Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему
Разработка методов селекции и повышения продуктивности штаммов-продуцентов эргоалкалоидов в сапрофитных условиях культивирования
ВАК РФ 03.00.23, Биотехнология

Автореферат диссертации по теме "Разработка методов селекции и повышения продуктивности штаммов-продуцентов эргоалкалоидов в сапрофитных условиях культивирования"

Барсегян Антон Геворкбекович

РАЗРАБОТКА МЕТОДОВ СЕЛЕКЦИИ И ПОВЫШЕНИЯ ПРОДУКТИВНОСТИ ШТАММОВ-ПРОДУЦЕНТОВ ЭРГОАЛКАЛОИДОВ В САПРОФИТНЫХ УСЛОВИЯХ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ

03.00.23-Биотехнология

Автореферат

диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук

1 9 КОл

МОСКВА- 2009г.

003483580

Диссертационная работа выполнена во Всероссийском научно-исследовательском институте лекарственных и ароматических растений (ВИЛАР) РАСХН

Научный руководитель:

кандидат биологических наук Савина Татьяна Алексеевна

Официальные оппоненты:

доктор биологических наук Краснопольская Лариса Михайловна доктор биологических наук Юдина Татьяна Георгиевна

Ведущая организация:

ОАО Институт «Прикладной биохимии и машиностроения»

Защита состоится «14» декабря 2009 г в 14 часов на заседании диссертационного совета Д 006.070.01 во Всероссийском научно-исследовательском институте лекарственных и ароматических растений (ВИЛАР) РАСХН (117216, г. Москва, ул. Грина 7) по адресу: 123056, г. Москва, ул. Красина д. 2.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ВИЛАР по адресу: 117216, г. Москва, ул. Грина 7

Автореферат разослан « » 2009 г.

Ученый секретарь диссертационного совета Д 006.070.01

доктор фармацевтических наук

А.И. Громакова

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ Актуальность темы

Вторичный метаболизм сапрофитно культивируемых микроорганизмов, в том числе мицелиальных грибов традиционно привлекает внимание исследователей, что обусловлено перспективностью промышленного использования их с целью получения большого разнообразия биологически активных веществ. К таким соединениям принадлежат различные алкалоиды, терпеновые соединения, полифенолы, гликозиды, специфичные пептиды и так далее.

Одной из самых изученных и распространенных групп алкалоидов, продуцируемых мицелиальными грибами, являются эргоалкалоиды, или алкалоиды спорыньи. Свое название они получили по тривиальному наименованию своих основных продуцентов - грибов-паразитов злаков из рода Claviceps (ergot, спорынья).

В настоящее время эргоалкалоиды занимают важное место в фармацевтической промышленности, так как используются в качестве фармакологических средств разнообразного направления и механизма действия. Считается, что большинство эффектов эргоалкалоидов объясняется их взаимодействием с рецепторами нейромедиаторов адреналина, норадреналина, дофамина и серотонина.

На сегодняшний день в мире выпускается более 80 лекарственных средств на основе эргоалкалоидов. Применяются эргоалкалоиды как индивидуально, так и в составе многочисленных комбинированных лекарственных препаратов. В России (ВИЛАР) на основе эргоалкалоидов разработаны препараты Абергин, Новокристин, Беллатаминал и Эргометрина малеат различного спектра действия.

Основным источником для получения эргоалкалоидов является спорынья пурпуровая (Claviceps purpurea (Fr.) ТиГ). В промышленном производстве гриб спорыньи используется как паразитарная культура и выращивается на посевах ржи. Данный способ имеет ряд существенных недостатков, к примеру, получение только одного урожая склероциев в год и значительная зависимость от погодных условий.

В настоящее время для получения эргоалкалоидов активно ведутся работы по изучению использования сапрофитной культуры гриба спорыньи.

Получение эргоалкалоидов, основанное на глубинном культивировании сапрофитных штаммов, имеет ряд преимуществ. Данный способ позволяет создать экологически чистое безотходное производство, получать стандартное сырье независимо от времени года, сократить время выращивания сапрофитной культуры, снизить производственные затраты и так далее.

Несмотря на многочисленность ранее проведенных исследований, эффективная технология получения пептидных эргоалкалоидов из сапрофитных культур отсутствует, или охраняется патентами, являясь собственностью коммерческих организаций. В Российской Федерации на сегодняшний день нет промышленных штаммов-продуцентов эргоалкалоидов в сапрофитных условиях культивирования.

Учитывая фармакологическую ценность эргоалкалоидов, разработка путей биотехнологического получения алкалоидов спорыньи является важным фактором обеспечения сырьем производства целой группы препаратов в фармацевтической промышленности.

Цель и задачи работы

Целью диссертационной работы являлось изучение гриба Claviceps purpurea (Fr.) Tul. в условиях сапрофитного культивирования, разработка методов селекции штаммов-продуцентов эргоалкалоидов и приемов экзогенной регуляции их продуктивности.

Для достижения поставленной цели решались следующие задачи:

1. Получить мицелиальную культуру спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма ВКМР-3602Д;

2. Изучить морфологические признаки и биохимические характеристики мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

3. Исследовать возможность экзогенной регуляции гормональными эффекторами ростовых и биосинтетических процессов у мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

4. Выбрать эффективные концентрации регуляторов роста для повышения реализации биосинтетического потенциала продуцирования мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

5. Изучить влияние индуцированного мутагенеза физических (УФ облучение) и химических (колхицин) мутагенных факторов на морфологические признаки, ростовые и биохимические характеристики мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

6. Изучить влияние селективных факторов на морфологические признаки и биохимические характеристики мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

7. Изучить возможность сочетания методов направленной селекции и индуцированного мутагенеза для получения штамма гриба спорыньи с измененными морфологическими и биохимическими характеристиками, на примере мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

8. Дать оценку морфологических и биохимических характеристик модифицированных линий мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

9. Использовать экзогенное воздействие регуляторов роста в эффективных концентрациях для повышения алкалоидообразования у модифицированных линий мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

10. Разработать инструкцию по методам селекции сапрофитных штаммов спорыньи пурпуровой - продуцентов эргоалкалоидов.

Научная новизна работы

Изучена возможность максимальной реализации адаптивного потенциала продуктивности эргоалкалоидов в пределах генетической нормы реакции за счет воздействия рострегулирующими факторами на мицелий гриба спорыньи в условиях глубинного культивирования.

Для увеличения влияния на биосинтетическую активность впервые использовали фиторегуляторы, ассоциированные с транспортными биодеградируемыми наночастицами из полибутилцианоакрилата.

В работе впервые исследованы возможности сочетания методов направленной селекции и индуцированного мутагенеза с целью получения генетически измененных линий мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма ВКМР-3602Д, обладающих способностью к биосинтезу эргоалкалоидов в условиях in vitro.

Предложенная методология отбора вариантных линий, и экзогенной регуляции ростовых и биосинтетических процессов гриба

С. purpurea позволяют получать эргоалкалоиды при глубинном способе культивирования.

Получен сапрофитный штамм С. purpurea - продуцент эргокриптина, зарегистрированный под №04868244-005-2009-Е24-09 ВИЛАР.

Практическая значимость работы

Разработана инструкция по методам селекции сапрофитных штаммов спорыньи пурпуровой - продуцентов эргоалкалоидов. Предложенная методология может быть адаптирована для получения генетически измененных линий других сапрофитных микроорганизмов.

Разработан способ реализации адаптивного потенциала продуктивности эргоалкалоидов в пределах генетической нормы реакции за счет воздействия рострегулирующими факторами на мицелий гриба спорыньи в условиях глубинного культивирования.

Получен сапрофитный штамм С. purpurea - продуцент эргокриптина, зарегистрированный под №04868244-005-2009-Е24-09 ВИЛАР, перспективный для проведения дальнейших работ по селекции и повышению продуктивности.

Основные положения, выносимые на защиту

1. Способы экзогенного управления ростовыми и биосинтетическими характеристиками сапрофитного штамма гриба спорыньи регуляторами роста стимулирующего и ретардантного действия;

2. Эффективные дозы воздействия индукторами мутагенеза и оптимальная плотность конидий гриба спорыньи для получения вариантных линий;

3. Селективные факторы и их концентрации, обеспечивающие отбор линий с повышенной биосинтетической активностью;

4. Сочетание методов направленной селекции и индуцированного мутагенеза для получения сапрофитного штамма гриба спорыньи с измененными морфологическими и биохимическими характеристиками;

5. Инструкция по методам селекции сапрофитных штаммов спорыньи пурпуровой - продуцентов эргоалкалоидов И 04868244007-2009 ВИЛАР.

Апробация работы

Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на 4-й Российской научно-практической конференции «Актуальные проблемы инноваций с нетрадиционными природными ресурсами и создания функциональных продуктов» (Москва 2007), Симпозиуме «Биотехнология и медицина в 21 веке» в рамках Международного медицинского Форума «Индустрия здоровья» (Москва 2008), VI Всероссийской научной конференции «Биомедицинские технологии» (Москва 2008).

Связь задач исследований с проблемным планом НИР

Диссертационная работа выполнена в соответствии с «Программой фундаментальных исследований по научному обеспечению развития агропромышленного комплекса Российской Федерации» на 2001-2005 и 2006-2010 гг., а также согласно тематическому плану теоретических и прикладных научно-исследовательских работ ВИЛАР.

Публикации

По материалам диссертации опубликовано 5 научных работ.

Объем и структура диссертации

Диссертационная работа изложена на 172 страницах печатного текста, состоит из введения, обзора литературы (глава 1), четырех глав экспериментальной части, выводов, списка литературы, включающего 171 источник, в том числе 98 иностранных, приложений. Работа содержит 35 рисунков и 52 таблицы.

Во введении обоснована актуальность темы, сформулированы цели и задачи исследования, представлены научная новизна и практическая значимость работы.

В первой главе на основе обзора данных литературы дана характеристика эргоалкалоидов, описаны их строение, классификация и пути биосинтеза, указаны основные источники и способы получения, показана значимость эргоалкалоидов для медицинской промышленности. Объяснена перспективность использования сапрофитной культуры гриба спорыньи в качестве источника эргоалкалоидов. Обоснована рациональность использования методов экзогенной регуляции биосинтеза эргоалкалоидов для повышения продуктивности сапрофитной культуры, а также рациональность использования методов

направленной селекции и индуцированного мутагенеза для получения штаммов-продуцентов эргоалкалоидов в сапрофитной культуре.

В разделе «Объекты и методы исследования» приведены сведения об объекте изучения, о методах и приборах, используемых в экспериментах.

Глава 3 посвящена исследования морфофизиологических и биохимических характеристик гриба Claviceps purpurea штамма ВКМР-3602Д в условиях сапрофитного культивирования.

В четвертой главе представлены данные по экзогенной регуляции биосинтетической активности Claviceps purpurea штамма ВКМР-3602Д ингибиторами и регуляторами роста.

Пятая глава содержит сведения по мутагенезу и направленной селекции исходной культуры.

ОСНОВНОЕ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ 1.0бъекты и методы исследования

Объектом исследования служила мицелиальная форма гриба спорыньи Claviceps purpurea (Fries) Tulasne, полученная из склероциев селекционного эргокриптинового штамма ВКМР-3602Д и вариантные линии на ее основе.

Для проведения исследования были использованы склероции спорыньи с известным содержанием целевого алкалоида (аир изомеров эргокриптина не менее 0,7%). Из половинок склероциев получали мицелиальную культуру на поверхности агаризованной питательной среды, в состав которой входили: сахароза - 100,0 г/л, КН2Р04- 0,25 г/л, FeS04-7H20 - 0,02 г /л, MgS04 • 7 Н20 - 0,25 г/л, ZnS04-7H20 - 0,015 г/л, КС1 - 0,125 г/л, Ca(N03)2 - 1,0 г/л, аспарагин - 10,0 г/л, дрожжевой экстракт - 0,1г/л, агар - 18,0 г/л. Культивирование проводили в течение 30 суток при температуре (24± 1) С0. В активном состоянии культура поддерживалась методом периодических пересевов.

