Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Нитроксидсинтаза центральной и периферической нервной системы двустворчатых моллюсков

ВАК РФ 03.00.25, Гистология, цитология, клеточная биология

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Анникова, Людмила Викторовна

ВВЕДЕНИЕ.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Половой процесс у двустворчатых моллюсков.

1.1.1. Размножение двустворчатых моллюсков.

1.1.2. Происхождение половых клеток и развитие гонад.

1.1.3. Оогенез и сперматогенез.

1.1.4. Реродуктивный цикл.

1.2. Строение ЦНС.

1.2.1. Анатомия нервной системы и строение нервных узлов.

1.2.2. Цитохимия нервной системы.

1.3. Иннервация гонад.

1.4. Регуляция гаметогенеза.

1.5. Оксид азота и его роль в репродукции.

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ.

2.1. Гистохимическиие методы исследования.

2.2. Иммуногистохимический метод исследования.

2.3. Метод компьютерного анализа изображения.

2.4. Морфометрические методы.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ.

3.1. NADPH-диафораза в центральной и периферической нервной системе двустворчатых моллюсков.

3.2. Локализация NADPH-д-позитивных нервных элементов в центральной и периферической нервной системе половой железы некоторых видов двустворчатых моллюсков.

3.3. Локализация серотониниммунореактивных нервных элементов в яичниках и семенниках М. kurilensis.

3.3. Сезонная характеристика состояния NO-ергического нервного аппарата половой железы и ганглиев ЦНС М. Kurilensis.

4. ОБСУЖДЕНИЕ.

ВЫВОДЫ.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Нитроксидсинтаза центральной и периферической нервной системы двустворчатых моллюсков"

Актуальность проблемы. За последнее десятилетие в биологии и медицине произошло заметное событие. Было установлено, что простейшее химическое соединение, оксид азота (N0), выполняет функции универсального регулятора клеточного и тканевого метаболизма позвоночных (Ванин, 1998; Реутов и др., 1997; Мотавкин, Гельцер, 1998; Gorren et al., 1998; Mayer et al., 1998; 1999; Shinde et al., 2000) и беспозвоночных животных (Elofsson et al., 1993; Martinez, 1994; Johansson, Carlberg, 1995; Colasanti, Venturini, 1998).

В исследованиях на беспозвоночных, включая моллюсков, доказано участие оксида азота в нейротрансмиссии и нейромодуляции, регуляции мышечной активности и пищевого поведения, респираторной функции, солевого и водного баланса, в механизмах иммунологической защиты организма, в клеточной пролиферации и дифференцировке. Структурное сходство гена, кодирующего нитроксидсинтазу (NOS) у некоторых беспозвоночных (Regulski, Tully, 1995) и его гомолога у млекопитающих, а также сходство физиологической роли оксида азота у этих групп животных свидетельствует о большой эволюционной консервативности энзима и функциональной значимости N0.

В последнее время показано, что оксид азота играет решающую роль в репродукции млекопитающих на всех уровнях: от мозга до гонады (МсСапп, Rettori, 1996; Franchi et al., 1994; Motto and Gimeno, 1997; Srisawat et al., 2000; Jaroszewski and Hansel, 2000; Farina et al., 2000; Yallampalli and Dong, 2000). NO участвует в формировании полового поведения (Burnett et all, 1992), имеется в сперматозоидах (Herrero et al., 1997), активирует яйцеклетку, определяет успех оплодотворения (Kuo et al., 2000).

Принимая во внимание многогранную роль оксида азота в контроле за репродукцией организмов, МсСапп и Rettori (1996) назвали его сексуальным газом. Вероятно, оксид азота играет важную роль и в регуляции размножения двустворчатых моллюсков, сведения о которой, по-видимому, ограничиваются лишь нашими работами (Анникова и др., 2000; Annikova et al., 2001). Ранее было доказано определяющее значение холин-, моноамин- и пептидергических механизмов нервной системы в регуляции половой активности двустворчатых моллюсков (Мотавкин, Вараксин, 1983, Мотавкин и др., 1990). Однако до настоящего времени данных об участии нитроксидергических нейронов в гонадогенезе и развитии половых клеток у этих беспозвоночных мы не обнаружили.

Цель и задачи исследования. Установить у двустворчатых моллюсков наличие нитроксидергических нейронов в центральной и периферической нервной системе и показать их состояние на разных стадиях репродуктивного цикла.

В работе были определены и решались следующие задачи:

Исследовать наличие, локализацию нитроксидергических нейронов и оценить активность нитроксидсинтазы в центральной и периферической нервной системе.

Доказать нитроксидергическую иннервацию половой железы самок и самцов двустворчатых моллюсков.

Охарактеризовать состояние нитроксидергической нервной системы ганглиев и половой железы на протяжении репродуктивного цикла.

Научная новизна. Получены новые данные о наличии, распределении и активности нитроксидсинтазы в нейронах ганглиев ЦНС двустворчатых моллюсков. Доказана центральная и местная нитроксидергическая иннервация половой железы. Определена активность нитроксидсинтазы в нейронах гонады и описаны морфологические характеристики NO-ергических нервных клеток. На протяжении репродуктивного цикла и нереста изучено состояние нитроксидергической нервной системы. Установлены новые факты, доказывающие, что помимо известных регуляторов - биогенных моноаминов, пептидных и стероидных гормонов, в систему управления гаметогенезом моллюсков должен быть включен оксид азота.

Теоретическое значение. Полученные сведения о локализации и активности нитроксидсинтазы в нейронах центральной и периферической нервной системы двустворчатых моллюсков расширяют теоретические представления о нейротрансмиттерных системах этих животных, доказывают функциональную роль нитроксидергической медиации у беспозвоночных в регуляции гонады. Данные о сезонных изменениях NO-ергической нервной системы дополняют представления о механизмах регуляции половых функций на протяжении полового цикла.

Апробация работы. Материалы диссертации были доложены на ежегодных научных конференциях Института биологии моря ДВО РАН (Владивосток, 1998 -2001); I и IV региональных естественнонаучных конференциях студентов, аспирантов и молодых ученых (Владивосток, 1997, 2001); Всероссийском совещании по изучению моллюсков Дальнего Востока России (Владивосток, 1998); V Всероссийской конференции «Нейроэндокринология - 2000» (Санкт-Петербург, 2000); V конгрессе международной ассоциации анатомов, гистологов и эмбриологов (Ульяновск, 2000); VI Европейской конференции международного общества нейробиологии беспозвоночных «Простые нервные системы» (Москва-Пущино, 2000) и Центрально-Европейской конференции по нейробиологии (Краков, Польша, 2001) и VI совещании по эволюционной физиологии, посвященном памяти Э.Я. Орбели (Санкт-Петербург, 2001).

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Экспрессия нитроксидсинтазы установлена в нейронах и/или нервных волокнах центральной и периферической нервной системы яичников и семенников у 8 из 17 исследованных видов: Crenomytilus grqyanus, Modiolus kurilensis, Mitilus koruscus, Mytilus trossulus, Septifer keenae (Mytilidaej, Glycymeris yessoensis (Glicemeridae), Mactra chinensis, Spisula sachalinensis (Mactridae). Оксид азота участвует в межнейрональных коммуникациях и нейро-эффекторных взаимодействиях.

2. Источниками нитроксидергической иннервации яичников и семенников моллюсков являются нейроны ганглиев ЦНС и/или местные нейроны межацинарной соединительной ткани гонады. Мишенями финальной конвергенции нитроксидергических нейронов служат ацинусы и выводные протоки, стенки гемолимфатических сосудов и мышечные клетки межацинарной соединительной ткани гонады.

3. На основании наличия в половой железе моллюсков нитроксидергических нейронов и нервных волокон, их топографии, специфической динамики активности нитроксидсинтазы в нейронах и их концентрации в гонаде и узлах 7 на различных стадиях половой активности, можно считать, что оксид азота принимает участие в регуляции репродуктивной функции этих животных.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 12 работ.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 170 страницах машинописного текста и состоит из введения, 4 глав, выводов и списка литературы, включающего 284 названий (из них 211 - иностранных авторов). Диссертация иллюстрирована 47 рисунками и 4 таблицами.

