Бесплатный автореферат и диссертация по биологии на тему

Кинетика перекисного окисления липидов в гетерогенных системах

ВАК РФ 03.00.02, Биофизика

Содержание диссертации, кандидата биологических наук, Шаров, Виктор Сергеевич

I СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

ЕВЕЩЕНИЕ.

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Основные методические подходы к изучению ПОЛ в мембранных структурах.

1.1.1. Общая схема процессов цепного свободнорадикального окисления ШК в лишщной фазе мембран.

1.1.2. Экспериментальные исследования кинетики ПОЛ в мембранах.

1.1.2.1. Реакции инициирования цепей.

1.1.2.2. Реакции разветвления цепей.;

1.1.2.3. Реакции продолжения цепей.

1.1.2.4. Реакции обрыва цепей.

1.1.3. Математическое моделирование кинетики ПОЛ в биомембранах.

1.2. ХЛ как метод изучения кинетики ПОЛ в мембранных системах.

1.2.1. Свободнорадикальные механизмы ХЛ при ПОЛ в биологических системах.

1.2.2. Химические активаторы ХЛ.

1.2.3. Физические активаторы в исследовании механизмов ХЛ.;.

1.2.4. Информативность хемилюминесцентного метода изучения свободнорадикальных реакций ПОЛ.

ГЛАВА П. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛВДВАНШ.

П.1. Выделение митохондриальных мембран.

П.2. Приготовление липосом из яичных фосфолипидов.

П.З. Получение "уфасом" из линоленовой кислоты.

П. 4. Индукция ПОЛ в суспензии биомембран ионами Ре . 96 П. 5. Индукция ПОЛ в суспензии биомембран УФ-облучением или под действием видимого света.

П.6. Ферментативные системы, продуцирующие свободные радикалы.

П.7. Приготовление активаторов ХЛ.

П. 8. Измерение ХЛ.

П.9. Непрерывное измерение концентрации Fe

П. 10. Спектральные измерения.

П. II. Полярографическое измерение концентрации кислорода

П. 12. Определение Продуктов ПОЛ.

П. 13. Облучение суспензии липосом СЩ-излучением миллиметрового диапазона длин волн.

П.14. Математическое моделирование кинетики ПОЛ в биомембранах.

П.15. Статистическая обработка экспериментальных результатов.

ГЛАВА Ш. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ.III

Ш.1. Математическое моделирование хемшпоминесцентных реакций ПОЛ в биомембранах.III

Ш.1.1. Уточнение и дополнение математической модели кинетики ПОЛ для гомогенной системы.III

HU 1.2. Влияние гетерогенности системы на параметры кинетической модели процессов ПОЛ.

Ш.2. Изучение роли липидных и водных радикалов в процессах ПОЛ методом ХЛ.

Ш.2.1. Исследование вклада липидных и водных радикалов в хемилюминесценцию при ПОЛ биомембран с помощью активаторов ХЛ.

Ш.2.2. Изучение роли водных радикалов в кинетике ХЛ при ПОЛ биомембран с помощью ингибиторов свободнорадикальных реакций.

Ш.З. Влияние СВЧ излучения низкой интенсивности на ПОЛ в суспензии мембран.

Ш.3.1. Обоснование задачи исследования.

Ш.З.2. Влияние СВЧ излучения миллиметрового диапазона длин волн на скорость накопления продуктов ПОЛ в суспензии липосом при различных способах инициирования.

Ш.3.3. Роль перемешивания в протекании процессов ПОЛ. 192 Ш.З.4. Конвекционный механизм действия СВЧ излучения на ПОЛ в суспензии биомембран.

Введение Диссертация по биологии, на тему "Кинетика перекисного окисления липидов в гетерогенных системах"

Перекисное окисление липидов (ПОЛ) в настоящее время считают одним из ведущих механизмов молекулярной патологии мембран. Повреждения структуры и функций различных мембранных систем при протекании процессов ПОЛ были изучены в многочисленных экспериментальных исследованиях.

Скорость окислительной деструкции липидов - основного строительного материала биологических мембран - представляет интерес при изучении самых различных процессов в биологических системах и физико-химических воздействий на них. Но количественный анализ кинетики ПОЛ в биологических системах до сих пор остается нерешенной проблемой. Дело в том, что традиционные экспериментальные и теоретические методы химической кинетики непригодны для изучения кинетики реакций в сложных гетерогенных системах, к которым относятся биологические мембраны в водном окружении и другие натив-ные липид-содержащие системы.

Ситуация изменилась с появлением в арсенале биологов метода измерения хемилюминесценции (ХЛ) - сверхслабого свечения, сопровождающего реакции окисления органических соединений молекулярным кислородом. Наряду с высокой чувствительностью и малоинерционностью, этот метод обладает уникальными свойствами: применение его не требует деструкции изучаемых объектов (даже при исследовании целых органов) и процесс измерения не вносит никаких возмущений в изучаемые процессы. Перечисленные достоинства, а также относительная простота метода обусловили его широкое применение в медико-биологических исследованиях и в практической медицине (для клинической диагностики и судебно-медицинской экспертизы).

Однако механизмы ХЛ в биологических системах до сих пор остаются неясными. Измеряемые величины интенсивности свечения зависят не только от скорости изучаемых хемилюминесцентных реакций, но и от ряда факторов, не поддающихся точному учету. Кроме того, во многих системах при физиологических условиях уровень ХЛ очень низок. Все это ограничивало применение метода для изучения кинетики ПОЛ в мембранах.

Одним из наиболее перспективных путей повышения информативности хемилюминесцентного метода и расширения возможностей его практического использования, по всей видимости, является применение активаторов ХЛ, способных избирательно усиливать свечение отдельных хемилюминесцентных реакций в гетерогенных системах. Этот методический подход впервые был использован в нашей работе для изучения механизмов ХЛ при ПОЛ, для экспериментального исследования кинетики ПОЛ в мембранах и анализа кинетических особенностей протекания процессов ПОЛ в гетерогенных системах (мембранах митохондрий и липосомах).

В работе экспериментально и с помощью математического моделирования были получены константы скоростей элементарных реакций ПОЛ в митохондриальных мембранах. Впервые проведена оценка роли гетерогенности системы в кинетике ПОЛ; предложены соотношения, связывающие константы скоростей реакций в липидной фазе мембран и эффективные константы для всей суспензии (измеренные в эксперименте). Исследован механизм ХЛ при ПОЛ в мембранах и проведена оценка вклада хемилюминесцентных реакций липидных и водных радикалов в интегральную ХЛ мембранных систем. Обнаружено ускорение ПОЛ в суспензии липосом под действием СВЧ излучения низкой интенсивности. Изучен физико-химический механизм этого эффекта, основанный на ускорении переноса кислорода в гетерогенной системе к реакционным центрам в мембранах.

Полученные в диссертации результаты говорят о важности учета гетерогенности системы при анализе особенностей протекания процессов ПОЛ и сопровождающей его ХЛ в биологических мембранах.

Заключение Диссертация по теме "Биофизика", Шаров, Виктор Сергеевич

У. ВЫВОДЫ

I. В суспензии митохондриальных мембран экспериментально определены константы скоростей реакций в процессе цепного свободнорадикального окисления липидов: окисления F&z+ кислородом k0[OzJ =7,0.Ю~4 СГ1), разветвления цепей ( кр =3,2.102М~1СГ1) и квадратичного обрыва цепей ( к& =1,1.10^ М"^ С""^). Математическое моделирование системы реакций ПОЛ с помощью ЭВМ позволило определить константу скорости обрыва цепей на ферроионах ( к9 = о т т

5.10° М~ С х) и константу спонтанного разложения гидроперекисей ( к^ =3,3.10""^ С-1), отношение констант продолжения цепей и обрыва на ферроионах ( къ[£Н]/кд =1,3.IO""4 М), а также величину эффективности инициирования цепей при окислении Рег+ ( $ =2.10"^). Показано хорошее совпадение рассчитанной кривой ХЛ с экспериментальной кинетикой развития "медленной вспышки" ХЛ.'