Для получения глубинной культуры гриба спорыньи использовали жидкую питательную среду следующего состава: сахароза -100,0 г/л, лимонная кислота - 10,0 г/л, КН2Р04- 0,5 г/л, FeS04-7H20 - 0,007 г /л, MgS04 -7 Н20 - 0,5 г/л, ZnS04-7H20 - 0,006 г/л, КС1 - 0,125 г/л, Ca(N03)2- 0,5 г/л, дрожжевой экстракт - 0,1 г/л, NH4N03 - 1,0 г/л, рН питательной среды 5,2. В каждую колбу

объемом 500 мл, при заполнении стерильной средой в соотношении 1/5 (100 мл) помещали аликвоту суспензии конидий из расчета 1 мл суспензии конидий, плотностью 3,5-106шт/мл, на 100 мл питательной среды.

Культивирование проводили при температуре 26±1 °С на подвесной качалке с эллиптической траекторией качания, совершающей 98-100 об/мин.

Для полной характеристики физиологического состояния культуры были использованы величины абсолютной и логарифмической скорости роста, а также продуктивности и удельной продуктивности мицелия (по воздушно-сухой массе, в г/ л питательной среды).

Морфологические исследования осуществляли визуально, при помощи бинокулярной лупы МБС-2 и светового микроскопа МББ-1. Учитывали диаметр колоний, форму и характер края колоний, цвет воздушного и субстратного мицелия.

Конидиогенез регистрировали методом микроскопии по числу конидий в мл. Подсчет конидий проводили при помощи камеры Горяева.

Для предварительной оценки присутствия производных индола алкалоидной природы использовали колориметрический метод анализа, основанный на определении суммарного содержания индольных производных после их конденсации с п-диметиламинобензальдегидом (п-ДМБА) по методу Румпеля.

Качественный контроль накопления индольных производных мицеллиальной культурой осуществляли методом тонкослойной хроматографии (ТСХ) на пластинках «MERK» размером 20 х 20 см.

Алкалоидную природу производных индола подтверждали посредством ЯМР- и УФ-спектроскопии.

Для качественного анализа аминокислот, содержащихся в мицелии гриба, был использован метод тонкослойной хроматографии (ТСХ) в системе растворителей бутанол : уксусная кислота : вода (4 : 1 : 1 об.), с последующей обработкой пластинок раствором нингидрина.

Количественное содержание аминокислот определяли по методу ВЭЖХ по методике Gratzfeld-Huesgen для ВЭЖХ хроматографа Agillent 1100 Series.

Исследовали влияние широкого диапазона доз мутагенных факторов физической (УФ облучение) и химической (колхицин) природы.

УФ облучение проводили с использованием ламп БУВ 15 с номинальным бактерицидным потоком, интенсивностью 1,5 бакт, путем обработки конидий.

Обработку колхицином проводили посредством высева конидий на чашки Петри с агаризованной питательной средой, содержащей в своем составе колхицин. В работе использовали колхицин «Sigma» (США).

Выживаемость культуры оценивали подсчетом колоний на чашках Петри.

В качестве селективных агентов использовали 5-метил-0,Ь-триптофан (5-МТ) («Serva», Германия) - аналог аминокислоты триптофана и сумму а-,(3-эргокриптинов оснований (ГУП ПЭЗ ВИЛАР, Москва) - конечный продукт биосинтеза.

Регуляторы роста использовали в форме коммерческих препаратов: Гиббереллин (Россия), хлорхолинхлорид (ССС) и 2-хлорэтилфосфоновая кислота (2-ХЭФК, компазан, этефон) («Биттерсрельд», Германия). Концентрацию регуляторов роста рассчитывали по действующему веществу.

Наночастицы получали методом анионной полимеризации бутилцианокрилата с последующим включением в состав полимеризационной среды фиторегулятора. Степень включения активного вещества в наночастицы составляла до 90%.

Все работы с мицелиальной культурой проводили в стерильных условиях.

Планирование экспериментов осуществляли с использованием методов постановки факторных экспериментов. Эксперименты ставили в 3-5 повторностях. Контрольный вариант по тексту обозначали как «чистая культура». При статистическом анализе опытов использовали дисперсионный, регрессионный и корреляционный методы оценки (определяли средние значения, стандартные отклонения ошибки средних, критерии Стьюдента, Фишера, коэффициенты регрессии и корреляции).

2. Морфофизиологические характеристики сапрофитной культуры гриба спорыньи эргокриптинового штамма

Морфофизиологическая характеристика гриба спорыньи в условиях глубинного культивирования

В условиях глубинного культивирования между инокуляцией и началом роста мицелия отмечался заметный лаг-период. Активный

рост культуры начинался с 3 суток культивирования, достигая своего максимального значения по массе на 28 сутки. В последующие сутки ростовые процессы приостанавливались.

Начало конидиогенеза отмечали на 12 сутки культивирования. При этом максимум конидидиообразования наблюдался на 24 сутки что соответствовало снижению скорости роста культуры (рис.1).

7

5 6

S

2 3

га

и

о О я ^

2

5 1

х

6 О

сутки роста

Рис.1. Динамика роста и показатели конидиогенеза мицелия гриба Скуюерэ ригригеа в условиях глубинного культивирования

Для более полной характеристики мицелиальной культуры было решено исследовать содержание основных аминокислот, принимающих участие в синтезе эргоалкалоидов (табл. 1).

5 Таблица 1

Содержание аминокислот-предшественников синтеза эргоалкалоидов

в мицелиальной культуре С. ригригеа в условиях глубинного __культивирования__

Исследуемый образец Содержание аминокислот, мг/г

Триптофан Метионин Пролин Валин Лейцин Изо-лейцин Фенилаланин

«чистая культура» 0,30 ± 6'104 0,59± 2-104 1,09± 6-Ю"4 0,14 ± 5-Ю"4 0,14 ± 6-10Ч 0,16 ± 7-10"4 0,32 ± 2-10"4

Было установлено, что количественным преимуществом обладали следующие аминокислоты - пролин, метионин, триптофан и фенилаланин. Однако тест на содержание индольных производных

показал, что, несмотря на присутствие в мицелии гриба необходимых аминокислот, синтез данной группы веществ не инициировался. Было сделано предположение, что уровень синтезируемых аминокислот не достаточен для реализации биосинтетического потенциала продуцирования эргоалкалоидов. Было решено повысить продуктивность мицелия посредством экзогенной регуляции.

З.Экзогенная регуляция биосннтетической активности С. purpurea регуляторами роста

Изучение экзогенного воздействия гормоноподобных эффекторов

ретардантного действия на рост, морфологию и биосинтетическую активность сапрофитной культуры С. purpurea эргокриптинового штамма Установлено, что эффекторы ретардантного действия ССС и 2-ХЭФК оказывали значительное тормозящее влияние на накопление биомассы на всех стадиях роста культуры (рис.2) и ингибировали процесс конидиогенеза.

7 -,

Контроль ССС 1,5 г/л 2-ХЭФК 0,5 г/л

["□7 ■ 14 028

Рис.2 - Влияние гормоноподобных эффекторов ретардантного действия на накопление биомассы на 7 14 и 28 сутки культивирования

В ответ на введение в питательную среду высоких концентраций изучаемых эффекторов наблюдалось существенное увеличение

биосинтеза аминокислот, предшественников биосинтеза

эргоалкалоидов (рис.3).

О ССС-0,3 ССС-1,5 ССС-3,0 2-ХЭФК-0.1 2-ХЭФК-0.5 2-ХЭФК-1,0

регулятор роста и его концентрация в питательной среде, г/л

□ триптофан ■ метионин ЕЗ пролин ,

Рис.3. Влияние ССС и 2-ХЭФК на образование аминокислот мицелиальной культурой С. purpurea в условиях глубинного культивирования

При увеличении биосинтеза эндогенных аминокислот, вызванного повышением концентрации ретардантов в питательном субстрате, наступала инициация синтеза индольных соединений (рис. 4). Инициация синтеза индольных производных наступала при добавлении в состав питательной среды ССС в концентрации 0,6 г/л и 2-ХЭФК в концентрации 0,5 г/л.

0,25 -г

к

3

I 0,2-

и

м о

С.

В ^ 0,15 -3 я S ч

5 о

6 I 0,1 -

0 а в

1 0,05 -

Л *

о §

U

О 4

0,03 0,05 0,1 0,5 0,6 1 1,5 3 концентрация ретардантоа, г/л

[иссс Q2-хэфк

Рис.4. Влияние концентрации ингибиторов роста ретардантного действия на суммарное содержание индольных производных в мицелии гриба

Для обоих ингибиторов роста, инициация синтеза индольных производных происходила при достаточно высоком, практически равном уровне биосинтеза в мицелии основных аминокислот. С увеличением содержания в мицелии эндогенных аминокислот происходило увеличение содержания суммы сложных производных индола. Проведенный анализ количественного содержания эндогенных аминокислот и их соотношений показал, что на активацию биосинтетических процессов в мицелии большее влияние оказывало не соотношение, а их количественное содержание.

Изучение экзогенного воздействия гибберелловой кислоты на рост, морфологию и биосинтетическую активность сапрофитной

культуры С. purpurea эргокриптинового штамма Экзогенное введение ГК в питательный субстрат позволяло значительно интенсифицировать процессы роста культуры. При использовании ГК в диапазоне концентраций 1-50 мг/л питательной среды, стационарная фаза роста наступала уже на 21 сутки культивирования. Период нарастания культуры при этом сокращался на 7 суток (табл. 2).

Таблица 2

Влияние ГК на нарастание биомассы мицелиальной культуры С. purpurea в условиях глубинного культивирования_

Сутки роста Масса сухого мицелия, г/л

Концентрация ГК в питательном субстрате, мг/л

0 (контроль) 1 10 50 100

7 2,21±0,16 4,16±0,01 3,64±0,01 3,49±0,01 начало роста

14 4,32±0,66 13,92±0,04 13,26±0,01 12,71±0,07 2,18±0,03

21 5,12±0,32 14,16±0,01 16,71 ±0,03 18,24±0,02 7,40±0,13

28 6,19±0,24 14,22±0,02 16,79±0,02 18,31 ±0,02 16,42±0,05

ГК в концентрации 50 мг/л оказывала положительное влияние на биосинтез аминокислот-предшественников и производных индола. При этом суммарное содержание сложных производных индола возрастало до 0,2% от сухой массы мицелия (табл. 3).

Таблица 3

Суммарное содержание индольных производных в мицелии С. purpurea, выращенном в условиях глубинного культивирования на _ средах с различным содержанием ГК_

Суммарное содержание индольных производных, % Концентрация ГК в питательной среде, мг/л

0 1 10 50 100

0 0,091±0 0,128±0,013 0,202±0,014 0,123±0,013

Изучение совместного влияния гормоноподобных эффекторов ретардантного действия и стимулятора роста гибберелповой кислоты на рост и биосинтетическую активность сапрофитной культуры С. purpurea эргокриптинового штамма Изучали влияние синтетических ингибиторов роста ретардантного действия ССС и 2-ХЭФК при их совместном присутствии с ГК. В эксперименте использовали 2 концентрации ГК 1 и 50 мг/л. Ретарданты вводили в состав питательных сред на 6-е сутки культивирования, параллельно началу активного конидиогенеза в концентрациях ССС - 1,5 и 2-ХЭФК - 0,5 г/л. Анализ проводили на 21 сутки культивирования, что соответствовало началу фазы стационарного роста культуры на среде с ГК.

Положительное действие изучаемых ретардантов отмечалось на

фоне концентрации ГК 50 мг/л. При этом более выраженным оказалось действие 2-ХЭФК. Так, при введении ССС в концентрации 1,5 г/л суммарное содержание индольных производных возрастало на 25 %, а при введении 2-ХЭФК в концентрации 0,5 г/л на 47 % (табл. 4).

