Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Взаимоотношения пролиферативной и функциональной активности щитовидной железы при метаморфозе амфибии. (Экспериментальное исследование)

ВАК РФ 03.00.11, Эмбриология, гистология и цитология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Султанова, Нина Николаевна

1. ВВЕДЕНИЕ. 1

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ . 8

2.1. Пролиферация клеток в процессе метаморфоза амфибий .8

2.2. Гистофизиология щитовидной железы амфибий . 18

3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.27

4. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ .39

4.1. Взаимоотношения пролиферативной и функциональной активности тироцитов при естественном метаморфозе.39

4.2. Пролиферация клеток щитовидной железы метаморфозирующих амфибий при изменении функциональной активности тироцитов .78

4.3. Функциональная активность щитовидной железы метаморфозирующих амфибий при подавлении пролиферации тироцитов . I08-II

5. ОБСУЖДЕНИЕ. II9-I

6. ВЫВОДЫ . 133

УКАЗАТЕЛЬ ЛИТЕРАТУРЫ . 135

Введение Диссертация по биологии, на тему "Взаимоотношения пролиферативной и функциональной активности щитовидной железы при метаморфозе амфибии. (Экспериментальное исследование)"

Взаимоотношения пролиферативной и функциональной активности клеток - одна из актуальных проблем современной биологии и медицины. В настоящее время углубленно изучаются механизмы регуляции пролиферативной активности клеток эпителиальной, соединительной, нервной и других тканей на различных этапах развития организма (А.К.Дондуа, 1967; А .А .Заварзин, 1967; Н.Г.Хрущов, 1976; О .Г. Строева и др., 1980). Интенсивно исследуются взаимные влияния пролиферативной и специальных функций в гистогенезе и в дефинитивных тканях (В .Я .Бродский, И .В .Урываева, 1981).

В частности, большой интерес представляет изучение взаимоотношений пролиферативной и функциональной активностей клеток щитовидной железы как двух основных аспектов интеграции данного органа (Л.В.Гербильский, 1984). Как известно, размножение клеток играет ведущую роль в поддержании клеточного гомеостаза различных тканей (Ю.А.Романов, А.И.Антохин, 1985). Нарушение этого гомеостаза является характерной чертой большинства заболеваний щитовидной железы, возрастание числа которых отмечается в последние годы (Б.В.Алешин, 1950; P.Groussin , 1980; Б.В .Алешин, 1981; Е.А.Валдина, 1981; О.П.Алексеев, И. А .Черкасов, 1982; Б.В .Алешин, В.И.Губский, 1983).

В настоящее время механизмы регуляции функциональной активности щитовидной железы изучены довольно подробно (0.В .Волкова и др., 1975, 1977; Б.В.Алешин, 1980; Л.В.Гербильский, 1980; Я.Х. Туракулов, 1980; M.A.Pisarev , D.L.Kleiman de Pisarev , 1980;

G. A,Hedge et al. , 1981; J.Robbins , 1981; JI .В .ГербйЛЬСКИЙ, 1983). Вместе о тем регуляция пролиферации клеток щитовидной железы исследована в гораздо меньшей степени (Ю.А.Романов, 1973; Ю.А.Романов, Л.И.Степанова, 1974; L.Nitsch , s.H.Woiiman , 1979; B.Westermark et al. , 1979).

Что же касается взаимоотношений между функциональной активностью щитовидной железы и интенсивностью пролиферации тироцитов, то данный вопрос до оих пор, несмотря на его важность, специально не изучался ( H.Pawlikowski » 1982).

Такое положение, очевидно, связано с тем, что исследователи не использовали адекватную модель для изучения взаимоотношений функциональной активности и пролиферации клеток щитовидной железы. Подобная модель должна характеризоваться возможностью развития существенных изменений функциональной активности щитовидной железы, происходящих на протяжении незначительного промежутка времени и сопровождающихся значительными изменениями пролифера-тивной активности тироцитов. Одной из моделей, удовлетворяющих данному требованию, по нашему мнению, может явиться метаморфоз бесхвостых амфибий.

Как известно, щитовидная железа играет ведущую роль при метаморфозе амфибий, регулируя своими гормонами морфогенетические процессы, происходящие в других органах. При метаморфозе в течение короткого промежутка времени происходят резкие изменения функциональной активности щитовидной железы, которые обеспечивают значительные изменения концентрации тиреоидных гормонов в организме метаморфозирующего головастика. Интенсивный рост органов головастика, в том числе и щитовидной железы, связан с пролиферацией клеток.

Таким образом, естественный метаморфоз амфибий является удобной моделью для исследования взаимоотношений между функциональной и пролиферативной активностью клеток щитовидной железы. Целесообразно исследовать взаимоотношения между функцией и пролиферацией тироцитов также при изменении функционального состояния щитовидной железы (например, при введении тиротропина и тироксина) и при изменении пролиферативной активнооти клеток (например, при введении окоимочевины). Однако изменения интенсивности пролиферации тироцитов при естественном и стимулированном метаморфозе, приводящем к росту органа и взаимоотношения роста щитовидной железы с изменениями ее функциональной активности, до сих пор не были изучены.

Актуальность решения данного вопроса в теоретическом плане состоит в том, что с помощью параллельного количественного исследования изменений функциональной активнооти и интенсивности роста щитовидной железы могут быть получены принципиально новые данные о взаимоотношениях между двумя основными аспектами жизнедеятельности клеток - функцией и пролиферацией.

Цель работы заключается в систематическом изучении взаимоотношений между функциональной активностью щитовидной железы и интенсивностью пролиферации тироцитов при метаморфозе бесхвостых амфибий.

Исходя из цели работы, оцределены основные задачи настоящего исследования:

1. Изучить взаимоотношения функциональной активности щитовидной железы и интенсивности пролиферации тироцитов при естественном метаморфозе.

2. Изучить взаимоотношения функциональной активности щитовидной железы и интенсивности пролиферации тироцитов при метаморфозе, стимулированном с помощью тиротропина и тироксина.

3. Изучить взаимоотношения функциональной активности и интенсивности пролиферации тироцитов метаморфозирующих амфибий при воздействия оксимочевины.

Научная новизна работы заключается в том, что получены новые данные о взаимоотношениях пролиферативной и функциональной активности клеток щитовидной железы при метаморфозе бесхвостых амфибий.

1. Впервые показано, что в цроцессе естественного метаморфоза повышение функциональной активности щитовидной железы головастиков сопровождается уменьшением интенсивности пролиферации тиро-цитов на ранних стадиях метаморфоза с последующим повышением их пролиферативной активности на поздних стадиях метаморфоза.

2. Впервые показано, что направленность изменений интенсивности пролиферации под влиянием экзогенных тиротропина или тироксина зависит от стадии метаморфоза.

3. Впервые показано, что в условиях подавления пролиферации тироцитов с помощью оксимочевины функциональная активность щитовидной железы головастиков на первой и второй стадиях метаморфоза не изменяется, а на пятой - уменьшается.

