент обнаруженной олигосахаридной фракции содержит более 90% глюкозы и ксилозы в

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Аюпова, Дина Анваровна, Казань

1. Акимова Г.П., Родченко О.П. Лигиификация в клетках корня кукурузы в условиях замедления скорости роста низкой температурой // Докл. АН СССР. 1977. Т.234. С.1230-1233.

2. Акимова Г.П. Гормональная регуляция на ранних этапах роста клеток корня при действии низкой положительной температуры // Рост и устойчивость растений. Новосибирск: Наука, 1988. С. 175-182. 210 с.

3. Аш О.А., Лоскутова Н.А., Павлова З.Н., Абрамычева Н.Ю., Внучкова В.А., Бабакот

4. A.В., Муромцев Г.С., Мельникова Т.Н., Нечаев О.А., Торгов В.И., Усов А.И., ШибаеЕ

5. B.Н. Новые физиологические эффекты олигосахаридных фрагментов растительногс ксилоглюкана // Докл. РАН. 1995. Т.430. С.427-429.

6. Баймиев А.Х., Гималов Ф.Р., Черемис А.В., Вахитов В.А. Экспрессия гена аланин-богатого белка капусты при различных условиях холодовой акклимации // Физиол.раст. 1982. Т.46. С.605-609.

7. Барышева Т.С., Заботина О.А.,. Заботин А.И. Влияние циклогексимида на синтез полисахаридов клеточной стенки и активность гликозидаз корней пшеницы при закаливании к морозу // Физиол. раст. 1999. Т.46. С.633-639.

8. Браун А.Д., Моженок Т.П. Неспецифический адаптационный синдром клеточной системы . Л.: Наука, 1987.232 с.

9. Буколова Т.П., Воловик Н.В., Кравцова Л.И. Изменение жирнокислотного состава фосфолипидов узлов кущения озимых злаков в процессе закаливания // Физиол. и биох. культ.раст. 1992. Т.24.С.69-73.

10. Владимирова С.В. Активность гликозидаз растущей части корня // Тез. докл. IV съезда общества физиологов растений России "Физиология растений наука III тысячелетия". Москва, 1999. С.547.

11. Вовчук С.В., Макаренко О.А., Мусич В.Н., Левицкий А.П. Возможные механизмы активации пептигидролаз проростков озимой пшеницы при закаливании // Физиол. раст. 1994. Т.41. С.552-557.

12. Ю.Войников В.К. Температурный стресс и митохондрии растений. Новосибирск : Наука, 1987. 135 с.

13. П.Войников В.К. Реакция генома на температурный стресс // Рост и устойчивость растений. Новосибирск: Наука, 1988. С. 154-163. 210с.

14. Войников В.К., Побежимова Т.П., Варакина Н.Н. Действие холода на жирнокислотный состав и энергетическую активность митохондрий клеток растений // Физиол. и биох культ, раст. 1985. Т. 14. С.431.

15. Войников В.К., Корытов М.В. Синтез стрессовых белков в проростках озимой пшеницы при закаливании к холоду // Физиол. раст. 1991. Т.38. С.960-969.

16. Глянько А.К. Температурный стресс: механизмы термоустойчивости, рост, развитие и продуктивность растений // С.-х. биол. Сер. биол .раст. 1996. С.3-19.

17. Горшкова Т.А. Метаболизм полисахаридов растительной клеточной стенки. Дис.д-ра биол. наук. Москва, 1997. 248 с.

18. Гудвин Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений, пер. с англ. М.: Мир, 1986. т.1.

19. Гурьянов О.П. Влияние эндогенных олигосахаридов из проростков гороха на процессы роста и корнеобразования : Автореф. дис. . канд. биол. наук. Казань, 1997. 23с.

20. Ильящук Е.М., Лихолат Д.А. Влияние низкой температуры на содержание абсцизовой и индолилуксусной кислот в растениях озимой и яровой пшеницы на разных фазах развития // Физиол. и биох. культ, раст. 1989. Т.21. С.286-293.

21. Колупаев Ю.Е., Трунова Т.И. Особенности метаболизма и защитные функции углеводов растений в условиях стрессов // Физиол. и биох. культ, раст. 1992. Т.24. С.523-533.

22. Комарова Э.Н., Выскребенцева Э.И., Трунова Т.И. Лектины клеточной стенки листьев и колеоптилей проростков озимой пшеницы при закаливании к морозу // Физиол. раст. 1994. Т.41. С.500-503.

23. Красавцев О.А., Туткевич Г.И. Ультраструктура клеток корней паренхимы древесных растений в связи с их морозостойкостью // Физиол. раст. 1971. Т.18. С.601-607

24. Критенко С.П., Титов А.Ф. Влияние абсцизовой кислоты и цитокинина на биосинтез белка при холодовой и тепловой адаптации растений // Физиол.раст. 1990. Т.37. С.126-132.

25. Кузнецов В.В., Шевякова Н.М. Пролин при стрессе: биологическая роль, метаболизм, регуляция // Физиол. раст. 1999. Т.46. С.321-336.

26. ЛакинГ.Ф. Биометрия. М.: Высш.школа, 1980.291с.

27. Ларская И. А., Заботин А.И. Изучение динамики содержания циклических нуклеотидов при низкотемпературном закаливании // Тез. III съезда Всероссийск. общества физиологов растений. С.-Петербург, 1993. Т.6. С.650.

28. Ларская И.А. Ответные реакции клетки на действие закаливающей температуры. Дис. . канд. биол.наук. Казань, 1996.137 с.

29. Никифорова В.Ю., Сидоркина Е.В., Миляева Э.Л. Регуляция активными веществами клеточных стенок перехода к цветению // Физиол. раст. 1999. Т.46. С.757-762.