Заключение Диссертация по теме "Гистология, цитология, клеточная биология", Анникова, Людмила Викторовна

ВЫВОДЫ

1. Экспрессия нитроксидсинтазы установлена в нейронах и/или нервных волокнах ганглиев ЦНС 8 представителей, относящихся к трем семействам двустворчатых моллюсков: Crenomytilus grayanus, Modiolus kurilensis, Mitilus koruscus, Mytilus trossulus, Septifer keenae (Mytilidaej, Glycymeris yessoensis (Glicemeridae), Mactra chinensis, Spisula sachalinensis (Mactridaej и не установлена у представителей семейств Arcidae, Pectinidae, Cultellidae, Pandoridae, Tellinidae, Veneridae и Myidae. Топография нитроксидергических нейронов и нервных сетей в пределах семейства не имеет видовой специфичности. Доля нитроксидергических нейронов в узлах не превышает 1.5 %. Различий в нитроксидергической системе ганглиев у самцов и самок не обнаружено.

2. У мидии и модиолуса С. grayanus, М. kurilensis имеются половые различия в концентрации нитроксидергических нервных волокон в яичнике и семеннике. У септифера S. кеепае и глицемериса G. yessoensis таких различий не выявлено.

3. В субацинарном слое соединительной ткани гонады содержатся единичные, или собранные в группы нитроксидергические нейроны. Среди них преобладают уни- и биполяры (46 и 40%, соответственно), до 14% нейронов являются мультиполярными. Их отростки совместно с центральными аксонами формируют густые сети вокруг половых трубочек. Концентрация перикарионов достигает 60 в мм2 среза железы, волокон - 500 в мм2 среза.

4. Мишенями финальной конвергенции нитроксидергических аксонов служат ацинусы и выводные протоки, стенки гемолимфатических сосудов и мышечные клетки межацинарной соединительной ткани гонады.

5. Иммуногистохимическим методом показано, что нитроксидсинтаза нейронов половой железы не солокализована с серотонином.

6. Установлены сезонные изменения концентрации нитроксидергических нервных элементов и активности фермента в нейронах в гонаде и в ганглиях ЦНС. У самцов и самок эти изменения имеют сходную годовую динамику и соответствуют стадиям половой активности моллюска: ба. Нерест, посленерестовая перестройка гонады и весенняя резорбция полового материала проходят при низкой активности нитроксидсинтазы в нейронах яичников и низкой концентрации нитроксидергических нервных элементов в яичниках и семенниках. бб. Для стадии начало гаметогенеза и активный гаметогенез характерно повышение активности фермента в нейронах и концентрации NO-ергических нервных элементов в гонадах. бв. Активность фермента в нейронах цереброплевральных ганглиев низкая в период нереста и посленерестовой перестройки, а в висцеральных - в период нереста и весенней резорбции.

6г Максимальное увеличение числа нитроксидергических нейронов в цереброплевральных ганглиях имеется в период активного гаметогенеза, а в висцеральных - после нереста, в начале гаметогенеза и после весенней резорбции половых клеток.

7. На основании изменения активности нитроксидсинтазы и динамики в концентрации нервных элементов в гонаде и узлах, соответствующих стадиям полового цикла, следует считать, что оксид азота принимает участие в регуляции репродуктивной функции моллюсков.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Анникова, Людмила Викторовна, Владивосток

1. Айзенштадт Т.Б. Цитология оогенеза. М.: Наука. 1984. 247 с.

2. Анникова Л.В., Пальцева Ю. Н. Нитроксидергическая иннервация гонады двустворчатого моллюска Modiolus kurilensis II Морфология. 2000. № 3. С. 1213.

3. Блинков С. М., Глезер И. И. Мозг человека в цифрах и таблицах. М.: Медицина. 1964. 208 с.

4. Блинков С.М., Моисеев Г.Д. Определение плотности капиллярной сети в органах и тканях человека и животных независимо от толщины микротомного среза//Докл. АН СССР. 1961. Т. 140. № 2. С. 465-468.

5. Бородулин Ю.Г. Роль аддуктора в нересте гребешка Patinopecten yessoensis (Jay) 11 Ж. эволюц. физиол. и биохим. 1986. Т. 22, № 5. С. 503-504.

6. Боровягин B.JL, Сахаров Д.А. Ультраструктура гигантских нейронов тритонии. М.: Наука. 1968. 32 с.

7. Бородулин Ю.Г., Вараксин А.А., Мотавкин П.А. Авторское свидетельство № 1214040 СССР. Способ стимуляции нереста приморского гребешка. Заявл. 20.06.84. 0публ.28.02.86. Бюл. № 8.

8. Брюне Б., Сандау К., фон Кнетен А. Апоптическая гибель клеток и оксид азота: механизмы адаптации и антагонистические сигнальные пути // Биохимия. 1998. Т.63. № 7. С. 966-975.

9. Ванин А.Ф. Оксид азота в биологии: история, состояние и перспективы исследований // Биохимия. 1998. Т.63. № 7. С. 867-869.

10. Вараксин А. А. Гистофизиология нервных ганглиев приморского гребешка и дальневосточной гигантской мидии: Автореф. канд. дис. Владивосток, 1974.

11. Вараксин А.А. Иннервация стенки половой железы приморского гребешка Patinopecten yessoensis (Jay) // Гистофизиология эффекторных и рецепторныхмеханизмов нервной системы морских организмов. Владивосток: ДВНЦ АН СССР. 1980. С. 21-26.

12. Вараксин А.А., Деридович И.И. Морфофункциональная характеристика стенки половой железы приморского гребешка // Биол. моря. 1984. № 3. С. 60-66.

13. Вараксин А. А. Регуляторные пептиды и половые стероидные гормоны в регуляции размножения двустворчатых моллюсков и морских ежей: Автореф. дис. докт. биол. наук. Владивосток. 1994. 53 с.

14. Вараксин А. А., Найденко Т.Х. Сравнительная характеристика различных методов стимуляции нереста у приморского гребешка // Биол. моря. 1989. № 2. С. 66-69.

15. Вараксин А.А., Мотавкин П.А., Бородулин Ю.Г. Авторское свидетельство № 1214040 СССР. Способ стимуляции нереста приморского гребешка. Заявл. 20.06.84. 0публ.28.02.86. Бюл. № 12.

16. Вараксин А.А., Реунова О.В. Влияние индометацина, архидоновой кислоты и некоторых ее метаболитов на пролиферацию сперматогониев у приморского гребешка Mizuhopecten yessoensis И Ж. эволюц. физиол. и биохим. 1993. Т.29. № 3. С.330-334.

17. Вараксина Г.С., Вараксин А.А. Локализация 17В -гидроксистероиддегидрогеназы в гонадах двустворчатых моллюсков приморского гребешка и мидии Грея // Архив анатомии, гистол. и эмбриол. 1988. Т. 95. №11. С. 79-82.

18. Вараксина Г.С., Вараксин А.А. Локализация 17В -гидроксистероиддегидрогеназы в яичниках и семенниках приморского гребешка и мидии Грея // Цитология. 1990. Т.32. № 2. С. 128-131.

19. Вараксина Г.С., Вараксин А.А. Действие эстрадиола, прогестерона и тестостерона на оогенез приморского гребешка // Биол. моря. 1991. № 3. С.61-68.

20. Вараксина Г.С., Вараксин А.А., Масленникова Л.А. Значение половых стероидных гормонов в сперматогенезе приморского гребешка // Биол. моря. 1992. № 1-2. С. 77-83.

21. Васецкий С.Г. Мейотические деления // Современные проблемы оогенеза. М.: Наука. 1977. С. 23-25.

22. Волин М.С., Дэвидсон К.А., Камински П.М. и др. Механизмы передачи сигнала оксидант оксид азота в сосудистой ткани // Биохимия. 1998. Т.63. № 7. С. 958965.

23. Горрен А.К.Ф., Майер Б. Универсальная и комплексная энзимология энзимология синтазы оксида азота // Биохимия. 1998. Т.63. № 7. С. 870-880.

24. Грузова М.Н., Дзюба С.М. Солитарный тип оогенеза на примере пластинчатожаберного моллюска Mizuhopecten yessoensis II Цитология. 1973. Т. 15. №3. С. 283-290.

25. Деридович И.И., Хотимченко Ю.С. Биогенные моноамины в центральной нервной системе приморского и мидии Грея // Биология моря. 1985. № 3. С. 5358.

26. Деридович И.И., Хотимченко Ю.С. Биогенные моноамины у представителей морских двустворчатых моллюсков и иглокожих // Тез. докл. V Всесоюз. биохим. съезда. М.: Наука. 1986. Т. 3. С 157.