Научно-практическая ценность работы заключается в том, что она позволяет глубже изучить у амфибий механизмы метаморфоза в целом и понять закономерности взаимоотношений между функциональной активностью и интенсивностью пролиферации клеток щитовидной железы. Полученные в работе данные способствуют расширению цред-ставлений о механизмах гормональной регуляции пролиферации клеток.

В практическом плане разработанные методические подходы могут быть использованы при изучении взаимоотношений между функциональной активностью и интенсивностью пролиферации тироцитов у больных с различными заболеваниями щитовидной железы, сопровождающимися нарушением функции и пролиферации клеток. Полученные данные о возможном угнетении функционального состояния тироцитов при воздействии окоимочевины должны быть учтены при использовании этого препарата в онкологической клинике, так как щитовидная яе-леза играет важную роль в защите организма от опухоли (В.И.Архи-пенко, 1965). Материалы работы используются при выполнении Всесоюзной комплексной научной молодежной программы "Тироцит".

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Исходя из цели, поставленной в настоящей работе, - исследования взаимоотношений между размножением клеток и функциональной активностью щитовидной железы метаморфозирующих амфибий - целесообразно рассмотрение двух вопросов. Во-первых, следует рассмотреть размножение клеток в процессе метаморфоза амфибий. Во-вторых, необходимо проанализировать литературные данные, касающиеся гисто-физиологии щитовидной железы при метаморфозе амфибий.

Заключение Диссертация по теме "Эмбриология, гистология и цитология", Султанова, Нина Николаевна

вывода

1. В цроцессе естественного метаморфоза головастиков озерной лягушки и зеленой жабы функциональная активность щитовидной железы повышается; при этом интенсивность пролиферации тироцитов временно уменьшается на второй стадии метаморфоза, а затем снова возрастает.

2. В процессе метаморфоза, стимулированного тиротропином, функциональная активность щитовидной железы головастиков повышается; при этом интенсивность пролиферации тироцитов может увеличиваться или уменьшаться в зависимости от стадии метаморфоза.

3. В процессе метаморфоза, стимулированного тироксином, функциональная активность щитовидной железы, а также интенсивность пролиферации тироцитов изменяются неодинаково, в зависимости от стадии метаморфоза. На первой стадии метаморфоза тироксин вызывает активацию щитовидной железы головастиков и подавляет размножение тироцитов. На третьей и пятой стадиях тироксин угнетает функциональную активность щитовидной железы, существенно не изменяя интенсивности пролиферации тироцитов.

5. Функциональная активность щитовидной железы и интенсивность пролиферации тироцитов метаморфозирующих головастиков относительно независимы. Их взаимоотношения изменяются в процессе метаморфоза.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Султанова, Нина Николаевна, Днепропетровск

1. Архипенко В.И. Состояние щитовидной железы и систем ее регуляции при росте злокачественных опухолей. - Дис. .докт.мед.наук. Днепропетровск, 1965. - 303с.

2. Архипенко В.И., Спица А.И., Гербильский Л.В., Пинская В.М. Действие тироксина на фоне актиномицина. Проблемы этоокри-нологии, 1971, 17, с.108-111,

3. Алешин Б.В. Развитие зоба и патогенез зобной болезни. Киев, Госмедиздат, УССР, 1954.

4. Алешин Б.В. Регуляция нейросекреторных функций гипоталамуса в патогенезе тиреотоксикоза. Бестн.Акад.мед.наук СССР, 1980, т. 7, с.25-31,

5. Алешин Б.В. Некоторые вопросы патогенеза зобной болезни. -Архив патологии, 1981, т. 43, № 4, с.88-93.

6. Алешин Б.В., 1убский В.И. Гипоталамус и щитовидная железа. -М.: Медицина, 1983. 182с.

7. Алексеев О.П., Черкасов И.А. Прогноз заболеваемо°ти УССР эндо-кринопатиями до 2005 г. на основе статистической обработки данных об уровнях их распространенности в 1959-1980гг. В кн.: Тез.докл. 3 съезда эндокринол.УССР. Киев, 1982, с.184-185.

8. Бакурадзе Э.И., Гогичайшвили В.Л., Туманишвили Г.Д. Содержание ДНК в фолликулярном эпителии щитовидной железы при различных формах зоба. Сообщ. АН Груз.ССР, 1974, т.76, № I, с. 181-184.

9. Большакова Г.Б. Методика избирательного окрашивания ядер на различных стадиях клеточного цикла при изучении миокарда. Бюлв экспер. биол. и медицины, т.90, № 8, с.247.

10. Бляхер JI.Я. Механика метаморфоза амфибии. Тр. Лаб. эксп. биол. Моск. зоопарка, 1928, т. 4, с.353-390.

11. Бродский В.Я., Урытева И.В. Клеточная полиплоидия. Пролиферация и дифференцировка. М.: Наука, 1981г.

12. Валдина Е.А. Папиллярный рак щитовидной железы (особенности клиники, морфологии и лечебной тактики).: Автореф. дис. . докт. мед. наук, Л,, 1981. 45с.

13. Волкова 0,В., Харчевникова Г.В., Миловидова Н.С. Состояние ядерного аппарата щитовидной железы в условиях гипофункции симпатического отдела нервной системы, Пробл. эндокринологии, 1975, т. 21, В 6, с. 80-84. .

14. Волкова О.В., Харчевникова Г.В., Миловидова Н.С. Морфофункцио-нальная характеристика щитовидной железы в условиях снижения уровня адренэргической медиации. Архив анат., гистол., эмбриологии, 1977, т. 73, J& 8, с. 5- 10.

15. Войткевич А.А. Тр. ин-та эксперим. морфогенеза, 1936, т. 5, с. 243-272.

16. Войткевич А.А. Биологическая активность щитовидной железы и передней доли гипофиза. Физиол. журнал СССР, 1945, т. 31, $ 5-6, с. 332-348.

17. Гербильский Л.В. Влияние аурантина на щитовидную железу. -Дис. . канд. мед. наук, Днепропетровск, 1974, 164 с.

18. Гербильский Л.В. Лаброцит системообразующий элемент тиреоид-ного микрорайона. - В кн.: Физиология и патология соединительной ткани. Новосибирск, 1980, с. 35-36.

19. Гербильский Л.В. Влияние гистамина на функциональное состояние щитовидной железы. Физиол. журнал, 1982, № I, с. 94-96.

20. Гербильский Л.В. Внутриорганная интеграция щитовидной железы. -Дис. . докт. мед. наук. Днепропетровск, 1983. - с. 515.

21. Гербильский Л.В. Системная органология как новое направлениесистемных исследовании в биологии и медицине. В кн.: Тез. докл. Всесоюзн. конф. теория, методология и практика системных исследовании. М.; 1985, с. 142.