30. Павлова З.Н., Лоскутова Н.А., Внучкова В.А., Муромцев Г.С., Усов А.И, Шибаев В.М. Ксилоглюкановые олигосахарины элиситоры защитных реакций растений // Физиол. раст. 1996. Т.43.С.279-284.

31. Побежимова Т.П., Колесниченко А.В., Войников В.К. Стрессовый белок 310 kD при гипотермии влияет на энергетическую активность растительных митохондрий // Докл. АН. 1996. Т.351. С.715-718.

32. Переход Е.А., Чаленко Г.И., Герасимова Н.Г., Васюкова Н.И., Озерецковская О.А., Ильина А.В., Татаринова Н.Ю., Анисимова М.В., Варламов В.П. Хитозан регулятор фитофторустойчивости картофеля //Докл. АН. 1997. Т.355. С.120-122.

33. Родченко О.П., Маричева Э.А., Акимова Г.П. Адаптация растущих клеток корня к пониженным температурам . Новосибирск: Наука, 1988. 150 с.

34. Спивак В.А., Смоляницкая Э.С. Регуляция развития проростков пшеницы Tr.aestivum L., экзогенными веществами фенольной природы // Защита растений от вредителей и болезней . Сарат. Гос. С.-х. Акад. Саратов, 1996. С. 121-123.

35. Стаценко А.П. О криозащитной роли аминокислот в растениях // Физиол. и биох. культ, раст. 1992. Т.24. С.560-571.

36. Таланова В.П., Титов А.Ф., Боева Н.П. Изменение уровня эндогенной абсцизовой кислоты в листьях растений под влиянием холодовой и тепловой закалки // Физиол. раст. 1991. Т.38.С.991 -997.

37. Тарчевский И.А. Регуляторная роль деградации биополимеров и липидов // Физиол. раст. 1992. Т.39. С.1215-1223.

38. Тарчевский И.А., Марченко Г.Н. Биосинтез и структура целлюлозы. М.: Наука, 1985. 280 с.

39. Титов А.Ф., Критенко С.П. Роль транскрипцинно-трансляционной системы в механизмах адаптации растений пшеницы к холоду и теплу // Биол. науки. 1985. Т.8. С.77-81.

40. Титов А.Ф., Шерудило Е.Г. Степень подавления процессов тепловой и холодовой адаптации растений ингибиторами синтеза РНК и белка при разных закаливающих температурах//Физиол. и биох. культ.раст. Т.22. 1990. С.384-388.

41. Титов А.Ф., Таланова В.В., Дроздов С.Н. Влияние специфических ингибиторов транскрипции и трансляции на холодовое и тепловое закаливание растений томата // Физиол.раст. 1982. Т.29. С.790-793.

42. Трунова Т.И. Сахара как один из факторов, повышающих морозостойкость растений // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1972. N2. С.185-196.

43. Трунова Т.И., Зверева Г.Н. Влияние ингибиторов белкового синтеза на морозостойкость пшеницы // Физиол. раст. 1977. Т.24. С.395-401.

44. Туманов И.И. Зимостойкость растений. Л.: Сельколхозгиз, 1931. 118 с.

45. Туманов И.И. Физиология закаливания и морозостойкость растений. М.: Наука, 1979. 350с.

46. Хохлова Л.П. Структурно-функциональное состояние митохондрий в связи с осенним закаливанием растений: Автореф. дис. д-ра биол. наук. Киев, 1985. 58с.

47. Феофилова Е.П. Клеточная стенка грибов. М.:Наука, 1983.248с.

48. Четверикова Е.П. Роль абсцизовой кислоты в морозоустойчивости растений и криоконсервации культур in vitro II Физиол. раст. 1999. Т.46. С.823-829.

49. Элберсгейм П., Дарвилл А.Г. Олигосахарины // В мире науки. 1985. N11. С.16-23.

50. Albersheim P., Darvill A., Roberts K. Do the structures of cell wall polysaccharides define their mode synthesis // plant Physiol. 1997. V.l 13. P.1-3.

51. Aldington S., McDougall G., Fry S.C. Structure-activity relationships of biologically active oligosaccharides I I Plant Cell and Environment. 1991. V. 14. P.625-630.

52. Aldington S., Fry S.C. Oligosaccharins // Adv. in Bot. Res. 1993. V.19. P.l-66.

53. Altamura M., Zaghi D., Salvi G., De Lorenzo G., Bellincampi D. Oligogalacturonides stimulate pericycle cell wall thickening and cell divisions leading to stoma formation in tobacco leaf explants // Planta. 1998. V.204. P.429-436.

54. Andreson J.A., Gusta D.W., Buchanan D.W., Burke M.J. Freezing of water in citrus leaves //J. Am. Soc. Hort. Sci. 1983. V.108. P.397-400.

55. Anderson M.D., Prasad Т.К., Martin B.A., Stewart C.R. Differential gene expression in chilling acclimated maize seedling and evidence for the involvement of ABA in chilling tolerance // Plant Physiol. 1994. V.105. P.331-339.

56. Antikainen M., Pihakaski S. Early development in RNA, protein, and sugar levels during cold stress in winter rye (Secale cereale) leaves // Annals of Botany. 1994. V.74. P.335-341.

57. Aspinall G.O. Chemistry of cell wall polysaccharides // The biochemistry of plants. N.-Y.: Academic Press, 1980.V.3. P.473-499.

58. Askman P., Abromeit M., Sarnighausen E., Dorffling K. Formation of polypeptides related to frost tolerance in response to cold hardening and abscisic acid treatment in winter wheat // Physiol.Plantarum. 1990.V.79. P.105.