27. Деридович И.И., Хотимченко Ю.С. Моноаминергическая регуляция размножения у двустворчатых моллюсков // Биол. моря. 1988. № 6. С. 3-16.

28. Дзюба С.М. Гистофизиология половой железы приморского гребешка в разные сезоны года // Науч. Сообщ. Ин-та биол. Моря ДВНЦ АН СССР. Владивосток. 1971. №.2. С. 68-71.

29. Дзюба С.М., Грузова М.Н. Сезонные изменения морфологии и синтеза РНК в женской гонаде приморского гребешка // Биол. моря. 1976. № 4. С. 38 44.

30. Дзюба С.М. Морфологическая характеристика половых желез мидии Грайана в разные сезоны года // Биология развития морских организмов. Апатиты. 1974. С. 158-164.

31. Дроздов. A.JL, Реунов А.А. Сперматогенез и ультраструктура сперматозоидов у модиолуса // Цитология. 1986. Т. 28. № 10. С. 1069-1074.

32. Дьяконова T.JL, Реутов В.П. Влияние нитрита на возбудимость нейронов мозга виноградной улитки // Физиол. ж. им. И.М. Сеченова 1998. Т. 84. С. 1264-1272.

33. Дюйзен И.В., Калиниченко С.Г., Охотин В.Е., Мотавкин П.А. Нитроксидергические нейроны белого вещества гиппокампальной формации человека // Морфология. 1998. Т. 113. № 1. С. 47-51.

34. Зефиров А.Л., Халиуллина P.P., Анучин А.А., Яковлев А.В. Влияние эндогенного оксида азота на функцию нервно-мышечного синапса // Физиол. ж. им. И.М. Сеченова. 2001. № 4. 499-506.

35. Касьянов В.Л., Медведева JI.A., Яковлев С.Н., Яковлев Ю.М. Размножение двустворчатых моллюсков и иглокожих. М.: Наука. 1980. 208 с.

36. Касьянов B.JI. Закономерности размножения морских двустворчатых моллюсков и иглокожих: Автореф. дис. докт. биол. наук. М. 1985. 48 с.

37. Касьянов B.J1. Репродуктивная стратегия морских двустворчатых моллюсков и иглокожих. JL: Наука. 1989. 184 с.

38. Касьянов B.JL, Медведева JI.A., Яковлев С.Н., Яковлев Ю.М. Размножение иглокожих и двустворчатых моллюсков. М.: Наука. 1980. 208 с.

39. Кауфман З.С. Особенности половых циклов беломорских беспозвоночных. JL: Наука. 1977. 265 с.

40. Кауфман З.С. Зависимость гаметогенеза морских шельфовых беспозвоночных от температуры воды // Ж. общ. биол. 1976. Т. 37. № 6. С. 912-916.

41. Косенко Л.А. Сперматогинез у дальневосточной гиганской мидии и приморского гребешка // Моллюски, их система, эволюция и роль в природе. Л.: Наука. 1975. С. 151-152.

42. Коцюба Е.П. Гистофизиология центральной нервной системы некоторых видов двустворчатых моллюсков с различным образом жизни: Автореф. канд. дис. Владивосток. 1991.

43. Коцюба Е.П., Букина И.А. Анатомия нервной системы Anadara broughtoni (Mytilida, Anadaridae) // Зоол. Ж. 1990. Т. 69. № 10. С. 126-129.

44. Кукин А.Ф. Репродуктивный цикл гребешка Свифта // Биологические исследования залива Восток. Владивосток: ДВНЦ АН СССР. 1976. С. 122-130.

45. Малышев И.Ю., Манухина Е.Б. Стресс, адаптация и оксид азота // Биохимия. 1998. Т. 63. № 7. С. 992-1006.

46. Масленникова JI.А. Сперматогенез двустворчатых моллюсков: Автореф. канд. Дисс. Владивосток. 1985. 20 с.

47. Медведева Л.А. Репродуктивный цикл сахалинской спизулы // Биологические исследования залива Восток. Владивосток: ДВНЦ АН СССР. 1976. С. 131-135.

48. Милейковский С.А. Зависимость размножения и нереста морских шельфовых донных беспозвоночных от температуры воды // Тр. Ин-та океанол. АН СССР. М., 1970. Т. 88. С. 113-148.

49. Мори К. (Mori К.). Действие эстрадиола-17(3 на половое созревание и превращение пола у японской устрицы Crassostrea gigas IIXIV Тихоокеанский науч. конгр.: Тез. докл. Комитет F, Морские науки, Секция FIIМ. 1979. С. 129130.

50. Мотавкин П. А., Вараксин А. А. Гистофизиология нервной системы и регуляция размножения у двустворчатых моллюсков. М.: Наука. 1983. 208 с.

51. Мотавкин П.А., Гельцер Б.И. Клиническая и экспериментальная патофизиология легких. М.: Наука. 1998. 366 с.

52. Мотавкин П.А., Хотимченко Ю.С., Деридович И.И. Регуляция размножения и биотехнология получения половых клеток у двустворчатых моллюсков. М.: Наука 1990. 216 с.

53. Мотавкин П.А., Евдокимов В.В., Дзюба С.М. Происхождение гоноцитов и формирование гонад у мидии Грайана // Науч. сообщения Ин-та биол. моря. 1971. №. 2. С. 162-165.

54. Мотавкин П.А., Вараксин А.А., Низяева Е.П., Реунова О.В. Типы нейронов центральной нервной системы приморского гребешка Mizuhopecten yessoensis (Jay) // Архив анатом, гистол. и эмбриол. 1988. Т. 95. № 12. С. 14-20.

55. Мотавкин П.А., Коцюба Е.П., Вараксин А.А. Нейроны холинергической синаптической передачи двустворчатых моллюсков // Цитология. 1992. Т. 34. № 5. С. 58-64.

56. Мотова Л.А. Половая структура природных популяций морских двустворчатых моллюсков Swftopecten swifti (Bernardi) и Crenomytilus grayanus (Duncer) // Дипл. раб. ДВГУ. Биол. ф-т, каф. Гидробиологии. 1979. 36 с.

57. Недоспасов А.А. Биогенный N0 в конкурентных отношениях // Биохимия. 1998. Т. 63. № 7. С. 870-880.

58. Пименова Е.А., Вараксин А.А. Нитроксидергические элементы кишечника модиолуса Modiolus kurilensis (Mollusca: Bivalvia) // Биол. моря. В печати.

59. Равен X. Оогенез. М.: Мир, 1964. С. 306

60. Реунова О.В. Простагландины Е2 и F2a и их значение в репродукции половых клеток приморского гребешка: Автореф. канд. дисс. Владивосток. 1995.

61. Реунова О. В., Коцюба Е.П., Мотавкин П.А. моноаминергическая иннервация гонады у некоторых двустворчатых моллюсков // Цитология. 1996. Т. 38. № 4/5. С. 488-493.

62. Реутов В.П., Каюшин Л.П., Сорокина Е.Г. Физиологическая роль цикла окиси азота в организме человека и животных // Физиология человека, 1994, т. 20, № 3, с. 165-174.

63. Реутов В. П., Сорокина Е. Г., Охотин В. Е., Косицын Н. С. Циклические превращения оксида азота в организме млекопитающих. М.: Наука. 1997. 157 с.

64. Реутов В. П., Сорокина Е. Г. NO-синтазная и нитритредуктазная компоненты цикла оксида азота // Биохимия. 1998. Т. 63. № 7. С. 1029-1038.

65. Садыхова И.А. Ресурсы промысловых донных моллюсков Мирового океана. М.: Наука. 1979. С. 192-195.

66. Сахаров Д.А. Генеалогия нейронов. М.: Наука. 1974. 183 с.

67. Хотимченко Ю.С. Влияние андренотропных и холинотропных веществ на рост, созревание и вымет яйцеклеток морского ежа Strongylocentrotus nudus II Биол. моря. 1982. №2. С. 57-63.

68. Хотимченко Ю.С. Моноаминергическая и холинергическая регуляция размножения у иглокожих и двустворчатых моллюсков. Автореф. дис. докт. биол. наук. М., 1989. 48 с.