22. Гербильский Л.В., Майле-Августинович С.Г., Пушкарь С.И., Гарец В.И. Роль генетического аппарата фолликулярного тироцита в механизме действия тиреотропного гормона. Тез. докл. 3 съезда генетиков Украины, Киев, 1976, т. 2, с.177-178.

23. Гербильский Л.В., Гарец В.И., Литвин B.C., Султанова Н.Н. Гипотеза о двух наборах генов у бесхвостых амфибий. В кн.: Тез. докл. 14-го Междунар. генетич. конгресса. М., 1978, т. I, с. 576.

24. Дондуа А.К. Особенности митотических циклов на разных этапах эмбрионального развития. Цитология, 1967, т. 9, № 9, с.1057-1071.

25. Епифанова О.И., Терских В.В., Захаров А.Ф. Радиоавтография. -М.: Высшая школа, 1977. 246 с.

26. Заварзин А.А. Синтез ДНК и кинетика клеточных популяций в онтогенезе млекопитающих. Наука, Ленинград, 1967, с. 215.

27. Киршенблат Я.Д. Практикум по эндокринологии. М.: Высшая школа, 1969. - 255 с.

28. Кузнецов Е.В. Суточные биологические ритмы у некоторых лягушек в связи с экзогенными и эндогенными факторами, детерминирующими их. Вестн. Моск. университета. Биол. почвовед., 1973, т.6, с. 14-16.

29. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.; Высшая школа, 1980. - 292 с.

30. Ланская А.Б. Авторадиографическое исследование кинетики клеточных популяций в эпителии тонкой кишки и печени травяной лягушки. Цитология, 1974, т. 16, 3, с. 329-334.

31. Литвин B.C., Гербильский Л.В. Влияние экзогенных РНК и тироксина на рост конечностей при метаморфозе амфибий. Тез. 8 научн. конф. молодых ученых. Днепропетровск, 1975, с. 23.

32. Литвин B.C., Гарец В.И., Гербильский JI.B., Султанова Н.Н. К механизму гормональной регуляции метаморфоза амфибий.- Депонир. во ВНИЙМИ-МРЖ п. 1696, 1977,р. 16, с. II.

33. Мазин А.Л. Содержание ядерной ДНК и продолжительность ми-тотического цикла у разных амфибий. Структура и функции клеточного ядра. - Тез. 6-го Всесоюзн. симпозиума. Алма-Ата, 1977, с. 30-31.

34. Митрофанов Ю.А., Отраднова В.В. Действие на клетку ингибиторов синтеза ДНК. Успехи совр. биологии, 1975, т. 80, }£ I,с. 39-55.

35. Блохинский Н.А. Алгоритмы биометрии. М.: М1У, 1980. - 150 с.

36. Погорелова Л.Я. Влияние тироксина на клеточный цикл: Автореф. дис. . канд. мед. наук. Днепропетровск, 1975. - 20 с.

37. Резников К.Ю., Милованова С.Д. Пролиферация и миграция клеток в крыше среднего мозга (тектума) у головастиков и лягушек xenopus laevis в норме и при травме мозга.

38. П. Пролиферация и диффервнцировка клеток тектума у лягушек.- Онтогенез, 1979, т. 10, $ 4, с. 350-358.

39. Резников К.Ю. Пролиферация клеток мозга позвоночных в условиях нормального развития мозга и при его травме. М.: Наука, 1981. - 149 с.

40. Романов 10.А. Суточные изменения митотической активности в эпителии и строме щитовидной и паращитовидной желез молодых крыс. Бюлл. экспер. биол. и медицины, 1973, т. 10, с.87-91.

41. Романов Ю.А., Ивченко Т.Н., Панченко Л.Ф. Действие тироксина на размножение клеток в культуре Heia . Онтогенез, 1973, т. 7, № I, с. 90-94.

42. Ромнов Ю.А., Антохин А.И. Пролиферативная система и клеточный гомеостаз тканей. В кн.: Тез. докл. 7-ой Всесоюзн. конф.по вопросам регенерации и клеточного деления. М., ч. 2, с. 251-252.

43. Романов Ю.А., Рахматулина И.К., Баккина М.Н. Биология репродукции клеток. -М., 1972, с. 64.

44. Романов Ю.А., Савченко Т.В. Влияние тироксина на продолжительность фаз митотического цикла гепатоцитов в разное время суток. Цитология, 1979, т. 21, № 5, с. 619-622.

45. Романов Ю.А., Степанова Л.И.Суточные ритмы процессов репродукции клеток и некоторых морфометрических показателей в щитовидной железе молодых крыс. Онтогенез, 1974, т. 5, №2,с.146-154.

46. Слинченко H.S. Быстрая и прочная окраска соединительной ткани, гиалина, фибрина и фибриноидов. Архив патологии, 1964, т. 26, с. 84.

47. Синицина В.®. Изучение кинетики клеточных популяций при гистогенезе сетчатки у лягушки Xenopus laevis . Онтогенез, 1975, т. 6, J6 4, с. 402-407.

48. Строева О.В., Ахабадзе Л.В., Лобачева В.А., Панова И.Г. Регуляция числа ДНК-синтезирущих клеток в растущем ретинальном пигментном эпителии. Журн.общ.биол., 1980, т. 41, с. 138-142.

49. Туманишвили Г.Д., Гогичайшвили В.А., Кашия И.И. Количественная оценка функционального состояния ткани на примере щитовидной железы. Изв. АН Груз.ССР. Сер. биол., 1978, т. 4, №5, с. 417-427.

50. Туракулов Я.Х. Пути биосинтеза метаболизма и механизм действия гормонов щитовидной железы в норме и при патологии. Вестн. Акад. мед. наук СССР, 1980, т. 7, }Ь , с.54-61.

51. Тучкова С.Я., Черкасова JI.B. Авторадиографическое исследование синтеза ДНК и митотической активности при восстановлении регенерационной способности конечностей у бесхвостых амфибий. Докл. АН СССР, 1974, т. 215, № 5, с. 1265-1268.

52. Тучкова С.Я., Черкасова Л.В. Радиоавтографическое исслеядование динамики включения н-тимидина в тканях конечностей бесхвостых амфибий в процессе утраты регекерационной способности. Онтогенез, 1975, т. 6, I, с. 55-62.

53. Франкфурт О.С. Острая гибель клеток в различных отделах желудочно-кишечного тракта при торможении синтеза ДНК. Бкшл. экспер. биол. и медицины, - 1975, $ 8, с. 33.

54. Хрущов Н.Г., Заборская И.В. Авторадиографическое исследование синтеза ДНК при прямом делении ядра, в двуядерных и многоядерных клетках. Докл. АН СССР, 1964, т. 155,с. 1435-1437.

55. Хмельницкий O.K., Катинас Г.С., Быков В.Л. Морфометри-ческое исследование щитовидной железы. Архив патологии, 1975, т. 35, & 7, с. 71-76.