2. Предложены формулы для оценки реальных констант скоростей реакций ПОЛ в мембранной фазе, с учетом гетерогенности распределения реагентов в суспензии биомембран.

3. Изучено действие активаторов ХЛ: эозина, люминола, дибром-антрацена и комплексных соединений и TS 3+ с органическими лигандами. Наиболее эффективным в мембранной системе является о ^ комплекс с и -тетрациклин (который усиливал ХЛ более чем на

3 порядка). Активатор не влиял на скорость реакций ПОЛ в мембранах, но уменьшал антиоксидантный эффект Fe z+ -ионов. з+

4. Обнаружено, что люминол и Ей -тетрациклиновый комплекс активируют различные группы хемилюминесцкнтных реакций при ПОЛ, индуцированном ферроионами в липосомах; их можно отнести соответственно к водной и липидной фазе. Спектры ХЛ этих двух активаторов не перекрываются и легко могут быть разделены при их совместном применении. Предложен метод одновременного контроля за интенсивностью реакций водных и липидных радикалов при перекисном окислении липидов в суспензии биомембран.

5. С помощью этого метода, а также ингибиторов реакций радикалов воды обнаружено, что ХЛ суспензии липосом, индуцированная ферроионами, на стадии "медленной вспышки" обусловлена реакциями липидных радикалов в мембранах. Вклад хемилюминесцентных реакций в водной фазе (с участием радикалов воды) в неактивированную ХЛ незначителен, а влияние этих реакций на процессы в липидной фазе на стадии "медленной вспышки" несущественно.

6. Установлено, что СВЧ излучение при различных исследованных длинах волн в диапазоне 4-8 мм и уровнях мощности порядка

I мВт/см2 ускоряет накопление продуктов ПОЛ в тонких неперемеши-ваемых образцах суспензии липосом при различных способах инициирования. Эффект объясняется ускорением переноса молекулярного кислорода в водной фазе к реакционным центрам ПОЛ за счет конвекции в образцах, вызванной СВЧ-облучением.

ЗУ. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Роль гетерогенности мембранных систем в кинетике процессов ПОЛ и сопровождающей его ХЛ

Попытаемся сопоставить данные, полученные в трех разделах экспериментальной части нашей диссертации.

В первом разделе была изучена схема реакций, определяющих скорость процесса ПОЛ. Математическое моделирование, дополненное экспериментальными измерениями, позволило оценить роль отдельных реакций, а следовательно, и отдельных реагентов, в регуляции ПОЛ; были определены константы ключевых реакций процесса для гомогенного раствора, которые являются количественным выражением роли Рея+ , 02, R-H , радикалов воды, R.0 2 f НО ОН и антиоксидантов в кинетике ПОЛ и сопровождающей его ХЛ. Однако произведенные нами оценки показали, что ранее применявшееся математическое описание процессов ПОЛ в биологических мембранах без учета гетерогенности системы не вполне адекватно по двум причинам. Во-первых, реагенты распределены в суспензии биомембран не равномерно; реальные концентрации соединений, участвующих в реакциях в липидной фазе мембран, очень сильно отличаются от средних концентраций в объеме суспензии. Во-вторых, кинетика быстропротекащих свободнорадикальных реакций на некоторых стадиях процесса ПОЛ может быть лимитирована скоростью поступления реагентов из водной фазы в мембраны.

Теоретический анализ влияния гетерогенности системы на параметры математической модели кинетики ПОЛ показал, что реальные значения констант скоростей реакций в липидной фазе мембран могут быть примерно на три порядка ниже, чем эффективные значения, полученные для мембранной суспензии (в приближении равномерного распределения реагентов в системе). Оценка величины фактора , характеризующего эффективность инициирования цепей окисления липидов за счет водных радикалов, которые образуются

2 + при окислении Fe , также подтверждает значение гетерогенности мембранной системы в кинетике ПОЛ. Очень низкая велис чина jj =2.10 свидетельствует о достаточно слабой взаимосвязи реакций радикалов воды и липидов, приводящих к первоначальному накоплению липидных перекисей. В то же время реакции ионов железа с кислородом и водными радикалами во время латентного периода играют важную роль в кинетике ПОЛ из-за триггерной функции Fez+ , т.к. в результате этих реакций происходит снижение концентрации ферроионов до критической, после чего развиваются цепные процессы окисления липидов в мембранах ("медленная вспышка"). Таким образом, учет пространственного разделения реагентов ПОЛ и реальных концентраций их в гетерогенной системе приводит к очень существенным отличиям математической модели, кинетики ПОЛ. в. мембранам от ранее предложенной модели (без учета гетерогенности) [24,67] . По-видимому-, полученные нами соотношения (табл.3) более точно отражают реальную кинетику ПОЛ в мембранах;

Все сказанное выше относится к достаточно медленным стадиям кинетики изучаемых процессов (латентный период, "медленная вспышка", стационарное свечение). В случае "быстрой вспышки" использованная математическая модель ПОЛ оказалась неадекватной (рис.12), т.к. необходимо учитывать еще и скорость поступления л ^

Fe (а, возможно, 0? и других реагентов) в мембраны, которая может лимитировать скорость всего процесса. Анализ кинетики быстропротекающих свободнорадикальных процессов в гетерогенных системах должен быть задачей дальнейших исследований.

Во второй части мы экспериментально исследовали вопрос о роли водных радикалов в кинетике ХЛ при ПОЛ в мембранах. Были Были поставлены две задачи: I) оценить вклад хемилюминесцентных реакций водных и липидных радикалов в интегральную ХЛ; 2) изучить влияние водных радикалов на скорость свободнорадикальных процессов в мембранах, т.е. определить эффективность инициирования ПОЛ. Для решения этих задач были использованы ингибиторы реакций водных радикалов, а также впервые предложенный нами метод активаторов ХЛ, избирательно усиливающих свечение липидных и водных радикалов в мембранных системах.

Результаты экспериментов подтвердили представления, полученные в математической модели кинетики ПОЛ и сопровождающей его ХЛ: I) вклад неактивированного свечения водных радикалов незначителен, а основная роль в излучении ХЛ при ПОЛ мембран принадлежит хемилюминесцентным реакциям липидных, по всей вероятности,

НО % радикалов; 2) эффективность инициирования ПОЛ в мембранах л водными радикалами 02 и ОН невысока (по крайней мере теми радикалами, которые доступны действию водорастворимых ингибиторов). Таким образом, ведущая роль в кинетике ПОЛ в суспензии мембран принадлежит ионам Гег+ , непосредственно взаимодействующим с липидными радикалами и перекисями. Это согласуется с эксперимента® ными оценками, произведенными другими исследователями в аналогичных системах [237] . Речь идет, безусловно, только о процессах ПОЛ в суспензии биомембран, инициированных ферроионами и при определенных условиях их протекания (рН, составе буферных растворов, скорости аэрирования, температуре и т.д.). В других системах механизмы, определяющие кинетику ПОЛ, могут быть совершенно иными.