Таблица 4

Суммарное содержание индольных производных и масса сухого мицелия гриба С. purpurea при выращивании на средах, содержащих ГК и гормоноподобные эффекторы ретардантного действия в условиях глубинного культивирования

Суммар ное содержа ние шшольн ых произво дных, % Регулятор роста и его концент| эация в питательном субстрате

ССС 1,5 г/л 2-ХЭФК 0,5 г/л ГК 1 мг/л ГК 50 мг/л ГК 1мг/л ГК 50 мг/л

ССС 1,5 г/л 2-ХЭФК 0,5 г/л ССС 1,5 г/л 2-ХЭФК 0,5 г/л

0,155±0,110 ),163±0,007 0,09 U0 0,202 ±0,014 0,151 ±0,013 0,163 ± 0,007 0,189 ± 0,007 0,240 ±0,011

Масса мицелия на 21 сутки, г/л 2,02±0,13 2,49±0,21 14,16 ±0,01 18,24 ±0,02 5,99±0,10 6,22 ±0,38 7,05±0,16 8,1440,22

Установлено, что изучаемые регуляторы роста влияли на качественный состав производных индола, отмечался сдвиг алкалоидообразования в сторону клавиновых алкалоидов и изомерных форм пептидных эргоалкалоидов (табл. 5). При совместном присутствии ГК и эффекторов ретардантного действия отмечался сдвиг биосинтетической активности в сторону образования эргокриптина и эрготамина.

Следует отметить, что результаты исследования по влиянию ингибиторов роста ССС и 2-ХЭФК на биосинтетическую активность мицелия гриба спорыньи в сапрофитных условиях культивирования представлены впервые.

Исследование возможности использования биодеградируемых наносомалъных систем доставки регуляторов роста В поисковых исследованиях была обнаружена возможность повышения суммарного выхода производных индола посредством введения регуляторов роста в более низких концентрациях в комплексе с полимерными транспортными наночастицами (табл.6).

Таблица 5

Влияние регуляторов роста на качественный состав производных индола, продуцируемых гриба С. purpurea *

<я « & К К Регулятор роста и его концентрация в питательном субстрате

ССС 0,6; 1,5;3 г/л 2-ХЭФК 0,5; 1,0 г/л ГК 1; 10; 50 мг/л ГК 1мг/л ГК 50 мг/л

ССС 1,5 г/л 2-ХЭФК 0,5 г/л ССС 1,5 г/л 2-ХЭФК 0,5 г/л

1. вещество 1. вещество 1. вещество группы 1.сетоклавин 1.сетоклавин 1.сетоклавин 1.сетоклавин

ta M группы группы эргоксина 2. эрготамин 2. сумма 2. эрготамин 2. сумма

S о эргоксина эргоксина 2. эрготаминин 3.эрготаминин эргокриптининов 3.эрготаминин эргокриптининов

a 2. сетоклавин 2.р- 3. 3. сумма

Й эргокриптин предположительно эргокриптинов

о о клавиновыи

и алкалоид

*По данным ТСХ

Таблица 6

Влияние ССС, 2-ХЭФК и ПК на накопления индольных производных мицелием гриба С. purpurea в условиях ___глубинного культивирования_ __

Концентрация регуляторов роста, не связанных с транспортными наноносителями, контроль Концентрация регуляторов роста, связанных с транспортными наноносителями

ССС 2-ХЭФК ГК ССС 2-ХЭФК ГК

1,5 г/л 0,5 г/л 50 мг/л 0,3 г/л 1 1,5 г/л 0,1 г/л | 0,5 г/л 10 мг/л | 50 мг/л

Суммарное содержание индольных производных,%*

0,155 ± 0,110 0,163 ± 0,007 0,202 ± 0,014 0,304 ± 0,011 0,307 ± 0,007 0,337 ± 0,014 0,358 ± 0,014 0,243 ± 0,007 0,192 ± 0,011

При оценке суммарного содержания производных индола мицелии на 21 сутки культивирования, было обнаружено, что, п] введении в состав питательного субстрата комплексов ССС и ХЭФК с наноносителями, содержание индолопроизводш возрастало в среднем в 2 раза при снижении концентрац] эффекторов в 5 раз. При этом действие комплекса с 2-ХЭФК бы. более выражено. Эффект воздействия комплекса с ГК бь несколько ниже, содержание индольных производных в мицел! при снижении концентрации эффектора в 5 раз повышалось все на 20 %.

5.Мутагенез и направленная селекция

Определение оптимальных доз мутагенов В исследованиях по влиянию мутагенных и селективш факторов частота образования колоний очень низка, поэтому экспериментах использовали достаточно высокую плотное высева, соответствующую 3,6 х 103 конидий в 1 мл, то ее превосходящую в сто раз плотность, обеспечивающую ро единичных колоний.

Для мицелиальной культуры спорыньи наблюдался волнов( характер ростовой реакции на разные дозы мутагенных факторе Обнаружено стимулирующее (5 сек.; 0,05 мМ), ингибирующее (3 45 сек.; 0,5-2,5 мМ), сублетальное (50-55 сек.; 3-3,5 мМ) летальное (60 сек.; 4 мМ) действие УФ и колхицина соответствен] на конидиоспоры (рис. 5).

Для проведения работ по получению штамма-продуцен нами были выбраны стимулирующие (5 сек.; 0,05 мГ^ ингибирующие (30 и 40 сек.; 1,0 мМ) и сублетальные (55 сек; 3 мМ) дозы УФ интенсивностью 1,5 бакт и колхицш соответственно. Было выделено и проанализировано по 50 колони выросших из конидий, подверженных воздействию УФ колхицина в отобранных дозах. Установили, что эффективнь мутагенным фактором, позволяющим получать линии < способностью к синтезу производных индола, является только У« облучение ингибирующего и сублетального типов воздействия.

Время воздействия, сек

Концентрация колхицина, мМ

Рис. 5. Дозовые кривые по росту конидий гриба спорыньи в зависимости от времени воздействия УФ света, интенсивностью 1,5 бакт и концентрации колхицина в питательной среде, мМ

Ступенчатый мутагенез В результате работ по индуцированному мутагенезу мицелиальной культуры С. purpurea было получено 3 линии, обладающие способностью к синтезу производных индола в глубинной культуре и устойчивых к пассированию на агаризованной питательной среде. С отобранными линиями проводили работы по ступенчатому мутагенезу по схеме (рис.6).

В ходе работ по ступенчатому мутагенезу было в общей сложности проанализировано 360 колоний. В результате было получено четыре вариантных линии, отличавшихся от исходной культуры по морфологическим характеристикам, особенностям роста и у которых можно было предположить наличие биосинтеза минорных количеств эргоалкалоидов в поверхностной и глубинной культурах. С отобранными линиями проводили работы по направленной селекции.

Рис.6. Схема работ по ступенчатому мутагенезу

Направленная селекция В качестве селективных агентов использовали токсичный аналог аминокислоты триптофана - 5метил триптофан (5-МТ) и алкалоид - эргокриптин в форме основания. Работы осуществляли по схеме рис.7.

Впервые было использовано сочетание методов селективных сред и индуцированного мутагенеза для получения продуктивных вариантов С. purpurea. В результате было получено 6 линий, растущих в глубинной культуре, обладающих способностью к синтезу индольных производных, и устойчивых к систематическим пересевам на стандартной агаризованной питательной среде. Линия Е24 была отобрана как наиболее продуктивная (табл.7).

Рис.7. Схема работ по направленной селекции

Таблица 7

Характеристика вариантных линий сапрофитной культуры спорыньи, полученных посредством сочетания методов направленной селекции и ____индуцированного мутагенеза_

Вариант Суммарное содержание производных индола в мицелии, % Наличие эргоалкалоидов в мицелии гриба*

ЕЗ 0,192 сумма а-,Р-эргокриптининов

Е8 0,137 эрготамин

Е13 0,137 Р-эргокриптин

Е21 0,240 сумма а-,р-эргокриптининов

Е24 0,256 а) эрготаминин б) Р-эргокриптин

Е28 0,240 а) эрготаминин б) сумма а-,р-эргокриптининов

*По результатам ТСХ

Культура спорыньи Е24 отличалась от исходной культуры по ростовым, морфологическим, и биохимическим показателям. Суммарное содержание производных индола в мицелии линии Е24 составило 0,256%. Анализ методом ТСХ показал наличие в мицелии пептидных эргоалкалоидов р-эргокриптина и эрготаминина.

С полученной сапрофитной линией Е24 было проведено исследование по экзогенной регуляции биосинтеза, посредством введения ГК в наиболее эффективной концентрации, отобранной в предыдущих исследованиях. При таком способе выращивания макисмальный уровень мицелиальной массы возрос на 70%, а суммарное содержание производных индола в мицелии гриба превосходило на 18,7% данный показатель для линии Е24, выращенной на стандартной питательной среде. Качественный анализ показал наличие в мицелии гриба суммы <х-,{3-эргокриптинов и их изомеров.

Алкалоидная природа соединений индольной природы, выделенных из мицелия линии Е24 была подтверждена методами

Рис.8. 'Н-ЯМР-спектр извлечения из мицелия гриба спорыньи вариантной линии Е24, выращенной в условиях глубинного культивирования на питательной среде с добавлением 50 мг/л ГК в СОС13.

Синглет в области 9,7-9,9 м.д. относится к сигналу протона NH-пептидной группировки эргоалкалоидов. Синглет в области около 8,5 м.д. относится к протону NH-группы индольной части молекулы. Синглет около 6,9 м.д. соответствует протону С-2 положения индольного фрагмента молекулы, дублет в области 6,316,39 м.д. соответствует протону С9 лизергиновой части молекулы эргоалкалоида. Триплет в области 4,8 м.д. относится к протону С5' положения пептидной части молекулы.

VriMt

tn\(rym*ni &WI4) Numb«!- ПО307563« 1.0

ол

0.6

п

•а <

0.4 0.2 0.0

200 300 400 500 600 700 800 VYavelength (лт)

Рис. 9. УФ-спектр экстрактивных веществ из мицелия гриба спорыньи вариантной линии Е24, выращенной в условиях глубинного культивирования на питательной среде с добавлением 50 мг/л ГК в 50 % метаноле.

УФ-спектр эфирного извлечения из мицелия имел максимум поглощения при >ь=313 нм и минимум около Х=280 нм, что соответствует минимумам и максимумам поглощения, характерным для лизергиновой кислоты и ее производных -пептидных эргоалкалоидов.

ВЫВОДЫ

1. На основе изучения физиологических и биохимических особенностей сапрофитной культуры гриба спорыньи в условиях in vitro изучена возможность мобилизации адаптивного потенциала продуктивности в пределах генетической нормы реакции рострегулирующими факторами. Отработан подход к получению генетически измененных линий, обладающих способностью к биосинтезу эргоалкалоидов, с использованием методов направленной селекции и индуцированного мутагенеза.

2. Отработаны способы экзогенной регуляции ростовых и биосинтетических характеристик мицелиальной культуры гриба спорыньи. Регуляторы роста ССС, 2-ХЭФК и ГК в концентрациях 0,6 г/л, 0,5 г/л и 50 мг/л, соответственно, стимулируют синтез пептидных и клавиновых эргоалкалоидов до уровня 0,2% от массы мицелия.

3. Установлено, что совместное влияние регуляторов роста ГК и 2-ХЭФК на процессы вторичного метаболизма отличалось сдвигом биосинтетической активности в сторону образования алкалоида эргокриптина, а ГК и ССС в сторону образования алкалоида эрготамина.

4. Наиболее эффективным индуктором мутагенеза является УФ-облучение интенсивностью 1,5 бакт на протяжении 30, 40 и 55 секунд. В качестве селективных агентов целесообразно использовать 5-МТ и конечный продукт метаболизма - сумму оснований а-,Р-эргокриптинов.