56. Шмидт В.М. О двух важных направлениях развития отечественной биометрии. Журнал общей биологии, 1979, т. 15, JS 2, с. 219-228.

57. Adams А.Е., Martindale А.С. Variations in the potency of thyrotropic hormone of the pituitary in animals. Quart. Rev. Biol., 1936, 21, 1-32.

58. Allen B.M. The influence of the thyroid gland and hypophysis upon growth and development of amphibian larvae. The Quart. Rev. Biol., 1929, v. 4, N 3. p. 325-352.

59. Allen B*M. The endocrine control of amphibian metamorphosis. Biol, revs., 1938, v. 13, N 1, p. 1-19*

60. Atwell W.J. Effects of thyreotropic and adrenotropic principles on hypophysectomized Amphibia. Anat. Rec., 1935, 62, p. 361-379.

61. Batistic R.F., Besak W., Besak M.L. DNA autoradiographic patterns in diploid, triploid and tetraploid amphibians

62. Ceratophrydidae). Cytologia, 1973» v. 38, N 4, p. 687-697.

63. Beach D.H., Jacobson M. Patterns of cell proliferation in the retina of the clawed frog during development. J. Сотр. Neurol., 1979, v. 183, N 3, p. 603-613.

64. Beach D.H., Jacobson M. Influences of thyroxine on cell proliferation in the retina of the claed frog at different ages. J. Сотр. Neurol., 1979, v. 183, N 3, p. 615-623.

65. Beach D.H., Jacobson M. Patterns of cell proliferation in the developing retina of the clawed frog in relation to blood supply and position of the choroidal fissure. J. Сотр. Neurol., 1979, v. 183, N 3, p. 625-632.

66. Beaumont A. La degenerescence partielle du pancreas larvaire des amphibiens anoures au cours de la metamorphose. Colloq. int. C.N.R.S., 1976, N 266, p. 113-124.

67. Belanger M., Brugal Q., Chibon P. Effects du LSD-25 eur le cycle cellulaire d'embryons de Pleurodeles waltlii Michah, traites en fin de gastrulation. C.r. Acad sci., 1975,v. 281, N 24, p. 1987-1990.

68. Bibb H.D. The production of ganglionic hypertrophy in Rana pipiens larvae. J. Exp. Zool., 1977, v. 200, N 2, p. 265275.

69. Bibb H. Neuronal death in the development of normal and hyperplastic spinal ganglia. J. Exp. Zool., 1978, v. 206, N 1, p. 65-72.

70. Borland R.J. The production of experimental goiter in Rana pipiens tadpoles by cabbage feeding and methyl cyanide. -J. Exp. Zool., 1943, v. 94, N 1, p. 115-143.

71. Bowers C.Y., Friesen H.G., Hwang P. Prolactin and thyrotropin release in man by synthetic pyroglutamyl-histidyl-prolin-amide. Biochera. biophys. res. Communic., 1971, 45, p. 1033

72. Brugal G. Relations entre la proliferation et la differencia-tion cellulaires: etude autoradiographique chez les embryons et les jeunes larves de Pleurodeles waltlii Michah. Develop. Biol., 1971a, v. 24, p. 301-321.

73. Brugal G. Etude autoradiographique de l1influence de la temperature sur la proliferation cellulaire chez les embryons ages de Pleurodeles waltlii Michah. Wilhelm Roux's Archives, 1971b, v. 168, p. 205-225.

74. Brugal G. Effects of adult intestine and liver extracts on the mitotic activity of corresponding embryonic tissues of Pleurodeles waltlii Michah. Cell Tissue Kinet., 1973, v. 6, p. 519-524.

75. Brugal G., Pelmont J. Existence of two chalone-like substances in intestinal extract from the adult newt, inhibiting embryonic intestinal cell proliferation. Cell tissue kinet.,1975, v. 8, p. 171-187.

76. Brugal G. Relations entre la proliferation et la differencia-tion cellulaires dans l'intestin embryonnaire et larvaire de Pleurodeles waltlii Michah. Wilhelm Roux's Archives, 1977,v. 182, p. 131-132.

77. Brugal G. Relations entre la proliferation et la differencia-tion cellulaires dans l'intestin embryonnaire et larvaire de Pleurodeles waltlii Michah. Developpement normal. Wilhelm Roux1 s Archives, 1977, v. 182, p. 133-146.

78. Bums E.R., Uyeda C.X., Scheving L.E. Mitotic nests in human vaginal smears and cultures of amphibian tissues. Oncology, 1973, v. 27, N 1, p. 92-96.

79. Cameron J., Fallon J.F. The absence of cell death during development of free digits in amphibians. Develop. Biol», 1977, v. 55, N 2, p. 331-338.

80. Campantico E., Olivero M., Peyrot A. Osservazioni sul metabo-lismo dello iodio in larve di Bufo bufo trattate con prolat-tina. Studio con 125J. Boll Zool., 1968, v. 35, p. 412*

81. Campantico E., Olivero M., Peyrot A. Accrescimento corporeo e metabolismo dello iodio in larve di Bufo bufo trattate con prolattina. Studio con 125J. Ric. Sci., 1968, v. 38,p. 980-985.

82. Campbell A.M., Corrance M., Davidson J., Keir H.M. The metabolism of DNA in the liver during precocious induction of metamorphosis in Rana catesbeiana. Proc. Roy. Soc. Edin-burg, 1969, v. 70, N 4, p. 295-310.

83. Ceusters R., Darras V.M., Ktthn E.R. Difference in thyroid function between male and female frogs (Rana temporaria L.) with increasing temperature. Gen. and Compar. Endocrinol.,1978, v. 36, IT 4, p. 598-603.

84. Cipullo R., Basile R., Barbosa M.L. Ecdysterone (ECD) and hydroxyurea (HU) action on ША synthesis in Trichosia pubes-cens (Diptera, Sciaridae). Eur. J. Cell Biol., 1980,v. 22, К 1, p. 105,

85. Champy C. L*action de l'extrait thyroidien. Archives de Morphologie, 1922, v. 10, К 2, p. 1-58.

86. Chibon P., Verain A. Premiers resultats de 1*etude du metabo-lisme de l'iode cher les amphibiens urodeles go it reux et sains. C.R. Soc. Biol. (Paris), 1970, v. 164, p. 2251-2255.

87. Chibon P., Dournon C. Etude autoradiographique de quelques parametres de la proliferation cellulaire pendant la metamorphose naturelle du crapaud Bufo bufo L. C.r. Acad. Sci., 1972, v. D275, p. 255-258.

88. Chibon P., Dournon C. Effets de l1hormone thyroidienne sur les parametres de la proliferation cellulaire chez la larve d'Amphibien. Ann. endocrinol., 1974, v. 35, N 3, p. 296297.

89. Christov-Tzelkov K., Graschev G. Cell population kinetics of thyroid follicular cells in infant rats. Cell tissue kinet., 1982, v. 15, N 3, p. 275-284.