Это подтверждают результаты, приведенные в третьем разделе экспериментальной части диссертации. Обнаружено, что в некоторых гетерогенных системах (например, в тонких неперемешиваемых слоях суспензии липосом) независимо от способа инициирования скорость ПОЛ лимитируется скоростью диффузии растворенных в воде реагену тов, главным образом, кислорода, к реакционным центрам.* Эта экспериментальная модель интересна тем, что она воспроизводит условия протекания биохимических процессов в реальных гетерогенных системах, например, в клетках и тканях.

В таких условиях скорость процесса ПОЛ в мембранах можно изменить путем воздействия на скорость переноса кислорода (а, возможно, и других водорастворимых реагентов) в водной фазе. Таков, по-видимому, механизм ускорения ПОЛ при облучении тонких неперемешиваемых слоев суспензии липосом миллиметровым СВЧ излучением низкой интенсивности. Интересно отметить, что поглощение СВЧ излучения суспензий биомембран отличается сильной неоднородностью: излучение практически не поглощается липидной фазой и очень интенсивно поглощается водой. Неравномерное выделение СВЧ энергии в образцах приводит к возникновению градиентов температуры и конвективному перемешиванию суспензии, ускоряющему реакции ПОЛ в мембранах.

Таким образом, особенности кинетики ПОЛ в мембранных системах обусловлены, с одной стороны, пространственным разделением реагентов ПОЛ и компартментализацией процессов, протекающих в липидной и водной фазах, а с другой стороны, их взаимосвязью. Как было показано, оба этих аспекта гетерогенности мембран во многом определяют кинетику процессов ПОЛ и сопровождающей его хемилюминесценции.

Библиография Диссертация по биологии, кандидата биологических наук, Шаров, Виктор Сергеевич, Москва

1. Александрова Т.А., Арчаков А.И., Владимиров Ю.А., Оленев В.И., Панченко Л.Ф. Хемилюминесценция, сопровождающая образование липидных перекисей в микросомах, Биофизика, 1971, т. 16, № 5, с.946-949.

2. Архангельская Н.К. Сверхслабая хемилюминесценция модельных и биологических систем. Известия АН Эст.ССР, Биология, 1982, т.31, № 2, с.65-78.

3. Арчаков А.И. Микросомальное окисление М.': Наука, 1975.- 327 с.

4. Барковский В.Ф., Горелик С.М., Городенцева Т.В. Физико-химичес кие методы анализа. М.: Высшая школа, 1972, с.224.

5. Барлтроп Дк., Койл Дд. Возбужденные состояния в органической химии. М.: Мщ>, 1978, 446 стр.

6. Беляков В.А., Васильев Р.Ф. Межмолекулярный перенос энергии в хемилюминесцентной системе окисления органической веществ в растворе. В сб. : Молекулярная фотоника, Л.: Наука, 1979, с.70-86.

7. Беляков В.А., Васильев Р.Ф. .Федорова Г.Ф. О переносе энергии с химически возбужденных карбонильных соединений на производные антрацена и кислород. Известия АН СССР, Сер.физ., 1973, т.37, № 4, с.747-752.

8. Беляков В.А., Васильев Р.Ф., Федорова Г.Ф. Возбуждение ХЛ как обращение безызлучательной дезактивации. Влияние температуры на выходы химического возбуждения кетонов при окислении органических веществ. Известия АН СССР, Сер.физ., 1978, т.42,3, с,613-620.

9. Беляков В.А., Васильев Р.Ф., Федорова Г.Ф. Влияние вязкости и температуры на триплет-триплетный перенос энергии от кетонов при их химическом возбуждении в растворах.-Известия АН СССР, сер.физ, 1978, т.42, № 3, с.621-625.

10. Беляков В.А., Васильев Р.Ф., Федорова Г.Ф. Хемилюминесценция в реакциях жидкофазного окисления органических соединений. I. Методы получения количесивенных характеристик.-Химия высоких энергий, 1978, т.12, № 2, с.231-237.

11. П. Бурлакова Е.Б., Алесенко А.В., Молочкина В.М., Пальмина Н.П., Храпова Н.Г. Биоантиоксиданты в лучевом поражении и злокачественном росте. М.: Наука, 1975.

12. Бучаченко А.Л., Сагдеев Р.З., Салихов К.М. Магнитные и спиновые эффекты в химических реакциях. Новосибирск: Наука, 1978.

13. Васильев Р.Ф. Механизмы возбуждения хемилюминесценции. Успехи химии, 1970, т.39, № 6, с.1130-1158.

14. Васильев Р.Ф. Хемилюминесценция в растворах. I. Методы идентификации возбужденных состояний. Оптика и спектроскопия, 1965, т.18, № 2. с.236-244.

15. Васильев Р.Ф. Хемилюминесценция в растворах. П. Идентификация возбужденного состояния в реакциях жидкофазного окисления. -Оптика и спектроскопия, 1965, т.18, $ 3, с.415-421.

16. Васильев Р.Ф. Механизмы возбуждения хемилюминесценции. -Известия АН СССР, Сер.физ., 1982, т.46, № 2, с.323-329.

17. Васильев Р.Ф., Вичутинский А.А. 0 природе связи хемилюминесценции и окисления молекулярным кислородом .-Доклады АН СССР,1962, т.142, & 3, с.615-618.

18. Васильев Р.Ф., Вичутинский А.А., Черкасов А.С. Хемилюминесценция, активированная производными антрацена.-Доклады АН СССР,1963, т.149, № I, с.124-127.

19. Васильев Р.Ф., 1^сина И.Ф. Механизм хемилюминесценции при окислении органических веществ в растворе.-Доклады АН СССР, 1964, т.156, & 6, с.1402-1405.

20. Вичутинский А.А. Хемилюминесцентные методы определения абсолютной величины констант скорости обрыва перекисных радикалов в жидкой фазе.-Доклады АН СССР, 1964, т. 157, В I, с. 150-153.

21. Владимиров Ю.А. Сверхслабые свечения при биохимических реакциях. М.: Наука, 1966.

22. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972, - 252 с.

23. Владимиров Ю.А., Гаврилов В.Б., Лосьев Г.М., Азизова О.А., Оленев В. И. Изучение роли свободных радикалов COg , СООН и НСО в хемилюминесцентных реакциях. Журнал физической химии, 1980, т.54, Jfc 2, с.504-506.

24. Владимиров Ю.А., Гутенев П.И., Кузнецов П.И. Математическое моделирование кинетики цепного окисления липидов биомембран в присутствии ионов Fez+ .- Биофизика, 1973, т.18, № 6, с.1024-1030.

25. Владимиров Ю.А., Корчагина М.В., Оленев В.И. Хемшгоминесценция, сопряженная с образованием липидных перекисей в биологических мембранах. УЛ. Реакция , сопровождаемая свечением. Биофизика, 1971, т.16, № 5, с.952-955.

26. Владимиров Ю.А., Суслова Т.Е., Оленев В.И. Регуляторная роль ионов железа в перекисном окислении лшщцов в митохондриях." -В сб.: Митохондрии. Транспорт электронов и преобразование энергии (под ред.В.Е.Северина). М.: Наука, 1976: с.109-125.

27. Владимиров Ю.А., Оленев В.И., Суслова Т.Б., Потапенко А.Я. Механизм перекисного окисления липидов и его действие на биологические мембраны. Итоги науки и техники, сер. Биофизика (под ред.Ю.А.Владимирова), т.5, с.56-117. - М.: ВИНИТИ, 1975.

28. Владимиров Ю.А., Петренко Ю.М. Определение механизма действия антиоксидантов в мембранных системах по параметрам хемилюминесценции в присутствии закисного железа. Биофизика, 1976, т.21, № 3, с.424-427.