59. Augur C., Benhamou N., Darvill A., Albersheim P. Purification, characterization and cell wall localization of an a-fucosidase that inactivates a xyloglucan oligosaccharin // The Plant Journal. 1993. V.3. P.415-426.

60. Auxtova О., Liskova D., Kakoniova D., Kubakova M., Karacsonyi S., Biliscs L. Effect of galactoglucomannan-derived oligosaccharides on elongation growth of pea and spruce stem segments stimulated by auxin-// Planta. 1995. V.196. P.420-424.

61. Ayres A.R., Ebel J., Valent В., Albersheim P. Host-pathogen interaction. X. Fractionation and biological activity of an elicitor isolated from the mycelial walls of Phytophthora megasperma var. sojae // Plant Physiol. 1976a. V. 57. P.760-765.

62. Basse C.W., Boiler T. Glycopeptide elicitors of stress responses in tomato cells // Plant Physiol. 1992. V.98. P.1239-1247.

63. Basse C.W., Fath A., Boiler T. High affinity binding of a glycopeptide elicitor to tomato cells and microsomal membranes and displacement by specific glycan suppressors // J.Biol.Chem. 1993. V.268. P.14724-14731.

64. Baydoun E.A., Fry S.C. The immobility of pectic substances in injured tomato leaves and its bearing on the identity of the wound gormone // Planta. 1985. V. 165. P.269-276.

65. Bell A.A. Biochemical mechanisms of disease resistance // Ann.Rev.Plant.Physiol.1981. V.2. P.21-81.

66. Bellincampi D., Salvi G., De Lorenzo G., Gervone F., Marfa V., Eberhard S., Darvill A., Albersheim P. Oligogalacturonides inhibit the formation of roots on tobacco explants // Plant J. 1993. V.4. P.207-213.

67. Benhaumou N., Chamberland H., Pauze E.G. Implication of pectic components in cell surface interactions between tomato root cells and Fusarium oxysporum f.sp. Radicis-lycopersici II Plant Physiol. 1990. V.92. P.995-1003.

68. Bishop P.D., Makus D.J., Pearce G., Ryan C.A. proteinase inhibitor-inducing activity in tomato leaves resides in oligosaccharides enzymically released from cell wall // Proc.Natl.Sci.USA. 1981 .V.78.P.3536-3540.

69. Bohnert H., Sheveleva E. Plant stress adaptation making metabolism move // Curr. Opinion Plant Biology. 1998. V.l. P.267-274.

70. Bol J.F., Linthorst H.J.M., Cornelissen B.J.C. Plant pathogesis-related proteins induced by virus infection //Annu.Rev.Phytopathol. 1990. V.28. P.l 13-138.

71. Bolwell G.P. A role for the phosphorylation in the down-regulation of phenylalanin ammonia-lyase in suspension-cultured cells of French bean // Phytochemistry. 1992. V.31. P.4081-4086.

72. Bornman C.H., Jansson E. Nicotiana tabacum callus studies.X. ABA increases resistance to cold damage //Physiol.Plantarum. 1980. V.48. P.491-493.

73. Bowles D.J. Defence-related proteins in higher plants // Annu.Rev.Biochem. 1990. V.59. P.873-907.

74. Brady С J. Fruit ripening // Annu.Rev.Plant Physiol. 1987. V.38. P. 155-178.

75. Branca C., DeLorenzo G., Cervone F. Competitive inhibition of the auxin induced elongation by a-D-oligogalacturonides in pea stem segments // Physiol.Plantarum. 1988. V.72. P.499-504.

76. Bruce R., West C. Elicitation of lignin biosynthesis and isoperoxidase activity by pectic fragments in suspension cultures of castor beans // Plant Physiol. 1989. Vol.91. P.889-897.

77. Burkiewicz K., Synak R. Biological activity of the media after algal cultures can result from extracellular carbohydrates// J.Plant Physiol. 1996. V.148. P.662-666.

78. Cadenhead D.A., Demchak RJ. Observations and implications of glycerol-monomolecular film interactions // Biochim.Biophys.Acta. 1969. V.176. P.849-857.

79. Caffrey M., Fonseca V., Leopold A.C. Lipid-sugar interactions. Relevance to anhydrous biology // Plant Physiol. 1988. V.86. P.754-758.

80. Campell A.D., Labavitch J.M. Induction and regulation of ethylene biosynthesis and ripening by pectic oligomers in tomato pericarp discs // Plant Physiol. 1991. V.97. P.706-713.

81. Carpenter J.F., Crowe J.H. The mechanism of cryoprotection of proteins by solutes // Cryobilogy. 1988. V.25. P.244-255.

82. Carpita N.C The biochemistry of "growing" cell walls. Physiology of cell expansion during plant growth, ed. D.J.Cosgrove and D.P. Knievel. The Am. Society of Plant Physiologists, 1987. P.28-45 .

83. Carpita N.C. Structure and biogenesis of the cell walls of grasses // Ann.Rev.Plant Physiol.PlantMol.Biol. 1996.V.47. P.445-476 .

84. Carpita N.C., Gibeaut D.M. Structural models of primary cell walls in flowering plants: consistency of the walls during growth // The Plant Journal. 1993. V.3. P. 1-30.

85. Carpita N.C., McCan M., Griffit L.R. The plant extracellular matrix: news from the cell's frontier//The Plant Cell. 1996. V.8. P.1451-1463.

86. Cativelli L., Bartels D. Molecular cloning and characterization of cold regulated genes in barley// Plant Physiol. 1990. V. 93. P. 1504-1510.

87. Cervone F., DeLorenzo G., Degra 1., Salvi G. Elicitation of necrosis in Vigna unguiculata Walp. by homogeneous Aspergillus niger endo-polygalacturonase and by a-D-galacturonate oligomers//Plant Physiol. 1987. V.85. P.626-630.