90. Coleman R., Evennett P.J., Dodd J.M. Ultrastructural observations on the thyroid gland of Xenopus laevis Daudin throughout metamorphosis. Gen. and Compar. Endocrinol., 1968,v. 10, IT 1, p. 34-36.

91. Coleman R., Evennett R.J. Ultrastructural observations on the droplets of experimentally-induced goitres in Xenopus laevis with a special reference to the development of Uhlenhuth colloid cells. Z. Zellforsch., 1968; bd. 84, S. 490-496.

92. Cress A., Gerner E.W. Hydroxyurea treatment affects the G1phase in next generation CHO cells. Exp. Cell Res., 1977, y. 110, N 2, p. 347-353.

93. Dauca M., Hourdry J. Analyse quatitative des remaniements intestinaux et evolution de la synthese de l'ADN. Wilhelm Roux's Archives, 1977, v. 183, N 2, p. 119-129.

94. Dftuca M., Hourdry J. Isolement de 1*epithelium intestinal chez le crapaud accoucheur a l'etat larvaire ou juvenile. -Biol. Cellulaire, 1978, v. 33, И 1, p. 85-88.

95. Dauca M., Hourdry J. Variations de l'activite specifique de l'ADN intestinal chez la larve d'Alytes obstetricans (Amphi-bien Anoure) traitee par la thyroxine. C.r. Acad. Sci., 1978, v. D286, H 12, p. 973-975.

96. Dawid I.B. Deoxyribonucleic acid in amphibian eggs. J. Mol. Biol., 1965, v. 12, p. 581-599.

97. Demeestere M., Rockweli S., Vallfron A., Frindel E., Tubia-na M. Cell proliferation in EMT6 tumours treated with single doses of X-rays or hydroxyurea. Cell tissue kinet., 1980, v. 13, N 3, p. 309-317.

98. Dent J.H. Maintenance of thyroid function in newts with transplanted pituitary glands. Gen. and Compar. Endocrinol., 1966, v. 6, p. 401-408.

99. Denbos G., Frieden E. DUA synthesis and turnover in the bullfrog tadpole during metamorphosis. J. Biol. Chem., 1976,v. 251, U 13, p. 4111-4114.

100. Dewachi H.S., Y/right N.A., Appleton D.R., Watson A.J. The action of hydroxyurea on cell population kinetics in the rat jejunum. J. Anat., 1977, v. 123, 11, p. 256-257.

101. Dmytrenko G.M., Kirby G.S. Mechanics of tail resorption in triiodothyronine-induced metamorphosing tadpoles. J. Exp. Zool., 1981, v. 215, N 2, p. 179-182.

102. Dresden M.H. Denervation effect on newt limb regeneration autoradiography with %-thymidine. Cell Differ., 1973, v. 2, U 5, p. 255-259.

103. Duprat A.H., Flavin M. In vitro culture of larval amphibian erythroblasts. Experientia, 1976, v. 32, U 12, p. 15871589.

104. Ergezen S«, Gorbman A. Binding of thyroxine with subcellular components of brain, liver and tail tissue of Rana pipiens tadpoles. Gen. and Compar. Endocrinol., 1977, v. 31, N 4, p. 492-494.

105. Etkin W. Growth of the thyroid gland of Rana pipiens in relation to metamorphosis. Biol. Bull., 1930, v. 59, p. 285292.115» Etkin W. Metamorphosis. A problem in development Biology. -Amer. Zoologist, 1964, 4, p. 12-15.

106. Fallon R.J., Cox R.P. Cell cycle analysis of sodium butyrate and hydroxyurea, inducers of ectopic hormone production in HeLa cells. J. Cell. Physiol., 1979, v. 100, N 2, p. 251261.

107. Fox B.H. Thyroid growth and its relationship to metamorphosis in Rana temporaria. J. Embryol. exp. Morph., 1966, v. 16, N 3, p. 487-496.

108. Frankfurt O.S. Unbalanced growth and cell death in HeLa S^ cultures treated with ША synthesis inhibitors. J. Cell Physiol., 1981, v. 107, N 1, p. 115-122.

109. Prancois-KCassowska A. The structure of the thyroid gland in Rana ridibunda Pall, and Rana lessonae Cam. Bull. Acad, pol. sci., 1973, v. 21, N 5, p. 357-363.

110. Frawley L.S., Walker R.F. Influence of light on thyroid function in bullfrog tadpoles. Gen. and Compar. Endocrinol., 1974, v. 24, IT 1, p. 83-86.

111. Gabrion J., Verain A., Sentein P. Incorporation thyroidienne de iode radioactif chez des tritons neoteniques (Triturus helveticus Raz.). Annales d'Endocrinologie, 1979, v. 40,1. H 2, p. 137-154.

112. Galton V.A. Binding of thyroid hormones in vivo by hepatic nuclei of Rana catesbeiana tadpoles at different Stages of metamorphosis. Endocrinology, 1980, v. 107, N 6, p. 19101915.

113. Galton V.A., Munck K. Metabolism of thyroxine in Rana catesbeiana tadpoles during metamorphic climax. Endocrinology, 1981, v. 109, N 4, p. 1127-1131.

114. George Y., Tusques J. Action de la thyroxine sur l'indice mitotique dans la thyroide chez le rat blanc nouveau-ne. -C.r. Soc. Biol., 1973, v. 166, N 10, p. 1349-1352.

115. Globus M., Vethamany-Globus S. Transfilter mitogenic effect of dorsal root ganglia on cultured regeneration blastemata, in the newt, Notophthalmus viridescens. Develop. Biol., 1977, v. 56, U 2, p. 316-328.

116. Gona A.G. Radioiodine studies on prolactin action in tadpoles. Gen. and Compar. Endocrinol., 1968, v. 11, N 2, p. 278-283.129» Gorbman A. Endocrinology of the amphibia. Of the Amphibia, Academic press, New York and London, 1964, p. 371-410.

117. Gress A.E., Gerner E.W. Hydroxyrea inhibits ODC induction, but not the to S phase transition. Biochem. and Bio-phys. Res. Commun., 1979, v. 87, N 3» p. 773-780.

118. Griesbach W.E., Purves H.D. The assay of thyrotropic activity by the cell height response in guinea-pigs. Brit. J.of Exp. Pathol., 1943, v. 24, N 2, p. 185-195.

119. Gudernatsch J.P. Feeding experiments on tadpoles. 1. Influence of specific organs given as food on growth and diffe

120. Hambyrh M., Kim Y., Tung G., Crenshaw R., Mendosa L.A. The significance of the latent period in thyroid hormone induced tissue regression during amphibian metamorphosis. Develop. Biol., 1981, v. 81, Я 2, p. 392-398.

121. Hanaoka Y., Koya S.M., Kondo Y., Kobayashi Y., Yamamoto K. Morphological and functional maturation of the thyroid during early development of anuran larvae. Gen. Сотр. Endocrinol., 1973, v. 21, N 3, p. 410-423.