29. Владимиров Ю.А., Сергеев П.В., Сейфулла Р.Д., Руднев Ю.Н. Влияние стероидов на перекисное окисление мембран митохондрий печени. Молекулярная биология, 1973, т.7, № 2, с.247-253.

30. Владимиров Ю.А., Тафельштейн Э.Е., Козлов Ю.П. ВлияниеоС -токоферола на хемилюминесценцию митохондрий в присутствии Fez+ . Доклады АН СССР, 1969, т. 188, & 5, с.П63-П65.

31. Владимиров Ю.А., Черемисина З.П., Суслова Т.Б. Хемилюминесценция, сопряженная с образованием липидных перекисей в биологических мембранах. IX. Свечение в присутствии люминола;-Биофизика, 1972, т;17, & 4, с.702-705.

32. Владимиров Ю.А., Шаров А.П., Малюгин Э;Ф. Хемилюминесценция плазмы крови в присутствии ионов двухвалентного железа. -Биофизика, 1973, т.18, № I, с.148-152.

33. Воробьева Т.П., Козлов Ю.Н., Колтыпин Ю.В., Турмал А.П., Русин Б.А., Франкевич Е.А. Процессы окисления люминола, сопровождающиеся хемилюминесценцией. 3. Феноменологические закономерности в системе L- hfa. OCl . Известия АН

34. СССР, сер.хим., 1978, т.42, № 3, с.552-555.

35. Гаврилов В.Б. Механизм фотоинициированных свободнорадикаль-ных реакций и хемилюминесценция жирных кислот. Дне.канд. биол.наук. - Минск, 1981. - 190 с.

36. Девятков Н.Д. Влияние электромагнитного излучения миллимет-роваго диапазона длин волн на биологические объекты. Успехи физических наук, 1973, т.ПО, № 3, с.453-454.

37. Девятков Н.Д., Бецкий О.В., Гельвич Э.А., Голаят М.Б.,

38. Махов A.M., Реброва Т.Б., Севастьянова Л.А., Смолянская А.З.

39. Воздействие электромагнитных колебаний миллиметрового диалазона длин волн на биологические системы. Радиобиология,1981, т.21, № 2, с,163-17I.

40. Добротина Н.А., Кузьмина Е.И., Нелгобин А.С. I Всесоюзный биофизический съезд (3-8 авг.1982 г.): Тез.докл. - М.: МГУ,1982. т.З, с.162.

41. Дубур Г.Я. Защита синтетическими антиоксидантами биологических мембран при переокислительных процессах,- В сб.: Биомембраны. Структура, функции; методы исследования. Рига: Зинат-не, 1977, с.236-247.

42. Ермолаев В.Л., Антипенко Б.М., Свешникова Е.Б., Тачин B.C., Шахвердов Т.А. Механизм безызлучательного переноса энергии при обменно-резонансных взаимодействиях в конденсированной фазе. В сб.: Молекулярная фотоника. Л.: Наука, 1979, с. 4470.

43. Золин В.Ф., Коренева Л.Г. Редкоземельный зонд в химии и биологии. М.: Наука, 1980. 350 с.

44. Иванов И. И. Механизмы защитного действия токоферолов в биологических мембранах и некоторые родственные вопросы.

45. В сб.: Биомембраны. Структура, функции, методы исследования.-Рига: Зннатне, 1977, с.248-260.

46. Иванов И.И., Бузас С.К., Гольдштейн Н.И., Тарусов Б.Н. Применение активаторов для изучения механизмов хемилюминесценции при окислении жирных кислот и биолипидов. Биофизика, 1971, т. 16, Js 4, с.735-738.

47. Иванов И.И., Петрусевич Ю.М. Регистрация спектров хемилюминесценции ненасыщенных жирных кислот и некоторых биолипидов. -Научные докл. высшей школы, сер.Биологические науки, 1965,3, с.81-83.

48. Иванов И.И., Петрусевич Ю.М. Исследования спектров хемилю-минесценции ненасыщенных жирных кислот и некоторых биолипи-дов. В сб.: Свободнорадикальные процессы в биологических системах. Труды ШИП, т.16, М.: Наука, 1966, с.13-15.

49. Ильина С.А., Бакаушина Г.Ф., Гайдук В.И., Храпко A.M., Зиновьева Н.Б. 0 возможной роли воды в передаче воздействия излучения миллиметрового диапазона на биологические объекты;-Биофизика, 1979, т.24, № 3, с.513-518.

50. Казаков В.П. Хемилюминесценция уранила, лантаноидов и d -элементов. М.: Наука, 1980.

51. Кейтс М. Техника лшшдологии. М.: Мир, 1975.

52. Козлов Ю.П., Глущенко Н.Н., Образцов В.В., Орлов С.Н., Каган В.Е., Данилов B.C. Свободнорадикальное окисление липидов биологических мембран. I. Автоокисление высших непредельных жирных кислот в различных условиях; Биофизика, 1973, т.18, & 6, I03I-I036.

53. Козлов Ю.П., Данилов B.C., Каган В.Е., Ситковский М.В. Свободнорадикальное окисление липидов в биологических мембранах. М.: МГУ, 1972.

54. Коренманн И.М. Органические реагенты в неорганическом анализе: Справочник. М.: Химия, 1980, 448 с.

55. Левина Н.В., Орлов С.Н., Петрусевич Ю.М., Тарусов B.HV Хмилюминесценция в модельных системах белок-липид под воздействием формалина. Биофизика, 1976, т.21, № 3, с.420-423.

56. Луковская Н.М., Костишина А.П., Богословская Т.А. Хемилюми-несцентные спектры люминола и спектры поглощения и люминесценции продуктов его окисления. Украинский химический журнал, 1978, т.44, №10, с.1105-1107.

57. Мамедов Т.Г., Конев В.В., Попов Г."А. Хемилюминесценция в реакциях липоксигеназного и гемопротеидного окисления ненасыщенных жирных кислот. Биофизика, 1973, т.18, № 4, с.643-648.

58. Мамедов Т.Г., Попов Г.А., Конев В.В. Спектральный состав сверхслабой биохемилюминесценции растений. Доклады АН СССР, 1969, т. 187, }& 4, с.928-930.

59. Мерзияк М.Н., Соболев А.С. Роль супероксидных анион-радикалов и синглетного кислорода в патологии мембран. В сб.: Молекулярные механизмы патологии мембран.- Итоги науки и техники. Сер. Биофизика, т.5. М.: ВИНИТИ, 1975, с.118-165.

60. Метелица Д.И. Активация кислорода ферментными системами. М.: Наука, 1982.

61. Нейфах Е.А. Свободнорадикальный механизм сверхслабой хемилюминесценции, сопряженной с перекисным окислением ненасыщенныхжирных кислот. Биофизика, 1971, т. 16, № 3, с."560-563.

62. Новицкая Г.В. Методическое руководство по тонкослойной хроматографии фосфолипидов. М.: Наука, 1972.

63. Нурмухаметов Р.Н. Поглощение и люминесценция ароматических соединений. М.: Химия, 1971. 215 с.

64. Оленев Б. И. Исследование кинетики и регуляции перекисного окисления липидов в митохондриальных мембранах. Дис.канд. биол.наук. Москва, 1976.

65. Орлов С.Н. Исследование свободнорадикального окисления высших жирных кислот и фосфолипидов биологических мембран. Дис. канд. биол. наук. М., 1975.