88. Chambat G., Falk A., Lefebvre A, Marais M.F., Joseleau J.P. Native xyloglucan oligosaccharides excreted in the culture medium of Rubus fruticosus suspension cells //

89. Abstr. and Programme of 7th Cell Wall Meeting. Santiago de Compostella, Spain, 1995. P.64.

90. Chaplin M.F., Kennedy J.F. Carbohydrate analysis: a practical approach . IPL Press. 1998. P.38.

91. Chen H.H., Li P.H., Brenner M.L. Involvement of abscisic acid in potato cold acclimation // Plant Physiol. 1983. V.71. P.362-365.

92. Chen H.H., Gusta .V. Abscisic acid-induced freezing resistance in cultured plant cells // Plant Physiol. 1983. V.73. P.71-75.

93. Cheong J.-J., Hahn M.G. A specific, high-affinity binding site for the hepta-p-glucoside elicitor exists in soybean membranes//Plant Cell. 1991. V.3. P.137-147.

94. Cook C.J., Smith C.J., Walton T.J., Newton R.P. Evidence that cAMP is involved in the hypersensitive response of Medicacago sativa to a fungal elicitor // Phytochemistry. 1994. V.35. P.889-895.

95. Cosgrove D.J., Durachko D.M. Autolysis and extension of isolated walls from growing cucumber hypocotyls // J.Exp.Bot. 1994. V.45. P. 1711-1719.

96. Cote F., Hahn M.G. Oligosaccharinesstructures and signal transduction // Plant.Mol.Biol. 1994. V.26. P. 1379-1411.

97. Cutillas-Iturralde A., Lorences E.P. Effect of xyloglucan oligosaccharides on growth, viscoelastic properties and long-term extension of pea shoots // Plant Physiol. 1997. V.l 13. P.103-109.

98. Daie J., Campell W.F. Response of tomato plants to stressful temperatures // Plant Physiol. 1981. V.67. P.26-29.

99. Dallaire S., Houde M., Gagne Y., Saini H.S., Boileau S., Chevrier N., Sarhan F. ABA and low temperature induced freezing tolerance via distinct regulatory pathways in wheat // Plant Cell Physiol. 1994. V.35. P.1-.4.

100. Darvill A.G., Smith C.J., All M.A. Cell wall structure and elongation growth in Zea mays coleoptiletissues//NewPhytol. 1978. V.80. P.503-516.

101. Darvill A., McNeil M., Albersheim P.A., Delmer D.P. The primary cell walls of flowering plants // The biochemistry of plants. N.Y.: Acad. Press, 1980. V.l. P.91-162.

102. Dawson M.C., Elliot D.C., Elliot W.H., Jones K.M. Data for biochemical research . Oxford: Claredon press, 1986. P.464-467.

103. DeVries J.A., Rombouts F.M., Voragen A.G.J, and Pilnik W. Enzymic degradation of apple pectin // Carbohydrate Polymers.1982. V.2. P.25-33.

104. Dinand E., Gerard E., Lienart Y., Vignon M.R. Two rhamnogalacturonide tetrasaccharides isolated from semi-retted flax fibers are signaling molecules in Rubus fruticosus L. cells I I Plant Physiol. 1997. V.l 15. P.793-801.

105. Driouich A., Faye L., Staehelin A. The plant Golgi apparatus: a factory for complex polysaccharides and glycoproteins//T.I.B.S. 1993. 18june. P.210-214.

106. Dunn M.A., Goddard N.J., Zanhg L., Pearce R.S., Hughes M.A. Low-temperature-responsive barley genes have different control mechanisms // Plant Mol.Biol. 1994. V.24. P.879-888.

107. Dumville J.C., Fry S.C. Naturalle occuring oligosaccharides in ripening tomato fruit // Abstr. and Programme of 8th International cell Wall Meeting. Norwich, UK, 1998. N8.25.

108. Eberhard S., DoubravaN., MarfaB., Mohnen V., Southwick D., Darvill A., Albersheim P. Pectic cell wall fragments regulate tobacco thin-cell-layer explant morphgenesis // The Plant Cell. 1989. V.l.P.747-755.

109. Emerling M., Seitz H.U. Influence of a specific xyloglucan nonasaccharide derived from cell-walls of suspension-cultured cells of Daucus carota L. on regeneration of carrot protoplasts I I Planta. 1990. V. 182. P. 174-180.

110. Farkas V., Maclachlan G. Stimulation of pea l,4-(3-glucanase activity by oligosaccharides derived from xyloglucan // Carbohydrate Research. 1988. V. 184. P.213-220.

111. Farmer E., Moloshok Т., Saxton M., Ryan C. Oligosaccharide signaling in plants. Specificity of oligouronide enhanced plasma membrane protein phosphorylation // The J. Biol. Chem. 1991. V.266. P.3140-3145.

112. Fischer R.L., Bennett A.B. Role of cell wall hydrolases in fruit ripening // Annu.Rev.Plant.Physiol.PlantMol.Biol. 1991.V.42. P.675-703.

113. Fry S.C. Cross-linking of matrix polymers in the growing cell walls of angiosperms // Ann.Rev.Plant Physiol. 1986. V.37. P.165-186.

114. Fry S.C. In-vivo formation of xyloglucan nonasaccharide: a possible biologically-active cell-wall fragment//Planta. 1986a. V.169. P.443-453.

115. Fry S.C. The growing plant cell wall: chemical and metabolic analysis. Longman Scientific and Technical, 1988. 333p.

116. Fry S.C. The structure and function of xyloglucan // J. Exp. Botany.1989. V.40. P.l-11.

117. Fry S.C. Polysaccharide-modifying enzymes in the plant cell wall // Annu.Rev.Plant Physiol.PlantMol.Biol. 1995. V.46. P.497-520.