69. Хотимченко Ю. С., Деридович И.И. Сезонная динамика биогенных моноаминов в центральной нервной системе морского ежа Strongylocentrotus intermedius и морской звезды Asterias amurensis II Биол. моря. 1988. № 2. С. 40-45.

70. Хотимченко Ю. С., Деридович И.И., Мотавкин П.А. Биология размножения и регуляция гаметогенеза и нереста у иглокожих. М.: Наука. 1993. 167 с.

71. Шеперд Г. Нейробиология. М.: Мир. 1987. 365 с.

72. Ansel P. Histogenese et structure de la glande hermaphrodide d'Helixpomatia II Arch. Boil. 1903. V. 19. P. 589-652.

73. Antheunisse L.I. Neurosecretory phenomena in the zebra mussel Dreissena polymorpha Pallas // Arch. Neerl. Zool. 1963. V. 15. P. 237-314.

74. Athanassakis I., Farmakiotis V., Aifantis I. et al. Expression of corticotropin-releasing hormone in the mouse uterus participation in embryo implantation // J. Endocrinol. 1999. V. 163. N2. P. 221-227.

75. Baranyi I.B., Salanki J. Studies on neurosecretion in the central nervous system of Anodonta cygnea II Acta Biol. Acad. Sci. hung. 1963. V. 13. P. 371-378.

76. Bascal Z. A., Montgomery A., Holden D.L., et al. Histochemical mapping of NADPH diaphorase in the nervous system of the parasitic nematode Ascaris suum II Parasitology. 1995. V. 110. P. 625-637.

77. Bayne B.L., Bubel A., Gabbot P.A., et al. Glicogen utilization and gametogenesis in Mytilus edulis L. // Mar. Biol. Lett. 1982. N 3. P. 89-105.

78. Beauchamp K.A. Reproductive ecology of the brooding hermaphroditic clam Lasaea subviridis // Mar. Biol. 1986. V. 93. N 2. P. 225-235.

79. Bicker G., Hahnlein I. NADPH-diaphorase expression in neurons and glial cells of the locust brain //Neuroreport. 1995. V. 6. P. 325-328.

80. Blute, T.A., Mayer, В., and Eldred, W.D. Immunocytochemical and histochemical localization of nitric oxide synthase in the turtle retina // Vis. Neurosci. 1997. V. 14. P. 717-729.

81. Bredt, D. S., Glatt, С. E., Hwang, P. M. et al. Nitric oxide synthase protein and mRNA are discretely localized in neuronal populations of the mammalian CNS together with NADPH diaphorase //Neuron. 1991. V. 7. P. 615-624.

82. Bredt D. S., Snyder S. N. Nitric oxide, a novel neuronal messenger // Neuron. 1992. V. 8. P. 3-11.

83. Brisson P., Regondaud J., Collin J. H. Systemes aminergiques des Gasteropodes pulmones. 2. Mise en evidence au carrefour des voies genitals par la methode FIF // Ann. Boil. Anim., biochim , biophys. 1977. V. 17. P. 1077-1086.

84. Broom. M.G. Gonad development and spawning in Anadara granosa (L.) (Bivalvia: Arcidae) // Aquaculture. 1983. V. 30. N 1/4. P. 211-219.

85. Brusle J. Aspects ultrastructuraux de l'innervation des gonads chez l'etoile de mer Asterina gibbosa P. // Ztschr. Zellforsch. 1969. Bd. 98. S. 88-98.

86. Buhimschi I.A., Yallampalli C., Buhimschi C.S., Saade G.R., Garfield R.E. Distinct regulation of nitric oxide and cyclic guanosine monophosphate production by steroid hormones in the rat uterus // Mol. Hum. Reprod. 2000. V. 6. N 5. P. 404-414.

87. Burnett А.1., Lowenstein С .J., Bredt D.S. et all. NO: A physiologic mediator of penile erection // Science. 1992. V. 257. P. 401-403.

88. Burnett А.1., Ricker D.D., Chamness S.L. et all. Localization Of NO-synthase in the reproductive organs of the male rats // Biol, and Reproduct. 1995. V. 52. P. 1-7.

89. Catania R. Structure et histochimie de la gaine periganglionnaire et du tissu conjonctif entourant le systeme nerveux central de Crepidula fornicata (Phil.) gasteropode prosobranche // C. r. Acad. Sci. 1974. V. D279. P. 1451-1454.

90. Chang Y. J., Matsutany Т., Mori K., Nomura T. Enzyme-histochemical localization of monoamine oxidase and acetylcholinesterase in the central nervous system of the scallop Patinopectenyessoensis II J. Mar. Biol. Lett. 1984. V. 5. P. 335-343.

91. Shinde U.A., Mehta A.A., Goyal R.K. Nitric oxide: a molecule of the millennium // Indian J. Exp. Biol. 2000. V. 38. N 3. P. 201-210.

92. Cho W.K., Stern S., Biggers J.D. Inhibitory effect of dibutyryl camp on mouse oocyte maturation in vitro // J. Exp. Zool. 1974. V. 187. N. 3 P. 383-386.

93. Choi S.K., Choi H.K. Kadono Okuda K., Taniai K., Kato Y., et al. Occurrence of novel types of nitric oxide synthase in the silkworm, Bombyx mori II Biochem. Biophys. res. Commun. 1995. V. 207. P. 452-459.

94. Choi Y. Raja S.N., Moore L.C., Tobin J.R. Neuropathic pain in rats is associated with altered nitric-oxide synthase activity in neural tissue // J. Neurological Sci. 1996. V. 138. N 1-2. P. 14-20.

95. Chwalisz K., Garfield R.E. Role of nitric oxide in implantation and menstruation // Hum. Reprod. 2000. V. 15. N S3. P. 96-111.

96. Cobbs C.S., Fenoy A., Bredt D.S., Noble-L.J. Expression of nitric-oxide synthase in the cerebral microvasculature after traumatic brain injury in the rat // Brain Res. 1997. V. 751. N2. P. 336-338.

97. Colasanti M., Lsuro G.M., Venturini G. NO in hydra feeding response // Nature. 1995. V. 374. P. 505.

98. Colasanti, M., Venturini, G. Nitric oxide in invertebrates // Mol. Neurobiol. 1998. V. 17. P. 157-174.

99. Cooke I.R.C., Edwards S. L., and Anderson C. R. The distribution of NADPH-diaphorase activity and immunoreactivity to nitric oxide synthase in the nervous system of the pulmonate mollusk Helix aspersa II Cell Tissue Res. 1994. V. 277. P. 565-572.

100. Cruz Т., Gaspar R., Donato A., Lopes C. Interaction between polyalkylcyanoaciylate nanoparticles and peritoneal-macrophages MTT metabolism, NBT reduction, and NO production // Pharm. Res. 1997. V. 14. N 1. P. 73-79.

101. Dakin M.J. The anatomy and physiology of Spondylus with a particular reference to the Lamellibranch nervous system // Proc. Roy. Soc. Lond. 1928. V. 103. P. 337354.

102. Dawson, T.M., Bredt, D.S., Fotuhi, M., Hwang, P.M., Snyder S.H., Nitric oxide synthase and neuronal NADPH-diaphorase are identical in brain and peripheral tissues, Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 88 (1991) 7797-7801.

103. De Biasi S., Vitellaro-zuccarello L., Blum I. Histochemical localization of monoamines and cholinesterases in Mytilus pedal ganglion // Histochemistri. 1984. V. 81. P. 561-565.

104. Demerval M. Recherches cytologiques et histochimiques sur les inclusions pigmentees des cellules des ganglions nerveux de la moule (Mytilus edulis L.) // C. R. Acad Sci. Paris. 1987. V. 305. N 12. P. 471-477.

105. Dhandapani K.M., Brann D.W. The role of glutamate and nitric oxide in the reproductive neuroendocrine system // Biochem. Cell Biol. 2000. V. 78. P. 165-179.

106. Dow J.A.,Maddrell S.H., Davies S.A., Skaer N.J., Kaiser K. A novel role for the nitric oxide-cGMP signaling pathway: the control of epithelial function in Drosophila II Am. J. physiol. 1994. V. 266. P. R1716-9.

107. Elofsson R., Carlberg M., Moroz L., Nezlin L., Sakharov D. Is nitric oxide (NO) produced by invertebrate neurons? // Neuroreport. 1993. V. 4. P. 279-282.

108. Elphick M.R., Green I.C., O'Shea M. Nitric oxide synthase and action in an invertebrate brain // Brain Res. 1993. V. 619. P. 344-346.