66. Орлов С.Н., Данилов B.C., Малков Ю.А., Ребров В.Г. Свободнорадикальное окисление липидов биологических мембран.

67. V. Флуоресценция жирных кислот и фосфолипидов. Биофизика, 1975, т.20, В 2, с.228-232.

68. Орлов С.Н., Данилов B.C., Хрущев А.А., Швецов Ю.Н; Свободнорадикальное окисление липидов биологических мембран.

69. VI. О природе хемилюминесценции линолевой кислоты. Биофизика, 1975, т.20, № 4, с.628-632.

70. Осипов А.Н. Изучение свободных радикалов, образующихся при перекисном окислении, методом ЭПР. Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 1983.

71. Осипов А.Н., Савов В.М., Зубарев В.Е., Азизова 0;А., Владимиров Ю.А. Участие железа в образовании ОН-радикалов в системе, генерирующей супероксидный анион-радикал. -Биофизика, 1981, т.26, № 2. с.193-198.

72. П.тренко Ю.М. Кинетика и механизм процессов, приводящихк нарушению барьерных функций мембран митохондрий при пере-кисном окислении липидов. Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 1978.

73. Петренко Ю.М., Рощупкин Д.И., Владимиров Ю.А. Кинетика взаимодействия закисного железа с окисленными липидами и возможность хемилюминесцентного определения гидроперекисей.-Виофизика, 1975, т.20, & 4, с.608-6II.

74. Полуэктов Н.С., Коненко Л.И. Спектрофотометрические методы определения индивидуальных РЗЭ. Киев: Наукова Думка, 1968.

75. Пучков Е.О., Путвинский А.В., Рощупкин Д.И., Владимиров Ю.А. Влияние температуры на структурное состояние липидов в мембранах митохондрий. Биофизика, 1976, т.21, № 2,с.387-388.

76. Рокицкий П.Ф. Биологическая статистика. Минск: Высшая школа, 1964, с.89-92.

77. Сергеев П.В., Владимиров Ю.А., Сейфулла Р.Д., Денисов Ю.П., Руднев Ю.Н. Роль химической структуры стероидных гормоновв ингибировании перекисного окисления липидов в мембранах митохондрий. Вопросы мед.химии, 1974, т.20, № 4, с.359-362.

78. Скулачев В.П. Соотношение окисления и фосфорилирования в дыхательной цепи. М.: Изд-во АН СССР, 1962.

79. Суслова Т.Е. Хемилюминесцентное исследование перекисного окисления липидов в митохондриальных мембранах и растворах олеиновой кислоты. Дис. канд. биол.наук. М., 1971;

80. Суслова Т.Е., Оленев В.И., Владимиров Ю.А. О роли ионов железа в хемилюминесценции липидов. Биофизика, 1968, т.13, № 4, с.723-726.

81. Суслова Т.Б., Оленев В.И., Владимиров Ю.А. Хемилюминесцен#ция, сопряженная с образованием липидных перекисей в биологических мембранах. I. Свечение митохондрий при добавлении Fez+ . Биофизика, 1969, т.14, В 3, с.510-516.

82. Суслова Т.Б., Оленев В.И., Корчагина М.В., Владимиров Ю.А. Хемилюминесценция, сопряженная с образованием липидных перекисей в биологических мембранах. 1У. Роль изменения валентности железа в этом процессе. Биофизика, 1970, т.15, & 4, с.622-628.

83. Тарусов Б.Н., Иванов И.И., Петрусевич Ю.М. Сверхслабое свечение биологических систем. М.: МГУ, 1967.

84. Тарусов Б.Н., Поливода А.И., Журавлев А.И. Обнаружение хемилюминесценции в печени облученных мышей. Радиобиология, 1961, т.1, }& I, с.150-151.

85. Тарусов Б.Н., Поливода А.И., Куравлев А.И. Изучение сверхслабой спонтанной хемилюминесценции животных клеток. -Биофизика, 1961, т.6, № 4, с.490-492.

86. Храпова Н.Г. Кинетические особенности действия токоферолов как антиоксидантов. Биофизика, 1977, т.22, № 2, с.436-443.

87. Черемисина З.П., Оленев В.И., Владимиров Ю.А. Хемилюминесценция, сопряженная с образованием липидных перекисей2.+в биологических мембранах. УШ. Реакции Fe и липидных перекисей на стадии "быстрой вспышки" свечения. Биофизика, 1972, т.17, В 4, с;605-610.

88. Шляпинтох В.Я., Карпухин О.Н., Постников Л.М., Захаров И.В., Вичутинский А.А., Цепалов В.Ф. Хемилюминесцентные методы исследования химических процессов. М.: Наука, 1966.

89. Эмануэль Н.М. Кинетика экспериментальных опухолевых процессов. М.: Наука, 1977.

90. Эмануэль Н.М., Денисов Е.Т., Майзус З.К. Цепные реакции окисления углеводородов в жидкой фазе. М.: Наука, 1965.

91. Эмануэль Н.М., Лясковская Ю.Н. Торможение окисления жиров. М#: Пшцепромиздат, 1961.

92. Яцимирский К.Б., Костромина Н.А.1, Шека З.А., Давиденко Н.К., Крисс Е.Е., Ермоленко В.И. Химия комплексных соединений редкоземельных элементов. Киев: Наукова Думка, 1966;

93. Adam W., Zinner К. Determination of Chemiexcitation yields in the thermal generation of electronic excitation from1,2-dioxetanes. In "Chemical and biological generation of excited states". New York: Acad.Press, 1982,p.115-152.

94. Allen R.C. Biochemiexcitation: chemiluminescence and the study of biological oxygenation reactions. In "Chemical and biological generation of excited states"(W.Adam, G.Ci-lento, eds.)! New York: Acad.Press, 1982, p.310-344.

95. All en R.C. Lucigenin chemiluminescence: a new approach, to the study of polymorphonuclear leucocyte redox activity.-In "Bioluminescence and chemiluminescence" (DeLuca M.A., McElroy W.D.,eds,). New York: Acad.Press, 1981, p.63-73.

96. Allen R.С.,Loose L.D. Phagocytic activation of a luminol-de pendent chemiluminescence in rabbit alveolar and.peritoneal macrophages.-Bioch.Biophye.Res.Comm.1976,69,N1,p.245-247.

97. Allred C.D.*Margetts J. Luminol-induced neutrophil chemilu minescence.- Biochim.Biophys.Acta,1980, 631, N2,p.380-385.

98. Andersen B.R., Harvath L. Light generation with Fenton's re agents. Its relationship to granulocyte chemiluminescence.- Biochim.Biophys.Acta, 1979, 584, N1, p.164-173.

99. Anderson S.M., Krinsky N.I. Protective action of carotenoid pigments against photodinamic damage to liposomes. Photo-chem.Photobiol., 1973, J8, N5, 403-408.

100. Anderson S.M., Krinsky N.I., Stone N.J., Clagett D.C. Effec of singlet oxygen quenchers on oxidative damage to.liposomes initiated by photosensitization or by.radiofrequency discharge.- Photochem.Photobiol.,1974, 20, N1, p.65-69.

101. Arneson R.M. Substrate-induced chemiluminescence of xanthine oxidase and aldehyde oxidase. Arch.Biochem.Biophys., 1970, 1J6, N2, p.352-360.

102. Babior B.M. Recent studies on oxygen metabolism in human ne utrophils: superoxide and chemiluminescence. In:"Superoxide and superoxide dismutases" (A.M.Michelson, J.M.McCord, I.Pridovich, eds.): New York: Academic, 1977, p.271-281.