118. Fry S.C., Smith R., Renwick K, Martin D.J., Hodge S.K., Matthews K.J. Xyloglucan endotransglycosylase, a new wall-loosening ensyme activity from plants // Biochem.J. 1992. V.282. P.821-828.

119. Fry S.C., Aldington S., Hetherington R., Aitken J. Oligosaccharides as signals and substrates in plant cell wall // Plant Physiol. 1993. V. 103. P. 1 -5.

120. Garsia-Romera I., Fry S. The longevity of biologically active oligogalacturonides in rose cell cultures: degradation by exopolygalacturonase // J.Exp.Bot. 1995. V.46. P.1853-1857.

121. Gibeaut D., Carpita N. Biosynthesis of plant cell wall polysaccharides // The FASEB Journal. 1994. V.8. P.904-915.

122. Gong M., Li Y.-J., Chen S.-Z. Abscisic acid-induced thermotolerance in maize seedlings is mediated by calcium and associated with antioxidant systems // J.Plant Physiol. 1997. V.153. P.448-496.

123. Green T.R., Ryan C.A. Wound-induced proteinase inhibitor in plant leaves, a possible defense mechanism against insects // Science. 1972. V.175. P.776-777.

124. Griffith M., Ala P., Yang D.S.C., Hon W-C. and Moffatt В .A. Antifreeze protein produced endogenously in winter rye leaves // Plant Physiol. 1992. V.100. P.593-596 .

125. Guy C. Cold acclimation and freezing stress tolerance: role of protein metabolism // Annu.Rev.Plant Physiol. Plant Mol.Biol. 1990. V.41. P.187-223.

126. Guy C.Z., Haskell D. Induction of freezing tolerance in Spinach is associated with the synthesis of cold acclimation induced proteins // Plant Physiol. 1987. Vol.84. P.872-878.

127. Hahn M.G., Albersheim P. and Darvill A.G. Host-pathogen interactions: XIX. The endogenous elicitor, a fragment of a plant cell wall polysaccharide that elicits phytoalexin accumulation in soybeans//Plant Physiol. 1981. V. 68. P.1161-1169.

128. Hahn M.G., Bucheli P., Cervone F.C., Doares S.H., O'Neil R.A., Darvill A., Albersheim P. Roles of cell wall constituents in plant-pathogen interactions // Plant-Microbe Interactions. Molecular and Genetic Perspectives. N.-Y., 1989. V3. P.l31-181.

129. Hajela R.K., Horvath D.P., Gilmour S.J., Thomashow M.F. Molecular cloning and expression of cor (cold-reulated) genes in Arabidopsis thaliana II Plant Physiol. 1990. V.93. P.1246-1252.

130. Hargreaves J.A., Bailey J.A. Phytoalexin production by hypocotyls of Phaseolus vulgarism. response to constitutive metabolites released by damaged bean cells // Plant Physiol. 1978. V.13. P.89-100.

131. Hasegawa K., Mizutani J., Kosemura S., Yamamura S. Isolation and identification of lepidomoide, a new allelopathic sunstance from mucilage of germinated cress seeds // Plant Physiol. 1992. V.100. P. 1059-1061.

132. Hinch J.M., Klarke A.E. Callose formation in zea mays as a response to infection with Phytophthoracinnanomi //Physiol.Plant Pathol. 1982. V.21. P.l 13-124.

133. Hincha D.K., Heber U., Schmitt J.M. Proteins from frost-hardy leaves protect thylakoids against mechanical freeze-thaw damage in vitro // Planta. 1990. V. 180. P.416-419.

134. Hon W-C., Griffith M., Chong P. and Yang D.S.C. Extraction and isolation of antifreeze proteins from winter lye (Secale cereale L.) leaves // Plant Physiol. 1994. V.104. P.971-980.

135. Janowiak F., Dorffling K. Water and hormonal balances in maize seedlings under cool soil conditions // Proc. Int. Symp. "Cereal Adaptation to Low Temperature .Stress" Martonvasar, Hungary, 1997. P.24-33.

136. John M., Rohrig H., Jurgen S., Walden R., Schell J. Cell signalling by oligosacchrides // Trend. Plant Sci. 1997. V.2. P.l 11-115.

137. Kauss H. Chitosan-elicited synthesis of callose in soybean cells: A rapid and Ca^iLdependent process // Abst. of 6 Int. Symp. "Cell Surface In Plant Growth and Development". Norwich, UK, 1984. P. 53.

138. Kazuoka Т., Oeda K. Purification and characterization of COR 85-oligomeric complex from cold-acclimated spinach // Plant Cell Physiol. 1994. V.3 5. P.601 -611.

139. Knight M.R., Campbell A.K., Smith S.M., Trewavas A.J. Transgenic plant aequorin reports the effect of touch and cold-shock and elicitors on cytoplasmic calcium // Nature. 1991. V.352. P.524-526.

140. Knight H., Trewavas J., Knight M. Cold calcium signaling in Arabidopsis involves two cellular pools and a change in calcium signature after acclimation // The Plant Cell. 1996. V.8. P.489-503.

141. Kodama H., Hamada Т., Horiguchi G., Nishimura M., Ibak K. Genetic enchancement of cold tolerance by expression in transgenic tobacco // Plant Physiol. 1994. V.105. -P.601-605.

142. Koike M., Takezawa D., Arakana K., Yoshida S. Accumulation of 19 kD plasma membrane polypeptide during induction of freezing tolerance in wheat suspension-cultured cells by abscisic acid // Plant Cell Physiol. 1997. V. 38. p. 132-139.

143. Kuroda H., Sagisaka S. Ultrastructural change in cortical cell of apple (Malus pumila Mill) associated with cold hardiness // Plant Cell Physiol. 1993. V.34. P.357.