109. Elphick M.R., Kemenes G., Staras К., O' Shea M. Behavioral role for nitric oxide in chemosensory activation of feeding in a mollusk // J. Neurosci. 1994. V. 15. P. 7653-7664.

110. Elphick M.R., Melarange R. Nitric oxide function in an echinoderm // Biol. Bull.1998. V.194. P. 260-266.

111. Fahmy O.G. Oogenesis in the desert snail Eremina desertorum with specialreference to vitellogenesis I I Quart. J. Microsc. Sci. 1949. V. 90. P 159-181.

112. Farina M., Ribeiro M.L., Ogando D., Gimeno M., Franchi A.M. ILlalpha augments prostaglandin synthesis in pregnant rat uteri by a nitric oxide mediated mechanism // Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 2000. V. 62. N 4. P. 243247.

113. Fossier P. Blanchard В., Ducrocq C., Leprince C. et al. Nitric oxide transforms serotonin into an inactive form and this affects neuromodulation // Neuroscience.1999. V. 93. P. 597-603.

114. Franchi A.M., Chaud M., Rettori V. et al. Role of nitric oxide in eicosanoid synthesis and uterine motility in estrogenizedrat uteri // Proc. of the Nat. Acad, of Sci. USA. 1994. V. 91. P. 2287-2290.

115. Garthwaite J.,Boulton C.L. Nitric oxide signaling in the central nervous system // Annu. Rev. Physiol. 1995. V. 57. P.683-706.

116. Gawronska, В., Bodek, G., and Ziecik, A.J. Distribution of NADPH-diaphorase and nitric oxide synthase (NOS) in different regions of porcine oviduct during the estrous cycle // J. Histochem. Cytochem. 2000. V. 48. P. 867-876.

117. Gelperin A. Nitric oxide mediates network oscillation of olfactory interneurons in a terrestrial mollusk // Nature. 1994. V. 369. P. 61-63.

118. Gelperin A., Flores J., RaccuiaBehling F., Cooke I.R.S. Nitric oxide and carbon monoxide modulate oscillation of olfactory interneurons in a terrestrial mollusk // J. Neurophysiol. 2000. V. 83. N 1. P. 116-127.

119. Gersch M. Evolutionary aspects of neurosecretion in invertebrates // Nova acta Leopoldina. 1984. V. 56. N. 255. P. 51-64.

120. Ghigo D., Todde R., Ginsburg H., Costamagna C., Gautret P. et al. Erythrocyte stages of Plasmodium falciparum exhibit a high nitric oxide synthase (NOS) activity and release an NOS-inducing soluble factor II J. Exp. Med. 1995. V. 182. P. 677-688.

121. Gilloteaux J. Innervation of the anterior byssal retractor muscle in Mytilus edulis L. 1. Histology // Ztschr. Zellforsch. 1972. V. 124. P. 204-216.

122. Gilloteaux J. Innervation du muscle retracteur anterieur du byssus (ABRM) de Mytilus edulis L. et de Mytilus galloprovincialis Lmk. // Histochemistiy. 1978. V.55. P. 209-224.

123. Gilyov, F.D., About sensory innervation of gut of the Anodonta cellensis, Docl. Acad. Nauk SSSR, 87 (1952) 1059-1061.

124. Gorren A.C.F., Mayer B. The versatile and complex enzymology of nitric-oxide synthase // Biochem. Engl. TR. 1998. V. 63. N 7. P 734-743.

125. Greenberg M.J., Price D.A. Invertebrate neuropeptides: native and naturalized // Ann. Rev. Physiol. 1983. V. 45. P. 271-288.

126. Grumetto L., Wilding M., De Simone M.L. et al. Nitric oxide gates fertilization channels in ascidian oocytes through nicotinamide nucleotide metabolism // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1997. V. 23. P. 723-728.

127. Gubicza A., Zs.-Nagy I. Histological examination of the ganglions in the fresh water mussel with impregnation methods Anodonta cygnea L. // Ibid. 1965. V. 32. P. 11-15.

128. Guevara-Guzman, R., Emson, P.C., Kendrick, K.M. Modulation of in vivo transmitter release by nitric oxide and cyclic GMP // J. Neurochem. 1994. V. 62. P. 807-810.

129. Gustafsson M.K., Lindholm A.M., Terenina N.B., Reuter M. NO nerves in a tapeworm. NADPH-diaphorase histochemistry in adult Hymenolepis diminuta II Parasitology. 1996. V. 113. P. 559-565.

130. Guyard A. Nature endocrine des substances reglant la sexualisation de la gonade et de son fonctionnement chez les mollusques hermaphrodites et gonochoriques // Haliotis. 1971. V.l. P. 167-183.

131. Hadeishi Y., Wood R.I. Nitric-oxide synthase in mating-behavior circuitry of male syrian-hamster brain // J. Neurobiology. 1996. V. 30. N 4. P. 480-492.

132. Herrero M.B., Viggiano J.M., Martinez S.P., Gimeno M.F. Evidence that nitric oxide synthase is involved in progesterone-induced acrosomal exocytosis in mouse spermatozoa // Reprod., Fertility and Development. 1997. V. 9. P. 1-10

133. Hoffmann J.A., Hetru C., Lagueux M. et al. Steroid hormones in invertebrates // Nova acta Leopoldina. 1984. V. 56. N 255 P. 317-340.

134. Hope В. Т., Michael G. j., Knigge К. M., Vinsent S. R. Neuronal NADPH-diaphorase is a nitric oxide synthase // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. V. 88. P. 2811-2814.

135. Hope В. Т., Vinsent S. R. Histochemical characterization of neuronal NADPH-diaforase // J. Histochem. Cytochem. 1989. V. 37. P. 653-661.

136. Huang S., Kerschbaum H.H., Engel E., Hermann A. Biochemical characterization and histochemical localization of nitric oxide synthase in the nervous system of the snail, Helixpomatia // J. Neurochem. 1997. V. 69. P. 2516-2528.

137. Hurst, W.J., Moroz, L.L., Gillette, M.U., and Gillette, R. Nitric oxide synthase imunolabeling in the molluscan CNS and peripheral tissues // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1999. V. 262 P. 545-548.

138. Illanes-Buscher J., Lubet P. Etude de Tactivite neurosecretrice au cours du cycle sexuel annuel de la moule (Mytilus edulis L.) // Soc. Zool. De France. 1980. V. 105. N l.P. 141-145.

139. Jacklet J.W. Nitric oxide is used as an orthograde cotransmitter at identified histaminergic synapses // J. neurophysiol. 1995. V. 74. P. 891-895.

140. Japha J.L., Wachtel A.W. Transmission in the visceral ganglion of the fresh-water pelecypod, Elliptic* complanatus II Сотр. Biochem. and Physiol. 1969. V. 29. P. 561579.

141. Johansson K.U., Carlberg M. NADPH-diaphorase histochemistry and nitric oxide synthase activity in deutocerebrum of the crayfish, Pacifastacus leniusculus (Crustacea, Decapoda) // Brain Res. 1994. V. 649. P. 36-42.

142. Johansson K. U. I., Carlberg M. NO-synthase what can research on invertebrates add to what is already known // Advances Neuroimmunol. 1995. V. 5. N 4. P. 431442.

143. Joosse J. Endocrinology of mollusks // Colloq. Intern. CNRS. 1976. P. 107-123.

144. Kato T. Biochemical characteristics of individual neurons // Adv. Cell. Neurobiol. 1980. V. l.P. 119-176.

145. Klemm N. The distribution of biogenic monoamines in invertebrates // Neurobiol.; curr. Сотр. Approoches. Berlin. 1985. P. 280-296.

146. Korneev S.A., Park J.H., Oshea M. Neuronal expression of neural nitric-oxide synthase (Nnos) protein is suppressed by an antisense RNA transcribed from an nos pseudogene // J. Neurosci. 1999. V. 19. P. 7711-7720.

147. Cruz Т., Gaspar R., Donato A., Lopes C. Interaction between polyalkylcyanoacrylate nanoparticles and peritoneal-macrophages MTT metabolism, NBTreduction, and NO production // Pharm. Res. 1997. V. 14. N 1. P. 73-79.

148. Kuo R.C. Baxter G.T., Thompson S.H., Strieker S.A., Patton C., et al. NO is necessary and sufficient for egg activation at fertilization // Nature. 2000. V. 406. P. 633-636.