5. Сочетание методов направленной селекции и индуцированного мутагенеза позволило выделить клеточные линии с искомыми изменениями биосинтетического потенциала сапрофитной культуры гриба С. purpurea. Получен штамм сапрофитной культуры С. purpurea - Е24-09 ВИЛАР, характеризующийся нарастанием мицелия - 6-7 г/л сухой массы; содержанием производных индола - 0,256% от сухой массы мицелия, присутствием алкалоидов (З-эргокриптина и эрготаминина.

6. По результатам работы разработана инструкция по методам селекции сапрофитных штаммов спорыньи пурпуровой -продуцентов эргоалкалоидов И 04868244-007-2009 ВИЛАР; составлен паспорт на сапрофитный штамм Claviceps purpurea (Fr.) Tul. продуцент эргокриптина №04868244-005-2009-Е24-09 ВИЛАР.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Получение конидиального материала спорыньи для проведения работ по воздействию мутагенными факторами / А.Г. Барсегян, Т.А. Савина // Конференции « Здоровье и образование в 21 веке»: Тезисы докладов. М, 2006. -С. 310.

2. Селекция вариантных линий Claviceps purpurea эрготаминового штамма со способностью к биосинтезу индольных производных в сапрофитной культуре / А.Г. Барсегян, Т.А. Савина, Р.И. Бобылева // Сборник научных трудов «Нетрадиционные ресурсы, инновационные технологии и продукты». - 2007. - Вып.16. - С. 211-215.

3. Зависимость выживаемости конидий штамма Claviceps purpurea продуцента эргокриптина от различных концентраций 5- метил-DL-триптофана / А.Г. Барсегян, Т.А. Савина, Р.И. Бобылева // XIV Российский национальный конгресс «Человек и лекарство»: Сборник материалов конгресса. М, 16-20 апреля 2007. С. 798-799.

4. Воздействие мутагенов на конидии гриба Claviceps purpurea эргокриптинового штамма / Барсегян А.Г. // Сборник научных трудов «Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции». - Пятигорск, 2007. - Выпуск 62. -С.436-438.

5. Изучение экзогенного воздействия гормоноподобных эффекторов ретардантного действия на биоситтетическую активность сапрофитной культуры Claviceps purpurea (Fr) Tul. эргокриптинового штамма / А.Г. Барсегян, Т.А. Савина, Р.И. Бобылева // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. - 2009. - №1. С. 15-18.

Подписано в печать: 29.10.2009

Заказ № 2863 Тираж -100 экз. Печать трафаретная. Типография «11-й ФОРМАТ» ИНН 7726330900 115230, Москва, Варшавское ш., 36 (499) 788-78-56 www.autoreferat.ru

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Барсегян, Антон Геворкбекович

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Краткая характеристика алкалоидов

1.2. Эргоалкалоиды

1.2.1. Классификация и химическое строение эргоалкалоидов

1.2.2. Физико-химические свойства эргоалкалоидов

1.3. Биологическая активность эргоалкалоидов 19 1.3.1. Применение эргоалкалоидов в медицине

1.4. Распространенность эргоалкалоидов в природе

1.5. Биосинтез эргоалкалоидов 24 L .6. Источники и способы получения эргоалкалоидов

1.6.1. Паразитарная культура спорыньи как источник для получения эргоалкалоидов

1.6.2. Получение эргоалкалоидов посредством полного или частичного химического синтеза

1.6.3. Сапрофитная культура спорыньи как источник для получения эргоалкалоидов 36 1.7. Получение штаммов-продуцентов эргоалкалоидов

1.7.1. Экзогенная регуляция биосинтеза эргоалкалоидов регуляторами роста

1.7.2. Регуляция биосинтеза эргоалкалоидов на уровне предшественников

1.7.3. Регуляция биосинтеза эргоалкалоидов по принципу обратной связи

1.7.4.Получение штаммов-продуцентов эргоалкалоидов посредством индуцированного мутагенеза

ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 47 2.1 Получение мицелиально растущей культуры гриба спорыньи эргокриптинового штамма

2.2.Морфофизиологические исследования

2.3. Биохимические исследования

2.4. Мутагенез

2.5. Селективные агенты

2.6. Фиторегуляторы

2.7. Условия асептики

2.8. Планирование экспериментов и методы статистической обработки данных

ГЛАВА 3. МОРФОФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ САПРОФИТНОЙ КУЛЬТУРЫ ГРИБА СПОРЫНЬИ ЭРГОКРИПТИНОВОГО ШТАММА ПРИ РОСТЕ НА ТВЕРДОМ И ЖИДКОМ ПИТАТЕЛЬНОМ СУБСТРАТЕ

3.1. Морфофизиологическая характеристика гриба спорыньи в сапрофитных условиях культивирования на твердом питательном субстрате

3.2. Морфофизиологическая характеристика гриба спорыньи в условиях глубинного культивирования

3.3. Биохимическая характеристика гриба спорыньи в сапрофитных условиях культивирования

3.3.1. Определение содержания пептидных эргоалкалоидов в мицеллиальной культуре С. purpurea

3.3.2. Определение содержания предшественников синтеза эргоалкалоидов — аминокислот в мицеллиальной культуре С. purpurea

ГЛАВА 4 ЭКЗОГЕННАЯ РЕГУЛЯЦИЯ БИОСИНТЕТИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ С. PURPUREA РЕГУЛЯТОРАМИ РОСТА

4.1. Изучение экзогенного воздействия гормоноподобных эффекторов ретардантного действия на рост, морфологию и биосинтетическую активность сапрофитной культуры С. purpurea

4.2. Изучение экзогенного воздействия гибберелловой кислоты на рост, морфологию и биосинтетическую активность сапрофитной культуры С. purpurea

4.3. Изучение совместного влияния гормоноподобных эффекторов ретардантного действия и стимулятора роста - гибберелловой кислоты на рост и биосинтетическую активность сапрофитной культуры С. purpurea

4.4. Исследование возможности использования биодеградируемых наносомальных систем доставки регуляторов роста

ГЛАВА 5 МУТАГЕНЕЗ И НАПРАВЛЕННАЯ СЕЛЕКЦИЯ

5.1. Отработка плотности конидий исходной культуры для проведения селекционных работ

5.2. Определение оптимальных доз мутагенов

5.2.1. Выбор эффективных доз мутагенов по влиянию на рост и морфологические характеристики С. purpurea

5.2.2. Выбор эффективных доз мутагенов по влиянию на биосинтез индольных производных в сапрофитной культуре С. purpurea

5.3. Индуцированный мутагенез УФ облучением интенсивностью

1,5 бакт

5.3.1. Характеристика вариантных линий С. purpurea, полученных в результате ингибирующего воздействия (30 и 40 сек.) УФ облучения интенсивностью 1,5 бакт

5.3.2. Характеристика вариантных линий С. purpurea, полученных в результате сублетального воздействия (55 сек.) УФ облучения интенсивностью 1,5 бакт

5.3.3.Ступенчатый мутагенез

5.4. Направленная селекция 113 5.4.1. Селекция с использованием 5-МТ в качестве селективного фактора

5.4.2. Селекция с использованием эргокриптина в качестве селективного фактора

5.5. Исследование ростовых, морфологических и биосинтетических характеристик гриба С. purpurea вариантной линии Е24 в условиях глубинного культивирования на питательной среде с оптимальной концентрацией ГК

Введение Диссертация по биологии, на тему "Разработка методов селекции и повышения продуктивности штаммов-продуцентов эргоалкалоидов в сапрофитных условиях культивирования"

Актуальность темы. Вторичный метаболизм сапрофитно культивируемых микроорганизмов, в том числе мицелиальных грибов традиционно привлекает внимание исследователей, что обусловлено перспективностью промышленного использования их с целью получения большого разнообразия биологически активных веществ. К таким соединениям принадлежат различные алкалоиды, терпеновые соединения, полифенолы, гликозиды, специфичные пептиды и другие.

Одной из самых изученных и распространенных групп алкалоидов, продуцируемых мицелиальными грибами, являются эргоалкалоиды, или алкалоиды спорыньи. Свое название они получили по тривиальному наименованию своих основных продуцентов - грибов-паразитов злаков из рода Claviceps (ergot, спорынья).

В настоящее время эргоалкалоиды занимают важное место в фармацевтической промышленности, так как используются в качестве фармакологических средств разнообразного направления и механизма действия. Считается, что большинство эффектов эргоалкалоидов объясняется их взаимодействием с рецепторами нейромедиаторов адреналина, норадреналина, дофамина и серотонина.

На сегодняшний день в мире выпускается более 80 лекарственных средств на основе эргоалкалоидов. Применяются эргоалкалоиды как индивидуально, так и в составе многочисленных комбинированных лекарственных препаратов. В России (ВИЛАР) на основе эргоалкалоидов разработаны препараты Абергин, Новокристин, Беллатаминал и Эргометрина малеат различного спектра действия.

Основным источником для получения эргоалкалоидов является спорынья пурпуровая (Claviceps purpurea (Fr.) Tul.). В промышленном производстве гриб спорыньи используется как паразитарная культура и выращивается на посевах ржи. Данный способ имеет ряд существенных недостатков, к примеру, получение только одного урожая склероциев в год и значительная зависимость от погодных условий.

В настоящее время для получения эргоалкалоидов активно ведутся работы по изучению использования сапрофитной культуры гриба спорыньи.

Получение эргоалкалоидов, основанное на глубинном культивировании сапрофитных штаммов, имеет ряд преимуществ. Данный способ позволяет создать экологически чистое безотходное производство, получать стандартное сырье независимо от времени года, сократить время выращивания сапрофитной культуры, снизить производственные затраты и так далее.

Несмотря на многочисленность ранее проведенных исследований, эффективная технология получения пептидных эргоалкалоидов из сапрофитных культур отсутствует, или охраняется патентами, являясь собственностью коммерческих организаций. В Российской Федерации на сегодняшний день нет промышленных штаммов-продуцентов эргоалкалоидов в сапрофитных условиях культивирования.

Учитывая фармакологическую ценность эргоалкалоидов, разработка путей биотехнологического получения алкалоидов спорыньи является важным фактором обеспечения сырьем производства большой группы препаратов в фармацевтической промышленности.

Цель и задачи работы. Целью диссертационной работы являлось изучение гриба Claviceps purpurea (Fr.) Tul. в условиях сапрофитного культивирования, разработка методов селекции штаммов-продуцентов эргоалкалоидов и приемов экзогенной регуляции их продуктивности.

Для достижения поставленной цели решались следующие задачи:

1. Получить мицелиальную культуру спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма ВКМР-3602Д;

2. Изучить морфологические признаки и биохимические характеристики мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

3. Исследовать возможность экзогенной регуляции гормональными эффекторами ростовых и биосинтетических процессов у мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

4. Выбрать эффективные концентрации регуляторов роста для повышения реализации биосинтетического потенциала продуцирования мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

5. Изучить влияние индуцированного мутагенеза физических (УФ облучение) и химических (колхицин) мутагенных факторов на морфологические признаки, ростовые и биохимические характеристики мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

6. Изучить влияние селективных факторов на морфологические признаки и биохимические характеристики мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

7. Изучить возможность сочетания методов направленной селекции и индуцированного мутагенеза для получения штамма гриба спорыньи с измененными морфологическими и биохимическими характеристиками, на примере мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

8. Дать оценку морфологических и биохимических характеристик модифицированных линий мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

9. Использовать экзогенное воздействие регуляторов роста в эффективных концентрациях для повышения алкалоидообразования у модифицированных линий мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма;

10. Разработать инструкцию по методам селекции сапрофитных штаммов спорыньи пурпуровой — продуцентов эргоалкалоидов.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Способы экзогенного управления ростовыми и биосинтетическими характеристиками сапрофитного штамма гриба спорыньи регуляторами роста стимулирующего и ретардантного действия;

2. Эффективные дозы воздействия индукторами мутагенеза и оптимальная плотность конидий гриба спорыньи для получения вариантных линий;

3. Селективные факторы и их концентрации, обеспечивающие отбор линий с повышенной биосинтетической активностью;

4. Сочетание методов направленной селекции и индуцированного мутагенеза для получения сапрофитного штамма гриба спорыньи с измененными морфологическими и биохимическими характеристиками;

5. Инструкция по методам селекции сапрофитных штаммов спорыньи пурпуровой - продуцентов эргоалкалоидов И 04868244-007-2009 ВИЛАР.