144. Labavitch J.M. Cell wall turnover in plant development // Annu.Rev.plant.Physiol. 1981. V.32. P.385-406.

145. Lalk I., Dorffling K. Hardening, abscisic acid, proline and freezing resistance in two winter wheat varieties // Physiol.Plant. 1985. V.63. P.894-897.

146. Lau J.M., McNeil M., Darvill A.G., Albersheim P. Structure of the backbone of rhamnogalacturonan I, a pectic polysaccharide in the primary walls of plants // Carbohydrate Res. 1985. V.137.P.11-125.

147. Leborgne N., Teulieres C., Travert S., Rols M.-P., Tessie J., Boudet A.M. Introduction of specific carbohydrates into Eucalyptus gunni cells increases their freezing tolerance // Eur.J.Biochem. 1995. V.229. P.710-717.

148. Levy S., York W.S., Stuike-Prill R Simulations of the static and dynamic molecular conformations of xyloglucan. The role of the fucosylated side-chain in surface-specific side-chain folding // Plant Journal. 1997.V.1. P.195-215.

149. Liners F., Thibault J-F., Van Cutsem P. Influence of the degree of polymerization of oligogalacturonates and of esterification pattern of pectin on their recognition by monoclonal antibodies// Physiol.Plant. 1992. V.99. P. 1099-1104.

150. Liskova О., Auxtova О., Kakoniova D., Kubakova M., Karacsonyi S., Bilisics L. Biological activity of galactoglucomannan-derived oligosaccharides // Planta. 1995. V.196. P.425-429.

151. Lorences P.E., McDougall GJ., Fry S.C. Xyloglucan- and cello-oligosaccharides: antogonists of the growth-promoting effect of H+// Physiol.Plantarum. 1990. V.80. P. 109113.

152. Lorences E. and Fry S. Xyloglucan oligosaccharides with at least two a-D-xylose residues act as acceptor substrates for xyloglucan endotransglycosylase and promote the depolymerization of xyloglucan // Physiol. Plantarum. 1993. V. 88. P. 105-112.

153. Lozovaya V., Zabotina O., Rumyantseva N., Malikov R.G., Znixareva M.V. Stimulation of root development on buckweat thin cell-layer explants by pectic fragments from pea stem cell walls//Plant Cell Reports. 1993. V.12. P.530-533.

154. Lynch D.V. Plant and plant membrane adaptation to low temperature survival // Criobiology. 1986. V.23.P.562.

155. Marentes E., Griffith M., Mlynarz A., Brush R.A. Proteins accumulate in the apoplast of winter rye leaves during cold acclimation // Plant Physiol. 1993. V.87. P.499-507.

156. Marfa V., Gollin D.J., Eberhard S., Mohnen D., Darvill A., Albersheim P. Oligogalacturonides are able to induce flowers to form on tobacco explants // Plant J. 1991. V.1.P.217-225.

157. Mathieu Y., Kurkdijan A., Xia H., Guern J., Koller A., Spiro M.D., O'Neil M., Albersheim P., Darvill A. Membrane responses induced by oligogalacturonides in suspension-cultured tobacco cells // Plant J. 1991. Vol.1. P.333-343.

158. Mauch F., Hadwiger L.A., Boiler T. Ethylen: symptom, not signal for the induction of chitinase and (3-1,3-glucanase in pea pods by pathogen and elieitors // Plant Physiol. V.76. P.607-611.

159. McCabe P.F., Valentine T.A., Forsberg L.S., Pennell R.I. Soluble signals from cells identified at the cell wall establish a developmental pathway in carrot // The Plant Cell. 1997. V.9. P.2225-2241.

160. McCan M.C., Wells B. and Roberts K. Complexity in the spatial localization and length distribution of plant cell wall matrix polysaccharides // Journal of Microscopy. 1992. V.166. P.123-136.

161. McCan M.C., Roberts K. Changes in cell wall architecture during cell elongation // J.Exp. Botany. 1994. V.45. P. 1683-1691.

162. McCan M.C., Roberts K. Plant cell wall architecture: role of pectins // Abstr. and Program of IntSymp. "Pectin and Pectinases". Wageningen, The Netherlands. 1995. L13.

163. McDougall G.J., Fry S.C. Inhibition of auxin-stimulated growth of pea stem segments by a specific nonasaccharide of xyloglucan// Planta.1988. V.175. P.412-416.

164. McDougall G.J., Fry S.C. Structure-activity relationships for xyloglucan oligosaccharides with antiauxin activity // Plant Physiol. 1989.V.189. P.883-887.

165. McDougall G.J, Fry C.S. Xyloglucan oligosaccharides promote growth and activate cellulase: evidence for a role of cellulase in cell expansion // Plant Physiol. 1990. V.93. P.1042-1048.

166. McDougall G.J, Fry C.S Xyloglucan nonasaccharide, a naturally-occuring oligosaccharine, arises in vivo by polysaccharide breakdown // J.Plant Physiol. 1991. V.137. P.332-336.

167. McNeil M., Darvill A.G. and Albersheim P. Structure of plant cell walls. 12.Identification of seven differently linked glycosil residues of rhamnogalacturonan-1 // Plant Physiol. 1982. V.70. P.1586-1591.

168. McNeil M., Darvill A.G., Fry S.C., Albersheim P. Structure and function of the primary cell walls of plants // Ann.Rev.Biochem.l994.V.53.P.625-663.

169. McQueen-Mason S.J., Fry S.C., Durachko D.M., Cosgrove D.J. The relationship between xyloglucan endotransglycosylase and in vitro cell wall extension in cucumber hypocotyles // Planta. 1993.V. 190 .P .327-331.