122. Haptmanova J., Sladecek F. Influence of temperature on regionally different mitotic activity in early development of Xenopus laevis Daud. Folia biol., 1974, v. 20, IT 5,p. 333-339.

123. Hayden J.H., Rothstein H. Complete elimination of mitosis and Шк synthesis in the lens of the hypophysectomized frog: effects on cell migration and fiber growth. Differentiation, 1979, v. 15, Jff 3, p. 153-160.

124. Hearing V.J., Epping J.J. Electron microscopy of the normal131and I treated thyroid gland of the newt Uotophthalmus viridescens. J. Morph., 1969, v. 128, p. 369-386»

125. Hedge G.A., Wright K.C., Judd A. Factors modulating the secretion of thyrotropin and other hormones of the thyroid axis. Environ. Health Perspect., 1981, v. 38, p. 57-63.

126. Herman L., Fitzgerald P.J. The fine structure of the Golgi body following thyroid stimulation and pancreatic regeneration. Trans, m Acad. Sci., 1969, v. 23, N 4, p. 332-345.

127. Hershman J.M. Stability of thyrotropin in the rat pituitary. Endocrinology, 1967, v. 80, I 2, p, 302-304»p. 205-211.

128. Jeanny J., Contcharaff M. Synthese de l'ADN au cours des phases precoces de la regeneration des membres posterieurs de Desraognathus fuscus. C.r. Acad, sci., 1974, v. D278, N 11, p. 1513-1516.

129. Kaung H.C. Development of beaks of Rana pipiens larvae. -Anat. Rec., 1975, v. 182, N 4, p. 401-414.

130. Kendall P., Swenson R., Borun Т., Rowinski J. Hicolini C. Nuclear morphometry during the cell cycle. Science, 1977, v. 196, p. 1106-1109.

131. MacKenzie D.S., Licht P. Thyrotropin from amphibian (Rana catesbeiana) pituitaries and evidence for heterothyrotropic activity of Bullfrog luteinizing hormone in reptiles. -Gen. and Compar. Endocrinol., 1978, v. 36, N 4, p. 566-574.

132. Kistler A., Weber R. A combined biochemical and morphometric study on tissue changes in Xenopus larvae during induced metamorphosis. Mol. and Cell Endocrinol., 1975, v. 2,p. 261-288.

133. Kobayashi H., Gorbman A. Thyroid function in amphiuma. -Gen. and Compar. Endocrinol., 1962, v. 2, p. 279-282.

134. Kurais A.R., Stanisstreet M. Scanning electron microscopy of cells from hydroxyurea-arrested blastulae of Xenopus laevis. Experientia, 1980, v. 36, H 4, p. 454-456.

135. Larsen J.H. Dense granules in the thyroid follicle cells of salamanders (Amblystoma gracile and A. macrodactylium); a functional interpretation. Anat. Rec., 1965, v. 3, p. 376.

136. Larsen S.H. Ultrastructure of thyroid gland follicle cellsof three salamanders (Ambystoma, Amphiuma, Hecturus), exhibiting varying degrees of neoteny. J. Ultrastruct. Res., 1968, v. 24, p. 190-209.

137. Leloup J., Buscaglia M., Horn C., Lambergeon M. Evolution of thyroid iodine and hormones in thyroid and plasma during the metamorphosis of Xenopus laevis tadpoles. Ann. Endocrinol., 1977, v. 38, N 5, p. 19.

138. Levenson R., Kernen J., Mitrani A., Housman D. DWA synthesis is not required for the commitment of murine erythro-leuke-mia cells. Develop. Biol., 1980, v. 74, N 1, p. 224-230.

139. Lohmann K. Untersuchungen zur Frage der DNS-Konstanz in der Embryonalentwiсklung (Urodela, Triturus vulgaris). Wilhelm Roux'Archives, 1972, v. 169, p. 1-40.

140. Malee J., Kornacka L., Sawecka J. Differential cell-cycle-dependent inhibition of DNA synthesis by hydroxyurea and cytosine arabinoside in cultured L 51784 mouse lymphoma cells. Arch, immunol. et ther. exp., 1979, v. 27, N 4, p. 539-545.

141. Mauchamp J., Nunez J. Synthese et iodination de la thyroglo-buline chez l'axolote (Ambystoma mexicanum) et le tetard premetamorphique (Rana catesbeiana). Gen. and Compar. Endocrinol., 1968, v. 10, N 1, p. 47-55.

142. Milne R.S., Leatherland J.P. Studies on the relationship between osmotic or ionic regulation and thyroid gland activity in two salmonid fishes. Salmo gairdneri Richardson and Oncorhynchus kisutch Walbaum. J. Pish Biol., 1980, v. 16, N 4, p. 349-360.

143. Miyauchi H., Lahochelle P., Suzuki M., Freeman M., Frieden E. Studies on thyroid hormones and their binding in bullfrog tadpole Plasma during metamorphosis. Gen. and Compar. Endocrinol., 1977, v. 33, N 2, p. 254-266.

144. Misiek L., Szarski H. Dimensions of cells in some tissues of six amphibian species. Acta Biol., Cracov, 1978, v. 21,p. 127-132.

145. Nag A.C., Healy C., Cheng M. ША synthesis and mitosis in adult amphibian cardiac muscle cells in vitro. Science,1979, v. 205, N 4412, p. 1281-1282.

146. Nag A.C., Cheng M., Healy C. Studies of adult amphibian heart cells in vitro: DNA synthesis and mitosis. Tissue Cell.,1980, v. 12, N 1, p. 125-139.

147. Nanba H. Endogeneous peroxidase activity in the frog thyroid gland. Histochemie, 1972, v. 32, p. 99-105.

148. Nanba H. Ultrastructural and cytochemical studies on the thyroid gland of normal metamorphosing frogs. (Rana japonica Guenther). I. Pine structural aspects. Arch, histol. jap., 1972, v. 34, N 3, p. 277-291.

149. Nataf В., Regard E., Hourdry M.J. Metabolisme du radio-iode dans la thyroide du Zenope du cours de la vie larvaire et de la metamorphose. C.R. Acad. Sc. Paris, 1975, v. 280,1. N 5, p. 657-660.

150. Necas E., Ponka P., Neuwirt J. Decreased sensitivity to hyd-roxyurea and to -'H thymidine suicide in the middle of the

151. S phase. Cell tissue kinet., 1981, v. 14, N 3, p. 261-267.

152. Necas E. Stem cell (CPUs) proliferation inhibitor in blood of mice injected with hydroxyurea. Cell tissue kinet., 1982, v. 15, N 3, p. 263-268.

153. Necas E., Cinatl J. Enhanced triggering of stem cell proliferation after two doses of hydroxyurea. Cell tissue kinet., 1982, v. 15, U 3, p. 269-273.

154. Neuenschwander P. Ultrastruktur und Iodaufnahme der Schild-drllse bei Larven des Krallenfroscheo (Xenopus laevis Daud.). Z. Zellforsch., 197.2, bd. 130, S. 553-574.