149. Kuzin В., Roberts I., Peunova N., Enikolopov G. Nitric oxide regulates cell proliferation during Drosophila development // Cell. 1996. V. 87. P. 639-649.

150. Leake L.D., Moroz L.L. Putative nitric oxide synthase (NOS)-containing cells in the central nervous system of the leech, Hirudo medicinalis: NADPH-diaphorase histochemistry // Brain. Res. 1996. V. 723. P. 115-124.

151. Lewin M.R., Walters E.T. Cyclic GMP pathway is critical for inducing long term sensitization of nociceptive sensory neurons // Nature Neurosci. 1999. V. 2. P. 18-23.

152. Lin M. F., Leise E. M. NADPH-diaphorase activity changes during gangliogenesis and metamorphosis in the gastropod mollusk Ilyanassa obsoleta II J. Сотр. Neurol. 1996. V. 374. P. 194-203.

153. Liu Y. Nitric oxide influences dopaminergic processes I I Advances Neuroimmunol. 1996. V. 6, Iss. 3. P. 259-264.

154. Longcamp D.D. Lubet P., Drosdowsky M. The in vitro biosynthesis of steroids by the gonad of the mussel (Mitilus edulis) // Gen. and Сотр. Endocrinol. 1974. V. 22 P. 116-127.

155. Loosanoff V.L. Development of the primary gonade sexual phases in Venus mercenaria L. // Biol. Bull. 1937. V. 72. N 3. P. 389-405.

156. Lubet P., Mathieu M., Lenoir F. Controle endocrinien de la reproduction chez les mollusques Bivalves // Oceanis. 1987. V. 3. n 3. P. 291-304.

157. Lubet P. Cycle neurosecretoire chez Chlamys varia L. et Mytilus edulis L. (Mollusques lamellibranches) // Ibid. 1955. V. D241. P. 119-121.

158. Lubet P. Effects de Г ablation des centres nerveux sur remission des gametes chez Mytilus edulis L. et Chlamys varia L. (Mollusques lamellibranches) // Ann. Sci. nature. Zool. Et boil. anim. 1956. V. 18. P. 175 184.

159. Lubet P. Incidences de Г ablation bilaterale des ganglions cerebroides sur la gametogenese et le developpement du tissu cojonctif chez la moule Mytilus galloprovincialis Lmk. (Moll. Lamell.) // C. r. Soc. Boil. 1965. V. 159. P. 397-399.

160. Lubet P., Streiff W., Silberzahn N., Drosdowsky M. Endocrinologie de la differenciation sexuelle chez les Mollusques Prosobranches // Bol. Zool. E Biol. mar. 1973.V. 30 P. 821-841.

161. Lubet P. Le cycle sexual et son control endocrinien chez quatre especes de Mollusques lamellibranches // Haliotis. 1978. V. 9 P. 99-105.

162. Lubet P. Essai cTanalyse experementale des perturbations produites par les ablations de ganglions nerveux chez Mytilus edulis L. et Mytilus galloprovincialis Lmk. (Moll. Lamell.) // Ann. Endocrinol. 1966. V. 27. P. 353-365.

163. Lubet P., Pijol J.P. Incidence de la neurosecretion sur Teuryhalinite de Mytilus galloprovincialis Lmk. Variation de la teneur en eau // Rapp. Comm. Intern. Explor. Sci. Mer Mediter. 1963. V. 18. P. 149-154.

164. Lubet P., Streiff W. Control neuroendocrine de la reproduction chez les Mollusques // J. Physiol. Fr. 1982. V. 76. N 6. P. 191-204.

165. Lucas A. Sex differentiation and juvenile sexuality in bivalve mollusks // Publ. Staz. Zool. Napoli. 1975. V. 39. P. 532-541.

166. Luckhart, S., Rosenberg, R., Gene structure and polymorphism. Of an invertebrate nitric oxide synthase gene, Gene, 232 (1999) 25-34.

167. Mac Donald I.A. Bennett Т., Fellows I.W. Catecholamines and the control of metabolism in man // Clin. Sci. 1985. V. 68. N. 6. P. 513-619.

168. Magnusson C., Hillensjo T. Inhibition of maturation and metabolism in rat oosytes by cyclic AMP // J. Exp. Zool. 1977. V. 201. N 1. P. 139-147.

169. Malyshev A. Y., Balaban P.M. Synaptic facilitation in Helix neurons depends upon postsynaptic calcium and nitric oxide // Neurosci. Lett. 1999. V. 261. P. 65-68.

170. Mathieu M., Van Minnen J. Mice on evidence par immunocytochimie de cellules neurocecretrices peptidergiques dans les ganglions cerebroides de la moule Mytilus edulis II C.B. Acad. Sci. 1989. V. 308. N 3. P. 489-494.

171. Martin R., Frosch D., Voigt K.H. Immunocytochemical evidence for melanotropin- and vasopressin like material in cephalopod neurohemaal organ // Gen. and Сотр. Endocrenol. 1980. V. 42. P. 235-243.

172. Martinez A., Riveros Moreno V., Polak J. M., Moncada S., Sesma P. Nitric oxide (NO) synthase immunoreactivity in the starfish Marthasterias glacialis 11 Cell Tissue Res. 1994. V. 275. P. 599-603.

173. Martinez A. Nitric oxide synthase in invertebrates // J. Histochem. 1995. V. 27. P. 770-776.

174. Matsumoto Т., Nakane M., Pollock J. S., Kuk J. E., Forstermann. A correlation between soluble brain nitric oxide synthase and NADPH-diaphorase activity is only seen after exposure of the tissue to fixative // Neurosci. Lett. 1993. V. 155. P. 61-64.

175. Matsutani Т. и Nomura T. Serotonin-like immunoreactivity in the central nervous system and gonad of the scallop, Patinopecten yessoensis // Cell Tissue Res. 1986. V. 244. N3. P. 515-517.

176. Mayer B. Medicine nitric-oxide as a signal molecule // Chemie in Unserer Zeit. 1998. V. 32. N 6. P. 338-339.

177. Mayer B.X., Mensik C., Krishnaswami S., Derendorf H. et al. Pharmacokinetic-pharmacodynamic profile of systemic nitric oxide-synthase inhibition with L-Nmma in humans // British J. Clinic. Pharmacol. 1999. V. 47. N 5. P. 539-544.

178. Mayer A.B., Ferraina S., Marconi B. et al. Early motor influences on visuomotor transformations for reaching a positive image of optic ataxia // Exp. Brain. Res. 1998. V. 123. N1-2. P. 172-189.

179. Mccann S.M., Mastronardi C., Walczewska A., Karanth S., et al. The role of nitric oxide in reproduction // Braz. J. Med. Biol. Res. 1999. V. 32. P. 1367-1379.

180. McCann S.M., Rettori V. The role of nitric oxide in reproduction // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1996. V. 211. P. 7-15.

181. Meyer W. NADPH diaphorase (nitric oxide synthase) in the central nervous system of spiders (Arachnida: Araneida) // Neurosci. Lett. 1994. V 165. P. 105-108.

182. Mirabile C.P .J., Massmann G.A., Figueroa J.P. Physiologic role of nitric oxide in the maintenance of uterine quiescence in nonpregnant and pregnant sheep // Am. J. Obstet Gynecol. 2000. V. 1. P. 191-198.

183. Moghadam H. F., Winlow W., Moroz L.L. Effects of hydrogen peroxide and nitric oxide (NO) on neuronal discharges and intracellular calcium concentration in the molluscan CNS // Acta Boil. Hung. 1996. V. 46. P. 145-153.

184. Mori К. Histochemical study on the localization and physiological significance of glucose-6-phosphate dehydrogenase system in the oyster during the stages of sexual maturation and spawning // Tohoku J. Agr. Res. 1967. V.17. P. 287-300.

185. Mori K. High-performance liquid-chromatographic analysis of biogenic-amines // J. Pharmacobio-Dynamics. 1982. V. 5. N 2. P. S28-S29.

186. Mori K., Tamate H., Imai T. Presence of Д5 -3j3-hydroxysteroid degidrogenase activity in the tissues of maturing oysters // Tohoku J. Arg. Res. 1964. V. 15 P. 269277.

187. Mori K., Osanai K., Sato R. Seasonal gonad changes in scallop under culture in Toni Bay, Iwata Prefecture // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1977. V. 43. N 1. P. 1-8.