170. Melotto E. Greve C., Labavitch J. Biologically active pectin oligomers in ripening tomato fruits // Progr. and Abstr. of Int. Symp. "Pectin and Pectinases". Wageningen, The Netherlands. 1995. L.24.

171. Messiaen J., Read N.D., Van Cutsem P., Trewavas A.J. Cell wall oligogalacturonides increase cytosolic free calcium in carrot protoplasts // J.Cell Sci. 1993. V.104. P.365-371.

172. Messiaen J., Van Cutsem P. Pectic signal transduction in carrot cells: membrane, cytosolic and nuclear responses induced by oligogalacturonides // Plant Cell Physiol. 1994. V.35. P.677-689.

173. Mohapatra S., Poole R.J., Dhindsa R.S. Changes in patterns and translatable messengers RNA population during cold acclimation of alfalfa // Plant Physiol. 1987.V.84. P.1172-1176.

174. Mohapatra S., Wofraim L., Poole R.J., Dhindsa R.S. Molecular cloning and relationship to freezing tolerance of cold-acclimation-specific genes of alfalfa // Plant Physiol. 1989. V.89. P.375-380 .

175. Muratova I. The effect of low temperature on hormones content in winter vegetative rye // Physiol.Plantarum. 1990. V.79. P. 106-107.

176. Natsume M., Kamo Y., Hirayama M., Adachi T. Isolation and characterization of alginate-derived oligosaccharides with root growth-promoting activities // Carb. Research. 1994. V.258. P 187-197.

177. Neven L.G., Haskell D.W., Qin-Bao Lli A.H., Guy G.L. Characterization of spinach gene responsive to low temperature and water stress // Plant and Mol.Biol. 1993. V.21. P.291-305.

178. Nothangel E.A., McNeil M., Albersheim P., Dell A. Host-pathogen interactions: XXII. A galacturonic acid oligosaccharide from plant cell walls elicits phytoalexins // Plant Physiol. 1983. V.71.P.916-926.

179. Palta J.P., Whotaker B.D., Wiess L.S. Plasma membrane lipids associated with genetic variability in freezing tolerance and cold acclimation of Salanum species // Plant Physiol. 1993. V.103. P.793-803.

180. Pavlova Z.N., Muromtsev G.S. Plant growth regulatory and defense eliciting activity of xyloglucan oligosaccharide fragments // Plant Physiol. Biochem. Sp. Issue. 10th FESPP Congress. Florence, Italy, 1996. P.285.

181. Poter I., Fry S. Xyloglucan endotransglycosylase activity in pea internodes // Plant Physiol. 1993. V.103. P.235-241.

182. Pressey R. Oxidazed oligogalacturonides activate the oxidation of indoleacetic acid by peroxidase // Plant Physiol. 1991. V.90. P.l 167-1170.

183. Priem В.,Gross K.C. Mannosyl- and xylosyl-containing glycans promote tomato (.Lycopersion esculentum Mill.) fruit ripening // Plant Physiol. 1992. V.98. P.399-401.

184. Priem В., Gotti R., Bush A., Gross K. Structure of ten free N-glucans in ripening tomato fruit // Plant Physiol. 1993. V. 102. P.445-458.

185. Priem В., Morvan H., Gross K.C. Unconjugated N-glucans as a new class of oligosaccharins // Biochem.Soc.Trans. 1994. Y.22. P.398-402.

186. Racz I., Kovacs M., Lasztity D., Veisz O., Szalai G., Paldi E. Effect of short-term and long-term low temperature stress on polyamine biosynthesis in wheat genotypes with varying degrees of frost tolerance//J.Plant Physiol. 1996. V.148. P.368-373.

187. Reymond P. Remorin, A. Uronide binding protein with physical properties similar to the tobacco mosaic virus movement protein // Plant Physiol. 1997. V. 114. Suppl. N. 1455.

188. Ride J.P. Lignification in wounded wheat leaves in response to fungi and its possible role in resistance // Physiol.Plant Pathol. 1975. V.5. P.125-134.

189. Rikin A., Atsmon D., Gitler C. Chilling injury in cotton (Gossypium hirsutum L.): prevention by abscisic acid // Plant and Cell Physiol. 1979. V.20. P. 1537-1546.

190. Roberts A.W., Donovan S.G. and Candace H.H. A secreted factor induces cell expansion and formation of metaxylem-like tracheary elements in xylogenic suspension cultures of Zinnia // Plant Physiol. 1997. V. 115. P.683-692.

191. Robertsen B. Elicitors of the production of lignin-like compounds in cucumber hypocotyls // Physiological and Molecular Plant Physiology. 1986. V.28. P.137-148.

192. Rouhier P., Kopp M., Begot V., Bruneteau M., Fritig B. Structural features of fungal- (3-d-glucans for the efficient inhibition of the initiation infection on Nocotina tobacum II Phytochemistry. 1995. V.39.P.57-62.

193. Ryan C.A. Proteinase inhibitors in plant leaves: a biochemical model for pest-induced natural plant protection // Trends Biochem.Sci. 1978. V.3. P.148-150.

194. Sakurai N., Masuda Y. Effect of indole-3-acetic acid on cell wall loosening: changes in mechanical properties and noncellulosic glucose content of Avena coleoptile wall // Plant Cell Physiol. 1977. V.l8. P.587-594.

195. Sarhan F., Chevrier N. Regulation of RNA synthesis by DNA-dependent RNA polymerases and RNAses during cold acclimation in winter and spring wheat // Plant Physiol. 1985. Vol.78. P.250-255.

196. Sarhan F., D'Aoust M.J. RNA synthesis in spring and winter wheat during cold acclimation // Physiol.Plantarum. 1975. P.62-65.