Научная новизна. Изучена возможность максимальной реализации адаптивного потенциала продуктивности эргоалкалоидов в пределах генетической , нормы реакции за счет воздействия рострегулирующими факторами на мицелий гриба спорыньи в условиях глубинного культивирования.

Для увеличения влияния на биосинтетическую активность впервые использовали фиторегуляторы, ассоциированные с транспортными биодеградируемыми наночастицами из полибутилцианоакрилата.

В работе впервые исследованы возможности сочетания методов направленной селекции и индуцированного мутагенеза с целью получения генетически измененных линий мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма ВКМР-3602Д, обладающих способностью к биосинтезу эргоалкалоидов в условиях in vitro.

Предложенная методология отбора вариантных линий, и экзогенной регуляции ростовых и биосинтетических процессов гриба С. purpurea позволяют получать эргоалкалоиды при глубинном способе культивирования.

Получен сапрофитный штамм С. purpurea - продуцент эргокриптина, зарегистрированный под №04868244-005-2009-Е24-09 ВИЛАР.

Практическая значимость. Разработана инструкция по методам селекции сапрофитных штаммов спорыньи пурпуровой — продуцентов эргоалкалоидов. Предложенная методология может быть адаптирована для получения генетически измененных линий других сапрофитных микроорганизмов.

Разработан способ реализации адаптивного потенциала продуктивности эргоалкалоидов в пределах генетической нормы реакции за счет воздействия рострегулирующими факторами на мицелий гриба спорыньи в условиях глубинного культивирования.

Получен сапрофитный штамм С. purpurea - продуцент эргокриптина, зарегистрированный под №04868244-005-2009-Е24-09 ВИЛАР, перспективный для проведения дальнейших работ по селекции и повышению продуктивности.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на 4-й Российской научно-практической конференции «Актуальные проблемы инноваций с нетрадиционными природными ресурсами и создания функциональных продуктов» (Москва 2007), Симпозиуме «Биотехнология и медицина в 21 веке» в рамках Международного медицинского Форума «Индустрия здоровья» (Москва 2008), VI Всероссийской научной конференции «Биомедицинские технологии» (Москва 2008).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 5 научных работ.

Связь задач исследований с проблемным планом НИР.

Диссертационная работа выполнена в соответствии с «Программой фундаментальных исследований по научному обеспечению развитая агропромышленного комплекса Российской Федерации» на 2001-2005 и 20062010 гг., а также согласно тематическому плану теоретических и прикладных научно-исследовательских работ ВИЛАР.

Объем и структура диссертации. Диссертационная работа изложена на 172 страницах печатного текста, состоит из введения, обзора литературы (глава 1), четырех глав экспериментальной части, выводов, списка литературы, включающего 171 источников, в том числе 98 иностранных, приложений. Работа содержит 35 рисунков и 52 таблицы.

Заключение Диссертация по теме "Биотехнология", Барсегян, Антон Геворкбекович

ВЫВОДЫ

1. На основе изучения физиологических и биохимических особенностей сапрофитной культуры гриба спорыньи в условиях in vitro изучена возможность мобилизации адаптивного потенциала продуктивности в пределах генетической нормы реакции рострегулирующими факторами. Отработан подход к получению генетически измененных линий, обладающих способностью к биосинтезу эргоалкалоидов, с использованием методов направленной селекции и индуцированного мутагенеза.

2. Отработаны способы экзогенной регуляции ростовых и биосинтетических характеристик мицелиальной культуры гриба спорыньи. Регуляторы роста ССС, 2-ХЭФК и ГК в концентрациях 0,6 г/л, 0,5 г/л и 50 мг/л, соответственно, стимулируют синтез пептидных и клавиновых эргоалкалоидов до уровня 0,2% от массы мицелия.

3. Установлено, что совместное влияние регуляторов роста ГК и 2-ХЭФК на процессы вторичного метаболизма отличалось сдвигом биосинтетической активности в сторону образования алкалоида эргокриптина, а ГК и ССС в сторону образования алкалоида эрготамина.

4. Наиболее эффективным индуктором мутагенеза является УФ-облучение интенсивностью 1,5 бакт на протяжении 30, 40 и 55 секунд. В качестве селективных агентов целесообразно использовать 5-МТ и конечный продукт метаболизма - сумму оснований а-,Р-эргокриптинов.

5. Сочетание методов направленной селекции и индуцированного мутагенеза позволило выделить клеточные линии с искомыми изменениями биосинтетического потенциала сапрофитной культуры гриба С. purpurea. Получен штамм сапрофитной культуры С. purpurea — Е24-09 ВИЛАР, характеризующийся нарастанием мицелия — 6-7 г/л сухой массы; содержанием производных индола — 0,256% от сухой массы мицелия, присутствием алкалоидов Р-эргокриптина и эрготаминина.

6. По результатам работы разработана инструкция по методам селекции сапрофитных штаммов спорыньи пурпуровой — продуцентов эргоалкалоидов И 04868244-007-2009 ВИЛАР; составлен паспорт на сапрофитный штамм Claviceps purpurea (Fr.) Tul. продуцент эргокриптина №04868244-005-2009-Е24-09 ВИЛАР.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Получение конидиального материала спорыньи для проведения работ по воздействию мутагенными факторами / А.Г. Барсегян, Т.А. Савина // Конференции « Здоровье и образование в 21 веке»: Тезисы докладов. М., 2006. -С. 310.

2. Селекция вариантных линий Claviceps purpurea эрготаминового штамма со способностью к биосинтезу индольных производных в сапрофитной культуре / А.Г. Барсегян, Т.А. Савина, Р.И. Бобылева // Сборник научных трудов «Нетрадиционные ресурсы, инновационные технологии и продукты». - 2007. -Вып.16. - С. 211-215.

3. Зависимость выживаемости конидий штамма Claviceps purpurea продуцента эргокриптина от различных концентраций 5- метил-DL-триптофана / А.Г. Барсегян, Т.А. Савина, Р.И. Бобылева //XIV Российский национальный конгресс «Человек и лекарство»: Сборник материалов конгресса. М., 16-20 апреля 2007. С. 798-799.

4. Воздействие мутагенов на конидии гриба Claviceps purpurea эргокриптинового штамма / Барсегян А.Г. // Сборник научных трудов «Разработка, исследование и маркетинг новой фармацевтической продукции». -Пятигорск, 2007. - Выпуск 62. - С.436-438.

5. Изучение экзогенного воздействия гормоноподобных эффекторов ретардантного действия на биоситтетическую активность сапрофитной культуры Claviceps purpurea (Fr) Tul. эргокриптинового штамма / А.Г. Барсегян, Т.А. Савина, Р.И. Бобылева // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. — 2009. - №1. С. 15-18.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В настоящее время основным промышленным источником для получения эргоалкалоидов является паразитарная культура спорыньи. Нами была получена мицелиальная культура спорыньи штамма BKMF-3602 Д, растущая в условиях поверхностного и глубинного культивирования. Исследование биохимических характеристик полученной культуры показало, что при переходе к сапрофитным условиям культивирования штамм утрачивает способность к синтезу эргоалкалоидов. При этом сапрофитная культура гриба спорыньи синтезировала необходимые для образования эргоалкалоидов аминокислоты, с количественным преобладанием пролина, метионина, триптофана и фенилаланина. Однако синтез их протекал в объеме, недостаточном для инициации образования эргоалкалоидов.

Биохимические исследования показали необходимость активации метаболических путей изучаемой культуры. С этой целью было решено провести исследования по двум направлениям. Первый путь включал в себя экзогенную регуляцию метаболической активности гриба спорыньи посредством влияния на ростовые процессы регуляторами роста. Второй путь заключался в использовании методов индуцированного мутагенеза и направленной селекции.

В результате проведенных исследований определены возможности экзогенной регуляции ростовых и биосинтетических характеристик мицелиальной культуры спорыньи С. purpurea эргокриптинового штамма гормоноподобными эффекторами ретардантного действия ССС и 2-ХЭФК. Установлено, что ССС и 2-ХЭФК оказывали значительное тормозящее влияние на накопление биомассы на всех стадиях роста культуры и ингибировали процесс конидиогенеза. Было отмечено, что гормоноподобные эффекторы ретардантного действия способны оказывать стимулирующее влияние на активацию биосинтетических процессов в направлении синтеза первичных метаболитов - аминокислот, а также инициировать синтез производных индола, содержание которых составляло в среднем 0,18% от сухой массы мицелия, для ССС в концентрации 3,0 г/л и 2-ХЭФК 1,0 г/л.

Экзогенное введение ГК в питательный субстрат позволяло значительно интенсифицировать процессы роста культуры. При использовании ГК в диапазоне концентраций 1-50 мг/л питательной среды, стационарная фаза роста наступала уже на 21 сутки культивирования. Период нарастания культуры при этом сокращался на 7 суток. ГК, подобно регуляторам роста ретардантного действия, оказывала положительное влияние на биосинтез аминокислот-предшественников и производных индола. Наиболее выраженный эффект наблюдался при введении в состав питательного субстрата ГК в концентрации 50 мг/л, при этом суммарное содержание сложных производных индола, определяемых по методу Румпеля, возрастал до 0,2% от сухой массы мицелия.

Регуляторы роста влияли не только на количественное содержание, но и на качественный состав производных индола. Несмотря на то, что в паразитарных условиях культивирования данный штамм синтезировал преимущественно а- и Р-эргокриптин, эрготамин и эргометрин, а в сапрофитной культуре синтез эргоалкалоидов вообще не наблюдался, под влиянием регуляторов роста отмечался сдвиг алкалоидообразования в сторону клавиновых алкалоидов и изомерных форм.

Так, ССС при любом способе введения стимулировал образование сетоклавина, а при совместном введении с ГК происходило образование фармакологически значимого эргоалкалоида — эрготамина, при этом культура утрачивала способность к синтезу эргоксина, который наблюдался при индивидуальном введении ССС.

2-ХЭФК при индивидуальном введении вызывала сдвиг бисинтетического потенциала культуры в сторону образования эргоксина и эргокриптина, а при совместном введении с ГК на тонкослойной хроматограмме можно было идентифицировать также и а-эргокриптин, и изомерные формы — а-,Р-эргокриптинины. Сама ГК вызывала образование сетоклавина и изомера эрготамина - эрготаминина.

При совместном присутствии ГК и эффекторов ретардантного действия отмечался сдвиг биосинтетической активности в сторону образования фармакологически значимых соединений — эргокриптина и эрготамина, однако суммарный выход соединений индольной природы на этих средах был все же невысоким.

Также в поисковых исследованиях была обнаружена возможность повышения суммарного выхода производных индола посредством введения регуляторов роста в комплексе с полимерными транспортными наносистемами.

Следует отметить, что результаты исследования по влиянию ингибиторов роста ССС и 2-ХЭФК на биосинтетическую активность мицелия гриба спорыньи в сапрофитных условиях культивирования представлены впервые.

Для получения вариантных линий гриба спорыньи использовали два вида мутагенных факторов. Мутаген физической природы - Уф-облучение и химический мутаген - колхицин. В исследовании широкого диапазона доз мутагенных факторов обнаружили наиболее эффективные по морфологическому воздействию. Однако дальнейшие эксперименты показали неэффективность колхицина в качестве мутагена для получения продуктивных вариантов.

Посредством ступенчатого мутагенеза УФ-облучением выделили продуктивные линии, обладающие способностью к биосинтезу эргоалкалоидов в условиях глубинного культивирования. С отобранными линиями проводили работы по направленной селекции.