103. Baird M.B.,Massie H.R.,Piekielman M.J. Formation of lipid peroxides in isolated rat liver microsomes by singlet molecular oxygen.- Chem.Biol. Interact. 1977, 16, N2, p.145-153.

104. Bangham A.D. The liposome as a membrane model.-^"Permeability and function of biological membranes" (Ed. L.Bolis et al.). Amsterdam: North-Holland Publ.Сотр.,1970, p.195-206.

105. Bangham A.D., De Cier J., Greville G.D. Osmotic properties and water permeability of phospholipid liquid crystals.

106. Chem.Phys.Lipids 1967, 1, p.225-246. •

107. Barela T.D., Sherry A.D, A simple, one-step fluorometric me^thod for determination of nanomolar concentrations of terbium. Analytical Biochemistry 1976,.71, N2, 351-357.

108. Barnes R., Connelly J.L., Jones O.T.G. The utilization of : iron and its complexes by mammalian mitochondria. Biochem.

109. J. 1972, 128, N5, p.Ю43-Ю55. .

110. Belyakov V.A., Fedorova G.F., Vasil'ev R.F. The importance and use of energy.transfer in the liquid phase chemiluminescence. Spectrosc.Lett, 1978, Ц, N7, p.549-561. .•

111. Bligh E.G., Dyer W.J.A rapid method of total lipid extrac- . tion and purification. Can.J.Biochem.Physiol. 1959, 37, U8, p.911-917.

112. Bogan D.J. Gas-phase dioxetane chemiluminescence. r In "Chem. and biol. generation of excited states" (W.Adam, G.Cilento, eds,). Hew York: Acad.Press,1982, p,37-84. .

113. Boveris A., Cadenas E., Chance B. Low-level chemiluminescence of the lipoxygenase reaction. Photobiochem.Photobiophys. 1980, 1, N3, p.175-182. .

114. Boveris A., Cadenas E., Chance B. Ultraweak chemiluminescence : a sensitive assay for oxidative radical reactions.,- Federation Proc., Fed. Am.Soc.Exp.Biol. 1981, 40, N2, p.195-198.

115. Boveris A., Cadenas E., Reiter R,, Filipkovsky M., Nakase Y., Chance B. Organ chemiluminescence: non-invasive assay for oxidative radical reactions. Proc.Hatl.Acad. Sci.USA 1980, XL* N2, 347-351.

116. Cadenas E., Boveris A., Chance B, Chemiluminescence of lipid vesicles supplemented with cytochrome С and hydroperoxide. -Biochem.J, 1980, 188, 3, p.577-583.

117. Caswell A.H., Hutchinson J.D. Utilization of membrane-bound cations by a fluorescent technique. Biochem,Biophys.Res. Communs. 1971, 42, N1, p.43-49.

118. Cederbaum A.I., V/ainio W.W. Bindings of iron and copper to bovine heart mitochondria. 1. Quantitation aspects and stability. J.Biol.Chem. 1972, 247, N11, p.4593-4596.

119. Cederbaum A.I., Wainio W.W, Binding of iron and copper to bovine heart mitochondria. 111. Role of mitochondrial.phospholipids and thiols. J.Biol.Chem. 1972, 247, N11, p.4615-4619

120. Chio K.S., Russ U., Fletcher В., Tappel A.L. Peroxidation of subcellular organelles: formation of lipofuscin-like fluorescent pigments. Sciens 1969, 166, N3912, p.1535-1536.

121. Chio K.S., Tappel A.L.Inactivation of rybonuclease and other enzymes by peroxidasing lipids and by malonaldehyde. Biochem., 1969, 8, N7, p.2827-2832.

122. Christophersen B.O. Formation of monohydropolyenic fatty acids from lipid peroxides by a glutathione peroxidase. Biochem. Biophys. Acta 1968, 164, N1, p.35-46.

123. Cilento G, Electronic excitation in dark biological processes In "Chemical and biological generation of excited states" (W.Adam, G.Cilento, eds,). New York: Acad.Press, 1982, p.279-309.

124. Cohen G, The generation of hydroxyl radicals in biological systems: toxicological aspects, Photochemistry and Photobi-ology ;1978, 28, N5, p.669-675,

125. DeChatelet L.R.,Long G.D., Shirley P.S., Bass D.A., Thomas ' M.J.,Henderson F.W., Cohen M.S. Mechanism of the luminol-de-pendent chemiluminescence of human neutrophils. J.Immunol. 1982, 129» N4, p. 1589-1593.

126. DeGroot J.J.M.C., Garssen G.J., Vliegenthart J.F.G., Boldingh . J. Biochim.Biophys.Acta 1973, 326, N1, p.279-284.

127. Duran IT. Singlet oxygen in biological processes. In "Chem. and biol. generation of excited states" (W.Adam, G.Cilento, eds.). New York: Acad.Press, 1982, p.345-370.

128. Finazzi-Agro A., Giovagnoli C., DeSole P., Cabalrese L., Ro-tilio G,, Mondove B. Erythrocuprein and singlet oxygen. -FEBS Letters 1972, 21., N. 1, p. 183-185.

129. Finkelstein E., Rosen G.M., Raukman E.J. Spin trapping of superoxide and hydroxyl radicals: practical aspects. Arch. Biochem.Biophys. 1980, 200, N1, p.1-16.

130. Fletcher B.L., Tappel A.L. Fluorescent modification of serum albumin by lipid peroxidation. Lipids 1971, 6, N3,p.172-175

131. Fong К., McCay P.B,, Poyer J.L., Keele B.B., Misra H. Evidens that peroxidation of lysosomal membranes is initiated by hydroxyl free radicals produced during flavin enzyme activity. -J.Biol.Chem. 1973, 248, N23, p.7792-7797.

132. Foote C.S, Photosensitized oxidation and singlet oxygen. -In "Free radicals in biology" (Ed. W.A.Pryor). New York: Acad.1. Press, 1976, p.85-133.

133. Fridovich I. Oxygen radicals, hydrogen peroxide and oxygen toxicity. In "Free radicals in biology" (W.A.Pryor, ed. V.1. New York: Acad.Press, 1976, p.239-277.

134. Gamage P.Т., Matsushita S. Interaction of the autoxidized products of linoleic acid with enzyme proteins. Agr.Biol.Chem.1973, 37» N1, p.1-8.

135. George P. The fitness of.oxygen. -.In."Oxidase and.related redox systems" (King.Т.Е., Mason H*S., Morrison M., eds.),

136. V.1. New.York: Wiley, 1965, p.3-36.

137. Gibson Q.H., Hastings I.W. Theoxidation of reduced flavin, mononucleotide by molecular oxygen. Biochem.J. 1962, 83, N2, p.368-377. . . .

138. Goldstein J.M., Cerquera M., bind S., Kaplan H.B. Evidence • that superoxide-generating system of human leucocytes.is associated with.the cell surface, J.Clin,Invest. 1977, 59, N2, p,249-254, . • :

139. Gray J.I. Measurement of lipid oxidation: a review. J.Amer. Oil Chem.Soc. 1978, N6, p,539-546. .■

140. Haas Y., Wiierzberg E. Chemiluminescence of luminol and related compounds under electron-beam excitation. Enhancement.of light yields by addition of dyes. J.Phys.Chem. 1979, 83, N21, p.2692-2696. .

141. Halliwell B. Generation of the superoxide radical during the peroxidatic oxidation of NADH by catalase at acid pH values. FEBS Letters, 1977, 80» K2> P.291-293.