155. Nitsch L., Wollman S.H. Thyroid epithelial cells of separated follicles in suspension culture divide after TSH stimulation. Ann. endocrinol., 1979, v. 40, H 5, p. 25A.

156. No^t J.C., Lefevre A. Arguments numeriques en faveur de l1existence de clones cellulaires dans l1adenohypophyse. -"C.r. Soc. Biol.", 1977, v. 171, N 4, p. 733-737.

157. Pajor W.J. The activity of some intracellular oxidative en-rymes in the thyroid follicular epithelium of Xenopus laevis Daud. in experimental long-term hypokinesia. Folia Histo-chem. et cytochem., 1977, v. 15, N 4, p. 295-298.

158. Pawlikowski M., Kunert-Radek J. Inhibition of mitotic activity in organ-cultured thyroid gland by high concentrations of thyroid stimulating hormone (TSH) and dibutyryl cyclic AMP. Endokr. polska, 1976, v. 27, N 5, p. 433-436.

159. Pawlikowski M., Mroz-Wasilewska Z., Stepien H., Rychter J. Cholinergic stimulation of the thyroid mitotic activity. -Endokr. polska, 1978, v. 29, N 6, p. 459-462.

160. Pawlikowski M., Kumert-Radek J., Mroz-Wasilewska Z. Biphasic inhibitory and stimulatory effects of thyrotropin on theчmitotic activity of thyroid explants cultured in vitro. -Endokrinologie, 1979, v. 73, N 2, p. 186-190.

161. Pawlikowski M. The link between secretion and mitosis in the endocrine glands. Life Sci., 1982, v. 30, N 4, p. 315-320.

162. Peyrot A., Andreoletti G.F., Pons G., Grotta L. Primi dati sulla composizione in aminoacidi iodati e caratteristiche di sedimentazione della tiroglobulina in alcuni Anfibi. -Boll. Zool., 1971, v. 38, p. 551-552.

163. Peyrot A., Andreoletti G.E., Pons G., Grotta L., Vottero C.

164. Sedimentation characteristics of thyroglobulin in some am1 31phibians after I J iodination in vivo. Gen. and Compar. Endocrinol., 1973, v. 21, N 3, p. 461-467.

165. Pisarev M.A., Kleiman de Pisarev D.L. Biochemistry of thyroid regulation under normal and abnormal conditions. J. Endocrinol. Invest., 1980, v. 3, p. 317-329.

166. Piatt S.E. The effects of ergocornine on tail height spontaneous and T^-induced metamorphosis and thyroidal uptake of radioiodine in neotenic Ambystoma tigrinum. Gen. and Compar. Endocrinol., 1976, v. 28, N 1, p. 71-81.

167. Pollak E.D. Presumptive relationships between ventricularproliferation and development of the lateral motor columns in the spinal cord of Rana pipiens larvae. Amer. J. Anat., 1976, v. 147, N 2, p. 183-192.

168. Poyet J.C., Beaumont A. Ultrastructure du pancreas larvaire d'un Amphibien Anoure, Alytes obstetricans L. en culture or-ganotypique. C.R. Soc. Biol., 1975, v. 169, N 4, p. 846-850.

169. Prahlad K.V. Induced metamorphosis: rectification of a genetic disability by thyroid hormone in the mexican axolotl siredon mexicanum. Gen. and Compar. Endocrinol., 1968,v. 11, N 1, p. 21-30.

170. Purnell D.M., Stowers D.J. Nonrandom frequency disribution of mitoses in rat lobulоalveolar mammary gland epithelium. Amer. J. Pathol., 1977, v. 88, p. 267-276.

171. Rafferty U.S., Gfeller E. thymidine mediated and delayed nuclear labelling in frog lens epithelium. Evidence for reutilization of DNA precursors. Exp. Cell Res., 1970,v. 59, N 2, p. 249-258.

172. Redmond 0., Tuffery A.R. Mitotic rate of rat thyroid follicular cells in vivo in response to a single injection of thyrotropin (TSH). Cell tissue kinet., 1981, v. 14, p. 625-631.

173. Regard E., Mauchamp J. Ultrastructure de la glande thyroide de Xenope larvaire normal et hypophysectomise: correlation avec la biosynthese de la thyroglobuline. J. Ultrastruct. Res., 1971, v. 37, N 5-6, p. 664-678.

174. Regard E., Hourdy J. Modifications structurales des cellulesthyroidiennes chez la larve du Xenope traitee par la prolac-tine ovine. Incidences sur le metabolisme de l'iode. J. Microscopie Biol. Cell. 1975, v. 22, N 1, p. 39-54.

175. Regard E., Taurog A., Uakashima T. Plasma thyroxine and triiodothyronine levels in spontaneously metamorphosing Rana catesbiana tadpoles and in adult anuran amphibia. Endocrinology, 1978, v. 102, U 3, p. 674-684.

176. Reyer R.W. ША synthesis and the incorporation of labeled iris cells into the lens during lens regeneration in adult newts. Develop. Biol., 1971, v. 24, p. 533-558.

177. Remy C., Disclos P. Influence de 1'epiphysectomie sur le de-veloppement de la thyroide et des gonades chez les tetards d'Alytes obstetricans. C.R. Soc. biol., 1971, v. 164,1. 10, p. 1989-1993.

178. Robbins J. Factors altering thyroid hormone metabolism. -Environ. Health Perspect., 1981, v. 38, p. 65-70.

179. Robertson D.R. The ultimobranchial body of Rana pipiens. V. The cell cycle studied with tritiated thymidine. Trans. Amer. Microsc. Soc., 1967, v. 86, И 2, p. 195-203.

180. Sakimura Y., Sekiya K. Amphibian cell culture in vitro. The cell cycle analysis of Xenopus A8 cell line. Sci. Repts. Nigata Univ., 1981, v. D, N 18, p. 1-4.

181. Sawicki W., Blaton 0., Pindor M. Spatial distribution of DNA-synthesizing cells in colonic crypts of the guinea pig. Amer. J. Anat., 1977, v. 148, N 3, p. 417-425.

182. DeSesso J.M. Comparative ultrastructural alterations in rabbit limb-buds after a teratogenic dose of either hydroxyurea or methotrexate. Teratology, 1982, v. 23, N 2, p. 197-215.

183. Severinghaus A.E. Cytological observations on secretion in normal and activated thyroides. Z. Zellforsch., microsc.

184. Anat., 1933, v. 19, N 3, p. 653-680.

185. Simnett J., Walton J., Oates Ch. Stimulation of cell division in ectopic kidney grafts following unilateral removal of the lung. Anat. Rec., 1977, v. 18, IT 2, p. 273-279.

186. Singh A.G., Balasubrahmanian A. Thyroid activity and the131nature of J uptake in the postmetamorphic Rana hexa-dactyla lesson. Curr. Sci., 1978, v. 47, N 12, p. 419-420.