188. Moroz L.L. Giant identified NO-releasing neurons and comparative histochemistry of putative nitrergic systems in gastropod mollusks // Microscopy Res. and Technique. 2000. V. 49. P. 557-569.

189. Moroz L. L., Chen D., Gillette M. U., Gillette R. Nitric oxide synthase activity in the molluscan CNS // J. Neurochem. 1996. V. 66, № 2. P. 873-876.

190. Moroz L.L., Gillette R. From Polyplacophora to Cephalopoda: comparative analysis of nitric oxide signaling systems in Mollusca // Acta Biol. Hung. 1995. V. 46. P. 169-182.

191. Moroz L.L., Gillette R., NADPH-diaphorase localization in the CNS and peripheral tissues of the predatory sea-slug Pleurobranchaea californica II J. Сотр. Neurol. 1996. V. 367. P. 607-622.

192. Moroz, L.L., Gillette, R., Sweedler J.V. Singl-cell analyses of nitrergic neurons in simpler nervous systems // J. Exp. Biol. 1999. V. 202. P. 333-341.

193. Moroz L. L., Park J.H. Nitric oxide modulates the central respiratory patterns in Lymnaea stagnalis II J. Physiol. 1993 a. V. 473. P. 188.

194. Moroz L. L., Park J.H., Winlow W. Nitric oxide activates buccal motor patterns in Lymnaea stagnalis II NeuroReport. 1993. V. 4. P. 643-646.

195. Moroz L.L., Roger I., Syed N.I. et al. Abundance of putative NO-synthesizing cells in the oesophagus of gastropod mollusks // J. Physiol. 1993 b. V. 473. P.247.

196. Moroz L. L., Winlow W., Turner R.W., et al. Nitric oxide synthase-immunoreactive cells in the CNS and periphery of Lymnaea II NeuruReport. 1994. V. 5. P. 1277-1280.

197. Motavkine P.A., Varaksine A.A. La reproduction chez les mollusques Bivalves. Role systeme nerveux et regulation. IFREMER. Brest. 1989. 250 p.

198. Mothet, J.P., Fossier, C.M., Taus, L., Baux, G. Opposite actions of nitric oxide on cholinergic synapses: Which pathway? //Neurobiol. 1996. V. 93.P. 8721-8726.

199. Motto A.B., Gimeno M.A.F. Nitric oxide participates in the corpus luteum regression in ovaries isolated from pseudopregnant rats // Canadian J. Physiol, and Farmacol. 1997. V. 75. p. 1335-1339.

200. Mukhtarov M.R., Vyskocel F., Urazaev A.K., Nikolsky E.E. Non-quantal acetylcholine release in increased after nitric oxide synthase inhibition // Physiol, res. 1999. V. 48. P.315-317.

201. Muller U. Ca /calmodulin-dependent nitric oxide synthase in Apis mellifera and Drosophila melanogaster II Eur. J. Neurosci. 1994. V. 7. P. 1362-1370.

202. Muller U., Bicker G. Calcium-activated release of nitric oxide and cellular distribution of nitric oxide synthesizing neurons in the nervous system of the locust // J. neurosci. 1994. V.14. P. 7521-7528.

203. Muller U., Buchner E. Histochemical localization of NADPH-diaphorase in the adult Drosophila brain. Is nitric oxide a neuronal messenger also in insects? I I Naturwissenschaften. 1993. V. 80. P. 524-526.

204. Muller U. The nitric oxide system in insects // Prog. Neurobiol. 1997. V. 51. P. 368-381.

205. Murad F. The role of nitric oxide in modulating guanylyl cyclase // Neurotransmissions. 1994. V. 10. P. 1-4.

206. Nagabhushanam R. Neurosecretory cycle and reproduction in the Bivalve, Crassostrea virginica II Indian. J. Exp. Biol. 1963. V. 1 P. 161-162.

207. Nagabhushanam R. Neurosecretory cell types in the central nervous system of the lamellibranch mollusc, Rangia cuneata (Gray) II Sci. And cult. 1965. V. 31. P. 156157.

208. Nagabhushanam R., Lomte V.S. Studies on neurosecretion in the mussel, Pareysia corrugata //Broteria. Cienc. Nature. 1973. V. 42. P. 53-64.

209. Nilsson, G.E., Soderstrom, V., Comparative aspect on nitric oxide in brain and its role as a cerebral vasodilator, Сотр. Biochem. Physiol., A, Physiol., 118 (1997) 949958.

210. Nimitz M.A., Giese A.C. Histochemical changes correlated with reproductive activity and nutaition in the chiton Katharina tunicata И Quart. J. Microsc. Soc. 1964. V. 105. N4. P. 481-495.

211. Nomura Т., Ogata H. Distribution of prostaglandins in the animals Kingdom // Biochim. etBiophys. acta. 1976. V. 431. P. 127-131.

212. Odiete W.O. The fine structure of the neurons in the mid-dorsal lobes of the visceral ganglion of the lamellibranch mollusk Scrobicularia plana (Da Costa) // J. Molluscan stud. 1978. V. 44. P. 305-321.

213. Ogata H., Nomura Т., Hata M. Prostaglandin biosinthesis in the tissue homogenates of marine animals // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish.1978. V. 44. P.1367-1370.

214. Ono K., Osada M., Matsutahi T. et al. Gonadal prostaglandin F2„ profile during sexual maturation in the oyster, Crassostrea gigas Thunberd // Mar. Boil. Lett. 1982. V. 3. N 4/5. P. 223-230.

215. Osada M., Nishikawa M., Nomura T. Involvement of prostaglandins in the spawning of the scallop, Patinopecten yessoensis 11 Сотр. Biochem. Physiol. 1989. V. 94C. P. 595-601.

216. Ota H., Igarashi S., Oyama N., Suzuki Y., Tanaka T. Optimal levels of nitric oxide are crucial for implantation in mice // Reprod. Fertil. Dev. 1999. V. 11. N 3. P. 183-188.

217. Painter S.D., Greenberg M.J. A survey of the responses of Bivalve hearts to the molluscan neuropeptide FMRF-amide and 5-hydroxytryptamine // Biol. Bull. 1982. V. 162. N3. P. 311-332.

218. Park J.N., Straub V.A., Ол Shea M. Anterograde signaling by nitric oxide characterization and in vitro reconstruction of an identified nitrergic synapse // J. Neurosci. 1998/V. 18. P. 5463-5476.

219. Perry S J., Staub V.A., Kemenes G., et al. Neural modulation of gut motility by myomodulin peptides and acetylcholin in the snail Lymnae II J. Neurophysiol. 1998. V. 79. P. 2460-2474.

220. Pisu M.B., Conforti E., Fenoglio D. et al.Nitric oxide-containing neurons in the nervous ganglia of helix aspersa during rest and activity: immunocytochemical and enzyme histochemical detection // J. Сотр. Neurobiol. 1999. V. 409. P. 274-284.

221. Price D.A., Greenberg M.J. The structure of a molluscan cardioexcitatory neuropeptide // Science. 1977. V. 197. P. 670-671.

222. Quayle D.B. Pacific oyster culture in British Columbia // Bull. Fish. Res. Bosrd Canada. 1969. V. 27. P. 1-192.

223. Ramis I., Lorente J., Rosellocatafau J., Quesada P., Gelpi E. Differential activity of nitric-oxide synthase in human nasal-mucosa and polyps // Europ. Respirator. J. 1996. V. 9. N2. P. 202-206.

224. Regulski M., Tully T. Molecular and biochemical characterization of d NOS: a Drosophila Ca2+/calmodulin-dependent nitric oxide synthase I I Proc. Natl. acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 9072-9076.

225. Reutov V.P., Kayushin L.P., Sorokina E.G. Physiological role of nitric oxide cycle in human and animal organism // Human Physiol. 1994. V. 20. P. 219-225.

226. Ribera J., Marsal J., Casanovas A. et al. Nitric oxide synthase in rat neuromuscular junction and in nerve terminals of Torpedo electric organ: its role as regulator of acetylcholine release // J. Neurosci. Res. 1998. V. 51. P. 90-102.