142. Halliwell B. Superoxide-dependent formation.of hydroxyl radicals in the presence of iron chelates: it is.the mechanism for hydroxyl radical production in biochemical systems? -PEBS Letters 1978, 92, N2, p.321-326.

143. Hassan H,M., Fridovich I. Regulation of the.synthesis.of SOD in E.coli: induction by methylviologen. J.Biol.Chem. 1972, 252, N18, p.7667-7672.

144. Hassan H,M., Fridovich I.Regulation of SOD synthesis .in E., . coli: glucosa effect. J.Bacterid. 1977,132, N2, p.505-510.

145. Henry J.P., Michelson A.M. Superoxide and chemiluminescence, In "Superoxide and superoxide dismutases"(Michelson A.M., McCord J.M., Pridovich I., eds.). London: Academic, 1977,p.283-290.

146. Hirsch S., Speiser S, Concentration effects in the chemilumi-i-nescence of.luminol, J.Photochem, 1979, 10, N2, p.159-162.

147. Hochstein P,, Jain S.K, Association of lipid peroxidation and polymerization of membrane proteins with erythrocyte aging. -Federation Proc. 1981, 40, N2, p.183-188.

148. Hochstein P., Uordebrand K., Ernster L, Evidence for the involvement of iron in the ADP-activated peroxidation of lipids in microsomes and mitochondria, Biochem.Biophys,Res.Communs 1964, 14, N2, p.323-328.

149. Hodgson E.K., Fridovich I. The role of superoxide in the chemiluminescence of luminol. Photochem.Photobiol. 1973, 18, N6, p.451-455.

150. Hodgson E.K,, Pridovich I. The mechanism of the activity carbonate-dependent luminescence of xanthine oxidase. Arch.Biochem. Biophys. 1976, 172, N1, p.202-205.

151. Howard J.A., Ingold K.U. The self-reaction of sec-butylperoxyк г tradicals,- Confirmation of'the Russel mechanism. J.Amer.Chem . Soc. 1968,-20, IT4, p. 1056-1058.

152. Hunter P.E., Gebicki J,M,, Hoffsten P.E., Weinstein J.,Scott A, Swelling and lysis of rat liver mitochondria induced by ferrous ions, J.Biol,Chem. 1963, 238, N2, p.828-835.

153. Ikariyama Y,, Suzuki S,,Aizawa M. Delayed luminescence of lu-minol initiated by a membrane-bound peroxidase. Appl.Bioch.' Biotechnol, 1981, 6, N3, p.223-235.

154. Illinger K.H. Millimeter-wave and far-infrared absorption in biological systems. In "The physical basis of electromagnetic interactions with biological systems" (L.S.Taylor, A.Y. Cheung, eds.). Maryland: Univ.Maryland, 1977, p.43-66.

155. Isacsson U., Wettenmark G. Chemiluminescence in-analytical chemistry, Anal,Chim.Acta 1974, 68, N2, p.339-362. .

156. Itzahaki R.P,, Gill D.M.A microbiuret method for estimating proteins, Anal,Biochem. 1964, 9, N4, p.401-410.

157. Jaggard D,L., Lords J.L. Cellular effects: millimeter waves and Raman spectra report.of.a panel discussion. - Proc. of IEEE, 1980, 68, N1, p.114-119. . - .

158. Kachar В., Cinner K., Vidigal C.C.C., Shimizu Y., Cilento G. Excitation of eosin when catalysing electron transport.in biochemical systems. Arch.Biochem.Biophys. 1979,195.N1,p.245-247.

159. Kakinuma K., Boveris A., Chance B. H202 generation in subcellular fractions of leucocytes assayed by cytochrome.с peroxy-dase method. PEBS Letters 1977, 74» N2» P.295-299.

160. Kameda К., Ono Т., Imai Y. Participation of superoxide, hydro gen peroxide, and hydroxyl radicals in UADPH-cytochrome E-450 reductase-catalysed peroxidation of methyllinoleate. Biochim.Biophys. Acta 1979, 572, И1, p.77-82.

161. Kasha M. Commentary on a long-range energy transfer with z-' dependence triplet-triplet exciton energy transfer. Photo. chem.Photobiol. 1979, 30, N1, p. 185-186.

162. Kearns D.R. Physical and chemical properties of singlet mo. lecular oxygen. Chem.Reviews, 1971, H,N4, p.395-427.

163. Khan A.U,, Kasha M. Physical-theory of.chemiluminescence in systems evolving molecular oxygen. J.Amer.Chem.Soc. 1966, 88, N7, p.1574-1576.

164. Khan A.U,, Kasha M. Chemiluminescence arising from .simultane-r. ous transitions in.pair.of.singlet, oxygen molecules. J.Amer Chem,Soc, 1970, 92, N11, p.3293-3300. .

165. King M.M., Lai E.K., McCay P.B. Singlet oxygen production associated with enzyme-catalysed lipid.peroxidation'in liver microsomes, J.Biol.Chem. 1975, 250, N16, p.6496-6502. .

166. Knowles P.P., Gibson J.P., Pick P,M,, Bray R.C. Electron-. spin-resonance evidence for enzymic reduction.of oxygen to a. free radical, the superoxide ion. Biochem.J. 1969, 111, N1, p.53-58.

167. Kunec-Vajic E. Effect of cholinesterase . on the. chemiluminescience of luminol. Experientia 1981, 37, N5, р.4б2-4бЗ.

168. Lai C,S., Piette L,H, Hydroxyl radical production involved in lipid peroxidation of rat liver microsomes. Biochem.Biophys. Res,Communs. 1977, 78, N1, p.51-54.

169. Lamola A.A., Yamane Т., Trozzolo A.M. Cholesterol hydroperoxide formation in red cell membranes and photohemolysis in erythropoetic protoporphyria. Science 1973, 179, N4078, : P.1131-1133. .

170. Lavelle P., Michelson A.M., Dmitrijavic.L. Biological protection, by superoxide dismutase, Biochem,Biophys.Res.Communs. 1973, N2, p.350-357.

171. Levis S.E., Wills E.D. The destruction of -SH groups of proteins and aminoacids by peroxides of unsaturated fatty acids, Biochem,Pharmacol, 1962, Ц, N4, p,901-908.

172. Lind J., Merenyi G. Determination of the chemiluminescence quantum yield of luminol in rapid chemical reactions, Chem. Phys,Letters 1981, 82, N2, p.331-334,

173. Little C., O'Brien P.J. An.intracellular GSH-peroxidase with a lipid peroxide substrate. Biochem.Biophys.Res.Communs. 1968, 31, N1, p.145-150.

174. Little C., O'Brien P.J. The effectiveness of a lipid peroxide in oxidizing proteins and non-protein thiols. Biochem.J. 1968, 106, N2, p.419-423.

175. Loschen G., Plone L., Chance B. Respiratory chain linked HgOg production in pigeon heart mitochondria. PEBS Letters 1971, 18, N2, p.261-264.

176. Marino D.F., Ingle J.D, Determination of free chlorine in water by chemiluminescence reaction with hydrogen peroxide. -Anal.Chim.Acta 1981, 123. p.247-253.

177. McCapra P, The chemistry of bioluminescence. In "Bioluminescence in action" (Ed. P.J.Herring), London: Academic, 1978, p.49-73.

178. McCapra F., Tutt D,, Topping R.M. The chemiluminescence of acridinium phenyl carboxylates in the assay of glucose and hydrogen peroxide, Proc, of the Int, symp, on Analyticalapplications of bio- and chemiluminescence. Brussel,1978,p.54

179. McCord J.M,, Chapo J.D., Fridovich I. SOD assays: a review of methodology. In "Superoxide and superoxide dismutases" (Michelson A.M., McCord J.M., Fridovich I., eds.). New York: Acad.Press, 1977, p.11-18.