187. Schubert Ch., Welsch U. Untersuchungen zur Schilddrttsenakti-vitat von Urodelen (Triturus cristatus, Triturus vulgaris, Mertensiella caucasica) miter verschiedenen Bedingungen. -Verh. Dtsch. Zool. Ges., 1975, N 76, S. 133.

188. Shimozawa A. Effect of starvation on the volume of various organs in the toad larvae (Bufo vulgaris formosus Boulenger). Dokkyo J. Med. Sci., 1977, v. 4, N 2, p. 93-101.

189. Short R.W., Kibert L., Zemel R. Triiodothyronine: on its role as a specific hepatomitogen. Cytobios, 1980, v. 28, N 111112, p. 165-177.

190. Smith A.R., Crawley A.M. The pattern of cell division during growth of the blastema of regenerating newt forelimbs. J. Embryol. exp. Morphol., 1977, v. 37, p. 33-48.

191. Smith A.R. Digit regeneration in the amphibian-Triturus cristatus. J. Embryol. exp. Morph., 1978, v. 44, p. 105112.

192. Smith-Gill S.J., Garret R.J., Weber E.M. ША synthesis andcell turnover in Rana pipiens tadpole liver during spontaneous metamorphosis. Develop., Growth and Differ., 1979, v. 21, N 4, p. 281-290.

193. Smith-Gill S.J. DNA synthesis in Rana pipiens' tadpole liver during triiodothyronine-induced metamorphosis. Develop., Growth and Differ., 1979, v. 21, N4, p. 291-301.

194. Smuts M.S., Hilfer S.R., Searls R.L. Patterns of cellular proliferation during thyroid organogenesis. J. Embryol. exp. Morphol., 1978, v. 48, p. 269-286.

195. Solomon S.H., McKenzie J.M. Release of thyrotropin by the rat pituitary gland in vitro. Endocrinology, 1966, v. 78, N 4, p. 699-706.

196. Stocum D.L. The relation of mitotic index, cell density, and growth to pattern regulation in regenerating Ambystoma macy-latum forelimbs. J. Exp. Zool., 1980, v. 212, N 2, p. 233242.

197. Straznicky K., Mess B. Effect of TSH on the rate of DNA andprotein synthesis in embryonic chicken thyroid cells, inves-•3 3tigated with ^H-thymidine and ^H-methionine autoradiography. Acta. Biol. Hung., 1967, v. 18, N 2, p. 221-229.

198. Suzuki S., Suzuki M. Changes in thyroidal and plasma iodine compounds during and after metamorphosis of the bullfrog, Rana catesbeiana. Gen. and Compar. Endocrinol., 1981, v.45, 11, p, 74-81.

199. Tassava R.A., McCullough W.D. Neural control of cell cycle events in regenerating salamander limbs. Amer. Zoologist, 1978, v. 18, N 4, p. 843-854.

200. Taurog A. Effect of TSH and long-acting thyroid stimulator on131thyroid I-metabolism and metamorphosis of the mexican axolotl (Ambystoma mexicanum).1 Gen. and Compar. Endocrinol.,1974, v» 24, N 3, p. 257-266.

201. Thornburn С.С. Concentration of thyroid hormone in the blood of the toad Bufo bufo. J. Endocrinol., 1967, v. 38, N 1, p. 79-80.

202. Tomita K., Planger J.E. In vivo cell cycle synchronization of the murine sarcoma 180 tumor following alternating periods of hydroxyurea blockade and release. Cancer Res., 1979, v. 39, N 11, p. 4407-4411.

203. Toth E., Tabachnick M. In vivo demonstration of the presence of specific saturable binding sites for triiodothyronine in nuclei of tadpole liver. Gen. and Compar. Endocrinol., 1979, v. 38, N 3, p. 345-355.

204. Tutton P.J.M. The influence of thyroidectomy and of triiodothyronine administration on epithelial cell proliferation in the jejunum of rat. Virchows Arch., 1976, v. B20, N 2, p. 139-142.

205. Valouch P., Melichna J., Sladecek P. The number of cells of the beginning of gastrulation depending on the temperature in different species of amphibians. Acta Universitatis Carolinae - Biologica, 1971, v. 20, p. 195-205.

206. Vassilopoulos E.M., Lumb E.M., Emery A.E.H. Muscle nuclear size in neuromuscular disease. J. Neurol., Neurosurg., Psych., 1976, v. 39, p. 159-162.

207. Vassilopoulos D., Emery A.E.H. Muscle nuclear changes in fetuses at risk for Duchenne muscular dystrophy. J. Med.

208. Genet'., 1977, v. 14, p. 13-15.

209. Vellano C., Peyrot A., Mazzi V. Effects of prolactin on the pituito-thyroid axis. Integument and behavior of the adult male crested newt. Monitore Zool., Ital. (U.S.), 1967,v. 1, N 3-4, p. 207-227.

210. Weinsieder A., Roberts L. Thyroidal hormones restore cell proliferation to the lenses of hypophysectomized adult frogs. Gen. and Compar. Endocrinol., 1980, v. 40, IT 3, p. 268-274.

211. Welsch U. U1trastruekturelle Beobachtungen an Ultimobran-chialkttrper und Schilddrtise embryonaler Ichthyophis Kontao-ensis (Gymnophiona, Amphibia). Zool. jb. anat., 1973,v. 90, p. 567-579.

212. Welsch U., Schubert C., Kirmse L., Storch V. The influence of temperature on the thyroid gland of Chthonevpeton indis-tinctum (Gymnophiona, Amphibia). Cell, and Tiss. Res., 1976, v. 165, N 4, p. 455-465.

213. Weiss W. Changing incidence of thyroid cancer. J. Hat. Cancer Inst., 1979, v. 62, N 5, p. 1137-1142.

214. Westermark В., Karlsson P.A., Walinder 0. Thyrotropin is not a growth factor for human thyroid cells in culture. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1979, v. 76, N 4, p. 2022-2026.

215. Wright M.L. Regulation of cell proliferation in tadpolelimb epidermis by thyroxine. J. Exp. Zool., 1977, v. 202, N 2, p. 223-234.

216. Wright M.L., Majerowski M.A., Lukas S.M., Pike P.A. Effect of prolactin on growth, development, and epidermal cell proliferation in the hindlimb of the Rana pipiens tadpole.- Gen. and Compar. Endocrinol., 1979, v. 39, p. 53-62.

217. Yamada Т., Roesel M., Beauchamp J. Cell cycle parameters in dedifferentiating iris epithelial cells. J. Embryol. ,exp. Morphol., 1975, v. 34, N 2, p. 497-510.

218. Yamamoto K., Kanski D., Frieden E. Uptake and excretion of

219. T^, I" in bullfrog tadpoles after immersion or injection at 25° and 6°C. Gen. and Compar. Endocrinol., 1966, v. 6, Ж 3, p. 312-324.