Впервые было использовано сочетание методов селективных сред и индуцированного мутагенеза для получения продуктивных вариантов С. purpurea. В результате была получена линия сапрофитной спорыньи, обладающая способностью к биосинтезу эргоалкалоидов. Линии было присвоено кодовое название Е24. Культура спорыньи Е24 отличалась от исходной культуры по морфологическим, ростовым и биохимическим показателям. Суммарное содержание производных индола в мицелии линии Е24 составило 0,256%. Анализ методом ТСХ показал наличие в мицелии пептидных эргоалкалоидов [3-эргокриптина и эрготаминина.

С полученной сапрофитной линией Е24 было проведено исследование по экзогенной регуляции биосинтеза посредством введения ГК в наиболее эффективной концентрации, отобранной в предыдущих исследованиях. При таком способе выращивания суммарное содержание производных индола в мицелии гриба превосходило на 18,7% данный показатель для линии Е24, выращенной на стандартной питательной среде. Качественный анализ показал наличие в мицелии гриба суммы а-,|3-эргокриптинов и их изомеров.

Алкалоидная природа соединений индольной природы, выделенных из мицелия линии Е24, была подтверждена методами УФ- и ЯМР-спектроскопии.

На основе полученных данных можно заключить, что в результате проведенных исследований был получен лабораторный штамм сапрофитной спорыньи с регистрационным названием 04868244-005-2009- Е24-09 ВИЛАР, обладающий следующими характеристиками: нарастание мицелия — 6-7 г/л сухой массы; содержание производных индола - 0,256% от сухой массы мицелия, присутствие алкалоида |3-эргокриптина и эрготаминина. Были отработаны условия культивирования, предусматривающие обязательное присутствие в питательном субстрате ГК в концентрации 50мг/л, что позволило увеличить интенсивность роста сапрофитной культуры спорыньи на 70%, повысить выход производных индола до 0,304% от сухой массы ткани с присутствием фармакологически значимых эргоалкалоидов: а-эргокриптина, [3-эргокриптина.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Барсегян, Антон Геворкбекович, Москва

1. Алипов В. И., Бескровная Н. И. Бромокриптин в акушерстве и гинекологии // Акушерство и гинекол.— 1980.— № 7.— С. 3-6.

2. Амелин А.В., Скоромец А.А., Игнатов Ю.Д. Роль серотонина и серотониновых рецепторов в патогенезе мигрени и механизмах действия антимигренозных препаратов // Журнал неврологии и психиатрии. 2000. — №7. С.55-58.

3. Баргер Г. Алкалоиды спорыньи: Пер. с нем. // Фармация и фармакология. 1937.-№7.-С. 45-52.

4. Безрукова М.В., Авальбаев A.M., Гималов Ф.Р., Шакирова Ф.М. Участие абсцизовой и гибберелловой кислот в регуляции экспрессии гена АЗП в корнях проростков пшеницы //Вестник Башкирского университета. 2001. — № 2 (I). -С. 105-107.

5. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе / Р.Г. Бутенко. -М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. 159 с.

6. Биорегуляция продуктивности растений / С.С. Шаин. — М.: Оверлей, 2005.-228 с.

7. Биотехнология продуктов микробного синтеза / A.M. Безбородов. — М.:ВО «Агропромиздат», 1991. С. 210-218.

8. Бойес-Коркис Д.М., Флосс Х.Г. Биосинтез эргоалкалоидов. Некоторые новые результаты по старой проблеме // Прикладная биохимия и микробиология. 1992. - Т.28., Вып.6. - С.844-857.

9. Васюкова Е. А., Зефирова Г. С. и др. Бромокриптин в лечении болезни Иценко-Кушинга// Сов. медицина.— 1979.— № 6.— С. 65-69.

10. Васюкова Е. А., Писарская И. В., Зефирова Г. С., Ибрагимова Г. В. Об эффективности применения парлодела при акромегалии // Клинич. медицина.— 1979.—№8.—С. 22-23.

11. Веприцкая И.Г., Бойченко Л.В., Аринбасаров М.У., Зеленкова Н.Ф., Бобкова Н.В. Получение продуцентов эргоалкалоидов методом индуцированного мутагенеза // Прикладная биохимия и микробиология. -2002. -Т. 38., №1.-С. 35-39.

12. Вторичный метаболизм у микроорганизмов, растений и животных / М. Лукнер. М.: Мир, 1979. - 548 с.

13. Генетика / М.Е. Лобашев. Издательство Ленинградского Университета, 1969.-751 с.

14. Германлиева Я., Илиева Ц. Парентерални лекарствени форми с ергоалкалоиди // Фармация, Болгария. 1988. - Т. 38, № 3. - С. 50-56., № 4. - С. 65-69.

15. Государственная фармакопея СССР, изд. 10. М.: Медицина, 1968. -1080 с.

16. Государственная фармакопея СССР, изд. 11. М.: Медицина, 1990. - Т.1. -333 с, Т.2.-397 с.

17. Грегер Д., Ерге Д. Образование производных лизергиновой кислоты в глубинной культуре Claviceps paspali Stevens et Hall: пер.с нем. // Микробиология. 1966. - Т. 35., N 4. - С. 606-610.

18. Заболотная Е.С. Алкалоиды спорыньи // Сборник научных трудов ВИЛР. М.: Медгиз, 1950. - вып. X. - С. 189-246.

19. Егоров Н.С., Олескин А.В., Самуилов В.Д. Проблемы и перспективы // Биотехнология. В 8 кн. /Под ред. Н.С. Егорова, В.Д. Самуилова. М.: Высшая школа, 1987.-Кн.1,- С. 13-45,53-58.

20. Каранова С.Л., Носов A.M., Пауков В.Н., Шамина З.Б. Продуктивность различных линий диоскореи дельтовидной // Культура клеток растений и биотехнология / Под ред. Бутенко Р.Г. М.: Наука, 1986. С. 83-85.

21. Каранова C.JL, Урманцев В.В. Селекция вариантных клеточных линий люцерны с повышенной активностью пероксидазы // Физиология растений. -1996.- Т.43., № 1. С.104-110.

22. Козловский А.Г., Аринбасаров М.У., Соловьева Т.Ф., Аданин В.М., Григоров И., Ангелов Т.И., Слокоска JI.C., Ангелова М.Б. Алкалоиды гриба Claviceps sp. ИБФМ F-401 // Прикладная биохимия и микробиология. -1980. Т. 16, № 4. С.569-572.

23. Козловский А.Г., Соловьева Т.Ф. Влияние условий культвирования на биосинтез алкалоидов Penicillium kapuscinskii // Микробиология. 1986. — Т.55., №1. - С.34-38.

24. Комарова E.JL, Шаин С.С. Идентификация селекционных штаммов спорыньи по алкалоидному составу индивидуальных склероциев // Хим.-фарм. журн. 1998. - Т.32,№8. - С. 34 - 37.

25. Комарова E.JL, Толкачев О.Н. Химия пептидных алкалоидов спорыньи.

26. Классификация и химия эргопептидов // Химико-фармацевтический журнал. 2001. - Т.35. №9. - С.37-45.

27. Комарова E.JL, Толкачев О.Н. Химия пептидных алкалоидов спорыньи.

28. Методы аналитического контроля эргоалкалоидов. // Химико-фармацевтический журнал. 2001 -Т.35., №10. - С. 18-24.

29. Краснопольская JI.M., Белицкий И.В., Федорова Г.Б., Катруха Г.С. Pleurotus djamor: способы культивирования и антимикробные свойства // Микология и фитопатология. — 2001.- Т.35., Вып.1. С.82-67.

30. Маланкина, E.JL, Гринева М.В. Биологические особенности монарды двойчатой (Monarda didyma L.) в условиях Московской области //Материалы VII междунар. конф. «Нетрадиционное растениеводство, экология и здоровье», Симферополь, 1998.-С. 144.

31. Марова Е. И., Бугрова С. А., Пронин В. С. Клиническая и биохимическая ремиссия болезни Иценко-Кушинга при лечении парлоделом // Сов. медицина.— 1978.— № 6.— С. 91-94.

32. Машковский М.Д. Лекарственные средства. М.: Новая волна, 2000. Т.1 С.: 512-513, 265-266, 244-247, 435

33. Методы паразитарного культивирования спорыньи для медицинских целей / И.А.Масалаб. — М.: Медгиз. — 39 с.

34. Мир растений. / Под ред. А. Л. Тахтаджяна. М.: Просвещение, 1991. Т. 2. - С.159-164.

35. Никифорова Т.А., Сухаревич В.И. Повышение эффективности биосинтеза лимонной кислоты при культивировании продуцента Aspergillus niger в глубинных условиях // Биотехнология. 1985. — №1. - С. 68-72.

36. Пат. Швейцария № 530374. С 07 С 1033/52, С 07 D 43/20. Stadler P., Stiitz P., Guttmann St. Neues Verfahren zur Herrstellung von Mutterkornpeptidalkaloide / Sandoz AG. Заявл. 06.05.1969, опубл. 29.12.1972.

37. Пат. Швейцария № 534683. С 07 D 43/20. Stadler P., Stiitz P. Verfahren zur Herrstellung neuer Mutterkornpeptidalkaloide / Sandoz AG. Заявл. 26.05.1970, опубл. 30.04.1973.

38. Персианинов Л. С., Пшеничникова Т. Я., Мануйлова И. А., Сотникова Е. И. Применение парлодела для лечения эндокринного бесплодия у женщин с гиперпролактиновой аменореей // Акушерство и гинекол.— 1979.— № 5.— С. 21-24.

39. Природные ингибиторы роста и фитогормоны / В.И. Кефели. М.: Наука, 1974. 253 с.

40. Покровский В. И., Тутельян В. А. Эрготизм— спутник стихийных бедствий // Терапевт, архив.— 1982.— Т. 54, № 9 с. 108-110.

41. Растения источник биологически-активных веществ лечебного действия /B.C. Синицкий. -М.: Наука, 1959. - С. 216-235.

42. Регистр Лекарственных Средств России. Энциклопедия Лекарств®. Издание седьмое переработанное и дополненное. // Глав. Ред. Ю.Ф. Крылов. -М.:РЛС®, 2000.-С. 1134, 1143-1144, 1158, 1171-1172, 1201,1206-1207.

43. Регуляция синтеза вторичных соединений в культуре клеток растений / А. М. Носов // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений / Под ред. Р.Г. Бутенко. -М.: Наука, 1991. С.5-20.

44. Рекомендации по возделыванию спорыньи на ржи. С.С. Шаин, J1.B. Первушина, Ю.А. Руссков, И.Д. Семенихин, Г.И. Клемахин. -М.: ВИЛР, 1983.

45. Решетилова Т.А., Козловский AT.II Успехи микробиологии. — 1988. -Т.23.-С.133-169.

46. Решетилова Т.А., Козловский А.Г. Биосинтез алкалоидов миелиальными грибами // Прикладная биохимия и микробиология. 1990. - Т.26, вып.З. - С. 291-306.

47. Решетник О.А., Мингалаева З.Ш., Победимский Д.Г. Влияние антиоксидантоа на рост дрожжей рода Candida при различных способах культивирования // Биотехнология. — 1986. Т.8. №2 — С.60-63.

48. Ржехачек 3. Новые достижения в исследовании алкалоидов спорыньи: Пер. с англ. // Известия АН СССР, Серия биологическая. 1976. - Т.2. - С. 208220.

49. Ржехачек 3. Физиологические аспекты образования алкалоидов спорыньи: Пер. с англ. // Прикладная биохимия и микробиология. 1983. — Т. 19. вып. 2. -С. 267-269.

50. Ржехачек 3. Некоторые аспекты регуляции синтеза эргоалкалоидов // Прикладная биохимия и микробиология. 1992. - Т.28., Вып.6. — С.828-843.

51. Савин П.С. Особенности регуляции конидиогенеза в условиях глубинного культивирования элитного инфекционного материала спорыньи

52. Claviceps purpurea (Fr.) Tul.): Дис. на соискание ученой степени к-та биологических наук. Москва, 2007. - 125 с.

53. Селекция растений и цитогенетика / Ф. Элиот. М.: издательство иностранной литературы, 1961. 447 с.