227. Roughly T.C. Monoacious oysters //Nature. 1929. V. 124. P. 793.

228. Rosell N.C. Biology and ecology of Placunaplacenta Linne // NSTA Technol. J. 1982. V. 7.N3.P. 4-23.

229. Salanki J., Hiripi L., Nemecsok J. Regulation of periodicity by monoamines in the mussel Anodonta cygnea L. // J. Interdiscipl. Cycle Res. 1974. V. 5. N 3-4. P.277-285.

230. Salleo A., Musci G., Barra P.F.A., Calabrese L. The discharge machanism of acontial nematocytes involves the release of nitric oxide // J. exp. Boil. 1996. V. 199. P. 1261-1267.

231. Sanchis C.A., Zambrano D. The occurrence of bipolar neurons in the abdominal mass ganglia of a pulmonate mollusc (Cryptomphallus aspersa) I I Experimentia. 1969. V. 25. P. 385-386.

232. Sandor T. Steroids in invertebrates // Advances invertebrate reproduction. N.Y.:Elsevier North Holland. 1981. P. 81-96.

233. Schmidt H.H.H.W., Hofmann H., Ogilvie P. The role of nitric oxide in physiology and pathophysiology //Heidelberg; Springer. 1995. P. 75-86.

234. Schoemakers H.J.N., Dieleman s.J. Progesterone and estron levels in the ovaries, pyloric ceca and perivisceral fluid during the annual reproductive cycle of starfish, Asterias rubens // Gen. and Сотр. Endocrinol. 1981. V. 43. P. 63-70.

235. Seidel C., Bicker G. Colocalization of NADPH-diaphorase and GABA1.munoreactivity in the olfactory and visual-system of the locust // Brain Res. 1997. V. 769. N 2. P. 273-280.

236. Selwood L. Interrelationships between developing oocytes and ovarian tissues in the chiton Sypharochiton septentriones (Ashby) (Mollusca, Polyplacophora) // J. Morphol. 1968. V. 125. P. 71-104.

237. Shapiro A.C., Wu D., Meydani S.N. Eicosanoids derived from arachidonic and eicosapentaenoic acids inhibit T-cell proliferative response // Prostaglandins. 1993. V. 45. N3. P. 229-240.

238. Shuman E.M., Madison D.V. Nitric oxide and synaptic function // Annu. Rev. neurosci. 1994. V. 17. P. 153-183.

239. Sotirov E., Dobreva G., Noeva A., Papasova M. Nitric oxide modulates cholinergic neurotransmission in cat duodenum // Gen Pharmacol. 1996. V. 27. N 2. P. 395-398.

240. Spagnolia Т., Wilkens L.A. Neurobiology of the Scallop // Mar. Behav. Physiol. 1983. V. 10. P. 23-55.

241. Srisawat R., Ludwig M., Bull P.M., Douglas A.J. et al. Nitric oxide and the oxytocin system in pregnancy // J. Neurosci. 2000. V.17. P. 6721-6727.

242. Stefano G.B., Catapane E.G. Norepinefrine: its presence in the central nervous system of the bivalve mollusc, Mytilus edulis II J. Exp. Zool. 1980. V. 214. N. 2. P. 209-213.

243. Stefano G.B., Leung M.K. Purification of opioid peptides from molluscan ganglia // Cell, and Mol. Neurobiol. 1982. V. 2. N. 4. P. 347-352.

244. Stefano, G.B., Salzet, В., Rialas, C.M. et al. Morphine- and anandamide-stimulated nitric oxide production inhibits presynaptic dophamine release // Brain Res. 1997. V. 763. P. 63-68.

245. Stickney A.P. Histology of reproductive system of the soft-shell clam (Mya arenarid)!! Biol. Bull. 1963. V. 125. P. 344-351.

246. Streiff W. Etude endocrinologique du determinisme du cycle sexuel chez un Mollusque Hermaphrodite protandre, Calyptraea sinensis II Ann. Endocrinol. (Paris). 1967. V.28. P. 641-656.

247. Stuehr D.J., Cho H.J., Kwon N.S. et al. // Ibid. 1991. V. 88. P. 7773-7777.

248. Sumida C., Graber R., Nunez E. Role of fatty acids in signal transduction -modulators and messengers // Prostaglandins Leukotrienes and Eeesnt. Fatty Acids. 1993. V.48.N l.P. 117-122.

249. Talavera E., Martinez Lorenzana G., Leon Olea M., et al. Histochemical distribution of NADPH-diaphorase in the cerebral ganglion of the crayfish Cambarellus montezumae II Neurosci. Lett. 1995. V. 187. P. 177-180.

250. Terenina N.B. Onufiriev M.V. Gulaeva N.V. et al. A radiometric analysis of nitric oxide synthase activity in Hymenolepis diminyta I/ Parasitology. 2000. V. 120. P. 191195.

251. Tiboni G.M., Giampietro F. Inhibition of nitric oxide synthesis causes preterm delivery in the mouse // Hum. Reprod. 2000. V. 15. N 8. P. 1838-1842.

252. Toullec J.Y., Lenoir F., Vanwormhoudt A., Mathieu M. Nonspecies specific growth-factor from cerebral ganglia of Mytilus edulis И J. Exp. Marine Biol, and Ecol. 1988. V. 119. N2. P. 111-117.

253. Truman J.V., De Vente J., Ball E.E. Nitric oxide-sensitive guanilate cyclase activity is associated with the maturational phase of neuronal development in insects // Development. 1996. V. 122. P. 3949-3958.

254. Umiji S. Neurosecrecao em Mytilus perna (mollusco-lamelibranquio) // Bol. Fac. fil., cienc. e let. Univ Sao Paulo. Zool. e biol. mar. 1969. V. 26. P. 181-254.

255. Vicente N. Etude histologique et histohemique du systeme nerveux central, des rhinophores et de la gonade chez les gasteropodes opisthobranches // Tethys. 1969. V.l.P. 833-873.

256. Wabnitz R.W., Wachtendonk D. Evidence for serotonin (5-hydroxytryptamine) as transmitter in the penis retractor muscle of Helix pomatia L. I I Experimentia. 1976. V. 32. P. 707-709.

257. Walker R.G. Neurohormones and neurotransmittersin invertebrates // Nova acta leopold. 1984. V. 56. N 255. P. 161-194.

258. Wattez C. Influence du complexe cephalique sur revolution, en culture in vitro, de gonads infantiles et yuveniles d'Arion subfuscus // Gen. And Сотр. Endocrinol. 1978. V. 35. P. 360-374.

259. Welsh J.H. Catecholamines in the invertebrates // Handb. Exp. Pharmacol. 1972. V. 33. P. 79-109.

260. Wendelaar Bonga, S.E. Ultrastructure and histochemistry of neurosecretory cells and neurohaemal areas in the pond snail Lymnaea stagnalis I I Ztschr. Zellforsch. 1970. V. 108. P. 190-224.

261. Wildemann В., Bicker G. Nitric oxide and cyclic GMP induce vesicle release at Drosophila neuromuscular junction // J. Neurobiol. 1999.V. 39. N 3. P. 337-346.

262. Woods F.N. History of germ cell in Sphaerium striatinum (Lam.) //J. Morphol. 1931. V. 51. P. 545-596.

263. Woods F.N. Keimbahn determinants and continuity of the germ cells in Sphaerium striatinum (Lam.) // Ibid. 1932. V. 53. P. 345-365.

264. Worden M.K. Modulation of vertebrate and invertebrate neuromuscular junctions // Current Opinion in Neurobiol. 1998. V. 8. P. 740-745.

265. Zerani M., Gobbetti A. No sexual-behavior in newts // Nature. 1996. V. 382. N 6586. P. 31-32.

266. Zheng J., Li Y., Weiss A.R., Bird I.M., Magness R.R. Expression of endothelial and inducible nitric oxide synthases and nitric oxide production in ovine placental and uterine tissues during late pregnancy // Placenta. 2000. V. 21. N 5-6. P. 516-524.

267. Zs.-Nagy I. Electron microscopic observations of the cerbral ganglion of the fresh water mussel (Anodonta cygnea L.) //Ann. Boil. Tihany. 1964. V. 31. P. 147-152.

268. Zs.-Nagy I. New data on the anatomy of the visceral ganglion of fresh water mussel // Ann. Boil. Tihany. 1966. V. 33. P. 103-110.

269. Zs.-Nagy I., Salanki J. Histochemical investigations of cholinesterase in different mollusks with reference to functional conditions // Nature. 1965. V. 206. P. 842-843.