197. Sato Y., Sugiyama M., Gorecki R.G., Fukuda H., Komamine A. Interrelationship between lignin deposition and the activities of peroxidase isoenzymes in differentiating tracheary elements of Zinnia// Planta. 1993. V.189. P.584-589.

198. Sawicka Т., Kasperska A. Soluble and cell wall-assosiated (3-galactosidases from cold-grown winter rape (Brassica napus L., var.oleifera L.) leaves // J.Plant Physiol. 1995. V. 145. P.357-362.

199. Schroder R., Knoop B. An oligosaccharide growth factor in plant suspension cultures: a proposed structure // J.Plant Physiol. 1995. V.146. P.139-147.

200. Sexton P., Roberts J.A. Cell biology of abscission // Annu.Rev.Plant Physiol. 1982. V.33. P.133-162.

201. Shibuya N., Yamada A., Kaku H., Kuchitsu K., Komada O., Akatsuka Т., Hong N., Ogawa T. Recognition of oligosaccharide-elicitors by suspension-cultured rice cells // Abstr of 15th Int .Bot. Congr. Yokogama, Japan, 1993.P.395.

202. Showalter A.M., Bell J.N., Cramer C.L., Bailey J.A., Varner J.E., Lamb С J. Accumulation of hydroxyprolin-rich glycoprotein mRNA in response to fungal elicitor and infection // Proc.Natl.Acad.Sci.USA. 1985. V.82.P.6551-6555.

203. Sieg F., Schroder W., Schmitt J., Hincha D.K. Purification and characterization of a cryoprotective protein (cryoprotectin) from the leaves of cold-acclimated cabbage // Plant Physiol. 1996. V.111. P.215-221.

204. Singleton V., Rossi J. Colorimetry of total phenols with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagent // Amer.J.Enol. Voticult. 1965. V.16. P.144-157.

205. Smith R.S., Fry S.C. Endotransglycosylation of xyloglucans in plant cell suspension cultures//Biochem. J. 1991. V.279. P.529-535.

206. Subikova V., Slovakova L., Farkas V. Inhibition of tobacco necrosis virus infection by xyloglucan fragments// J.Plant Diseases Protection. 1994. V.101. P.128-131.

207. Tran Than Van K., Toubart P., Cousson A., Manipulation of the morphogenetic pathways of tobacco explants by oligosaccharins //Nature. 1985. V.314. P.615-617.

208. Vance C.P., Kirk T.S., Sherwood R.T. Lignification as a mechanism of decease resistance // Annu.Rev.Phytopathol.1980. V.l8. P.259-288.

209. Vaughan D., Mcqueen-Mason S., Lillford P., Bowles D.J., Smallwood M. The role of the plant cell wall in freezing tolerance // Abstr. and Programme of 8th International Cell Wall Meeting. Norwich, UK, 1998. N.9.15.

210. Yeisz О., Galiba G., Sutka J. Effect of abscisic acid on the cold hardiness of wheat seedlings // J.Plant Physiol. 1996. V.149. P.439-443.

211. Warneck H., Seitz H.U. Inhibition of gibberelic acid-induced elongation growth of pea epicotyls by xyloglucan oligosaccharides // J.Exp.Bot. 1993. V.44.P. 1105-1109.

212. Warneck H., Hang Т., Seitz H.U. Activation of cell wall-associated peroxidase isoenzymes in pea epicotyls by a xyloglucan-derived nonasaccharide // J. Exp.Bot. 1996. V.47. P. 18971904.

213. Weiser C.J. Cold resistance and injury in woody plants // Science. 1970. Vol. 169. P. 12691278.

214. Weiser R., Wallner S.J., Waddell J.W. Cell wall and extensin mRNA changes during cold acclimation of pea seedlings // Plant Physiol. 1990. V.93. P.1021-1026.

215. Wisniowska J., Rudnichi K., Szopa J. An endogenous RNA-synthesis promoting oligopeptide from Cucurbita pepo var. patissoniua // Planta. 1988. V.173. P.46-52.

216. Yagi F. Preparation and application of oligogalacturonates-BSA conjugates // Plant Physiol. 1997. V.l 14. Suppl.N.1447.

217. York W.S., Darvill A.G., Albersheim P. Inhibition of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid-stimulated elongation of pea stem segments by a xyloglucan oligosaccharide // Plant Physiol. 1984.V.75. P.295-297.

218. Yoshida S. Reverse changes in plasma membrane properties up on deacclimation of mulberry trees (Morns bombysis Koidz) // Plant Cell Physiol. 1986. V.27. P.83.

219. Zhong H., Lauchli A. Changes of cell wall composition and polymer size in primary roots of cotton seedlings under high salinity //J.Exp.Botany. 1993. V.44. P.773-778.

220. Zabotin A.I., Barisheva T.S., Zabotina O.A., Larskaya I.A., Lozovaya V.V., Beldman G., Voragen A.G.J. Alterations in cell walls of winter roots during low temperature acclimation // J. Plant Physiol. 1998. V.152. P.473-479 .

221. Zabotina O., Ibragimova N., Ayupova D., Gurjanov 0., Lozovaya V., Beldman G., Voragen A. Bioactive fragments from pea pectin // Pectin and Pectinases . Elsevier Science B.V, 1996. P.693-701.

222. Zabotina O., Gurjanov O., Ayupova D., Beldman G., Voragen A.G.J., Lozovaya V.V. Biologically-active soluble oligosaccharides from pea stem tissues // Plant Cell Reports. 1996a. V.15.P.954-957.

223. Zhu X., Wang D. Потенциальное воздействие экстрактов корней Malus pumila и Populus canadensis на рост пшеницы // Zhiwushengtai xuebao = Acta phytoecol.sin. 1997. V.21. P.226-233. кит.