54. Скляр В.И., Карякина Е.Е., Медмап Д.Я., Чан Динь Тоай, Калюжный С.В., Варфоломеев С.Д. Кинетические закономерности роста и метаболизма термофильной водородобразующей культуры // Биотехнология. 1986. -№3. -С. 16-23.

55. Словарь терминов по генетике, цитологии, селекции, семеноводству и семеноведению / Г.В. Гуляев, В.В. Мальченко. — М.: Россельхозиздат, 1975. 215 с.

56. Соловьева Т.Ф., Баскунов Б.П.Бузилова И.Г., Решетилова Т.А. Экзогенный триптофан как фактор, регулирующий алкалоидообразование у Penicillium aurantio-virens Biourge ВКМ F-229 // Прикладная биохимия и микробиология, 1999. -Т.З5., №3.-С.313-318.

57. Соломко Э.Ф., Аре Р.Ю., Стеганцева Е.М. Продуктивность базидиального гриба Pleurotus ostreatus (Jacg. :Fr) Kummer при глубинном кльтивировании на комплексных средах // Биотехнология. — 1988. — Т.4., №5. — С. 629-633.

58. Справочное руководство по лекарственным растениям. / С.Я. Соколов, И.П.Замотаев. -М.: Медицина, 1984. 462 с.

59. Старкова Н. Т., Мельниченко Г. А., Пронин В. С. Результаты клинического применения парлодела при синдроме галактореи — аменореи и акромегалии // Сов. медицина.— 1978.-— № 6.— С. 88-91.

60. Старостина Н.Г. Сузина Ы.Е., Фихте Б.А. Ингибирование бактериолизиса метанотрофных бактерий в смешанных популяциях в процессе их культивирования // Прикладная биохимия и микробиология. —1991. Т. 27., №5. - С.748-750.

61. Столярова JT.Г., Кадыков А.С. и др. Опыт применения парлодела при лечении больных паркинсонизмом // Жур. невропатол. и психиатр. — 1986 №2 С.219-222.

62. Физико-химические методы анализа биологически активных веществ растительного происхождения. / В.П.Георгиевский, И.А. Казаринов, М.О. Каррыев. Ашхабад.: Ылым, 1976. — 239 с.

63. Химический анализ лекарственных растений / Под ред. Н.И. Гринкевич, Л.Н. Сафронич. -М.: Высшая школа, 1983. 175 с.

64. Химия. Большой энциклопедический словарь. М.: Большая Российская энциклопедия, 2000. — С.22, 58.

65. Цитология растений / А.И. Атабекова, Е.И. Устинова. — М.: ВО «Агропромиздат», 1987. 246 с.

66. Шаин С.С. Возделывание спорыньи на ржи. // Обзорная информация. «Лекарственное растениеводство».- М.: ЦБНТИ минмедбиопром, 1987. Вып. 4.-50 с.

67. Шаин С.С., Кузнецова Г.К., Руссков Ю.А. и др. О возможности заражения ржи спорыньей в солнечную и дождливую погоду.// Обзорная информация «Лекарственное растениеводство». -М.: ЦБНТИ минмедбиопром, 1987.-Вып. 9.-50 с.

68. Шаин С.С. Экзогенная регуляция накопления биологически активных веществ лекарственными и эфиромасличными растениями как способ формирования максимальной биопродуктивности в онтогенезе. // С.-х. биол. — 1996. №3. - С.68-82.

69. Шаин С.С. Биологические основы производства сырья спорыньи (CVlaviceps purpurea (Fr.) Tul.) в биотехнологической системе гриб-растение. // Прикладная Биохимия и микробиология. — 1996. — Т.32., №3. — С.275-279.

70. Шаин С.С., Головкина Г.И., Гейер Н.И., Бондаренко А.К., Фонин B.C., Кузнецова Г.К., Сапа Н.П. Способ регулирования роста наперстянки шерстистой // Патент РФ №2051583, 1996, Бюл.№1.

71. Шалагина А.И., Баньковская А.Н., Островский Н.И. О составе алкалоидов, образуемых Claviceps purpurea Tul. // Микробиология. 1970. Т. XXXIX. - С. 67-70.

72. Шамина З.Б. Методические указания по клеточной селекции. — М.: Всесоюзная академия сельскохозяйственных наук имени В.И. Ленина, 1984. -35 с.

73. Anderson J.A., In-Soo Kim., Lentonen P., Floss H.G. Conversion of dihydrolysergic Acid to dihydroergotamine in an ergotamin producing strain of Claviceps purpurea // J. Natur. Prod. - 1979. - V.42., N 3. - P. 271-273.

74. Arcatone F, Chain E.B., Ferretti A., Mnghetti A. Pennela P., Tonolo A., Vero L. Production of a new lysergic acid derivative in submerged culture by a strain of Claviceps paspali Stevens & Hall. //ProcR.Soc.Lond. (Biol). 1961. - V.I55. -P.26-54.

75. Banks G.T., Mantle P.G., Szezyrbak C.A. Large-scale production of clavinet alkaloids by Claviceps fusiformis // J.Gen.Microbiology. 1974. — V.82. - P.345-361.

76. Beacco E., Bianchi M. L., Minghetti A., Spalla C. Directed biosynthesis of analogues of ergot peptide alkaloids with Claviceps purpurea // Experientia.— 1978.— Vol.34., № 10.— P .1291-1293.

77. Beran M., Krepelka J. Soucasny stav vyzkumu namelovych alkaloidu // Gesk. Farm. 1985. - V. 34, N 5. - S. 194-198, N6.-S. 232-236.

78. Berde B, Schild H.O., (eds). Ergot alkaloids and related compounds // Springer Verlag. Springer, Berlin Heidelberg New York. Berlin, Neid, New-York: 1978. -V. 1. - 420 p., - V. 2.-1003 p.

79. Bianchi M. L., Crespi Perellino N., Gioia В., Minghetti A. Production by Claviceps purpurea of two new peptide ergot alkaloids belonging to a new series containing a-aminobutyric acid // J.Natur.Prod. 1982. — V. 45. - P. 191-196.

80. Bisping В., Rehm H.J., Multistep reactions with immobilized microorganism // Biotechnol. Appl. Biochemistry. 1988. - V.10. -P.87-98.

81. Browning R., Schrick F.N., Thompson F.N., Wakefield T. Reproductive hormonal responses to ergotamine and ergonovine in cows during the luteal phase, of the estrous cycle // J. Anim. Sci. 1998. - V. 76. - N.5. - P. 1448-1454.

82. Costa A., Bertazzo A., Allegeer G., Curcuruto O., Traldi P. Indole Alkaloids from the Roots of an African Plant Securidaca longipedunculata. Part I. // J.Heter.Chem. 1992. - V.29. - P. 1641-1647.

83. Crespi-Perellino N., Ballabio M., Gioia В., Mingnetti A. Two unusual ergopeptines produced by a saprophytic culture of Claviceps purpurea // J. Natur. Prod. 1987. - V. 50., N 6. - P. 1065-1074.

84. Cress W.A., Chayet L.T., Rilling H.C. Crystallyzation and partial characterization of dimethyl allylpyrophosphate: L-tryptophane dimethylallyltransferase from Claviceps sp. SD58 // J.Biol.Chem. 1981. - V.256. -P.10917-10923.

85. Crider A.M., Robinson J.M., Floss H.J., Cassady J.M. Clemens J.A. Ergot alkaloids. Synthesis of 6-alkyl-8-ergolenes-6-methyl-8-aminoergolens as potential prolactin inhibitors // J.Med.Chem. 1977. -V.20., N.l 1., -P.1473-1477.

86. Erge D., Wenzel A., Groger D. Zur Physiologie der Alkaloid-bildung bei Claviceps-Arten // Biochem.Physiol.Pflanzen. 1972. - V.163. - P.288.

87. Flieger M., Sedmera P., Vokoun J., Rehacek Z. New alkaloids from a saprophytic culture of Claviceps purpurea // J. Natur. Prod. — 1984. V.47, N6. - P. 970-976.

88. Flieger M., Wurst M., Shelby R. Ergot Alkaloids sources, structures and analytical methods // Folia microbiol. - 1997. - V42. № 1. - P. 3 - 30.

89. Floss H.G., Mothes U., Giinther H. // Z. Naturforsch.1964. B.19b. - S.784.

90. Floss H. G., Hornemann U., Schilling N. et all. Biosynthesis Ergot Alkaloids. Evidence of Two Isomerizations in The Isoprenoid Moiety during the Formation of Tetracyclic Ergolines // J. Amer. Chem. Soc. 1968. - V. 90., N 23. - P. 6500 -6506.

91. Floss H.G., Basmadian G. P., Tcheng M. et all. Biosynthesis of Peptide-type Ergot Alkaloids Ergocornine and Ergocryptine // J. Natur. Prod. 1973. - V.34. -P. 446-449.

92. Floss H.G., Cassajdy J.M.,Robbers J.E. Influence of Ergot Alkaloids on Pituitary Prolactin and Prolactin-Dependent Processes // J. Pharm. Sci. 1973. — V. 62., N5.-P. 699-715.

93. Floss H. G., Tcheng-Lin M., ICobel R, et al.// Experientia, 1974, V30 №12, p.1369-1271.

94. Floss H.G. Biosynthesis of Ergol Alkaloids and Related Compounds // Tetrahedron. 1976. -V. 32. - P. 873-896.

95. Floss H.G. Regulation of alkaloid synthesis in the ergot fungus // In: Microbiology. D. Schlessinger (cd.). Washington: American Society of Microbiology. 1976. - P.553-554.

96. Floss H.G. The biosynthesis of ergot alkaloids (or the story of the unexpected). // In: Indole and biogenetically related alkaloids. J.D. Phillipson (Ed.). London, New York, Toronto, San Francisco: Academic Press. 1980.P.249-254.

97. Gratzfeld-Huesgen A. Sensitive and Reliable Amino Acid Analysis in Protein Hydrolysates using the Agilent 1100 Series HPLC. Agilent Technologies. 1999.

98. Groger D. Uber die Bildung von Clavin-alkaloiden in Submers-kultur.// Arch. Phann. 1959. - V.292. - P.389-392.

99. Groger D. Ergot alkaloids recent advances in chemistry and biochemistry // In: FBMS Symp.5.Antibiot.&Other Second. Metab./Byosynth. Prod. - 1978. -P.201-205.

100. Gyenes J., Bayer J. Uber verchiedene Verfahren zur quantitativen Bestimmung der Mutterkornalkaloide // Pharmazie. 1961. - Bd. 16., N4. - S. 211-217.

101. Heinstein P.F., Lee S.L., Floss H.G. Isolation of dimethylallylpyrophosphate: tryptophan dimethylallyl transferase from the ergot fungus (Claviceps species) // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1971. - V.44. -P.1244-1249.

102. Herenyj В., Gorog S. Ready separation of ergocornine-a and P-ergocriptine by high-performance liquid chromatography // J. Chromatogr. 1982. - V.238. - P. 250-254.

103. Hesse M. Alkaloids / Zurich: Verlag Helv. Chim.Acta,2002. 414 p.

104. Hofmann A. Die wirkstoffe der mexikanischen rauberdroge "Ololigui" // Planta medica. 1961. - V.4. - P.354-357.

105. Hofmann A., Ott H., Griot R. et all. Die Synthese und Stereocheme des Ergotamins // Helv. Chim. Acta. 1963. - Bd.46, N.6. - S. 2306-2328.

106. Jacobs W.A., Gould R.G.//J.Biol.Chem. 1937. -V. 120. - P. 141-145.

107. Jaroniewski W. Sporysz (Secale cornutum) // Farm. pol.— 1981.— T.37, № 4.— S.222-224.

108. Keller U., Zocher R., Kleinkauf H. Biosynthesis of ergotamine in protoplasts of Claviceps purpurea // J.Gen.Microbiol. 1980. - V. 118. - P.485-495.