180. McRee D.I, Soviet and Eastern European research on biological effects of microwave radiation. Proc. of the IEEE, 1980, 68, N1, p.84-91. .

181. Mead J.F. Free radical mechanisms -of lipid damage and consequences for cellular membranes. In "Free radicals in biology", V.1 (Ed. W.A,Pryor). New York: Acad.Press, 1976, .p.51-68

182. Merenyi G,, Lind J. Role of a peroxide intermediate • in. the. chemiluminescence of luminol. A mechanistic study. J.Amer. Chem.Soc. 1980, 102, N18, p.5830-5835. . . . .

183. Michaelson S.M, Microwave biological effects: an overview. -Proc. of the IEEE, 1980, 68, N1,p40-49.

184. Michelson A.M. Production of superoxide by metal ions.- In "Superoxide and superoxide dismutases" (Michelson A.M., . McCord J.M,, Fridovich I., eds.). London: Academic, 1977, p.77-86.

185. Miller R.W. Reactions of superoxide anion, catechols, and cytochrome c. Can.J.Biochem. 1970, 48, N8, p.935-939,

186. Misra PI.P. Generation of superoxide free radical during.the autooxidation of thiols. J.Biol;Chem. 1974, 249, N7, p.2151 -2155.

187. Misra H.P., Fridovich I. The univalent reduction of oxygen by reduced flavins and quinones, J,Biol.Chem. 1972, 247, N1,p.188-192,

188. Misra H.P.* Squatrito P.M. The role of superoxide:anion ifl peroxidase-catalysed chemiluminescence of luminol. Arch.Biochem.Biophys. 1982,.215* H1, p.59-65.

189. XTakano M.,.Sugioka K. Mechanism of chemiluminescence frdm. li-noleate-lipoxygenase system. Arch.Biochem.Biophys. 1977,181, 1T2, p.371-383.

190. Neta P., Dorfman L.M. Reactivity of the hydroxyl radical in aqueous solutions. Adv.Chem., Ser., 1968, §1, p.222-231.

191. Nillson R, On the role of free radicals and hydrogen.peroxide in some biological oxidations. Stockholm: Roy.Univ.Thesis, 1969.

192. Nilsson R,, Kearns D.R. Some useful heterogeneous systems.for photosensitized generation of singlet oxygen, Photochem.Pho tobiol, 1974, 12, K2, p.181-184.

193. O'Brien P.J, Intracellular mechanismsfor the decomposition of the lipid peroxide, 1.Decomposition of a.lipid peroxide by me tal ions, heme compounds and nucleotides. Can.J.Biochem. 1969, 47, N2, p.485-492.

194. Kallman H.P., Spruch G.M., eds.). NewYork: Wiley, 1962,p.26-45.

195. Poyer J.L., McCay Р.Б. Reduced triphosphopyridine nucleotide oxidase-catalysed alterations of membrane phospholipids. J.

196. Biol.Chem. 1971, 246, N1, p.263-269.

197. Russel G.A. Deuterium-isotope effects in the autoxidation of aralkyl hydrocarbons. Mechanism of the interaction of peroxy radicals. J.Amer.Chem.Soc. 1957, 79, N14, p.3871-3877. .

198. Stoner C.D., Sirak H.D. Osmotically-induced alterations in volume and ultrastructure of mitochondria isolated from rat liver and bovine heart. J.Cell.Biol. 1969, 43, N3,p.521-538

199. Strickland E.H., Davis B.C. Fe^+ uptake by rat liver mitochondria. Biochim.Biophys.Acta 1965, 104. N2, p.596-599.

200. Sun A.Y. The effect of lipoxidation on synaptosomal (Na+,K+)-ATP-ase isolated from the cerebral cortex of squirrel monkey. Biochim.Biophys.Acta 1972, 966, N2, p.350-360.

201. Suzuki N., Wakatsuki S., Isawa Y. Phospha-1,2-dioxetanes: possible chemiluminescent intermediates of fotooxygenation of benzophenone and fluorenone triphenylphosphazines. Tetrahed ron Lett. 1980, 21., N24, p.2313-2314.

202. Svingen B.A., O'Neal F.O., Aust S.D. The.role of.superoxide• and singlet oxygen in lipid peroxydation. Photochem.Photo-biol. 1978, 28, N5, p.803-810. .

203. Tappel A.L. Lipid peroxidation damage to cell components. -Federation Proc. 1973, 32, N8, p.1870-1874.

204. Thomas M.J., Mehl K.S., Pryor W.A, The role of superoxide ani on in the xantine oxidase-induced autoxidation of.linoleic acid. Biochem.Biophys.Res.Communs. 1978, 83, N3, p.927-933.

205. Tien M., Svingen B.A., Aust S.D. Superoxide dependent lipid peroxidation. Federation Proc. 1981, 40, N2, p.179-182.

206. Torinuki W., Kumai N., Miura T. Active oxygen and ultraweak chemiluminescence in rat skin. Igaku no Ayumi 1982, 121, N1, p.25-26.

207. Totter J.R., Medina 7.J., Scoseria J.L. Luminescence during the oxidation of hypoxanthine by xanthine oxidase in.the presence of dimethylbiacridinium nitrate, J.Biol,Chem, 1960, 235, N1, p.238-241,

208. Vladimirov Yu.A., Gavrilov V.B,, Olenev V.I., Azizova O.A.,»

209. Remizov А.И. Low temperature • chemiluminescence of UV -.irradiated, methyllinoleic acid, Studia biophys. 1978, 70, N3, . p.189-192. . . . : :

210. Vladimirov Yu.A., Olenev V.I,, Suslova T.B.,.Cheremisina Z.P. Lipid peroxidation, in.mitochondrial membrane. Advances in Lipid Research 1980, 17., p. 174-249. . ■

211. Vladimirov Yu.A,, Roshchupkin D.I,, Fesenko E.E. Photochemical reactions in amino acid.residues and inactivation of en-; zymes during.UV-irradiation. A review. Photochem.Photobiol.1970, 11,N4, p.227-246,

212. Walling C, Fenton's reagent revisited. Acc.Chem.Res. 1975, 8, N1, p.125-131. .244» White E.H., Bursey M.M. Chemiluminescence of luminol and rela ted hydrasides.The Light emission step. J.Amer.Chem.Soc.1964, 86» N5, p.941-942. . .

213. Whitehead T.P., Kricka L.J., Carter T.J.N., Thorpe G.H.G. Analytical luminescence: its potential in clinical.laboratory. Clinical Chemistry 1979, 25, N9, p.1531-1546.

214. Y/ildes P.D., White E.H. The dioxetane-sensitized chemiluminescence of lanthanide chelates. A chemical source„of "monochromatic " light, J.Amer.Chem,Soc, 1971,93,N23,p.6286-6288

215. Wills E.D. Effects of lipid peroxidation on membrane-bound enzymes of the endoplasmic reticulum. Biochem.J. 1971, 123, N5, p.983-991.\ 231

216. Wood P.M. The redox potential of the system oxygen superoxi de. - PEBS Letters 1974, 44» » P.22-24.

217. Wiirzberg E,, Haas Y. Apulse radiolysis study , of the Chemilumi nescence of some luminol-like molecules. J.Phys.Chem. 1979, 83, N21, p.2687-2692,

218. Wybourne D.C. Spectroscopic properties of rare earths. New York: Wiley, 1965.