109. Keller U., Han ML, Stoffler-Meilicke M.// Biochemistry. 1988. - V.27 -P.6164-6170.1. Q Q

110. Kobel H., Schreier E., Rutshmann J. 6-Methyl-A ' ergolen-8-carbonsaure ein neues Ergolinderivat aus Kulturen eines stammes von Claviceps paspali Stevens et Hall // Helv.Chim.Acta. - 1964. - Bd.47, N.4. - S.1052-1064.

111. Kren V., Mehta P., Rylko V., Flieger M., Kozova J., Sajdl P., Rehacek Z. Substrate regulation of elymoclavine formation by some saccharides // Zentralbl. Mikrobiol. 1987. - P. 71-85.

112. Kren V., Harazim P., Malinka Z. X. Claviceps purpurea (Ergot): Culture and Bioproduction of ergot alkaloids // Biotehnology in Agriculture and Forestry, Vol.28, Medicinal and Aromatic Plants VII . Springer-Verlag Berlin Heidelberg. 1994. -P. 139-156.

113. Krupinski V., Robbers J.E., Floss H. Physiological study of ergot: induction of alkaloid synthesis by tryptophan at the enzymatic level. // J. Bacteriol. 1976. -V.125., N.l. - P. 158-165.

114. Leemann H.G., Fabbri S. Uber die absolute Konfiguration der Lysergsaure // Helv. Chim. Acta. 1959. - V.42. -P.2696-2709.

115. Lyons P.C., Plattner R. D., Bacon C.W. Occurrence of peptide and clavinet ergot alkaloids in tall fescue grass // Scince. 1986. - V. 232., N.4749. - P.487-489.

116. Makarieva T.N., Byin S.G. Stonik V.A., Lyssenko K.A., Denisenko V.A. Pibocin, the first ergoline marine alkaloid from the far-eastern ascidian Eudistoma sp. // Tetrahedron Letter. 1999. - V.40. - P.l591-1594.

117. Mantegani S., Brambilla E., Varasi M. Ergoline derivates: receptor affinity and selectivity // Farmacc. 1999. - V.54., №5. - P.288-296.

118. Montastrue J.L., Rascol O., Senard J.M Treatment of Parkinson's disease should begin with a dopamine agonist // Mov. Disord. 1999. - V.14., N5. - P. 725730.

119. Morris ZJ. Fatty acid composition of Claviceps species. Occurrence of (+) threo 9,10-dihydroxysteric acid // Lipids. 1968. - V.3.,N.3. -P.261-262.

120. Muehlbacher M., Poulter C.D. Isoprenyl-diphosphate isomerase: inactivation of the enzyme with active-site-directed irreversible inhibitors and transition-state analogues // Biochemistry. 1988. - V.27., N. 19. -P.7315-7528.

121. Otsuka H., Quigley F.R., Groger D., Anderson J.A., Floss H.G. In vivo and in vitro evidence for N-metylation as the second pathway-specific step in ergoline biosynthesis //Planta Medica. 1980. - V.40. - P. 109-114.

122. Pachalatko P., Tabacik C., Acklin W., Arigoni D. Naturliche und unnaturliche Vorlaufer in der Biosinthese der Ergotalkaloide //Chimia. 1975. -V.29. -P.526-530.

123. Pertz H. Naturally occurring clavines: antagonism / partial agonism at 5-HT2A receptors and antagonism at alpha 1-adrenoreceptors in blood vessels // Planta Med. -1996. -V. 62. -N. 5. P. 387-392.

124. Porilock D.E., Ghosh A.C., Schwazzel W.E. et all. Cyclol (1,2) Derivatives Related to Ergocornine // J. Heterocyclic Chem. 1976. - V. 13. - P. 781-784.

125. Porter J. K., Bacon C.W., Robbins J.D., Betowst D. Ergot alkaloid identification in Clavicepitaceae systemic fungi of pasture grasses. // J. Agric. Food Chem. 1981. - V.29., N.3. - P.653-659.

126. Rao K.K., Patel V.P. Effect on tryptophan and related compounds on alkaloid formation on Aspergillus fumigatus. // Lloydia. 1974. - V. 37., N. 4. - P.608-610.

127. Rehacek Z. Ergot alkaloids and some problems of the physiology of their formation // Zentralblatt fur Bakteriologie, Parasitenkunde, Infektionskrankheiten und Hygiene. 1974. - V.129, № 1-2. - S.20-49.

128. Rehacek Z., Sajdl P. Ergot alkaloids. Chemistry. Biological effect, biotechnology // Praha: Academia, 1990. 383 p.

129. Rehacek Z. Physiological controls and regulation of ergot alkaloid formation // Folia Microbiol. 1991. - V.36., N4. - P.323-342.

130. Riederer В., Han M., Keller U. D-Lysergyl peptide synthetase from the ergot fungus Claviceps purpurea // J. Biol. Chem. 1996. - V. 271., N 44. - P. 2752427530.

131. Rumpel W. Einfache serienmabige Bestimmung des Allcaloidwertes von Eincelsklerotien des Mutterkorns // Farmazie. 1955. - Bd. 10., N.3. - S. 204-206.

132. Scandola M. Structural Stady of Alkaloids from Securidaca longipedunculata Roots. Part II //J.Heter.Chem. 1994. - V.31. -P.219-224.

133. Schlientz W., Brunner R., Ruegger A. et all. P-ergocryptin, ein neues Alkaloid der Ergotoxin-Gruppe // Pharm. Acta Helv. 1968. - S. 497-509.

134. Schmauder H.P., Groger D. Selection of ergot alkaloid producers by induced mutagenesis // Acta Biotechnol. 1983. - V.3., №4. - P.379-382.

135. Schreier E. Radiolabeled Peptid Ergot Alkaloids //Helv. Chim. Acta. 1976. -Bd.59.,N.2. - S.585-606.

136. Schwarz G., Eich E. Influence of ergot alkaloids on growth of Streptomyces puipurescens and production of its secondary metabolites // Planta Med. — 1983. -V.47.-P. 212-214.

137. Seif-El-Nasr M.M., Rizlc A.M. Ergot Alkaloids (production, characterization and determination ) // Herba Hungarica. 1985. - V. 24., N. 2-3. - P. 197-212.

138. Shain S.S. Prospects of usage of the gross regulators for medicinal plant. // Proceedings of the IV International symposium of plant growth regulators. — Bulgaria, Sofia, 1987. Part 2. - P.883-889.

139. Stadler P.A., Hofmann A. Chemische Bestimmung der absoluten Konfiguration der Lysergsaure // Helv. Chim. Acta. 1962. - V.45. - P.2005-2011.

140. Stadler P. A., Frey A. J., Hofmann A. Herstellung der optisch activen Methyl-benzyloxy-malonsaure-halbester und Bestimmung ihrer absoluten Konfiguration // Helv. Chim. Acta. 1963. - Bd.46. - S. 2300-2305.

141. Stadler P.A., Frey A.J., Troxler F., Hofmann A. Selecktive Reductions- und Oxydationsreactionen an lysergsaure- Derivaten. 2,3-Dihydro- und 12-Hydroxy-lysergsaureamide // Helv. Chim. Acta. 1964. - Bd. 47, N.3. - S.756-769.

142. Stadler P.A., Stutz P. The Ergot Alkaloids // The Alkaloids. Chemistry and Physiology / By ed. R.H.F. Manske. New York, San Francisko, London: Academic Press, 1975.-V.15.-P.1-40.

143. Stadler P. A., Stutz P., Sturmer E. Completition of the Natural Groups of Ergot Alkaloids: Syntheses and Pharmacological Profiles of B-Ergosine and B-Ergoptlne // Experientia.- 1977.-V.33. -P. 1552-1554.

144. Stadler P. A. Neuere Ergebnisse der Mutterkornalkaloid -Forschuhg // Planta medlca.-1982.-Y.46.-P. 131-143.

145. Stanffacher D., Tshertex H. Isomere des Chanoclavins aus Claviceps purpurea (Fr.) Tul. // Helv.Chim.Acta. 1964. - Bd.47, N.8. - S.2186-2194.

146. Stoll A., Hofmann A., Troxler F. Uber die Isonerie von Lysergsaure und Isolysergsaure // Helv. Chim. Acta. 1949. - Bd.32. - S. 1947-1954.

147. Stoll A., Renz J., Brack A. Uber gelbe Farbstoffe in Mutterkorn // Helv. Chim. Acta. 1952. -Bd.35, N 5. - S. 1544-1551.

148. Stoll A., Petrzilka Т., Rutschmann J. et all. Uber die Stereochemie der Lysergsauren und Dihydro-lysergsauren // Helv. Chim. Acta. 1954. - Bd.37, N 7. — S.2039-2057.

149. Stoll A., Hofmann A. Amide der stereoisomeren Lysergsauren und Dihydro-Lysergsauren // Helv. Chim. Acta. 1955. - Bd. 38., N.2. - S. 421-433.

150. Stoll A., Hofmann A. The Ergot Alkaloids // The Alkaloids. Chemistry and Physiology / By ed. R.H.F. Manske. New York, London: Academic press, 1965. — Y.8.-P. 725-783.

151. Strnadova K. A method of preparation and application of nitrous acid as a mutagen of Claviceps purpurea // Folia Microbiol. 1976. - V.21. — P. 455-458.

152. Teuscher E. Uber die Zusammenhange zwischen aktiver Aufnahune von Tryptophan und Alkaloidbiogenese bei Claviceps purpurea (Fries) Tul.asne // Flora. — 1964.-V. 155.-P. 80-89.

153. Tonolo A., Udvardy-Nagy E. Production of clavinet alkaloids by Claviceps fuciformis (Loveles) in submerged culture // Acta Microbiol. Acad. Sci. Hung. -1968.- V.15. -P.29-33.

154. Troxler F. Beitrage zur chemie der 6-Methyl- 8- ergolen-carbonsaure // Helv. Chim. Acta. 1968. - Bd.51, N.6. - S.1372-1381.

155. Tsai H.F., Wang H., Gebler J.C., Poulter C.D., Schardl C.L. The Claviceps purpurea gene encoding dimethylalliyltryptophan synthase, the committed step forergot alkaloid biosynthesis // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1995. - V. 216., N.l.-P. 119-125.

156. Tscherter H., Hauth H. Drei neue Mutterkornalkaloide aus saprophytischen Kulturen von Claviceps paspali Stevens et Hall // Helv. Chim. Acta. 1974. — Bd. 57., N.l. - S. 113 - 121.

157. Tudzynski В., Holter K., Correia T. Arntz C, Grammel N., Keller U. Evidence for an ergot alkaloid gene claster in Claviceps purpurea // Mol. Gen. Genet. 1999.- V.261., N.l.-P. 133-141.

158. Umar S., Junior P., Wichtl M. Isolierung und intifizierung von agroclavin und a-dihydrolysergol aus den Blatern von Ipomoea fisTul.osa // Planta medica. -1980. -V.40., N.4. P.328-332.

159. Van Dongen P. W., de Groot A.N. History of ergot alkaloids from ergotism to ergometrine. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1995. - V.60., N.2. - P.109-116.

160. Vining L.C., Taber W.A. Studies on biosyntheses of ergot alkaloids. // Can. J.Microbiol. 1963. - V.9. - P. 291-295.

161. Walzel В., Rfederer В., Keller U. Mechanism of alkaloid cyclopeptide synthesis in the ergot fungus Claviceps purpurea // Chem. Biol. — 1997. V.4., N.3.- P.223-230.

162. Wang K. Ohnuma S. Chain-length determination mechanism of isoprenyl diphosphate synthases and implieations for molecular evolution // TIBS. 1999. -N. 24. — P.445-451.

163. Yates S.G., Fenster J.C., Bartelt R.J. Assay of tall fescue seed extracts, fractions, and alkaloids using the large milkweed bug // J. Agric. Food Chem. 1989.- V.37. — P.353-357.